Humanos mamaria interna arteria (IMA) de Trasplantes y colocación de un stent: un modelo humano para estudiar el desarrollo de la reestenosis intra-stent

Resumen

Este video muestra un modelo para estudiar el desarrollo de hiperplasia de la íntima después de la implantación del stent utilizando un recipiente humano (IMA) en un modelo de rata inmunodeficiente.

Resumen

Preclínica en modelos in vivo de investigación para investigar los procesos patobiológicas y fisiopatológicos en el desarrollo de hiperplasia de la íntima después de la colocación de stents buques son cruciales para el ^1,2 enfoques de la traducción.

Los modelos animales comúnmente utilizados son ratones, ratas, conejos, cerdos y ^3-5. Sin embargo, la traducción de estos modelos en entornos clínicos sigue siendo difícil, ya que los procesos biológicos ya se estudió en los vasos de los animales, pero nunca realizado antes en modelos de investigación humanos ^6,7. En este video se demuestra un nuevo modelo humanizado de superar esta brecha de la traducción. El procedimiento que se muestra es reproducible, fácil y rápido de realizar y es adecuado para estudiar el desarrollo de hiperplasia de la íntima y la aplicación de stents diversas.

Este vídeo muestra cómo realizar la técnica de stent en los vasos humanos seguida por el trasplante en ratas inmunodeficientes, yidentifica el origen de las células proliferantes como humano.

Protocolo

1. La arteria mamaria interna (AMI) Preparación

1. El endotelio arterial se desnuda por el paso de un catéter de 2-francés Fogarty embolectomía arterial (Baxter Healthcare, Deerfield, IL, EE.UU.). El catéter se saca a través de la longitud del recipiente entero dos veces para asegurar el daño endotelial.
2. Utilice cualquier stent humana de duración de 8 mm y 2,5 mm-3 mm de diámetro (por ejemplo, Translumina, Yukon stent). PRECAUCION: El diámetro del stent no debe exceder el diámetro del vaso en más del 10% para evitar la estenosis pre y post-stent. PRECAUCIÓN: No cambie la longitud del stent dentro del mismo estudio.
3. Despliegue el stent utilizando la presión de globo adecuado (que se observa en el paquete del stent) para conseguir el diámetro deseado.
4. Tienda IMA stent en 4 ° C RPMI + heparina (500 ml IE/10) sobre el hielo hasta el trasplante.

2. Preparación de Animales

RNU Nude (Crl: NIH Foxn1rnu) ratas (300-350 g) se housed bajo condiciones convencionales en scantainer ventilados, alimentados con pienso estándar para ratas y agua ad libidum autoclave.

1. Se anestesia la rata con isoflurano (2,5-3%), utilizando una cámara de inducción.
2. Afeitar el vello abdominal y colocar la rata en su espalda y coloque una mascarilla sobre la nariz y la boca para mantener la anestesia.
3. Desinfecte la zona abdominal ampliamente mediante Provo-yodo, el próximo uso etanol al 80% - repita este paso dos veces. Compruebe reflejos pellizcando las patas traseras para asegurarse de que la rata es suficiente anestesia.
4. Bajo visión microscópica, realizar una laparotomía media superior para exponer la aorta abdominal infrarrenal.
5. Coloque los intestinos en un guante hidratada solución salina. Doble el guante alrededor de los intestinos para evitar la pérdida de humedad.
6. Disección de la aorta infrarrenal de la región a la bifurcación, con cuidado para no causar daños en las ramas de los vasos.
7. Utilice abrazaderas micro para detener el flujo sanguíneo aórtico. Coloque elabrazadera proximal primero, seguido por la pinza distal.
8. Eliminar una aplicación. 0.5-0.7 segmento aórtico mm y vaciar la aorta restante con heparina (200 unidades).
9. Tome el IMA con stent y acortar a la longitud adecuada y colocarlo en el hueco.
10. Conecte el IMA a la aorta receptor, mediante la ejecución de las suturas de prolene 8-0 con puntos de sutura (Ethicon, Norderstedt, Alemania).
11. Abra cuidadosamente la primera abrazadera craneal y luego la pinza caudal.
12. No debe haber un pulso visible en el trasplantado IMA y en el extremo distal de la aorta.
13. Coloque los intestinos en el abdomen.
14. Lave el abdomen con pre-calentado solución salina estéril.
15. Cerca de la capa muscular de la pared abdominal usando suturas de prolene 6-0 funcionamiento (Ethicon, Norderstedt, Alemania).
16. Mientras que la rata se encuentra todavía en la anestesia, inyectar 4-5 mg / kg de carprofeno por vía subcutánea.
17. Administrar la analgesia post-quirúrgica, según proceda (por ejemplo, carprofeno o meloxicam) durante 3 días después de la SurgEry.

