Diese Arbeit wurde vom Ministerium für Wissenschaft und Technologie der Provinz Sichuan unterstützt (2021YJ0175).

Das Versuchsprotokoll und die Verfahren wurden vom Verwaltungs- und Tierforschungsausschuss der Chengdu University of Traditional Chinese Medicine genehmigt (Datensatznummer: 2022DL-010). Acht Wochen alte männliche Sprague Dawley (SD)-Ratten mit einem Gewicht von 180-200 g wurden kommerziell gewonnen (siehe Materialtabelle) und unter einem natürlichen Hell-Dunkel-Zyklus mit kontrollierter Temperatur (23 ± 2 °C) und relativer Luftfeuchtigkeit (55 % ± 10 %) gehalten. Zwölf Ratten wurden nach dem Zufallsprinzip in zwei Gruppen eingeteilt: die Kontrollgruppe und die AR-Gruppe. Alle Ratten wurden an diese Bedingungen gewöhnt und erhielten vor dem Versuch eine Woche lang freien Zugang zu Futter und Wasser.
1. Etablierung eines Rattenmodells der AR
<ol><li>Herstellung der sensibilisierenden Lösung: 30 mg Ovalbumin (OVA) und 3 g Al(OH)3 in 100 ml Kochsalzlösung suspendieren (siehe Materialtabelle)14,15.</li>
	<li>Grundlegende Sensibilisierung: Fassen und halten Sie die voll wache Ratte mit dem Bauch nach oben. Desinfizieren Sie den Bauch mit 75% alkoholgetränkten Wattebäuschen. Verwenden Sie eine 1,5-ml-Spritze, um 1 ml der in Schritt 1.1 hergestellten sensibilisierenden Lösung in die linke Bauchhöhle der Ratten in der AR-Gruppe zu injizieren. Wiederholen Sie diese Injektion 14 Tage lang einmal alle zwei Tage (Abbildung 1A). HINWEIS: Stellen Sie sicher, dass der Kopf der Ratte tiefer als ihr Schwanz positioniert ist, um Schäden am Dick- und Dünndarm beim Einführen der Spritze zu vermeiden. Die Injektionsstelle befindet sich 1,5 cm von der ventralen Mittellinie entfernt. Ratten in der Kontrollgruppe sollten 14 Tage lang alle zwei Tage intraperitoneale Injektionen von 1 ml normaler Kochsalzlösung erhalten.</li>
	<li>Nasale Provokation: Verabreichen Sie 50 μl 5%ige OVA über Nasentropfen mit einer 100-μl-Pipette (Abbildung 1B) am Tag nach der basalen Sensibilisierung und wiederholen Sie diesen Vorgang 7 Tage lang (Abbildung 1C). HINWEIS: Bereiten Sie die 5%ige OVA-Lösung vor, indem Sie 5 g OVA mit 100 ml Kochsalzlösung mischen. Verabreichen Sie der Kontrollgruppe Tropfen des gleichen Volumens Kochsalzlösung.</li>
</ol>2. Verhaltens-Scoring von Ratten
<ol><li>Beobachten und zeichnen Sie die Ratten innerhalb von 30 Minuten nach Abschluss der letzten nasalen Herausforderung mit einer Digitalkamera auf, um Symptome wie Nasenkratzen, Niesen und eine laufende Nase basierend auf den in Tabelle 1 (Abbildung 1D) beschriebenen Bewertungskriterien zu identifizieren. HINWEIS: Die Bestätigung einer erfolgreichen AR-Modellierung basiert auf dem Erreichen einer Gesamtpunktzahl von ≥5 Punkten14.</li>
</ol>3. Entnahme von Nasenschleimhautproben
<ol><li>Ratten opfern: Opfern Sie die Ratten, indem Sie sie einer Überdosis CO2 aussetzen. Desinfizieren Sie die Ratten anschließend mit 75%igem Ethanol (siehe Materialtabelle). Verwenden Sie ein Skalpell, um einen Schnitt entlang der beiden Mundwinkel zu machen, um das Muskelgewebe freizulegen (Abbildung 2A). Als nächstes werden die Gelenke des Jochbeins und des Unterkiefers auf beiden Seiten des Schädels mit einer Gewebeschere durchtrennt (Abbildung 2B) und der Unterkiefer entfernt (Abbildung 2C).</li>
	<li>Freilegung der Nasenhöhle: Trennen Sie die Haut des Oberkiefers mit einem Hämostat (Abbildung 2D) ab, um die Nasenhöhle freizulegen (Abbildung 2E). Durchtrennen Sie die knöcherne Verbindung zwischen Nasenhöhle und Oberkiefer mit einer Gewebeschere (Abbildung 2F). Dann wird die Verbindung zwischen der Nasenhöhle und den Augenhöhlen beidseits am Foramen infraorbitalis durchtrennt (Abbildung 2G) und die Nasenhöhle entfernt (Abbildung 2H).</li>
	<li>Fixierung: Die extrahierte Nasenhöhle wird zur Fixierung in 4% Paraformaldehyd gelegt und 24-72 h bei Raumtemperatur gelagert (siehe Materialtabelle). HINWEIS: Stellen Sie sicher, dass die Menge des verwendeten Paraformaldehyd-Fixiermittels ausreicht, um die Abschnitte für eine ordnungsgemäße Fixierung vollständig zu bedecken.</li>
</ol>4. Vorverarbeitung von Nasenschleimhautproben
