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Dieses Protokoll stellt die Differenzierung humaner Osteoklasten aus induzierten pluripotenten Stammzellen (iPSCs) dar und beschreibt Methoden zur Charakterisierung von Osteoklasten und Osteoklastenvorläufern.
Dieses Protokoll beschreibt die Vermehrung und Passage von humanen iPS-Zellen und ihre Differenzierung in Osteoklasten. Zunächst werden iPS-Zellen in eine einzellige Suspension dissoziiert, um sie in der Induktion des Embryoidkörpers weiter zu verwenden. Nach der mesodermalen Induktion durchlaufen die Embryoidkörper eine hämatopoetische Differenzierung, wodurch eine schwimmende hämatopoetische Zellpopulation entsteht. Anschließend durchlaufen die geernteten hämatopoetischen Zellen einen Makrophagenkolonie-stimulierenden Faktorreifungsschritt und schließlich eine Osteoklastendifferenzierung. Nach der Osteoklastendifferenzierung werden die Osteoklasten durch eine Färbung für TRAP in Verbindung mit einer methylgrünen Kernfärbung charakterisiert. Osteoklasten werden als mehrkernige, TRAP+-Polykaryonen beobachtet. Ihre Identifizierung kann durch die Cathepsin-K-Färbung weiter unterstützt werden. Knochen- und Mineralresorptionsassays ermöglichen eine funktionelle Charakterisierung und bestätigen die Identität von echten Osteoklasten. Dieses Protokoll stellt eine robuste und vielseitige Methode zur Unterscheidung menschlicher Osteoklasten von iPS-Zellen dar und ermöglicht eine einfache Anwendung in Anwendungen, die große Mengen an funktionellen menschlichen Osteoklasten erfordern. Denkbar wären Anwendungen in den Bereichen Knochenforschung, Krebsforschung, Tissue Engineering und Endoprothesenforschung.
Osteoklasten (OCs) sind hämatopoetische 1,2, vielseitige Zelltypen, die häufig von Forschern in Bereichen wie der Erforschung von Knochenkrankheiten 3,4, derKrebsforschung 5,6, dem Tissue Engineering 7,8 undder Endoprothesenforschung 9,10 verwendet werden. Nichtsdestotrotz kann die OC-Differenzierung eine Herausforderung darstellen, da die Fusion von mononukleären Vorläufern zu ....
HINWEIS: Alle in diesem Protokoll verwendeten Reagenzien finden Sie in der Materialtabelle. Sofern nicht anders angegeben, wurden alle Medien vor der Verwendung auf 37 °C voräquilibriert. Alle Zentrifugationsschritte werden bei 37 °C und im langsamsten Beschleunigungs-/Verzögerungsmodus durchgeführt. Sofern nicht anders angegeben, wird der Überstand immer mit Einweg-Pasteur-Glaspipetten entfernt.
1. Auftauen und Vermehrung humaner iPS-Zellen
Überwachung der Zellmorphologie während des gesamten Differenzierungsprozesses
Alle unten beschriebenen Ergebnisse wurden mit der MCND-TENS2 iPSC-Linie zur OC-Differenzierung generiert. Diese iPSC-Linie wurde bereits in mehreren Studien eingesetzt 32,33. Nichtsdestotrotz wurden auch andere iPSC-Linien mit diesem Differenzierungsprotokoll erfolgreich eingesetzt.
Regelmäßige visuelle Untersuchungen zeigen untersch.......
Dieses Protokoll bietet eine zuverlässige und robuste Methode zur Unterscheidung von iPS-Zellen in OCs. Dennoch gibt es einige Fallstricke, die während des gesamten Differenzierungsprozesses auftreten können. Humane iPSC-Linien, die aus Zellen unterschiedlicher Gewebeherkunft erzeugt wurden, wurden mit diesem Protokoll erfolgreich differenziert33. Beim Einfrieren von iPS-Zellen (siehe Protokollschritt "3. Einfrieren von iPS-Geräten") wurde eine Vertiefung zum Zeitpunkt des Durchgangs wieder in.......
Die Autoren erklären, dass es keine konkurrierenden Interessen gibt.
Die Autoren danken den Mitgliedern des Giachelli-Labors für ihre technische Hilfe und Unterstützung. Wir danken dem W. M. Keck Mikroskopiezentrum und dem Leiter des Keck-Zentrums, Dr. Nathanial Peters, für die Unterstützung bei der Beschaffung der konfokalen Mikroskopie- und Weitfeldmikroskopiebilder. Wir danken auch der UW Flow Core Facility und dem Leiter der Flow Core Facility, Aurelio Silvestroni, für die technische Unterstützung und Unterstützung. Abschließend bedanken wir uns bei Hannah Blümke für die Unterstützung bei Illustration und Grafikdesign.
