<ol style="list-style-type:upper-alpha;"><li> Vorbereitung der Phantom-Läsion (Vorbereitung Phantom etwa 38 bis 48 Stunden vor der tatsächlichen Ausübung Sitzung des FNA Kenntnisse (Abbildung 1) oder nutzen Sie bereit, &#39;AV Phantom &quot;aus FNA Source, USA verwenden. Das Phantom Läsion (gespeichert unter Kühlung ohne Gefrieren) kann gehalten, auch 3 bis 4 Tage vor der Sitzung der Praxis vorbereitet werden. </li><li> Üben FNA Kompetenz: Wir haben zwar das Verfahren mit Shidham ist THFV (Tissue Harvester mit Functional Valve) (FNA Source, USA) gezeigt, kann jede andere FNA System zum Üben (Abbildung 2) verwendet werden. </li><li> Verbreitung und Verarbeitung der Aspiration auf den Glasträger (Abbildung 3). </li></ol> Benötigtes Material <ol style="list-style-type:lower-alpha;"><li> Klare Silikon abdichten-an vielen Bau / Baumärkten. Viele Marken sind verfügbar, einschließlich GETM, DAP, Red Devil, White Lightning, und lokale Kette Marken. Wir haben klare Silicone Rubber, White Lightning Produkte, Cleveland, Ohio, USA, <a href="http://www.wlcaulk.com/products/all_purpose/silicone_rubber/wl09010.html">http://www.wlcaulk.com/products/all_purpose/silicone_rubber/wl09010.html</a> ) </li><li> Kartuschenpistole </li><li> Ein Stück Plastikfolie Blatt (wir Saran Cling Plus-Wrap, SC Johnson &amp; Son Inc., Racine, WI, USA <a href="http://www.saranbrands.com/plastic-wrap/index.asp">http://www.saranbrands.com/plastic-wrap/index.asp</a> </li><li> Latex-Handschuhe </li><li> Großer Durchmesser Banane oder Wurst. </li><li> Festen und ebenen Bodenplatte (ca. 6 Zoll x 6 Zoll) dicker Karton, Acryl-Platte, oder andere gemacht. </li><li> FNA Durchführung Ausrüstungen <ul><li> 25 Gauge Kanülen </li><li> Shidham ist THFV (oder andere Komponenten für die Durchführung FNA) </li><li> Glasträger </li><li> Färbekits </li></ul></li></ol> Step-by-step Details A. Herstellung von Phantom Läsion (Vorbereitung Phantom 1 bis 2 Tage vor dem Üben FNA Kenntnisse (Abbildung 2) oder nutzen Sie bereit, &#39;AV Phantom &quot;aus FNA Source, USA verwenden. <ol><li> Cut eine 6 x 6 Zoll-Format unterstützen Bord. </li><li> Schneiden Sie ein 2,5-Zoll langes Segment des &quot;Phantom Läsion Kern&quot; (Banane oder Wurst). </li><li> Expel 0,5 Zoll dicken Schicht von caulk auf der Grundplatte. </li><li> Drücken Sie die &quot;Phantom Läsion Kern&quot; leicht in dieser Schicht abdichten. </li><li> Fügen Sie mehr abdichten über die &quot;Phantom Läsion Kern&quot; so, dass sie vollständig in die Hügel von caulk eingebettet, ohne Luftblasen. </li><li> Passen und Form der caulk über &quot;Phantom Läsion Kern&quot; mit behandschuhten Hand. </li><li> Nehmen Sie eine 6 x 6 Zoll großes Stück Plastikfolie und decken die caulk Hügel und passen Sie die Oberfläche des Hügels in eine glatte konvexe Konfiguration mit einem sauberen, behandschuhten Hand. </li><li> Lassen Sie die caulk Hügel Heilung für 6-8 Stunden länger als die Aushärtung unter dem Produktnamen Anweisungen erwähnt, (in der Regel für 24 Stunden), in warmen Ort. </li><li> Nach der Aushärtung sollte die caulk fest sein, und die Plastikfolie lässt sich leicht schälen. </li><li> Der FNA Phantom Läsion ist bereit, für die Ausübung des FNA Verfahren nach ca. 8 Stunden, wenn der gesamte Hügel caulk vollständig in die Mitte mit dem &quot;Phantom Läsion Kern&quot; (Banane oder Wurst) geheilt werden. </li></ol> B. Üben FNA Kenntnisse über AV Phantom Läsion. Jeder Ansatz bei der Beschaffung von qualitativ hochwertigen, sollte eine angemessene FNA saugt mit guter Qualität direkte zytologische Abstriche Adresse folgende kritische Punkte- <ol style="list-style-type:upper-roman;"><li> Die Nadelstärke-wie im Titel des Verfahrens angedeutet, ergeben die feinere Nadeln (höhere Anzahl gauge) besser saugt mit minimalen Blutverdünnung. Für kritische Bilanz der Vorteile und Grenzen, sind 22 bis 25 Gauge-Nadeln für eine optimale mechanische Stabilität der Nadel, ohne die FNA absaugen Qualität bevorzugt. </li><li> Controlling entsprechenden Sequenzen in Vakuum-Anwendung und Freisetzung während der FNA Verfahren: Dies ist, um die Proben-Zellen mit jedem Schlag der Nadel voraus, in Richtung Nadel-Hub kritisch. Allerdings sollte die angesaugte Material darf nicht in den Bereich der Punktion der Montage mit der Spritze zu erreichen. Wenn dies nicht verhindert wird, kann das Material nur schwer zur Herstellung von Abstrichen (dieses Material kann jedoch für Zellenblock Vorbereitung oder zur Konzentration Methoden wie Cytospin, Filter-Methoden, oder kürzlich flüssige Zytologie Zubereitungen verwendet werden) abzurufen. </li><li> Die Entwicklung geeigneter Fähigkeiten in der Verarbeitung der angesaugten Probe, einschließlich direkter Abstrich Vorbereitung und vor Ort Angemessenheit Auswertung mit geeigneten Triage für Zusatzuntersuchungen wie Zell-Block der Vorbereitung einer elektiven Immunzytochemie, elektiven Durchflusszytometrie für Immunphänotypisierung lymphoproliferative Läsionen, die Übermittlung sterile Pässe für die Mikrobiologie Studien und Material für die molekulare Tests (Zytogenetik, etc.). </li></ol> Ba Performing FNA Verfahren (Abbildung mit Shidham ist THFV [1] (FNA Source, USA), aber alle anderen FNA System kann zum Üben verwendet werden). (Bild 3,4,5). <ol><li> Bereiten Sie die FNA Zusammenbau mit dem Ventil geschlossen. </li><li> Suchen Sie die Läsion und legen Sie die Nadelspitze in der Läsion. </li><li> Öffnen Sie das Ventil, um das Vakuum zu verbinden, durch die Nadel in die