<ol><li>Entkalkung: Beginnen Sie mit der Fixierung des entfernten Gewebes aus Schritt 3.1. Waschen Sie sie dreimal mit PBS für jeweils 20 Minuten. Waschen Sie sie anschließend dreimal mit destilliertem Wasser, jeweils 20 Minuten lang. Anschließend wird das Gewebe in einer Entkalkungslösung mit einem Volumen von 20-30 mal so groß wie das Gewebe bei Raumtemperatur entkalkt.<ol><li>Die Entkalkungslösung (siehe Materialtabelle) sollte einen pH-Wert von 7,2-7,4 aufweisen. Zum Schluss legen Sie das entkalzte Gewebe in eine Dehydrierbox. HINWEIS: Die Entkalkungslösung muss wöchentlich gewechselt werden. Der Entkalkungsprozess kann abgeschlossen werden, wenn das Gewebe weicher wird (ca. 2 Monate).</li>
	</ol></li>
	<li>Dehydrierung und Waxing: Füllen Sie die Dörrbox in einen Dörrautomat (siehe Materialtabelle). Beginnen Sie mit 75 % Alkohol für 4 Stunden, gefolgt von 85 % Alkohol für 2 Stunden, 90 % Alkohol für 2 Stunden und 95 % Alkohol für 1 Stunde.<ol><li>Tauchen Sie anschließend das Gewebe für 30 Minuten in wasserfreies Ethanol, wiederholen Sie den Vorgang für weitere 30 Minuten, verwenden Sie Xylol für 5-10 Minuten, wiederholen Sie diesen Schritt für weitere 5-10 Minuten, tauchen Sie das Gewebe 1 Stunde lang in Wachs, wiederholen Sie diesen Schritt für eine weitere Stunde und tauchen Sie das Gewebe schließlich für weitere 1 Stunde in Wachs.</li>
	</ol></li>
	<li>Einbetten: Legen Sie den geschmolzenen Wachsblock in die Einbettbox (siehe Materialtabelle) und lagern Sie ihn in einem Gefrierschrank bei -20 °C. Sobald sich das Wachs verfestigt hat, entferne es und schneide den Wachsblock ab.</li>
	<li>Schneiden: Den getrimmten Wachsblock in ein Paraffinmikrotom (siehe Materialtabelle) stecken und in 3 μm dicke Scheiben schneiden. Die Scheiben in ein 40 °C warmes Wasserbad auf einen Objektträgerstreuer legen. Das Tuch flach drücken, dann mit einem Objektträger anheben und bei 60 °C backen.<ol><li>Nachdem das Wasser verdunstet ist und das Wachs richtig ausgehärtet ist, entfernen Sie die Objektträger und lagern Sie sie bei einer Temperatur von 25 °C.</li>
	</ol></li>
</ol>5. H&E-Färbung von Nasenschleimhautgewebe
<ol><li>Entwachsung und Hydratation: Legen Sie die Scheiben für 20 Minuten in Xylol, wiederholen Sie den Vorgang für weitere 20 Minuten, absolutes Ethanol für 5 Minuten, wiederholen Sie diesen Schritt für weitere 5 Minuten, 75% Alkohol für 5 Minuten und waschen Sie schließlich 5 Minuten lang.</li>
	<li>Hämatoxylin-Färbung: 100 μl Hämatoxylin-Färbelösung (siehe Materialtabelle) für 3-5 Minuten mit einer 100-μl-Pipette abgeben, 5-10 s lang spülen, 100 μl 0,5%iges Salzsäure-Ethanol für 10-30 s hinzufügen, 5-10 s spülen, 100 μl 0,2%iges Ammoniakwasser für 10-30 s hinzufügen und 30 s lang spülen. HINWEIS: Nach der Hämatoxylin-Färbung ist eine Differenzierung mit 0,5% Salzsäure-Ethanol erforderlich, um überschüssigen Hämatoxylin-Farbstoff zu entfernen, der an den Zellkern gebunden und vom Zytoplasma absorbiert wird. Wenn eine Eosin-Färbung durchgeführt wird, werden die Zellkerne und das Zytoplasma deutlich gefärbt. Die Scheiben erscheinen nach der Differenzierung mit 0,5%igem Salzsäure-Ethanol rot oder rosa, also spülen Sie sofort nach der Differenzierung ab, um die Säure aus den Gewebeschnitten zu entfernen und die Differenzierung zu stoppen. Verwenden Sie dann 0,2 % Ammoniakwasser, um die Kernfärbung zu verbessern.</li>
	<li>Eosin-Färbung: Verwenden Sie eine 100-μl-Pipette, um 100 μl Eosin-Färbelösung (siehe Materialtabelle) für 5 Minuten zu dosieren und 30 s lang zu spülen.</li>
	<li>Dehydrierung und Versiegelung: Tauchen Sie die Scheiben 5 Minuten lang in absolutes Ethanol, wiederholen Sie den Vorgang für weitere 5 Minuten, wiederholen Sie den Vorgang noch einmal für 5 Minuten, Dimethyl für 5 Minuten und Xylol für 5 Minuten. Zum Schluss mit Neutralharz abdichten (siehe Materialtabelle).</li>
	<li>Platzieren des gefärbten Schnitts auf dem Mikroskop: Positionieren Sie den gefärbten Bereich auf dem Mikroskop, stellen Sie den Fokus des Mikroskops ein, bis das Bild deutlich sichtbar ist, stellen Sie die Vergrößerung auf 40x ein und nehmen Sie das Bild auf.</li>
</ol>6. Mehrfarbige Immunfärbung von Nasenschleimhautgewebe
<ol><li>Entwachsung und Hydratation: Befolgen Sie die Anweisungen in Schritt 5.1.</li>