Die Finanzierung erfolgte durch den Zuschuss der National Instit....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
2-Mercaptoethanol | Sigma Aldrich | M6250-10ML | |
Antibody - Anti-Cathepsin K | Abcam | ab19027 | |
Antibody - APC-conjugated Anti-Human CD45 | BD | 555485 | |
Antibody - APC-conjugated Mouse IgG1, κ Isotype Control | BD | 555751 | |
Antibody - BV711-conjugated Anti-Human CD14 | BD | 563372 | |
Antibody - BV711-conjugates Mouse IgG2b, κ Isotype Control | BD | 563125 | |
Antibody - Goat Anti-Rabbit IgG H&L Alexa Fluor® 647 | Abcam | ab150079 | |
Antibody - PE-conjugated Anti-Human CD14 | R&D Systems | FAB3832P-025 | |
Antibody - PE-conjugated Anti-Human Integrin alpha M/CD11b | R&D Systems | FAB16991P-025 | |
Antibody - PE-Cy7-conjugated Anti-Human CD34 | BD | 560710 | |
Antibody - PE-Cy7-conjugated Mouse IgG1 κ Isotype Control | BD | 557872 | |
Antibody - PE/Cyanine5-conjugated Anti-Human CD11b | Biolegend | 301308 | |
Antibody - PE/Cyanine5-conjugated Mouse IgG1, κ Isotype Ctrl | Biolegend | 400118 | |
Antibody - PerCP-Cy5.5-conjugated Mouse IgG1 κ Isotype Control | BD | 550795 | |
Antibody - PerCpCy5.5-conjugated Anti-Human CD43 | BD | 563521 | |
Bone Resorption Assay Kit | CosmoBioUSA | CSR-BRA-24KIT | |
Countess 3 Automated Cell Counter | ThermoFisher | 16812556 | |
Cultrex Stem Cell Qualified Reduced Growth Factor Basement Membrane Extract | R&D Sytems | 3434-010-02 | Basal membrane extract |
DAPI | R&D Systems | 5748/10 | |
Dispase (5 U/mL) | STEMCELL Technologies | 7913 | |
DMEM/F-12 with 15 mM HEPES | Stem Cell | 36254 | |
DMSO | Sigma Aldrich | D2650 | |
DPBS | Sigma Aldrich | D8537-500ML | |
Human Bone Morphogenetic Protein 4 (hBMP4) | STEMCELL Technologies | 78211 | |
Human IL-3 | STEMCELL Technologies | 78146.1 | |
Human Macrophage Colony-stimulating Factor (hM-CSF) | STEMCELL Technologies | 78150.1 | |
Human Soluble Receptor Activator of Nuclear Factor-κB Ligand (hsRANKL) | STEMCELL Technologies | 78214.1 | |
Human Stem Cell Factor (hSCF) | STEMCELL Technologies | 78155.1 | |
Human TruStain FcX (Fc Receptor Blocking Solution) | Biolegend | 422301 | |
Human Vascular Endothelial Growth Factor-165 (hVEGF165) | STEMCELL Technologies | 78073 | |
Invitrogen Rhodamine Phalloidin | Invitrogen | R415 | |
MEM α, nucleosides, no phenol red | ThermoFisher | 41061029 | |
mFreSR | STEMCELL Technologies | 05855 | Serum free cryopreservation medium |
mTeSR Plus medium | STEMCELL Technologies | 100-0276 | Human iPSC-serum free medium (hiPSC-SFM) |
Nunclon Sphera 96-Well, Nunclon Sphera-Treated, U-Shaped-Bottom Microplate | Thermo Scientific | 174925 | Round bottom ultra-low attachment 96-well plate |
P1000 Wide Bore Tips | ThermoFisher | 2079GPK | |
ROCK-Inhibitor Y-27632 | STEMCELL Technologies | 72304 | |
StemSpan SFEM | StemCell | 09650 | Hematopoietic cell culture medium |
TrypLE Select Enzyme (1X), no phenol red | Thermo Fisher | 12563011 | Single-cell dissociation reagent |
Ultraglutamine | Bioscience Lonza | BE17-605E/U1 | |
X-VIVO 15 Serum-free Hematopoietic Cell Medium | Bioscience Lonza | 04-418Q | Hematopoietic basal medium |
µ-Slide 8 Well High | Ibidi | 80806 |
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