Spitze, um repräsentative zellulären Komponenten der Läsion mit jedem hin und her Schlaganfall in die Läsion absaugen. </li><li> Pflegen Sie die Vakuum-und Probe verschiedenen Bereichen der Läsion durch Einstechen der Nadel in die Läsion in verschiedene Richtungen. </li><li> Schließen Sie das Ventil, um das Vakuum in der Nadel Lumen zu trennen. </li><li> Druckausgleich mit Umgebungsbedingungen (zB durch Abschalten der Spritze-Armatur aus der Nadel für einen kurzen Moment und verbinden. Wenn Sie den speziellen Gerät mit eingebautem Schritte, wie zum Beispiel &quot;THFV &#39;verwendet wird, werden diese und andere Schritte von Ba1 durch Ba6 konzertierte automatisch von folgenden verschiedenen Schritte in der Ventil-System) [1]. </li><li> Entfernen Sie die Nadel aus der Läsion mit dem Ventil geschlossen, um den Verlust der Probe durch Kapillarwirkung zu verhindern in die Läsion sei denn, es ist etwas Unterdruck an der Nabe zu beenden. </li><li> Verdrängen die angesaugte Inhalte auf den Objektträger zu direkten Abstrich (siehe unten) (Abb. 6) vorzubereiten. </li></ol> Bb. Verarbeitung der angesaugten Probe mit geeigneten Triage Verbreitung der Aspiration auf dem Glasträger und die Vorbereitung von guter Qualität direkte Ausstriche (Abbildung 6) gefolgt von richtigen Färbung und Triage (Abbildung 7,8). <ol><li> Ein Tropfen absaugen auf dem Objektträger abgelöst wird durch eine Vielzahl von Ansätzen wie in (Abbildung 6) [2] zu verbreiten. Der übliche Ansatz ist &#39;a&#39;. Allerdings, wenn die Probe Blut mit einigen Mikrofragmente verdünnt, wird das überschüssige Blut weg durch Kippen der Folie abgelassen, und die Mikrofragmente dann zwischen dieser Folie und zweiten Objektträger ähnlich &#39;a&#39; zu verbreiten. Wenn das absaugen ist überwiegend eine Suspension ohne Mikrofragmente, wie von lymphoproliferativen Läsionen, ist es verbreitet so ähnlich wie &#39;b&#39; oder &#39;c&#39;. </li><li> Die Abstriche können verarbeitet und in vielfältiger Weise für unterschiedliche Färbemethoden fixiert werden während der Vor-Ort Angemessenheit Auswertung. Allerdings ist der beste Ansatz an der Luft trocknen alle Abstriche. Die luftgetrockneten Ausstriche mit Romanowski Flecken (z. B. Difff-Quik-Färbung, Wright-Färbung) nach Methanol Fixierung oder mit Pap-Färbung angefärbt werden nach Kochsalzlösung Rehydratation und post-Fixierung (in 95% igem Ethanol oder vorzugsweise in 95% igem Ethanol mit 5 % Essigsäure) [3]. Beseitigung von Störungen durch die Verdunkelung Blut ist ein bedeutender Vorteil [3]. </li><li> Je nach Ausgangslage zytomorphologische Erkenntnisse während der Vor-Ort Angemessenheit Auswertung wird zusätzlich Triage (wie elektiven Zellenblock, Elektronenmikroskopie, Mikrobiologie Kulturen, Durchflusszytometrie, molekulare Tests-Zytogenetik etc.) empfohlen, wie angegeben. </li></ol> Repräsentative Ergebnisse: <img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig1tmb.jpg" alt="Abbildung 1" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig1.jpg">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version der Abbildung 1 sehen</a> . Abbildung 1. Material zur Herstellung AV Phantom zum Üben FNA Kenntnisse erforderlich (* Wir verwenden Saran Plastikfolie, die nicht dem caulk am Ende tat-Stick, beim Entfernen nach vollständiger Aushärtung des abdichten.) <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig2tmb.jpg" alt="Abbildung 2" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig2.jpg">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version der Abbildung 2 zu sehen.</a> Abbildung 2. Vorbereitung AV Phantom Läsion <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig3tmb.jpg" alt="Abbildung 3" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig3.jpg">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version der Abbildung 3 zu sehen.</a> Abbildung 3. Critical Schritte in FNA Verfahren. <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig4tmb.jpg" alt="Abbildung 4" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig4.jpg">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version der Abbildung 4 zu sehen.</a> Abbildung 4. EUS-FNA-Zusammenfassung der kritischen Schritte * (siehe Abb. 3) <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig5tmb.jpg" alt="Abbildung 5" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig5.jpg">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version der Abbildung 5 zu sehen.</a> Abbildung 5. Fallstricke im Zusammenhang mit der kritischen Schritte in FNA procEDURE. <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig6tmb.jpg" alt="Abbildung 6" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig6.jpg">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version der Abbildung 6 zu sehen.</a> Abbildung 6. Vorbereitung der direkten Ausstriche FNA Probe zwischen zwei Folien. <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig7tmb.jpg" alt="Abbildung 7" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig7.jpg">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version der Abbildung 7 zu sehen.</a> Abbildung 7. Wet festen und luftgetrocknete Ausstriche. <hr style="border-bottom:1px dotted #999999;" /><img border="0" src="/files/ftp_upload/1404/1404fig8tmb.jpg" alt="Abbildung 8" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1404/1404fig8.jpg">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version der Abbildung 8 zu sehen.</a> Abbildung 8. Wet festen und luftgetrocknete Ausstriche.