3. Los resultados representativos

Para histología, las muestras fueron fijadas en formol al 4%, se deshidrataron en una serie gradual de alcohol, y se infiltró en una mezcla (MMA I) de 80% de metacrilato de metilo y el 20% de ftalato de dibutilo por 1 día, yo con MMA seca de peróxido de benzoilo para el 1% Hace 1 semana, y yo MMA con peróxido de benzoilo seca 3% (MMA III) durante 1-2 días a 4 ° C. Posteriormente, las muestras se polimeriza en fresco III MMA en viales de vidrio en un baño de agua sobre una base de pre-polimerizado. Polimerización lenta se logra manteniendo los viales a 26 ° C durante la noche, aumentando la temperatura a 28 ° C a la mañana siguiente, y luego aumentar gradualmente la temperatura de 0,5 ° C durante 12 h hasta que la polimerización se produjo. Los bloques polimerizados se seccionaron en espesor micras 5 utilizando un microtomo MICROM HM 360 equipado con una cuchilla de carburo de tungsteno.

Para identificar el origen de la proliferación de las células (figura 1), las diapositivas se Stained con la identificación de anticuerpos o bien la rata proteína verde fluorescente (GFP) o MHC-I y las células musculares lisas. Para estos estudios, humano IMA se incubó con el gen reportero GFP durante la noche utilizando partículas lentiviral para la transducción estable de células IMA. La división de las células hijas de origen humano podrían ser identificados mediante la expresión de GFP. Después de deparaffinization, inducida por el calor de recuperación del epítopo se realiza mediante el calentamiento de las diapositivas en la solución de antígeno de recuperación con un barco de vapor. La imagen-iT FX señal potenciador se puede utilizar para la etapa de bloqueo. Las células de origen humano se identifican usando los anticuerpos monoclonales de ratón contra GFP (1:100 diluida en diluyente anticuerpo primario (Dako)), y aún más marcado con cabra anti-IgG de ratón, Alexa Fluor 488 (1:1000 diluido en diluyente anticuerpo secundario ). Las células del músculo liso se marcaron con el conejo polycolonal anti-músculo liso α-actina (1:100 diluida en diluyente anticuerpo primario), seguido de cabra anti-IgG de conejo, Alexa Fluor 555 (1:1000 dilbuidas en diluyentes anticuerpo secundario). Cada etapa de incubación del anticuerpo se realizó a 37 ° C durante 1 hora con PBS tres veces el lavado en el medio. Los núcleos se tiñeron con DAPI durante 10 minutos. Después del montaje de las diapositivas utilizando Prolongue reactivo Antifade Oro, las muestras se analizaron mediante microscopía confocal.

Figura 1. las células neointimal como las células del músculo liso R:. Verde = contra las buenas prácticas agrarias, el etiquetado de las células de origen humano, rojo = humanos anti actina de células musculares lisas, de color azul = DAPI, la identificación de núcleos de células B: Verde = rata anti MHC-I, el etiquetado las células de origen rata; rojo = humanos anti actina de células musculares lisas, de color azul = DAPI, la identificación de los núcleos celulares. Las células en crecimiento se identifican como células musculares lisas y positivos para las buenas prácticas agrarias, pero negativo para la rata MHC-I molécula. Por lo tanto, las células proliferantes son origen humano.

Discusión

Aunque diferentes en los modelos de investigación in vivo son existentes para investigar el desarrollo de hiperplasia de la íntima después de la colocación de un stent, estos modelos siguen enfrentando obstáculos para superar translacional. Además, los modelos animales grandes son las condiciones de vivienda caros y especiales, así como equipo quirúrgico no está disponible para todos los laboratorios.

El uso de un IMA humanos para estudiar el desarrollo humano de l...

Materiales

Name	Company	Catalog Number	Comments
Nombre del reactivo	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
2 catéter de Fogarty francesa	Baxter Healthcare, Deerfield, IL, EE.UU.	120602F
Yukon stent	Translumina GmbH, Hechingen, Alemania		El uso del stent de su elección de acuerdo a su protocolo de estudio
Medio RPMI	Biochrom	Nr.F1275
heparina	Baxter	2B0953
isoflurano	Abad	B506
Provo-yodo	Betadine Puredue Pharma	EAN: 5995327165830
80% etanol	Geyer	ETV 80/0500
Micro pinza	Aparato de Harvard	PY2-61 hasta 0186
Las suturas 8-0	Johnson & Johnson,	2808G
Las suturas 6-0	Johnson & Johnson,	1698 H
Carprofeno	Feizer Vet	PZN: 0110208
Metamizol	Ratiopharm
Target Retrieval Solution, pH 9	Dako	S2368
Imagen de la señal FX-iT potenciador	Invitrogen	I36933
monoclonal de ratón anticuerpos anti-GFP	BD colores vivos	632381
diluyente anticuerpo primario	Dako	S3022
de cabra anti-IgG de ratón, Alexa Fluor 488	Invitrogen	A11017
diluyente anticuerpo secundario	Dako	S0809
conejo polycolonal anti-músculo liso α-actina	Abcam,	ab5694
cabra anti-IgG de conejo, Alexa Fluor 555	Invitrogen	A21430
Prolongar el reactivo Antifade Oro	Invitrogen	P36930