Name: non-terminal blood sampling techniques in guinea pigs
Uploaded: 2014-10-11T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 58 s
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Wir erkennen die geschickte Unterstützung von Annie B. Kristensen, Elisabeth V. Andersen, Belinda B. Bringtoft und den Tierpflegern bei der Abteilung für Experimentelle Medizin, Frederiksberg Campus, Fakultät für Gesundheit und Medizin, Universität von Kopenhagen, Dänemark. Jacob Lønholdt wird dankte für die hervorragende technische Unterstützung bei Dreharbeiten die Verfahren. Diese Studie wurde zum Teil durch die LIFEPHARM Center zur in vivo-Pharmakologie und Universität Kopenhagen unterstützt.

Die gezeigten Verfahren wurden nach Protokollen, die von der dänischen Tierversuchsinspektion des Ministeriums für Ernährung, Landwirtschaft und Fischerei zugelassenen geführt. 1. Blutentnahme aus der Vena Lateral oder Tarsal Vein <ol><li> Führen Sie dieses Verfahren ohne Narkose und die Hilfe von einem Prüfer, ein Umgang mit dem Meerschweinchen und ein Sammeln der Probe. </li><li> Rasieren Sie die Fußwurzel Region des Hinterbein mit einem elektrischen Rasierer, bis die Venen sichtbar sind. Stellen Sie sicher, das Gebiet ist groß genug, um fur Eingriffe in die Einstichstelle zu vermeiden. </li><li> Legen Sie das Hinterbein in einem lauwarmen Wasserbad und sanft einmassieren das Bein, so dass die Venen erweitert und mehr offensichtlich. </li><li> Wischen Sie das Bein mit einem sauberen Handtuch und desinfizieren Sie die Einstichstelle mit Gaze oder einem Wattestäbchen, das mit 70% Alkohol gedämpft. </li><li> Hemmen die Meerschweinchen und erweitern das Hinterbein nach unten, während mit leichtem Druck direkt über dem Kniegelenk to Bereitstellung von Stasis. </li><li> Punktion der Vene mit einer Nadel 21 G oder Lanzette. Blutentnahme zB., Indem Sie eine Sammlung oder Kapillare. Manipulieren Sie vorsichtig das Bein, um den Blutfluss zu unterstützen. </li><li> Frei Stase, sobald die Probe erhalten worden ist. Mit einem Stück Gaze oder Watte mit sanftem Druck auf die Einstichstelle, bis Blutung aufgehört hat. </li><li> Schicken Sie das Tier in seinen Käfig und Monitor für 5-10 min zur Blutstillung zu gewährleisten. </li></ol> 2. Blutentnahme aus der Ohrvene <ol><li> Führen Sie dieses Verfahren ohne Narkose entweder allein oder vorzugsweise mit der Hilfe von einem Kollegen. </li><li> Desinfizieren Sie die Rückenfläche des Ohres mit Gaze oder einem Wattestäbchen mit 70% Alkohol gedämpft. </li><li> Mit leichtem Druck an der Basis des Ohres zu Stase bieten. </li><li> Punktion der Vene mit einer Nadel 21 G oder Lanzette, und sammeln Blut. </li><li> Lassen Sie Stase, sobald die Probe erhalten worden ist, mit einem Stück Gaze oder Watte mit GEntle Druck auf die Einstichstelle, bis Blutung aufgehört hat. </li><li> Schicken Sie das Tier in seinen Käfig und Monitor für 5-10 min zur Blutstillung zu gewährleisten. </li></ol> 3. Blutentnahme aus der Vena jugularis <ol><li> Führen Sie diesen Vorgang mit der Hilfe von einem zusätzlichen Ermittler; einen Umgang mit dem Meerschweinchen und ein Sammeln der Probe. </li><li> Betäuben das Meerschweinchen mit einem geeigneten Betäubungsmittel für die gesamte Dauer dieses Verfahrens. Eine Mischung von Tiletamin (0,93 mg / kg), Zolazepam (0,93 mg / kg), Xylazin (1,49 mg / kg) und Butorphanol (0,06 mg / kg) verwendet werden. </li><li> Legen Sie den narkotisierten Meerschweinchen auf dem Rücken und sanft zurückziehen den Vorderbeinen kaudal. </li><li> Rasieren und desinfizieren (zB., Mit 70% Alkohol) dem ventralen Teil des Halses. </li><li> Bestreichen Sie die Spritze mit Heparin oder EDTA entweder vor der Probenahme, um das Risiko von Gerinnungs reduzieren. </li><li> Abtasten dem Schlüsselbein und legen Sie eine 25 G (oder 23 G) Nadel auf einer 1 ml Spritze ap montiertproximately 1 cm seitlich der Mittellinie auf der Höhe des Schultergelenks. Halten Sie die Spritze in einem leichten Aufwärtswinkel und medial, während ein leichter Unterdruck. Damit eine Beschädigung der darunter liegenden Strukturen wie der Halsschlagader ist ziemlich oberflächlich entfernt. Neigen Sie den Hals der Meerschweinchen leicht nach hinten erhöht Stase der Vene ist. </li><li> Lassen Sie die Vorderbeine, wenn die Blutprobe erhalten und zu lindern Stase, bevor die Nadel zurückgezogen wird. Verwenden Sie ein trockenes Stück Gaze oder Watte, um sanften Druck auf die Punktionsstelle. </li><li> Zurück, das Tier zu einer Erholung Käfig und zu überwachen, um die Blutstillung und Erholung von der Anästhesie zu gewährleisten. </li></ol>