<ol>
	<li>Shidham, V. B., Pandit, A. W., Rao, R. N., Basir, Z., Shidham, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue+Harvester+with+Functional+Valve+(THFV):+Shidham's+device+for+reproducibly+higher+specimen+yield+by+fine+needle+aspiration+biopsy+with+easy+to+perform+steps.">Tissue Harvester with Functional Valve (THFV): Shidham's device for reproducibly higher specimen yield by fine needle aspiration biopsy with easy to perform steps.</a> BMC Clinical Pathology. 7 (2), (2007).</li><li>Shidham, V. B., Epple, J., Shidham, V. B., Atkinson, B. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=AppendiX+I:+Collection+and+processing+of+effusion+fluids+for+cytopathologic+evaluation.">AppendiX I: Collection and processing of effusion fluids for cytopathologic evaluation.</a> , 207-235 (2007).</li><li>Shidham, V., Kampalath, B., England, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Routine+air+drying+of+all+the+smears+prepared+during+fine+needle+aspiration+and+intraoperative+cytology+studies:+An+opportunity+to+practice+a+unified+protocol,+offering+the+flexibility+of+choosing+variety+of+staining+methods.">Routine air drying of all the smears prepared during fine needle aspiration and intraoperative cytology studies: An opportunity to practice a unified protocol, offering the flexibility of choosing variety of staining methods.</a> Acta Cytologica. (45), 60-68 (2001).</li></ol>