	<li>Citrat-Phosphat-Puffer-Behandlung: Citrat-Phosphat-Puffer (pH 6,0) (siehe Materialtabelle) in einen mikrowellengeeigneten Behälter geben. Erhitzen Sie es, bis es kocht, nehmen Sie es heraus und geben Sie dann die Objektträger in den Behälter. 8 Minuten lang bei mittlerer Hitze in der Mikrowelle erhitzen, bis sie kochen, den Herd für 8 Minuten ausschalten und dann für 7 Minuten auf mittlere bis niedrige Hitze umschalten.<ol><li>Nach dem natürlichen Abkühlen die Scheiben in PBS (pH 7,4) geben, schütteln und dreimal mit einem Entfärbungsshaker waschen, jeweils 5 Minuten lang. HINWEIS: Stellen Sie sicher, dass der Puffer während dieses Vorgangs nicht verdunstet, und verhindern Sie, dass die Scheiben austrocknen.</li>
	</ol></li>
	<li>Blockieren der endogenen Peroxidase: Trocknen Sie die Scheiben, ziehen Sie mit einem immunhistochemischen Stift einen Kreis um das Gewebe (um zu verhindern, dass der Antikörper wegfließt) und tragen Sie 3%ige Wasserstoffperoxidlösung auf (Wasserstoffperoxid: reines Wasser = 1:9).<ol><li>Bei Raumtemperatur im Dunkeln 15 min inkubieren. Nach dem natürlichen Abkühlen legen Sie die Scheiben in PBS (pH 7,4) und schütteln Sie sie auf einem Entfärbungsschüttler für drei Zyklen von jeweils 5 Minuten.</li>
	</ol></li>
	<li>Blockierung: 5% Ziegenserum innerhalb des Kreises auftragen und 30 Minuten inkubieren.</li>
	<li>Zugabe von Primärantikörpern: Entfernen Sie vorsichtig die blockierende Lösung, geben Sie FOXP3 (Verdünnung: 1:200, siehe Materialtabelle) in die Scheibe und legen Sie sie in eine feuchte Kammer. Über Nacht bei 4 °C inkubieren. HINWEIS: Geben Sie eine kleine Menge Wasser in die feuchte Kammer, um die Verdunstung der Antikörper zu verhindern.</li>
	<li>Zugabe von sekundären Antikörpern: Geben Sie die Scheiben in PBS (pH 7,4) und schütteln Sie sie auf einem Entfärbungsschüttler für drei Zyklen von jeweils 5 Minuten. Trocknen Sie die Scheiben vorsichtig ab und tragen Sie den Sekundärantikörper (Goat Anti-Rabbit IgG H&L, siehe Materialtabelle) innerhalb des Kreises auf. Bei Raumtemperatur 50 Minuten im Dunkeln inkubieren.</li>
	<li>Herstellung der Tyramid-Verdünnungslösung: 100 μl 3 %H2O2mit 100 ml 1x TBST vermischen (siehe Materialtabelle).</li>
	<li>Zugabe von TSA-Arbeitslösung: Mischen Sie 1 ml Tyramid-Verdünnungsmittel mit 2 μl CY3-Tyramid, um die TSA-Arbeitslösung herzustellen. 100 μl TSA-Arbeitslösung auf jede Scheibe geben und bei Raumtemperatur im Dunkeln 10 Minuten lang inkubieren. Waschen Sie die Scheiben dann dreimal mit PBS, jeweils 5 Minuten. HINWEIS: Bereiten Sie die TSA-Arbeitslösung sofort vor, verwenden Sie sie und lagern Sie sie bei 4 °C im Dunkeln. Sie ist bis zu 24 h gültig.</li>
	<li>Wiederholen Sie die Schritte 6.2-6.8: Wechseln Sie zu einer 1:200-Verdünnung von RORγt (FITC-Fluoreszenzfarbstoff) und dann zu einer 1:200-Verdünnung von TICAM1 (TYP620-Farbstoff) (siehe Materialtabelle).</li>
	<li>DAPI-gegengefärbte Kerne: Schütteln Sie die Scheiben vorsichtig, um sie zu trocknen, tragen Sie DAPI-Färbelösung auf und inkubieren Sie sie 10 Minuten lang bei Raumtemperatur im Dunkeln.</li>
	<li>Autofluoreszenz löschen: Die Scheiben in PBS (pH 7,4) legen und drei Zyklen à 5 Minuten lang auf einem Entfärbungsschüttler schütteln. Den Autofluoreszenzlöscher (siehe Materialtabelle) auf die Scheiben auftragen, 5 Minuten warten und dann 10 Minuten waschen.</li>
	<li>Blockierung: Legen Sie die Scheiben in PBS (pH 7,4) und schütteln Sie sie auf einem Entfärbungsschüttler für drei Zyklen von jeweils 5 Minuten. Schütteln Sie die Scheiben vorsichtig, um sie zu trocknen, und versiegeln Sie sie mit dem Anti-Fluoreszenz-Quencher (siehe Materialtabelle).</li>
	<li>Mikroskopie: Legen Sie den gefärbten Bereich auf das Mikroskop, stellen Sie den Fokus des Mikroskops für eine klare Sicht ein, stellen Sie die Vergrößerung auf 20x und 40x ein und nehmen Sie das Bild auf. HINWEIS: DAPI hat eine UV-Anregungswellenlänge von 330-380 nm und eine Emissionswellenlänge von 420 nm (blaues Licht). FITC hat eine Anregungswellenlänge von 465-495 nm und eine Emissionswellenlänge von 515-555 nm (grünes Licht). CY3 hat eine Anregungswellenlänge von 510-560 nm und eine Emissionswellenlänge von 590 nm (rotes Licht). TYP-690 hat eine Anregungswellenlänge von 630 nm und eine Emissionswellenlänge von 690 nm (rosa Licht).</li>
</ol>