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Die Autoren haben nichts zu offenbaren. Alle Verfahren wurden von der Tierversuchsgesetz von Dänemark, das im Einklang mit dem Übereinkommen des Europarates ETS 123 ist genehmigt.

Im Vergleich zu Mäusen und Ratten, Meerschweinchen sind von Natur aus ängstlich und muss ruhig angegangen und richtig, um Stress zu reduzieren behandelt werden. Aus Tierschutzsicht, mit Sorgfalt handeln, sind natürlich eine Priorität; jedoch wird dies auch das Risiko von Angst damit verbundenen Auswirkungen auf die erfassten Daten beispiels., erhöhte Blutspiegel von Corticosteroiden und Glucose 12. Ebenso wird täglich Umgang mit den Tieren zu normalen Verfahren zu gewöhnen und kann dazu dienen...

Das Meerschweinchen ist ein wertvolles und validiert experimentellen Tiermodell aufgrund einer Reihe von biologischen Ähnlichkeiten zum Menschen wie das Erfordernis einer diätetischen Versorgung mit Vitamin C, vergleichbar Plasma-Lipoprotein-Stoffwechselenzyme und Lipoprotein-Profile sowie gemeinsamen Ähnlichkeiten mit der menschlichen Plazenta und pränatalen Entwicklung 1-3,7,8. Dies macht die Meerschweinchen eine attraktive und geeignete Modell für die Untersuchung die Auswirkungen der Ernährung-assoziierten Erkrankungen wie nicht-alkoholische Fettlebererkrankungen, Herz-Kreislauf-Erkrankungen und vermeintliche Wirkungen von Vitamin-C-Mangel, sondern auch die Wirkung von zB., Mütterliche diätetische Intervention auf der Entwicklung Nachkommen. Wiederholte Entnahme von Blut wird häufig sowohl in lang-und kurzfristigen in-vivo-Untersuchungen erforderlich. Aufgrund artenspezifischer anatomischer Unterschiede Modulation der Entnahmetechnik ist notwendig, um Blutproben beim Meerschweinchen im Vergleich zu anderen Tiermodellen erhalten <sup&gt; 4,5. Dies beinhaltet Variation im Verlauf der Venen und Arterien, und auch, daß Meerschweinchen nicht einen Schwanz, wodurch unterschiedliche Anforderungen und Möglichkeiten sowohl für die Probenahme und Handhabung. Probenahme aus der Vena oder Fußwurzel Vene, induziert minimalen Beschwerden und Stress im Tier und erfordert keine Narkose 3,9. Diese Technik ermöglicht die wiederholte Proben von kleinen Blutmengen (100-400 ul), zB., Biochemische Marker im Plasma zu bestimmen. Falls eine noch kleinere Größe ausreichend ist (50-100 ul), kann dies sehr einfach durch Durchstoßen der Ohrvene erhalten werden. Diese Technik kann auch in wachen Tieren durchgeführt werden und ist beispielsweise nützlich, wenn die Messung des Blutzucker 10,11. Probenahme aus der Halsschlagader können für die Sammlung von größeren Mengen Blut (1-2 ml), sondern erfordert Anästhesie. Hier stellen wir vier verschiedene Techniken zur Blutentnahme entweder bewusst oder betäubt Meerschweinchen. Das procedures sind alle Nicht-Terminal-Verfahren vorgesehen, dass die Probenvolumina und die Anzahl der Proben nicht bei Labortieren 6 nicht Richtlinien für die Blutentnahme überschreiten. Es ist im Interesse der guten Wissenschaft sowie des Tierschutzes, dass Stress auf ein Minimum gehalten werden. Folglich kann nur gut ausgebildete und kompetente persönliche sollten die Tierversuche durchführen.