Feinnadelpunktion Biopsie (FNP) werden allgemein als eine wirtschaftliche, sichere und schnelle minimalinvasive Technik für die Gewebe-Diagnose verschiedener Tumoren und Läsionen durchgeführt. In diesem Verfahren wird eine 18 bis 27 Gauge-Nadel in die Läsion eingeführt, hin und her bewegt mehrfach in verschiedenen Bereichen der Läsion unter kontrollierten Unterdruck (Sog) mit variabler Intensität von minimal in Form von nur Kapillarwirkung auf ca. 10 ml Vakuum in der Spritze zu diagnostischen Gewebematerial abzurufen. Eine feinere Nadel mit einer höheren Zahl wird bevorzugt, um eine gute zytologische Material abrufen zu direkten Abstrichen vorzubereiten. Wider-Gauge-Nadel von 18G ruft mehr Proben für Zellenblock, Durchflusszytometrie, Elektronenmikroskopie, Zytogenetik, Mikrobiologie Kulturen etc. Obwohl das Verfahren ist einfach, Controlling verschiedenen Schritte bei sachgemäßer Anwendung und Freisetzung von Vakuum bei entsprechenden Schritte in konzertierter Weise ist extrem wichtig für optimale Ergebnisse. Aufgrund der nicht-Verfügbarkeit von speziell entwickelten High-Yield-Nadeln, herkömmliche Injektionsnadeln oder deren Modifikationen werden verwendet, um dieses Verfahren durchzuführen. Allerdings haben die Injektionsnadeln viele Einschränkungen, was zu einer geringen Ausbeute der Probe, wenn in herkömmlicher Weise verwendet. Das Erfordernis einer besonderen Spritze greift in der Regel erhöht die Komplexität des Verfahrens. So wegen des Fehlens von kommerziell erhältlichen geeignet FNAB Nadel Gerät, leidet dieser vielseitigen Verfahren ein häufiges Problem der unzureichenden Probe Retrieval. Kürzlich wurde ein Gerät der Erhöhung der Ausbeute mit der Reproduzierbarkeit wurden [1] berichtet. Darüber hinaus gibt es derzeit einen Mangel an geeigneten Modells für die Ausübung Kenntnisse in der Durchführung FNAB durch medizinisches Personal in Ausbildung einschließlich Anwohnern und Mitmenschen. Wir hatten ein standardisiertes Modell mit einem Stück frischem Rind Leber in Latex-Handschuh gefüllt zum Üben FNAB Können. Allerdings ist dieses Modell nur schwer zu einem kurzfristig zu organisieren. Beschaffung von frischem Rind Leber ist in der Regel der limitierende Zwangslage. Darüber hinaus kann Umgang mit Leber-Kontamination Faktoren als bedeutender zurückziehen einzuführen. Die Tendenz für die Latex-Handschuh nach ein paar Nadelstiche Leck führt zu potenziellen Chaos während des Trainings. Wir berichten und beschreiben ein neuartiges, aber einfache Methode der Einbettung ein kleines Stück Banane (oder Wurst) in einem handelsüblichen Silikon abdichten und andere leicht verfügbare Material. Die FNAB Phantom beibehält Vakuumdichtung wodurch eine Aspiration von Material aus dem Embedded-Probe, entsprechend der tatsächlichen FNAB Verfahren auf eine Läsion in klinischen Umfeld. In diesem Video zeigen wir, das Verfahren, FNAB Phantom Läsion und Üben FNAB Verfahren. Es zeigt auch, in Kürze die Verarbeitung der abgerufenen Probe einschließlich Abstrich Vorbereitung und Färbung [2,3]. Da die caulk braucht Zeit zu heilen, sollte das Phantom Läsion im Voraus über 24 bis 48 Stunden hergestellt vor dem Üben Sitzung. Vergleichbare bereit Phantom Läsion nutzen können aus kommerziellen Quellen (FNA Source, USA) bezogen werden. Das Phantom Läsion für das Üben FNAB Kenntnisse können für die Ausbildung der Bewohner und Stipendiaten vor Beginn der FNAB Leistung am Patienten im klinischen Umfeld eingesetzt werden.