Mehrfarbige Immunfluoreszenz des Nasengewebes in einem allergischen Rhinitis Rattenmodell

<ol>
	<li>Bro&#380;ek, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Allergic+rhinitis+and+its+impact+on+asthma+(ARIA)+Guidelines-2016+revision.">Allergic rhinitis and its impact on asthma (ARIA) Guidelines-2016 revision.</a> The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 140 (4), 950-958 (2017).</li><li>Maurer, M., Zuberbier, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Undertreatment+of+rhinitis+symptoms+in+Europe:+findings+from+a+cross-sectional+questionnaire+survey.">Undertreatment of rhinitis symptoms in Europe: findings from a cross-sectional questionnaire survey.</a> Allergy. 62 (9), 1057-1063 (2007).</li><li>Ding, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alpha-linolenic+acid+improves+nasal+mucosa+epithelial+barrier+function+in+allergic+rhinitis+by+arresting+CD4++T+cell+differentiation+via+IL-4R&#945;-JAK2-STAT3+pathway.">Alpha-linolenic acid improves nasal mucosa epithelial barrier function in allergic rhinitis by arresting CD4+ T cell differentiation via IL-4R&#945;-JAK2-STAT3 pathway.</a> Phytomedicine: International Journal of Phytotherapy and Phytopharmacology. 116, 154825 (2023).</li><li>Zhou, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activation+of+NLRP3+inflammasome+contributes+to+the+inflammatory+response+to+allergic+rhinitis+via+macrophage+pyroptosis.">Activation of NLRP3 inflammasome contributes to the inflammatory response to allergic rhinitis via macrophage pyroptosis.</a> International Immunopharmacology. 110, 109012 (2022).</li><li>Watts, A. M., Cripps, A. W., West, N. P., Cox, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modulation+of+allergic+inflammation+in+the+nasal+mucosa+of+allergic+rhinitis+sufferers+with+topical+pharmaceutical+agents.">Modulation of allergic inflammation in the nasal mucosa of allergic rhinitis sufferers with topical pharmaceutical agents.</a> Frontiers in pharmacology. 10, 294 (2019).</li><li>Patel, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fungal+extracts+stimulate+solitary+chemosensory+cell+expansion+in+noninvasive+fungal+rhinosinusitis.">Fungal extracts stimulate solitary chemosensory cell expansion in noninvasive fungal rhinosinusitis.</a> International Forum of Allergy &amp; Rhinology. 9 (7), 730-737 (2019).</li><li>Granier, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tim-3+expression+on+tumor-infiltrating+PD-1(+)CD8(+)+T+cells+correlates+with+poor+clinical+outcome+in+renal+cell+carcinoma.">Tim-3 expression on tumor-infiltrating PD-1(+)CD8(+) T cells correlates with poor clinical outcome in renal cell carcinoma.</a> Cancer Research. 77 (5), 1075-1082 (2017).</li><li>Badoua, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PD-1-ex+pressing+tumor-infiltrating+T+cells+are+a+favorable+prognostic+biomarker+in+HPV-associated+head+and+neck+cancer.">PD-1-ex pressing tumor-infiltrating T cells are a favorable prognostic biomarker in HPV-associated head and neck cancer.</a> Cancer Research. 73 (1), 128-138 (2013).</li><li>Fedchenko, N., Reifenrath, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Different+approaches+for+interpretation+and+reporting+of+immunohistochemistry+analysis+results+in+the+bone+tissue+-+a+review.">Different approaches for interpretation and reporting of immunohistochemistry analysis results in the bone tissue - a review.</a> Diagnostic Pathology. 9, 221 (2014).</li><li>Faget, L., Hnasko, T. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tyramide+signal+amplification+for+immunofluorescent+enhancement.">Tyramide signal amplification for immunofluorescent enhancement.</a> Methods in Molecular Biology. 1318, 161-172 (2015).</li><li>Parra, E. R., Villalobos, P., Rodriguez-Canales, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+multiple+faces+of+programmed+cell+death+ligand+1+expression+in+malignant+and+nonmalignant+cells.">The multiple faces of programmed cell death ligand 1 expression in malignant and nonmalignant cells.</a> Applied Immunohistochemistry &amp; Molecular Morphology.: AIMM. 27 (4), 287-294 (2019).</li><li>Welsh, A. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standardization+of+estrogen+receptor+measurement+in+breast+cancer+suggests+false-negative+results+are+a+function+of+threshold+intensity+rather+than+percentage+of+positive+cells.">Standardization of estrogen receptor measurement in breast cancer suggests false-negative results are a function of threshold intensity rather than percentage of positive cells.</a> Journal of Clinical Oncology: Official Journal of the American Society of Clinical Oncology. 29 (22), 2978-2984 (2011).</li><li>Parra, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Validation+of+multiplex+immunofluorescence+panels+using+multispectral+microscopy+for+immune-profiling+of+formalin-fixed+and+paraffin-embedded+human+tumor+tissues.">Validation of multiplex immunofluorescence panels using multispectral microscopy for immune-profiling of formalin-fixed and paraffin-embedded human tumor tissues.</a> Scientific Reports. 7 (1), 13380 (2017).</li><li>Miao, M., Xiang, L., Miao, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Specification+for+preparation+of+allergic+rhinitis+animal+model+(draft).">Specification for preparation of allergic rhinitis animal model (draft).</a> Chinese Traditional and Herbal Drugs. 49 (1), 50-57 (2018).</li><li>Xu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Astragalus+polysaccharides+attenuate+ovalbumin-induced+allergic+rhinitis+in+rats+by+inhibiting+nlrp3+inflammasome+activation+and+nod2-mediated+nf-+&#954;+b+activation.">Astragalus polysaccharides attenuate ovalbumin-induced allergic rhinitis in rats by inhibiting nlrp3 inflammasome activation and nod2-mediated nf- &#954; b activation.</a> Journal of Medicinal Food. 24 (1), 1-9 (2021).</li><li>Bousquet, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Allergic+rhinitis.">Allergic rhinitis.</a> Nature reviews. 6 (1), 95 (2020).