<table><tbody><tr><td>Electric shaver</td><td>Wella (Contura), Denmark</td><td>273207</td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr><tr><td>Syringes&amp;nbsp;</td><td>B.Braun-Omnifix-F, Germany</td><td>9161406V</td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr><tr><td>Needles</td><td>BD Microlance, Spain</td><td>301156</td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr><tr><td>Microvette collection tube&amp;nbsp;</td><td>Sarstedt, D-51588N&amp;uuml;mbrecht, Germany</td><td>201,288,100</td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr><tr><td>Accu-Check analyzer</td><td>Roche A/S Diagnostics, Denmark</td><td></td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr><tr><td>Heparin 5000 IE/ml</td><td>LEO Pharma, Denmark</td><td></td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr><tr><td>Anesthesia</td><td>Zoletil 50, Chemvet, Denmark</td><td></td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr><tr><td>Anesthesia</td><td>Narcoxyl vet 20 mg/ml, Intervet, Denmark</td><td></td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr><tr><td>Anesthesia</td><td>Torbugesic vet 10 mg/ml, Scanvet, Denmark</td><td></td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr><tr><td>Neutral eye ointment</td><td></td><td></td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr><tr><td>Gauze or a cotton swab&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr><tr><td>Disinfectant (70% alcohol)</td><td></td><td></td><td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td></tr></tbody></table>

non-terminal blood sampling techniques in guinea pigs

Meerschweinchen besitzen mehrere biologische Ähnlichkeiten zum Menschen und experimentellen Tiermodellen validiert 1-3. Allerdings ist die Verwendung von Meerschweinchen stellt derzeit einen relativ engen Bereich der Forschung und beschreibenden Daten zu spezifischen Methodik ist entsprechend knapp. Die anatomischen Merkmale der Meerschweinchen sind etwas anders als andere Nagetiermodellen, daher Modulation von Stichprobenverfahren für artenspezifische Unterschiede unterzubringen, zB., Im Vergleich zu Mäusen und Ratten, sind notwendig, um eine ausreichende und qualitativ hochwertige Proben zu erhalten. Wie lange und kurze Laufzeit in-vivo-Studien erfordern oft wiederholte Entnahme von Blut die Wahl der Technik sollte auch, um Stress und Unbehagen bei den Tieren zu reduzieren, sondern auch in Betracht gezogen werden, um das Überleben als auch die Einhaltung der Anforderungen der Stichprobengröße und die Zugänglichkeit zu gewährleisten. Venöse Blutproben können bei einer Reihe von Standorten in Meerschweinchen zB erhalten werden., Die Vena jugularis undVenen, jede Technik, die sowohl Vor-und Nachteile von 4,5. Hier stellen wir vier verschiedene Techniken zur Blutentnahme entweder bewusst oder betäubt Meerschweinchen. Die Verfahren sind alle Nicht-Terminal-Verfahren vorgesehen, dass die Probenvolumina und die Anzahl der Proben nicht bei Labortieren 6 nicht Richtlinien für die Blutentnahme überschreiten. Alle beschriebenen Methoden wurden gründlich getestet und angewandt für die in vivo Blutentnahme in Studien innerhalb unserer Forschungseinrichtung wiederholt.