preparation and using phantom lesions to practice fine needle aspiration biopsies

Derzeit haben Gesundheitspersonal einschließlich Bewohner und Stipendiaten nicht über ein geeignetes Phantom Modell, um die Feinnadelpunktion Biopsie (FNP) Verfahren der Praxis. In der Vergangenheit haben wir ein standardisiertes Modell, bestehend aus Latex-Handschuh mit frischem Rind Leber zum Üben FNAB. Allerdings ist dieses Modell schwer zu organisieren und vorzubereiten kurzfristig, mit der Beschaffung von frischem Rind Leber wird der schwierigste Aspekt. Behandlung von Leber mit Kontamination verbundenen Probleme ist auch ein wichtiger zurückziehen. Darüber hinaus geht die Handschuhmaterials Leckagen nach ein paar Nadel, mit daraus resultierenden Chaos. Wir haben eine neue einfache Methode zur Einbettung ein kleines Stück Wurst oder Banane in einem handelsüblichen Silikon abdichten gegründet. Dieses Modell erlaubt die Beibehaltung der Vakuumdichtung und Aspiration von Material aus dem Embedded-Probe, ähnlich einer tatsächlichen FNAB Verfahren zur klinischen Raumforderungen. Die angesaugte Material in die Nadel-Hub lassen sich ähnlich wie die Proben während eines tatsächlichen FNAB Verfahren beschafft werden, erleichtern zusätzlich Kenntnisse in Abstrich Vorbereitung und Färbung.

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Preparation and Using Phantom Lesions to Practice Fine Needle Aspiration Biopsies

Das Üben der Feinnadelpunktion Biopsie (FNP) der Auszubildenden ist relativ schwierig, aufgrund des Fehlens eines leicht verfügbar, entsprechende Läsion. Erstellung eines AV Phantomspeisung Läsion für das Üben der FNAB Verfahren und Mastering Kompetenz ist relativ einfach.

Zubereitung und Verwendung von Phantom Läsionen Feinnadelpunktion Biopsie Praxis

Currently, health workers including residents and fellows do not have a suitable phantom model to practice the fine- needle aspiration biopsy (FNAB) ...

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Research

JoVE Journal

Biology

17.7K Aufrufe.  University of Wisconsin - Milwaukee. Das Üben der Feinnadelpunktion Biopsie (FNP) der Auszubildenden ist relativ schwierig, aufgrund des Fehlens eines leicht verfügbar, entsprechende Läsion. Erstellung eines AV Phantomspeisung Läsion für das Üben der FNAB Verfahren und Mastering Kompetenz ist relativ einfach.

Serie: Preparation and Using Phantom Lesions to Practice Fine Needle Aspiration Biopsies

Gross and Fine Dissection of Inner Ear Sensory Epithelia in Adult Zebrafish (Danio rerio)

Neurosensory epithelia in the inner ear are the crucial structures for hearing and balance functions. Therefore, it is important to understand the cellular and molecular features of the epithelia, which are mainly composed of two types of cells: hair cells (HCs) and supporting cells (SCs). Here we choose to study the inner ear sensory epithelia in adult zebrafish not only because the epithelial structures are highly conserved in all vertebrates studied, but also because the adult zebrafish is able to regenerate HCs, an ability that mammals lose shortly after birth. We use the inner ear of adult zebrafish as a model system to study the mechanisms of inner ear HC regeneration in adult vertebrates that could be helpful for clinical therapy of hearing/balance deficits in human as a result of HC loss.
Here we demonstrate how to do gross and fine dissections of inner ear sensory epithelia in adult zebrafish. The gross dissection removes the tissues surrounding the inner ear and is helpful for preparing tissue sections, which allows us to examine the detailed structure of the sensory epithelia. The fine dissection cleans up the non-sensory-epithelial tissues of each individual epithelium and enables us to examine the heterogeneity of the whole epithelium easily in whole-mount epithelial samples.

Gross and Fine Dissection of Inner Ear Sensory Epithelia in Adult Zebrafish Danio rerio

The inner ear sensory epithelium of adult zebrafish is a good model system for understanding the mechanisms of hair cell regeneration in adult vertebrates. This protocol demonstrates the fine dissection of the epithelia, through which we can get tissue samples for studying the regenerative events at cellular and subcellular levels.

Gross und Fine Dissection of Inner Ear Sinnesepithelien in Adult Zebrafisch ( Danio rerio)

Neurosensory epithelia in the inner ear are the crucial structures for hearing and balance functions. Therefore, it is important to understand the ...