</li><li>Huang, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Expression+of+activated+signal+transducer+and+activator+of+transcription-3+as+a+predictive+and+prognostic+marker+in+advanced+esophageal+squamous+cell+carcinoma.">Expression of activated signal transducer and activator of transcription-3 as a predictive and prognostic marker in advanced esophageal squamous cell carcinoma.</a> World Journal of Surgical Oncology. 13, 314 (2015).</li><li>Leynaert, B., Bousquet, J., Neukirch, C., Liard, R., Neukirch, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Perennial+rhinitis:+An+independent+risk+factor+for+asthma+in+nonatopic+subjects:+results+from+the+European+Community+Respiratory+Health+Survey.">Perennial rhinitis: An independent risk factor for asthma in nonatopic subjects: results from the European Community Respiratory Health Survey.</a> The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 104 (2), 301-304 (1999).</li><li>Guerra, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rhinitis+is+an+independent+risk+factor+for+developing+cough+apart+from+colds+among+adults.">Rhinitis is an independent risk factor for developing cough apart from colds among adults.</a> Allergy. 60 (3), 343-349 (2005).</li><li>Greisner, W. A., Settipane, R. J., Settipane, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Co-existence+of+asthma+and+allergic+rhinitis:+a+23-year+follow-up+study+of+college+students.">Co-existence of asthma and allergic rhinitis: a 23-year follow-up study of college students.</a> Allergy and Asthma Proceedings. 19 (4), 185-188 (1998).</li><li>Pawankar, R., Mori, S., Ozu, C., Kimura, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Overview+on+the+pathomechanisms+of+allergic+rhinitis.">Overview on the pathomechanisms of allergic rhinitis.</a> Asia Pacific Allergy. 1 (3), 157-167 (2011).</li><li>Van Nguyen, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anti-allergic+rhinitis+activity+of+&#945;-lipoic+acid+via+balancing+th17/treg+expression+and+enhancing+nrf2/ho-1+pathway+signaling.">Anti-allergic rhinitis activity of &#945;-lipoic acid via balancing th17/treg expression and enhancing nrf2/ho-1 pathway signaling.</a> Scientific Reports. 10 (1), 12528 (2020).</li><li>Ivanov, I. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+orphan+nuclear+receptor+ror&#947;t+directs+the+differentiation+program+of+proinflammatory+IL-17++T+helper+cells.">The orphan nuclear receptor ror&#947;t directs the differentiation program of proinflammatory IL-17+ T helper cells.</a> Cell. 126 (6), 1121-1133 (2006).</li><li>Fontenot, J. D., Gavin, M. A., Rudensky, A. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Foxp3+programs+the+development+and+function+of+CD4+CD25++regulatory+T+cells.">Foxp3 programs the development and function of CD4+CD25+ regulatory T cells.</a> Nature Immunology. 4 (4), 330-336 (2003).</li><li>Zhou, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Instability+of+the+transcription+factor+Foxp3+leads+to+the+generation+of+pathogenic+memory+T+cells+in+Vivo.">Instability of the transcription factor Foxp3 leads to the generation of pathogenic memory T cells in Vivo.</a> Nature Immunology. 10 (9), 1000-1007 (2009).</li><li>Ziegler, S. F., Buckner, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Foxp3+and+the+regulation+of+Treg/Th17+differentiation.">Foxp3 and the regulation of Treg/Th17 differentiation.</a> Microbes and Infection. 11 (5), 594-598 (2009).</li><li>Yaling, Y., Gui, Y., Shuqi, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recent+research+advances+of+toll-like+receptors+and+allergic+rhinitis.">Recent research advances of toll-like receptors and allergic rhinitis.</a> Medical Recapitulate. 23 (7), 1273-1276 (2017).</li><li>Shan, H., Jie, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Correlation+between+TLR4+gene+polymorphisms+and+allergic+rhinitis.">Correlation between TLR4 gene polymorphisms and allergic rhinitis.</a> Journal of Clinical Otorhinolaryngology, Head, and Neck Surgery. 31 (13), 991-994 (2017).</li><li>Xu, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunoregulatory+mechanism+of+Treg+cells+and+TICAM-1+patients+with+severe+allergic+rhinitis.">Immunoregulatory mechanism of Treg cells and TICAM-1 patients with severe allergic rhinitis.</a> Chinese Journal of Coal Industry Medicine. 23 (3), 303-306 (2020).</li><li>Granier, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tim-3+expression+on+tumor-infiltrating+PD-1+CD8++T+cells+correlates+with+poor+clinical+outcome+in+renal+cell+carcinoma.">Tim-3 expression on tumor-infiltrating PD-1+CD8+ T cells correlates with poor clinical outcome in renal cell carcinoma.</a> Cancer Research. 77 (5), 1075-1082 (2017).</li><li>Badoual, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PD-1+expressing+tumor-infiltrating+T+cells+are+a+favorable+prognostic+biomarker+in+hpv-associated+head+and+neck+cancer.">PD-1 expressing tumor-infiltrating T cells are a favorable prognostic biomarker in hpv-associated head and neck cancer.</a> Cancer Research. 73 (1), 128-138 (2013).</li><li>Gustavson, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+an+unsupervised+pixel-based+clustering+algorithm+for+compartmentalization+of+immunohistochemical+expression+using+automated+quantitative+analysis.">Development of an unsupervised pixel-based clustering algorithm for compartmentalization of immunohistochemical expression using automated quantitative analysis.</a> Applied Immunohistochemistry &amp; Molecular Morphology. 17 (4), 329-337 (2009).</li><li>Lu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+biomarker+modalities+for+predicting+response+to+PD-1/PD-L1+checkpoint+blockade:+a+systematic+review+and+meta-analysis.">Comparison of biomarker modalities for predicting response to PD-1/PD-L1 checkpoint blockade: a systematic review and meta-analysis.</a> JAMA Oncology. 5 (8), 1195-1204 (2019).</li><li>Hernandez, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiplex+immunofluorescence+tyramide+signal+amplification+for+immune+cell+profiling+of+paraffin-embedded+tumor+tissues.">Multiplex immunofluorescence tyramide signal amplification for immune cell profiling of paraffin-embedded tumor tissues.</a> Frontiers in Molecular Biosciences. 8, 667067 (2021).</li></ol>