Vier verschiedene Ansätze zur nicht-terminale Blutentnahme in vivo Techniken entweder bewusst oder narkotisierten Meerschweinchen wurden vorgelegt. Abbildung 1 zeigt den Verlauf der lateralen Vena saphena und Fußwurzel Vene im Meerschweinchen und mögliche Punktionsstellen. Ohrvenen auf der dorsalen Oberfläche des Meerschweinchens Ohr sichtbar sind in Abbildung 2 dargestellt Diese Adern können zur Blutentnahme verwendet werden, wenn nur ein sehr kleines Volumen erforderlich...

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Non-Terminal Blood Sampling Techniques in Guinea Pigs

Obwohl ein bekanntes Modell, stellt das Meerschweinchen noch eine Nische in der experimentellen Tierforschung und der begrenzten Daten über die Ausführung der meisten Verfahren zur Verfügung. Hier präsentieren wir Ihnen vier verschiedene Ansätze, um Nicht-Terminal in vivo Blutentnahme Techniken entweder bewusst oder betäubt Meerschweinchen.

Nicht-Terminal-Blut-Stichprobenverfahren bei Meerschweinchen

Guinea pigs possess several biological similarities to humans and are validated experimental animal models1-3. However, the use of guinea pigs currently ...

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Research

JoVE Journal

Biology

37.4K Aufrufe.  University of Copenhagen.  Obwohl ein bekanntes Modell, stellt das Meerschweinchen noch eine Nische in der experimentellen Tierforschung und der begrenzten Daten über die Ausführung der meisten Verfahren zur Verfügung. Hier präsentieren wir Ihnen vier verschiedene Ansätze, um Nicht-Terminal in vivo Blutentnahme Techniken entweder bewusst oder betäubt Meerschweinchen. 

Serie: Non-Terminal Blood Sampling Techniques in Guinea Pigs

Drawing Blood from Rats through the Saphenous Vein and by Cardiac Puncture

Drawing blood from rodents is necessary for a large number of both in vitro and in vivo studies. Sites of blood draws are numerous in rodents: retro-orbital sinus, jugular vein, maxillary vein, saphenous vein, heart. Each technique has its advantages and disadvantages, and some are not approved any more in some countries (e.g., retro-orbital draws in Holland). A discussion of different techniques for drawing blood are available 1-3.
Here, we present two techniques for drawing blood from rats, each with its specific applications.
Blood draw from the saphenous vein, provided it is done properly, induces minimal distress in animals and does not require anesthesia. This technique allows repeated draws of small amounts of blood, such as needed for pharmacokinetic studies 4,5, determining plasma chemistry, or blood counts 6.
Cardiac puncture allows the collection of large amounts of blood from a single animal (up to 10 ml of blood can be drawn from a 150 g rat). This technique is therefore very useful as a terminal procedure when drawing blood from the saphenous would not provide a large enough sample. We use cardiac puncture when we need sufficient amounts of serum from a specific strain of rats to grow T lymphocyte lines in vitro 4-9.

Blood draws are necessary in a large number of studies, for example to study the pharmacokinetics profile of a compound. Here, we demonstrate how to draw blood from rats using two techniques: blood draw from the saphenous vein or by cardiac puncture.

Drawing Blood von Ratten durch die Vena saphena und durch Herzpunktion

Drawing blood from rodents is necessary for a large number of both in vitro and in vivo studies. Sites of blood draws are numerous in rodents: ...

Forschung

Biologie

Optimized Interferon-gamma ELISpot Assay to Measure T Cell Responses in the Guinea Pig Model after Vaccination

The guinea pig has played a pivotal role as a relevant small animal model in the development of vaccines for infectious diseases such as tuberculosis, influenza, diphtheria, and viral hemorrhagic fevers. We have demonstrated that plasmid-DNA (pDNA) vaccine delivery into the skin elicits robust humoral responses in the guinea pig. However, the use of this animal to model immune responses was somewhat limited in the past due to the lack of available reagents and protocols to study T cell responses. T cells play a pivotal role in both immunoprophylactic and immunotherapeutic mechanisms. Understanding T cell responses is crucial for the development of infectious disease and oncology vaccines and accommodating delivery devices. Here we describe an interferon-gamma (IFN-&#947;) enzyme-linked immunospot (ELISpot) assay for guinea pig peripheral blood mononuclear cells (PBMCs). The assay enables researchers to characterize vaccine-specific T-cell responses in this important rodent model. The ability to assay cells isolated from the peripheral blood provides the opportunity to track immunogenicity in individual animals.