Forschung

Biologie

Western Blotting: Sample Preparation to Detection

Western blotting is an analytical technique used to detect specific proteins in a given sample of tissue homogenate or extract. It uses gel electrophoresis to separate native or denatured proteins by the length of the polypeptide (denaturing conditions) or by the 3-D structure of the protein (native/ non-denaturing conditions). The proteins are then transferred to a membrane (typically nitrocellulose or PVDF), where they are probed (detected) using antibodies specific to the target protein.

Western blotting is an analytical technique used to detect specific proteins in a given sample of tissue homogenate or extract.

Western Blot: Probenvorbereitung zur Detektion

Western blotting is an analytical technique used to detect specific proteins in a given sample of tissue homogenate or extract. It uses gel ...

Advanced Confocal Microscopy Techniques to Study Protein-protein Interactions and Kinetics at DNA Lesions

Local microirradiation with lasers represents a useful tool for studies of DNA-repair-related processes in live cells. Here, we describe a methodological approach to analyzing protein kinetics at DNA lesions over time or protein-protein interactions on locally microirradiated chromatin. We also show how to recognize individual phases of the cell cycle using the Fucci cellular system to study cell-cycle-dependent protein kinetics at DNA lesions. A methodological description of the use of two UV lasers (355 nm and 405 nm) to induce different types of DNA damage is also presented. Only the cells microirradiated by the 405-nm diode laser proceeded through mitosis normally and were devoid of cyclobutane pyrimidine dimers (CPDs). We also show how microirradiated cells can be fixed at a given time point to perform immunodetection of the endogenous proteins of interest. For the DNA repair studies, we additionally describe the use of biophysical methods including FRAP (Fluorescence Recovery After Photobleaching) and FLIM (Fluorescence Lifetime Imaging Microscopy) in cells with spontaneously occurring DNA damage foci. We also show an application of FLIM-FRET (Fluorescence Resonance Energy Transfer) in experimental studies of protein-protein interactions.

Laser microirradiation is a useful tool for studies of DNA repair in living cells. A methodological approach for the use of UVA lasers to induce various DNA lesions is shown. We have optimized a method for local microirradiation that maintains the normal cell cycle; thus, irradiated cells proceed through mitosis.

Fortgeschrittene Mikroskopiertechniken der konfokalen zur Untersuchung von Protein-Protein-Wechselwirkungen und die Kinetik bei DNA-Läsionen

Local microirradiation with lasers represents a useful tool for studies of DNA-repair-related processes in live cells. Here, we describe a methodological ...

Immunolabelling Myofiber Degeneration in Muscle Biopsies

The necrosis of muscle fibres (myonecrosis) plays a central role in the pathogenesis of several muscle conditions, including muscular dystrophies. Therapeutic options addressing the causes of muscular dystrophy pathogenesis are expected to alleviate muscle degeneration. Therefore, a method to assay and quantify the extent of cell death in muscle biopsies is needed. Conventional methods to observe myofiber degeneration in situ are either poorly quantitative or rely on the injection of vital dyes. In this article, an immunofluorescence protocol is described that stains necrotic myofibers by targeting immunoglobulin G (IgG) uptake by myofibers. The IgG uptake method is based on cell features characterizing the necrotic demise, including 1) the loss of plasma membrane integrity with the release of damage-associated molecular patterns and 2) the uptake of plasmatic proteins. In murine cross-sections, the co-immunolabelling of myofibers, extracellular matrix proteins, and mouse IgG allows clean and straightforward identification of myofibers with necrotic fate. This simple method is suitable for quantitative analysis and applicable to all species, including human samples, and does not require the injection of vital dye. The staining of necrotic myofibers by IgG uptake can also be paired with other co-immunolabelling.

Described here is a protocol for direct immunolabelling of necrotic myofibers in muscle cryosections. Necrotic cells are permeable to serum proteins, including immunoglobulin G (IgG). Revealing the uptake of IgG by myofibers allows the identification and quantification of myofibers that undergo necrosis regardless of muscle condition.

Immunolabelling Myofiber Degeneration in Muskelbiopsien

The necrosis of muscle fibres (myonecrosis) plays a central role in the pathogenesis of several muscle conditions, including muscular dystrophies. ...