Die Autoren haben nichts zu verraten.

Die allergische Rhinitis (AR) ist eine nicht-infektiöse entzündliche Erkrankung der Nasenschleimhaut, die durch eine Kombination von Umwelt- und genetischen Faktoren entsteht. Es ist zu einem globalen Gesundheitsproblem geworden, das sich auf die Arbeitseffizienz auswirkt, die Lebensqualität verringert, den Schlaf und die kognitiven Funktionen beeinträchtigt und Reizbarkeit und Müdigkeit verursacht. AR betrifft 10 % bis 20 % der Weltbevölkerung¹ und verursacht erhebliche wirtschaftliche Kosten, die in den EU-Länd...

Die allergische Rhinitis (AR) ist eine chronische, nicht-infektiöse entzündliche Erkrankung der Nasenschleimhaut, die hauptsächlich durch spezifisches Immunglobulin E (IgE)1,2 vermittelt wird. Sie ist gekennzeichnet durch Symptome wie Niesen, laufende Nase, verstopfte Nase und Juckreiz in der Nase. Mit der Industrialisierung und Urbanisierung nimmt die Verbreitung von AR allmählich zu und betrifft etwa 10 % bis 20 % der Weltbevölkerung1. Die Immunfluoreszenztechnik (IF) ist eine Fluoreszenzfärbemethode, bei der eine Antikörper-Antigen-Bindungsreaktion verwendet wird. Es kann eingesetzt werden, um die Verteilung und Expression bestimmter Proteine in biologischen Geweben oder Zellen zu erkennen und zu quantifizieren. In der AR-Forschung kann IF mehrere Ziele gleichzeitig erkennen, darunter AR-bezogene Zytokine, Entzündungszellen, Rezeptoren und mehr, was die Erforschung der AR-Pathogenese und der Wirkung von Medikamenten erleichtert 3,4,5,6.
Das mehrfarbige Immunfluoreszenz-Färbeverfahren (mIF) ähnelt stark dem traditionellen IF-Färbeverfahren, wobei bei jeder Färberunde ein Antikörper-Elutionsschritt hinzugefügt wird. Diese Modifikation ermöglicht den gleichzeitigen Nachweis mehrerer Biomarker auf demselben Gewebeschnitt durch sequentielle Einzelmarkierung und mehrere Runden der Re-Färbung. mIF basiert auf der Tyramid-Signalverstärkung (TSA), die wiederholte Zyklen der TSA-Fluoreszenzfärbung und die Verwendung von Mikrowellenheizung zur Entfernung von Antikörpern unter Beibehaltung der Fluoreszenzsignale ermöglicht 7,8. Im Vergleich zu herkömmlichen IF bietet mIF mehrere Vorteile: (1) Es kann schwach exprimierte Antigene nachweisen, die mit konventionellem IF 9,10 nur schwer zu identifizieren sind; (2) Es bietet eine qualitativ hochwertige Färbung mit einem verbesserten Signal-Rausch-Verhältnis; (3) Es ermöglicht die Quantifizierung gewebespezifischer Strukturen und Regionen von Interesse11; (4) Multiplexing mehrerer Signalwege nutzt Gewebe effizient aus und schont begrenzte pathologische Ressourcen12; (5) Die Multiparameter-Analyse mittels mIF bietet tiefere Einblicke in Gewebe und deckt verborgene biologische Informationen auf13.
Insgesamt ermöglicht mIF die Beobachtung verschiedener Antigenexpressionen und -verteilungen innerhalb derselben Probe, was die Untersuchung von Zielproteinen erleichtert. In Zukunft werden Forscher, die die Expression und Verteilung mehrerer Zielproteine verstehen wollen, diese Technik als wertvolle Wahl empfinden. Diese Studie demonstriert die Anwendung von mIF zur Färbung von Nasenschleimhautproben von Ratten mit AR und evaluiert die Etablierung eines Rattenmodells für AR.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Al(OH)3</td>
			<td>Sollerbauer Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>A7130</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>75% ethanol</td>
			<td>Anhui Yiren An Co., Ltd</td>
			<td>20210107</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ammonia</td>
			<td>Chengdu Kolon Chemical Co., Ltd</td>
			<td>2021070101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anhydrous ethanol</td>
			<td>Chengdu Kolon Chemical Co., Ltd</td>
			<td>2022070501</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-fluorescence quenching sealer</td>
			<td>SouthernBiotech</td>
			<td>0100-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Automatic dyeing machine</td>
			<td>Thermo scientific</td>
			<td>Varistain Gemini ES</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carrier slides</td>
			<td>Nantong Mei Wei De Experimental Equipment Co., Ltd</td>
			<td>220518001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Citrate-phosphate buffer&#160;</td>
			<td>Servicebio biotechnology co., Ltd</td>
			<td>G1201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Citric acid antigen repair solution (PH 6.0)</td>
			<td>Xavier Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>G1201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslip</td>
			<td>Nantong Mei Wei De Experimental Equipment Co.</td>
			<td>220518001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslip</td>
			<td>Nantong Mewtech Life Science Co., Ltd</td>
			<td>CS01-2450</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CY3-Tyramide</td>
			<td>Sawell Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>G1223-50UL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DAPI</td>
			<td>Sawell Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>G1012</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Decoloring shaker</td>
			<td>SCILOGEX</td>
			<td>S1010E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EDTA decalcification solution</td>
			<td>Wuhan Xavier Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>CR2203047</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electric heating blast dryer&#160;</td>
			<td>Shanghai Yiheng Scientific Instruments Co., Ltd</td>
			<td>DHG-9240A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Embedding box marking machine</td>
			<td>Thermo scientific</td>
			<td>&#160;PrintMate AS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Embedding machine</td>
			<td>Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd</td>
			<td>JB-P5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fast tissue dewatering machine</td>
			<td>Thermo scientific</td>
			<td>STP420 ES</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Film sealer</td>
			<td>Thermo scientific</td>
			<td>Autostainer 360</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FITC-Tyramide</td>
			<td>Sawell Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>G1222-50UL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluorescence microscope</td>
			<td>Sunny Optical Technology Co.Ltd</td>
			<td>CX40</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Foxp3</td>
			<td>Affinity Biosciences Co., Ltd</td>
			<td>bs-10211R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Freezing table</td>
			<td>Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd</td>
			<td>JB-L5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Goat Anti-Rabbit IgG H&#38;L (HRP)</td>
			<td>Liankebio Co., Ltd</td>
			<td>GAR0072</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Goat serum</td>
			<td>Biosharp</td>
			<td>BL210A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>H&#38;E staining kit</td>
			<td>Leagene</td>
			<td>DH0020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hemostatic forceps</td>
			<td>Shanghai Medical Devices Co., Ltd</td>
			<td>J31010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hydrochloric acid</td>
			<td>Sichuan Xilong Science Co., Ltd</td>
			<td>210608</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Immunohistochemical pen</td>
			<td>Biosharp</td>
			<td>BC004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microwave oven</td>
			<td>Midea</td>
			<td>M1-L213B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Neutral gum</td>
			<td>Sinopharm Group Chemical Reagent Co., Ltd</td>
			<td>10004160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ovalbumin&#160;</td>
			<td>Sollerbauer Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>A804010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oven</td>
			<td>Shanghai Yiheng Scientific Instruments Co., Ltd</td>
			<td>DHG-9240A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Palm centrifuge</td>
			<td>SCILOGEX</td>
			<td>D1008E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Paraformaldehyde</td>
			<td>Beyotime Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>P0099-100ml</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pathology section scanner</td>
			<td>3DHISTECH Kft</td>
			<td>Pannoramic SCAN&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS buffer</td>
			<td>Biosharp</td>
			<td>G4202</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette&#160;</td>
			<td>Dragon</td>
			<td>KE0003087/KA0056573</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ror&#947;t</td>
			<td>Affinity Biosciences Co., Ltd</td>
			<td>DF3196</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel</td>
			<td>Quanzhou Excellence Medical Co., Ltd</td>
			<td>20170022</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Self-fluorescent quenching agent Sudan Black B</td>
			<td>Bioengineering Co., Ltd</td>
			<td>A602008-0025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slicer</td>
			<td>Thermo scientific</td>
			<td>HM325</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slicing machine</td>
			<td>Thermo scientific</td>
			<td>HM325</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slide</td>
			<td>Nantong Mewtech Life Science Co., Ltd</td>
			<td>PC2-301</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sprague Dawley rats</td>
			<td>Sichuan Academy of Traditional Chinese Medicine</td>
			<td>SYX <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/65937/65937eq01.jpg" style="margin: auto;" /> 2023-0100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TICAM-1</td>
			<td>Affinity Biosciences Co., Ltd</td>
			<td>DF6289</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue scissors</td>
			<td>Shanghai Medical Devices Co., Ltd</td>
			<td>J22120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue spreading baking sheet machine</td>
			<td>Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd</td>
			<td>JK-6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TYR-690 fluorescent dyes</td>
			<td>Shanghai Rutron Biotechnology Co., Ltd</td>
			<td>RC0086-34RM</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vortex mixer</td>
			<td>SCILOGEX</td>
			<td>SLK-O3000-S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water bath-slide drier</td>
			<td>Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd</td>
			<td>JK-6</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wax trimmer</td>
			<td>Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd</td>
			<td>JXL-818</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylene</td>
			<td>Chengdu Kolon Chemical Co., Ltd</td>
			<td>2022051901</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