The development of the interferon-gamma ELISpot assay for guinea pig PBMCs allows the characterization of T-cell responses in this highly relevant model for studying infectious diseases. We have applied the assay to measure T cell responses associated with intradermal delivery of DNA vaccines.

Optimierte Interferon-Gamma ELISpot Assay zur Maßnahme T-Zell-Antworten im Meerschweinchen-Modell nach der Impfung

The guinea pig has played a pivotal role as a relevant small animal model in the development of vaccines for infectious diseases such as tuberculosis, ...

Immunologie und Infektion

Subclavian Vein Puncture As an Alternative Method of Blood Sample Collection in Rats

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful compared to other more aggressive methods such as retro-orbital plexus sample collection. However, this blood collection method is sometimes limited by an unsatisfactory success rate. Here, we introduce a method for blood collection through the subclavian vein puncture. The subclavian vein is located just under the clavicle and this vein is large enough to fulfill the volume requirements of blood collection. Our results show that this method is safe and applicable for blood collection sampling with the required blood volume. Blood collection through the subclavian vein puncture could serve as an alternative blood collection method in case of failed tail vein blood sampling in rats.

Here, we present a protocol to collect blood samples from the rat subclavian vein.

Vene subclavia Punktion als eine Alternative Methode zur Probe Blutentnahme bei Ratten

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful ...

Medizin

A Revised Surgical Approach to Induce Endolymphatic Hydrops in the Guinea Pig

Endolymphatic hydrops is an enlargement of scala media that is most often associated with Meniere&#39;s disease, though the pathophysiologic mechanism(s) remain unclear. In order to adequately study the attributes of endolymphatic hydrops, such as the origins of low-frequency hearing loss, a reliable model is needed. The guinea pig is a&#160;good model because it hears in the low-frequency regions that are putatively affected by endolymphatic hydrops. Previous research has demonstrated that endolymphatic hydrops can be induced surgically via intradural or extradural approaches that involve drilling on the endolymphatic duct and sac. However, whether it was possible to create an endolymphatic hydrops model using an extradural approach that avoided dangerous drilling on the endolymphatic duct and sac was unknown. The objective of this study was to demonstrate a revised extradural approach to induce experimental endolymphatic hydrops at 30 days post-operatively by obliterating the endolymphatic sac and injuring the endolymphatic duct with a fine pick. The sample size consisted of seven guinea pigs. Functional measurements of hearing were made and temporal bones were subsequently harvested for histologic analysis. The approach had a success rate of 86% in achieving endolymphatic hydrops. The risk of cerebrospinal fluid leak was minimal. No perioperative deaths or injuries to the posterior semicircular canal occurred in the sample. The presented method demonstrates a safe and reliable way to induce endolymphatic hydrops at a relatively quick time point of 30 days. The clinical implications are that the presented method provides a reliable model to further explore the origins of low-frequency hearing loss that can be associated endolymphatic hydrops.

This article demonstrates an extradural approach to obliterate the guinea pig endolymphatic sac and injure the endolymphatic duct with a fine pick in order to induce experimental endolymphatic hydrops.

Ein überarbeiteter chirurgischer Ansatz zur Induzieren von endolymphatischen Hydrops im Meerschweinchen

Endolymphatic hydrops is an enlargement of scala media that is most often associated with Meniere&#39;s disease, though the pathophysiologic mechanism(s) ...