Single Cell Micro-aspiration as an Alternative Strategy to Fluorescence-activated Cell Sorting for Giant Virus Mixture Separation

During the amoeba co-culture process, more than one virus may be isolated in a single well. We previously solved this issue by end point dilution and/or fluorescence activated cell sorting (FACS) applied to the viral population. However, when the viruses in the mixture have similar morphologic properties and one of the viruses multiplies slowly, the presence of two viruses is discovered at the stage of genome assembly and the viruses cannot be separated for further characterization. To solve this problem, we developed a single cell micro-aspiration procedure that allows for separation and cloning of highly similar viruses. In the present work, we present how this alternative strategy allowed us to separate the small viral subpopulations of Clandestinovirus ST1 and Usurpativirus LCD7, giant viruses that grow slowly and do not lead to amoebal lysis compared to the lytic and fast-growing Faustovirus. Purity control was assessed by specific gene amplification and viruses were produced for further characterization.

Here, we describe a single cell micro-aspiration method for the separation of infected amoebae. In order to separate viral subpopulations in Vermamoeba vermiformis infected by Faustoviruses and unknown giant viruses, we developed the protocol detailed below and demonstrated its ability to separate two low-abundance novel giant viruses.

Single Cell Micro-Aspiration als Alternative zur fluoreszenzaktivierten Zellsortierung für die Trennung von Riesenviren

During the amoeba co-culture process, more than one virus may be isolated in a single well. We previously solved this issue by end point dilution and/or ...

Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens

Current risk assessment strategies for honey bees rely heavily upon laboratory tests performed on adult or immature worker bees, but these methods may not accurately capture the effects of agrochemical exposure on honey bee queens. As the sole producer of fertilized eggs inside a honeybee colony, the queen is arguably the most important single member of a functioning colony unit. Therefore, understanding how agrochemicals affect queen health and productivity should be considered a critical aspect of pesticide risk assessment. Here, an adapted method is presented to expose honey bee queens and worker queen attendants to agrochemical stressors administered through a worker diet, followed by tracking egg production in the laboratory and assessing first instar eclosion using a specialized cage, referred to as a Queen Monitoring Cage. To illustrate the method&#39;s intended use, results of an experiment in which worker queen attendants were fed diet containing sublethal doses of imidacloprid and effects on queens were monitored are described.

This protocol was developed to enhance the understanding of how agrochemicals affect honey bee (Apis mellifera) reproduction by establishing methods to expose honey bee queens and their worker caretakers to agrochemicals in a controlled, laboratory setting and carefully monitoring their relevant responses.

Bewertung des agrochemischen Risikos für gepaarte Honigbienenköniginnen

Current risk assessment strategies for honey bees rely heavily upon laboratory tests performed on adult or immature worker bees, but these methods may not ...

Profiling of H3K4me3 Modification in Plants using Cleavage under Targets and Tagmentation

Epigenomic regulation at the chromatic level, including DNA and histone modifications, behaviors of transcription factors, and non-coding RNAs with their recruited proteins, lead to temporal and spatial control of gene expression. Cleavage under targets and tagmentation (CUT&#38;Tag) is an enzyme-tethering method in which the specific chromatin protein is firstly recognized by its specific antibody, and then the antibody tethers a protein A-transposase (pA-Tn5) fusion protein, which cleaves the targeted chromatin in situ by the activation of magnesium ions. Here, we provide our previously published CUT&#38;Tag protocol using intact nuclei isolated from allortetraploid cotton leaves with modification. This step-by-step protocol can be used for epigenomic research in plants. In addition, substantial modifications for plant nuclei isolation are provided with critical comments.

Cleavage under targets and tagmentation (CUT&amp;Tag) is an efficient chromatin epigenomic profiling strategy. This protocol presents a refined CUT&amp;Tag strategy for the profiling of histone modifications in plants.

Profilierung der H3K4me3-Modifikation in Pflanzen mittels Spaltung unter Targets und Tagmentation

Epigenomic regulation at the chromatic level, including DNA and histone modifications, behaviors of transcription factors, and non-coding RNAs with their ...

An Improved Chemotaxis Assay for the Rapid Identification of Rhizobacterial Chemoattractants in Root Exudates

Chemotaxis identification is very important for the research and application of rhizosphere growth-promoting bacteria. We established a straightforward method to quickly identify the chemoattractants that could induce the chemotactic movement of rhizosphere growth-promoting bacteria on sterile glass slides via simple steps. Bacteria solution (OD600 = 0.5) and sterile chemoattractant aqueous solution were added dropwise on the glass slide at an interval of 1 cm. An inoculating loop was used to connect the chemoattractant aqueous solution to the bacterial solution. The slide was kept at room temperature for 20 min on the clean bench. Finally, the chemoattractant aqueous solution was collected for bacterial counting and microscopic observation. In this study, through multiple comparisons of experimental results, the method overcame multiple shortcomings of traditional bacterial chemotaxis methods. The method reduced the error of plate counting and shortened the experimental cycle. For the identification of chemoattractant substances, this new method can save 2-3 days compared to the traditional method. Additionally, this method allows any researcher to systematically complete a bacterial chemotaxis experiment within 1-2 days. The protocol can be considered a valuable resource for understanding plant-microbe interactions.

