Diese Methode kann Schlüsselfragen in der Wachstum und Morphologie von Stolonen und Rhizome verschiedener Kulturen wie Rasengräser, Wiesen und Weiden beantworten. Der Hauptvorteil dieser Technik besteht darin, dass die Länge von Stolon und Rhizom in Proben mit einer großen Menge Biomasse gemessen werden kann, für die das Gewicht der einzige Parameter ist, der derzeit verwendet wird. Sammeln Sie Proben mit einem Bodenkern-Sampler.
Fügen Sie die oberirdische Biomasse und eine Bodenschicht mit einer geeigneten Tiefe ein, je nach Art, um die Sammlung von Stolonen und Rhizomen zu gewährleisten. Alternativ können Sie die Zuspielfläche mit einem Rahmen definieren und die Proben mit einem Spaten sammeln. Beschriften Sie jede Probe mit Laborband.
Um die Biomasseproben zu reinigen, legen Sie die Probe in ein großes Sieb mit 0,5 bis 1,5 Millimeter Öffnungen, je nach Stolon- oder Rhizomgröße. Die Öffnungen sollten klein genug sein, um alle Stolons und Rhizome zu behalten, aber groß genug, um die Bodenpartikel entfernen zu lassen. Reinigen Sie die Proben mit einem Wasserstrom mit genügend Kraft, um Bodenpartikel zu entfernen, ohne die Pflanzen zu beschädigen.
Holen Sie sich die sauberen Proben und legen Sie sie in ein Fach mit Papiertüchern, wobei Sie darauf achten, die Schalen entsprechend zu beschriften. Reinigen Sie die Proben weiter, indem Sie Wurzeln und Blätter mit einer Schere entfernen. Trennen Sie dabei bei Bedarf die Stolons und Rhizome und erfassen Sie zusätzliche Informationen, wie z. B. die Anzahl der Pflanzen, Ackerfräsen und Stolons pro Pflanze.
Legen Sie die Stolons und Rhizome in papierbeschriftete Beutel. Legen Sie die Probe auf ein transparentes Kunststofffach des WinRHIZO-Standard-Scangeräts. Legen Sie die Stolons und Rhizome manuell mit Laborzangen, um Überlappungen zu minimieren.
Große Proben müssen möglicherweise in Unterproben aufgeteilt werden. Legen Sie das Fach auf die Scanneroberfläche, schalten Sie dann den Scanner ein, und starten Sie das Programm. Um weitere Kontrolle in einem gespeicherten Bild zu erhalten, überprüfen Sie das Bild-dpi im Bildmenü, indem Sie den Befehl Bildaufnahmeparameter auswählen.
Überprüfen Sie den Schwellenwert und die Analyse, indem Sie den Befehl Hintergrundunterschied verlesen auswählen, um eine gute Klassifizierung der Pixel der gescannten Organe zu erhalten. Überprüfen Sie, ob die gesamte Trayoberfläche im Menü Bild gescannt wird, indem Sie den Befehl Bildaufnahmeparameter auswählen. Überprüfen Sie nun die Durchmesserklasse, die für die Organverteilung pro Durchmesser im grafiken Bereich über dem gescannten Bild angezeigt wird.
Wählen Sie 20 Gleiche Breitenklassen mit 0,1 Millimeter-Intervallen aus, indem Sie auf den horizontalen Zugriff auf das Diagramm klicken. Diese Funktion ermöglicht den Ausschluss von Daten, die zu Wurzeln oder kleinen Organen gehören, wenn Stolons oder Rhizome nicht perfekt gereinigt wurden. Die Literatur berichtet, dass die meisten Wurzeln von Rasenarten einen Durchmesser von weniger als 0,2 Millimetern haben.
Führen Sie den ersten Beispielscan aus, und überprüfen Sie, ob die Bearbeitung eine gute Analyse ermöglicht. Befolgen Sie die Softwareanweisungen zum Speichern des Bildes. Schließlich verarbeiten Sie die Analyse nach der Softwareoption und beschriften Sie das Bild und die Analyse mit dem Beispieletikett.
Fahren Sie mit dem Scannen aller Proben fort. Um die Messung des Trockengewichts durchzuführen, legen Sie die gescannten Proben in einem geteerten Aluminiumfach auf eine präzise elektronische Waage und zeichnen sie auf. Wiederholen Sie diesen Schritt für alle gescannten Proben.
Fügen Sie alle Proben in eine oft auf 105 Grad Celsius eingestellte und trocknen Sie sie für 24 Stunden. Am nächsten Tag entfernen Sie die Proben und warten Sie, bis sich das Gewebegewicht stabilisiert hat. Dann wiegen Sie alle Proben mit ihrem Tare.
Subtrahieren Sie das Gewicht von dem aufgezeichneten Gewicht, um das Nettogewicht jeder Probe zu erhalten. Gezeigt werden Beispielergebnisse aus einem Feldversuch, in dem die Stolon- und Rhizomlängendichte von vier Bermudagrassorten vom Typ Rasen verglichen wird. Die Stolonlängendichte zwischen den vegetativen Sorten Patriot und Tifway und den Samensorten La Paloma und Yukon in Proben, die im Juli 2014 gesammelt wurden, unterscheidet sich signifikant.
Für die Rhizome weist Patriot die höchste Längendichte auf, gefolgt von Tifway und den gesäten Sorten. Die Entwicklung der Stolonlängendichte der Sorte Patriot während des gesamten Studienzeitraums zeigt einen Anstieg von März 2014 bis Juli 2014 und schwankte nicht von Juli 2014 bis Juli 2015. In Proben, die im Oktober 2013 und März 2014 entnommen wurden, wurden nur wenige Rhizome gefunden.
Die Rhizomlängendichte nimmt im Juli 2014 zu und erreicht die höchsten Werte. Aber sie nimmt im Oktober 2014 wieder ab. Beim Versuch dieses Verfahrens ist es wichtig, sich daran zu erinnern, repräsentative Proben auszuwählen, Stolons und Rhizome vor der Analyse sorgfältig zu reinigen und die Breite der Durchmesserklassen mithilfe von Softwareoptionen auszuwählen, die nur Stolons und Rhizome in die Analyse einbeziehen.