Neurowissenschaften

Continuous Blood Sampling in Small Animal Positron Emission Tomography/Computed Tomography Enables the Measurement of the Arterial Input Function

For quantitative analysis and bio-kinetic modeling of positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) data, the determination of the temporal blood time-activity concentration also known as arterial input function (AIF) is a key point, especially for the characterization of animal disease models and the introduction of newly developed radiotracers. The knowledge of radiotracer availability in the blood helps to interpret PET/CT-derived data of tissue activity. For this purpose, online blood sampling during the PET/CT imaging is advisable to measure the AIF. In contrast to manual blood sampling and image-derived approaches, continuous online blood sampling has several advantages. Besides the minimized blood loss, there is an improved resolution and a superior accuracy for the blood activity measurement. However, the major drawback of online blood sampling is the costly and time-consuming preparation to catheterize the femoral vessels of the animal. Here, we describe an easy and complete workflow for catheterization and continuous blood sampling during small animal PET/CT imaging and compared it to manual blood sampling and an image-derived approach. Using this highly-standardized workflow, the determination of the fluorodeoxyglucose ([18F]FDG) AIF is demonstrated. Further, this procedure can be applied to any radiotracer in combination with different animal models to create fundamental knowledge of tracer kinetic and model characteristics. This allows a more precise evaluation of the behavior of pharmaceuticals, both for diagnostic and therapeutic approaches in the preclinical research of oncological, neurodegenerative and myocardial diseases.

Here a protocol for continuous blood sampling during PET/CT imaging of rats to measure the arterial input function (AIF) is described. The catheterization, the calibration and setup of the system and the data analysis of the blood radioactivity are demonstrated. The generated data provide input parameters for subsequent bio-kinetic modeling.

Kontinuierliche Blutentnahme in der Kleintier-Positronen-Emissionstomographie/Computertomographie ermöglicht die Messung der arteriellen Eingabefunktion

For quantitative analysis and bio-kinetic modeling of positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) data, the determination of the temporal ...

Sampling Blood from the Lateral Tail Vein of the Rat

Blood samples are commonly obtained in many experimental contexts to measure targets of interest, including hormones, immune factors, growth factors, proteins, and glucose, yet the composition of the blood is dynamically regulated and easily perturbed. One factor that can change the blood composition is the stress response triggered by the sampling procedure, which can contribute to variability in the measures of interest. Here we describe a procedure for blood sampling from the lateral tail vein in the rat. This procedure offers significant advantages over other more commonly used techniques. It permits rapid sampling with minimal pain or invasiveness, without anesthesia or analgesia. Additionally, it can be used to obtain large volume samples (upwards of 1 ml in some rats), and it may be used repeatedly across experimental days. By minimizing the stress response and pain resulting from blood sampling, measures can more accurately reflect the true basal state of the animal, with minimal influence from the sampling procedure itself.

Blood samples are useful for assessing biomarkers of physiological states or disease in vivo. Here we describe the methodology to sample blood from the lateral tail vein in the rat. This method provides rapid samples with minimal pain and invasiveness.

Blutprobenentnahme aus der laterale Schwanzvene der Ratte

Blood samples are commonly obtained in many experimental contexts to measure targets of interest, including hormones, immune factors, growth factors, ...

Repetitive Blood Sampling from the Subclavian Vein of Conscious Rat

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to detect drug exposure. The rat blood sampling method determines the quality of the plasma and further affects the precision of the test results. The subclavian vein blood collection method described in this protocol collects blood samples repeatedly in the conscious state of animals to meet the needs of PK and TK tests. The skills of restraint handling and appropriate procedure of needle incision ensure the success rate of blood collection. It is easy to operate while ensuring the quality of plasma and at the same time catering to animal welfare. However, this method requires skilled operation, and an improper one may cause animal weakness, pain, lameness, and even mortality. The current method has been used in the testing facility for a 4-week oral toxicity study in Sprague Dawley (SD) rats with TK. The maximum amount of blood collected within 24 h did not exceed 20% of the animal's total blood. The animals' body weight was more than 200 g for males and females. The data showed that the animals' bodyweight increased steadily every week, and the clinical observation was normal after repetitive sample collection.

The present protocol describes a simple and efficient method for collecting blood from the subclavian vein in rats. It enables rapid, timely, and easily identifiable sampling without anesthesia and obtains high-quality blood through repetitive sample collection.

Wiederholte Blutentnahme aus der Vena subclavia einer bewussten Ratte

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to ...