immunofluorescent labeling in nasal mucosa tissue sections of allergic rhinitis rats via multicolor immunoassay

Allergische Rhinitis (AR) ist eine chronische, nicht-infektiöse entzündliche Erkrankung der Nasenschleimhaut, die hauptsächlich durch spezifisches Immunglobulin E (IgE) vermittelt wird und etwa 10%-20% der Weltbevölkerung betrifft. Während die Immunfluoreszenzfärbung (IF) seit langem eine Standardtechnik zum Nachweis der krankheitsspezifischen Proteinexpression ist, sind herkömmliche IF-Techniken nur begrenzt in der Lage, die Expressionsniveaus von drei oder mehr Proteinen in derselben Probe nachzuweisen. Folglich wurden in den letzten Jahren mehrfarbige IF-Techniken entwickelt, die die gleichzeitige Markierung mehrerer Ziele in Zellen oder Geweben ermöglichen.
Dieses Protokoll bietet einen umfassenden Überblick über den Prozess zur Etablierung eines Rattenmodells der AR, zur Gewinnung von Nasenschleimhautproben und zu den technischen Verfahren für die mehrfarbige Immunfluoreszenz. Alle Ratten in der AR-Gruppe zeigten typische Symptome wie Niesen, eine laufende Nase und eine juckende Nase, wobei die Verhaltensbeobachtungen ≥5 Punkte erreichten. Die Hämatoxylin- und Eosinfärbung (H&E) zeigte eine erhöhte Anzahl von Entzündungszellen und eine gestörte Integrität der Nasenschleimhaut in der AR-Gruppe. Die mehrfarbige Immunfluoreszenz (mIF) zeigte eine erhöhte Expression von RORγt und TICAM-1, während die Foxp3-Expression im Nasenschleimhautgewebe von AR-Ratten abnahm.

Allergic rhinitis (AR) is a chronic, non-infectious inflammatory disease of the nasal mucosa primarily mediated by specific immunoglobulin E (IgE)1,2. It is characterized by symptoms such as sneezing, a runny nose, nasal congestion, and nasal itching. With industrialization and urbanization, the prevalence of AR is gradually increasing, affecting approximately 10%-20% of the world&#39;s population1. The immunofluorescence (IF) technique is a fluorescent staining method that utilizes an antibody-antigen binding reaction. It can be employed to detect and quantify the distribution and expression levels of specific proteins in biological tissues or cells. In AR research, IF can simultaneously detect multiple targets, including AR-related cytokines, inflammatory cells, receptors, and more, facilitating the exploration of AR pathogenesis and the effects of drugs3,4,5,6.
The multicolor immunofluorescence (mIF) staining process closely resembles traditional IF, with the addition of an antibody elution step during each round of staining. This modification enables the simultaneous detection of multiple biomarkers on the same tissue section through sequential single-labeling and multiple rounds of re-staining. mIF is based on tyramide signal amplification (TSA), allowing for repeated cycles of TSA fluorescent staining and the use of microwave heating to remove antibodies while retaining fluorescent signals7,8. In comparison to conventional IF, mIF offers several advantages: (1) it can detect weakly expressed antigens that are challenging to identify with conventional IF9,10; (2) it provides high-quality staining with an improved signal-to-noise ratio; (3) it allows for the quantification of tissue-specific structures and regions of interest11; (4) multiplexing multiple pathways efficiently utilizes tissues and conserves limited pathological resources12; (5) multi-parameter analysis through mIF offers deeper insights into tissues, uncovering hidden biological information13.
Overall, mIF allows the observation of different antigen expressions and distributions within the same sample, facilitating the study of target proteins. In the future, researchers seeking to understand the expression and distribution of multiple target proteins will find this technique a valuable choice. This study demonstrates the application of mIF for staining nasal mucosa samples from rats with AR and evaluate the establishment of a rat model of AR.

Autor im Rampenlicht: Förderung der Forschung zu allergischer Rhinitis mit mehrfarbiger Immunfluoreszenz

Immunfluoreszenz-Markierung in Nasenschleimhaut-Gewebeschnitten von Ratten mit allergischer Rhinitis mittels Multicolor-Immunoassay

Our main research is based on a study of allergic rhinitis. Our research intends to analyze what proteins are associated with allergic rhinitis. Multicolor immunofluorescence is currently used to advance research in our field.In future studies, we will focus on the possible mechanisms of TCM in the treatment of allergic rhinitis.

Sechs SD-Ratten wurden erfolgreich durch intraperitoneale OVA-Injektion und nasale Provokation in das AR-Modell induziert. AR wurde bei allen Ratten in der AR-Gruppe induziert, was 100% der Gruppe ausmachte. Alle Ratten in der AR-Gruppe zeigten typische Symptome wie Niesen, eine laufende Nase und eine juckende Nase. Alle Verhaltensbeobachtungen wurden mit ≥5 Punkten bewertet (Tabelle 2).
Die Ergebnisse der H&E-Färbung am 21. Tag der Modellierung zeigten, dass bei...

Watch this Scientific Journal Video about Advancing Allergic Rhinitis Research with Multicolor Immunofluorescence at JoVE.com

Dieses Protokoll beschreibt eine mehrfarbige Immunfluoreszenztechnik zur Evaluierung des Rattenmodells der allergischen Rhinitis.

Allergic rhinitis (AR) is a chronic, non-infectious inflammatory disease of the nasal mucosa, primarily mediated by specific immunoglobulin E (IgE), ...