Here, we present an improved chemotaxis assay protocol. The goal of this protocol is to reduce the steps and costs of traditional bacterial chemotaxis methods and to serve as a valuable resource for understanding plant-microbe interactions.

Ein verbesserter Chemotaxis-Assay zur schnellen Identifizierung von rhizobakteriellen Chemoattraktantien in Wurzelexsudaten

Chemotaxis identification is very important for the research and application of rhizosphere growth-promoting bacteria. We established a straightforward ...

Comprehensive Echocardiographic Assessment of Right Ventricle Function in a Rat Model of Pulmonary Arterial Hypertension

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a progressive disease caused by vasoconstriction and remodeling of the small arteries in the lungs. This remodeling leads to increased pulmonary vascular resistance, worsened right ventricular function, and premature death. Currently approved therapies for PAH largely target pulmonary vasodilator pathways; however, recent emerging therapeutic modalities are focused on other novel pathways involved in the pathogenesis of the disease, including right ventricle (RV) remodeling. Imaging techniques that allow longitudinal assessment of novel therapeutics are very useful for determining the efficacy of new drugs in preclinical studies. Noninvasive trans-thoracic echocardiography remains the standard approach to evaluating heart function and is widely used in rodent models. However, echocardiographic evaluation of the RV can be challenging due to its anatomical position and structure. In addition, standardized guidelines are lacking for echocardiography&#160;in preclinical rodent models, making it difficult to carry out a uniform assessment of RV&#160;function across studies in different laboratories. In preclinical studies, the monocrotaline (MCT) injury model in rats is widely used to evaluate drug efficacy for treating PAH. This protocol describes the echocardiographic evaluation of the RV in na&#239;ve and MCT-induced PAH rats.

The present protocol describes the echocardiographic characterization of right ventricular morphology and function in a rat model of pulmonary arterial hypertension.

Umfassende echokardiographische Beurteilung der Funktion des rechten Ventrikels in einem Rattenmodell der pulmonalen arteriellen Hypertonie

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a progressive disease caused by vasoconstriction and remodeling of the small arteries in the lungs. This ...

Verwendung von Hautbiopsien zur Erzeugung von patienteneigenen Podozyten

Generation of Patient-Derived Podocytes from Skin Biopsies

Podocytes are epithelial cells sitting on the urinary site of the glomerular filtration barrier that contribute to the selective filter function of the glomerulus. Mutations in podocyte-specific genes can cause focal segmental glomerulosclerosis (FSGS), and podocytes are also affected in many other primary and secondary nephropathies. Due to their differentiated nature, primary cell culture models are limited for podocytes.&#160;Therefore, commonly conditionally immortalized cells are used. However, these conditionally immortalized podocytes (ciPodocytes) have several limitations: the cells can dedifferentiate in culture, especially when they reach confluency, and several podocyte-specific markers are either only slightly or not expressed at all. This brings the use of ciPodocytes and their applicability for physiological, pathophysiological, and clinical reach into question. Here, we describe a protocol for the generation of human podocytes-including patient-specific podocytes-from a skin punch biopsy by episomal reprogramming of dermal fibroblasts into hiPSCs and subsequent differentiation into podocytes. These podocytes resemble in vivo podocytes much better in terms of morphological characteristics, like the development of foot processes and the expression of the podocyte-specific marker. Finally, yet importantly, these cells maintain patients&#39; mutations, resulting in an improved ex vivo model to study podocyte diseases and potential therapeutic substances in an individualized approach.

Autor im Rampenlicht: Generierung von patienteneigenen Podozyten aus Hautbiopsien  

This manuscript describes a two-step protocol to generate patient-specific podocytes from dermal fibroblasts via episomal reprogramming into human-induced pluripotent stem cells (hiPSCs) and subsequent differentiation into podocytes.

Generierung von patienteneigenen Podozyten aus Hautbiopsien

Podocytes are epithelial cells sitting on the urinary site of the glomerular filtration barrier that contribute to the selective filter function of the ...