Transdermal Measurement of Glomerular Filtration Rate in Mechanically Ventilated Piglets

Transdermal measurement of glomerular filtration rate (GFR) has been used to evaluate kidney function in conscious animals. This technique is well established in rodents to study acute kidney injury and chronic kidney disease. However, GFR measurement using the transdermal system has not been validated in pigs, a species with a similar renal system to humans. Hence, we investigated the effect of sepsis on transdermal GFR in anesthetized and mechanically ventilated neonatal pigs. Polymicrobial sepsis was induced by cecal ligation and puncture (CLP). The transdermal GFR measurement system consisting of a miniaturized fluorescence sensor was attached to the pig's shaved skin to determine the clearance of fluorescein-isothiocyanate (FITC) conjugated sinistrin, an intravenously injected GFR tracer. Our results show that at 12 h post-CLP, serum creatinine increased with a decrease in GFR. This study demonstrates, for the first time, the utility of the transdermal GFR approach in determining renal function in mechanically ventilated, neonatal pigs.

Glomerular filtration rate (GFR) is the ideal marker for assessing kidney function. However, the standard measurement method using inulin injection with serial blood and urine analysis is impractical. This article delineates a practical method to measure GFR transdermally in piglets.

Transdermale Messung der glomerulären Filtrationsrate bei mechanisch belüfteten Ferkeln

Transdermal measurement of glomerular filtration rate (GFR) has been used to evaluate kidney function in conscious animals. This technique is well ...

Vergleichende Studie zu Blutentnahmetechniken bei Ratten

Modified Tail Vein and Penile Vein Puncture for Blood Sampling in the Rat Model

Blood samples are required in most experimental animal designs to assess various hematological parameters. This paper presents two procedures for blood collection in rats: the lateral tail vein puncture and the dorsal penile vein puncture, which offer significant advantages over other previously described techniques. This study shows that these two procedures allow for fast sampling (under 10 min) and yield sufficient blood volumes for most assays (202 &#956;L &#177; 67.7 &#956;L). The dorsal penile vein puncture must be done under anesthesia, whereas the lateral tail vein puncture can be done on a conscious, restrained animal.
Alternating these two techniques, therefore, enables blood draw in any situation. While it is always recommended for an operator to be assisted during a procedure to ensure animal welfare, these techniques require only a single operator, unlike most blood sampling methods that require two. Moreover, whereas these previously described methods (e.g., jugular stick, subclavian vein blood draw) require extensive prior training to avoid harm to or death of the animal, tail vein and dorsal penile vein puncture are rarely fatal. For all these reasons, and according to the context (e.g., for studies including male rats, during the perioperative or immediate postoperative period, for animals with thin tail veins), both techniques can be used alternately to enable repeated blood draws.

Autor im Rampenlicht: Kontextabhängige Blutentnahmemethoden bei Ratten 

Here, we present a protocol to offer rapid, easy, and reliable blood collection alternatives for the rat model. We describe three different blood sampling methods according to the context: tail vein puncture under anesthesia or on a conscious animal, and dorsal penile vein puncture under anesthesia.

Modifizierte Schwanzvenen- und Penisvenenpunktion zur Blutentnahme im Rattenmodell

Blood samples are required in most experimental animal designs to assess various hematological parameters. This paper presents two procedures for blood ...

Nicht-Terminal-Blut-Stichprobenverfahren bei Meerschweinchen

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Drawing Blood von Ratten durch die Vena saphena und durch Herzpunktion

Optimierte Interferon-Gamma ELISpot Assay zur Maßnahme T-Zell-Antworten im Meerschweinchen-Modell nach der Impfung

Vene subclavia Punktion als eine Alternative Methode zur Probe Blutentnahme bei Ratten

Ein überarbeiteter chirurgischer Ansatz zur Induzieren von endolymphatischen Hydrops im Meerschweinchen

Kontinuierliche Blutentnahme in der Kleintier-Positronen-Emissionstomographie/Computertomographie ermöglicht die Messung der arteriellen Eingabefunktion

Blutprobenentnahme aus der laterale Schwanzvene der Ratte

Wiederholte Blutentnahme aus der Vena subclavia einer bewussten Ratte

Transdermale Messung der glomerulären Filtrationsrate bei mechanisch belüfteten Ferkeln

Modifizierte Schwanzvenen- und Penisvenenpunktion zur Blutentnahme im Rattenmodell

Modifizierte Schwanzvenen- und Penisvenenpunktion zur Blutentnahme im Rattenmodell