Unsere Hauptforschung basiert auf einer Studie über allergische Rhinitis. Unsere Forschung zielt darauf ab, zu analysieren, welche Proteine mit allergischer Rhinitis in Verbindung gebracht werden. Die mehrfarbige Immunfluoreszenz wird derzeit eingesetzt, um die Forschung auf unserem Gebiet voranzutreiben.In zukünftigen Studien werden wir uns auf die möglichen Mechanismen der TCM bei der Behandlung der allergischen Rhinitis konzentrieren.

immunofluorescent-labeling-nasal-mucosa-tissue-sections-allergic

Research

JoVE Journal

Medicine

Immunofluorescent Labeling in Nasal Mucosa Tissue Sections of Allergic Rhinitis Rats via Multicolor Immunoassay

1.1K Aufrufe.  Hospital of Chengdu University of Traditional Chinese Medicine. Unsere Hauptforschung basiert auf einer Studie über allergische Rhinitis. Unsere Forschung zielt darauf ab, zu analysieren, welche Proteine mit allergischer Rhinitis in Verbindung gebracht werden. Die mehrfarbige Immunfluoreszenz wird derzeit eingesetzt, um die Forschung auf unserem Gebiet voranzutreiben.In zukünftigen Studien werden wir uns auf die möglichen Mechanismen der TCM bei der Behandlung der allergischen Rhinitis konzentrieren.

Serie: Autor im Rampenlicht: Förderung der Forschung zu allergischer Rhinitis mit mehrfarbiger Immunfluoreszenz

Allergic rhinitis (AR) is a chronic, non-infectious inflammatory disease of the nasal mucosa, primarily mediated by specific immunoglobulin E (IgE), affecting approximately 10%-20% of the world's population. While immunofluorescence (IF) staining has long been a standard technique for detecting disease-specific protein expression, conventional IF techniques are limited in their ability to detect the expression levels of three or more proteins in the same sample. Consequently, multicolor IF techniques have been developed in recent years, which allow the simultaneous labeling of multiple targets in cells or tissues.
This protocol provides a comprehensive overview of the process for establishing a rat model of AR, obtaining nasal mucosal samples, and the technical procedures for multicolor immunofluorescence. All rats in the AR group exhibited typical symptoms such as sneezing, a runny nose, and an itchy nose, with behavioral observations scoring &#8805;5 points. Hematoxylin and eosin (H&amp;E) staining revealed increased inflammatory cell counts and disrupted nasal mucosal integrity in the AR group. Multicolor immunofluorescence (mIF) demonstrated increased expression of ROR&#947;t and TICAM-1, while Foxp3 expression decreased in the nasal mucosa tissue of AR rats.

This protocol describes a multicolor immunofluorescence technique for evaluating the rat model of allergic rhinitis.

Forschung

Medizin

Acquisition and Pre-Processing of Nasal Mucosal Samples from Rats with Allergic Rhinitis

To begin, with a scalpel, make a precise incision along the two corners of the mouth of a euthanized rat to expose the muscle tissue. Use a pair of tissue scissors to cut the joints of the zygomatic bone and the mandible on both sides of the skull. Then remove the mandible.Use tissue scissors to cut the bony connection between the nasal cavity and the maxilla. Then use a hemostat to separate the skin of the maxilla to expose the nasal cavity. Sever the connection between the nasal cavity and the orbital bones on both sides at the infraorbital foramen, and remove the nasal cavity.Place the extracted nasal cavity in a 4%Paraformaldehyde solution for fixation. To decalcify the tissue, wash the fixed tissue with distilled water. Place the tissues in a decalcification solution with a volume 20 to 30 times that of the tissues at room temperature.Once decalcification is complete, place the tissue in a dehydration box. Transfer the dehydration box to a dehydrator and dehydrate the tissue in increasing alcohol concentrations at different incubation times. Next, place the tissue in anhydrous ethanol for 30 minutes for two cycles.Following this, transfer the tissue to xylene for five to 10 minutes and repeat, then immerse the tissue in wax for one hour. Place the wax block in embedding cassettes. Remove the wax blocks after they have solidified and trim the wax block.Insert the trimmed wax block into a paraffin microtome and cut it into three micrometer thick slices. Hematoxylin and eosin staining of the control rats showed well arranged and cilia. The nasal septum mucosa was damaged and detached in the disease group with notable neutrophil infiltration.

Erfassung und Vorverarbeitung von Nasenschleimhautproben von Ratten mit allergischer Rhinitis

Multicolor Immunostaining of Nasal Mucosal Tissues of Rats with Allergic Rhinitis

To begin, place the hematoxylin and eosin stained rat nasal mucosal tissue sections onto a microscope stage. Adjust the microscope's focus until the image is clearly visible. Capture the tissue image at 40X.Heat the citrate phosphate buffer until it boils. Then add the slides to the container after removing it from the heat. After heating for eight minutes until boiling, turn off the heat for eight minutes and subsequently switch to medium low heat for seven minutes.After allowing the container to cool naturally transfer the slices to PBS. Use a decolorizing shaker to shake the slices for five minutes. Next draw a circle around the dried tissue with an immunohistochemical pen.Add 3%hydrogen peroxide solution to the slices before incubating. Then transfer the slices to PBS for washing as before. To block, apply 5%goat serum within the marked circle.After incubation, carefully remove the blocking solution and add one to two milliliters of FOXP3 to the tissue slices. Then place the slices in a humid chamber for overnight incubation. After washing the slices in PBS, gently dab the slices dry with filter paper.Then add one to two milliliters of the secondary antibody solution to the slices. Next incubate the slices in 100 microliters of tyramide signal amplification working solution for 10 minutes at room temperature in the dark. After incubation, wash the slices with PBS three times for five minutes each.Now apply one to two milliliters of DAPI staining solution to the slices before incubation. Quench the auto fluorescence by incubating the slices in the quencher for five minutes before a 10 minute PBS wash. Then seal them with the anti fluorescence quencher.Capture the microscopic images of the stained sections under 20X and 40X magnification. Hematoxylin and eosin staining of the control rats showed well arranged epithelial cells and cilia. The nasal septum mucosa was damaged and detached in the disease group with notable neutrophil infiltration.Multi immunofluorescent staining revealed that the expressions of ROR Gamma T and TCAM1 were increased in the disease group. However, FOXP3 was under expressed.