Menschliche Arteria mammaria interna (IMA) Transplantation und Stenting: A Human Model um die Entwicklung von In-Stent Restenose Studie

Zusammenfassung

Dieses Video zeigt ein Modell zur Entwicklung von Intimahyperplasie nach der Entfaltung des Stents unter Verwendung einer menschlichen Gefäß (IMA) in einem immundefizienten Rattenmodell zu untersuchen.

Zusammenfassung

Präklinische Forschung in vivo Modelle zu pathobiologischen und pathophysiologischen Prozessen in der Entwicklung der Intimahyperplasie nach Gefäß-Stents zu untersuchen sind entscheidend für translationale Ansätze ^1,2.

Die am häufigsten verwendeten Tiermodelle gehören Mäuse, Ratten, Kaninchen, Schweine und ^3-5. Allerdings bleibt die Übersetzung dieser Modelle in den klinischen Alltag schwierig, da diese biologischen Prozesse bereits in der Tier-Gefäße untersucht werden, aber nie in der menschlichen Forschung Modelle ^6,7 durchgeführt. In diesem Video zeigen wir einen neuen humanisierten Modell, um diese Lücke zu überwinden translationale. Das gezeigte Verfahren ist reproduzierbar, einfach und schnell durchzuführen und geeignet ist, die Entwicklung von Intimahyperplasie und die Anwendbarkeit von verschiedenen Stents zu studieren.

Dieses Video zeigt, wie die Stent-Technik in der menschlichen Gefäße durch Transplantation in immundefizienten Ratten folgten durchzuführen, undbezeichnet die Herkunft von proliferierenden Zellen als Menschen.

Protokoll

1. Arteria mammaria interna (IMA) Vorbereitung

1. Die arterielle Endothel wird durch die Passage eines 2-Französisch Fogarty arteriellen Embolektomie Katheter (Baxter Healthcare, Deerfield, IL, USA) entblößt. Der Katheter wird durch das ganze Schiff Länge gezogen zweimal zu Endothelschädigung zu gewährleisten.
2. Verwenden Sie eine beliebige menschliche Stent 8mm Länge und 2,5 mm-3 mm Durchmesser (zB Translumina, Yukon Stent). ACHTUNG: Der Durchmesser des Stents sollte nicht mehr als die Gefäßdurchmesser um mehr als 10% auf Pre-und Post-Stent-Stenose zu vermeiden. ACHTUNG: Schalten Sie nicht die Länge des Stents innerhalb der gleichen Studie.
3. Den Stent unter Verwendung der entsprechenden Ballondruck (die auf dem Stent-Paket angegeben), um den gewünschten Durchmesser zu erreichen.
4. Shop gestentet IMA in 4 ° C RPMI + Heparin (500 IE/10 ml) auf Eis bis zur Transplantation.

2. Tierische Vorbereitung

RNU Nude (CRL: NIH-Foxn1rnu) Ratten (300-350 g) sind HouSED unter üblichen Bedingungen in scantainer belüfteten Schränken, Fed Standard Rattenfutter und autoklaviertem Wasser ad libidum.

1. Anesthetize Ratte mit Isofluran (2,5-3%) mit einem Induktions-Kammer.
2. Rasieren Sie die Bauch-Haar und legen Sie die Ratte auf den Rücken und legen Sie eine Gesichtsmaske über die Nase und den Mund zu halten die Anästhesie.
3. Desinfizieren Sie die Bauch-Bereich weit über Provo-Jod nächsten Einsatz 80% Ethanol - wiederholen Sie diesen Schritt zweimal. Überprüfen Reflexe Einklemmen der Hinterpfoten, um sicherzustellen, dass die Ratte ausreichend betäubt ist.
4. Unter mikroskopischer Sicht, führen Sie eine obere mediane Laparotomie, um die infrarenalen Bauchaorta aussetzen.
5. Platzieren Sie den Darm in einer Kochsalzlösung befeuchtet Handschuh. Falten Sie den Handschuh um den Darm, um den Verlust von Feuchtigkeit zu verhindern.
6. Präparieren Sie die Aorta aus der infrarenalen Region zur Bifurkation, vorsichtig, um Schäden nicht auf den Zweigen der Gefäße führen.
7. Verwenden Sie Klammern, um die Mikro-Aorten Blutfluss zu stoppen. Legen Sie dieproximale Klemme, gefolgt von dem distalen Klemme.
8. Entfernen Sie eine App. 0,5-0,7 mm Aortasegment und spülen Sie den restlichen Aorta mit Heparin (200 Einheiten).
9. Nehmen Sie die IMA-Stent und verkürzen sie auf die angemessene Länge und positionieren Sie es in die Lücke.
10. Verbinden Sie die IMA an den Empfänger Aorta, von einer fortlaufenden Naht mit 8-0 Prolene Nahtmaterial (Ethicon, Norderstedt, Deutschland).
11. Öffnen Sie vorsichtig die ersten kranialen Klemme und dann die kaudalen Klemme.
12. Es sollte ein sichtbar-Impuls in der transplantierten IMA und am distalen Ende der Aorta sein.
13. Platzieren Sie den Darm wieder in den Bauch.
14. Spülen Sie den Bauch mit vorgewärmten steriler Kochsalzlösung.
15. Schließen Sie die Muskelschicht der Bauchwand mit 6-0 Prolene fortlaufenden Nähten (Ethicon, Norderstedt, Deutschland).
16. Während die Ratte immer noch in der Anästhesie, injizieren 4-5 mg / kg subkutan Carprofen.
17. Verwalten postoperativen Analgesie gegebenenfalls (zB Carprofen oder Meloxicam) für 3 Tage nach surgery.

3. Repräsentative Ergebnisse

Für die Histologie wurden die Proben in 4% Formalin, dehydratisiert in einer abgestuften Serie von Alkohol fixiert und infiltriert in einem Gemisch (MMA I) von 80% Methylmethacrylat und 20% Dibutylphthalat für 1 Tag, MMA I mit 1% Trockensubstanz Benzoylperoxid 1 Tag und MMA I mit 3% Trockensubstanz Benzoylperoxid (MMA III) für 1-2 Tage bei 4 ° C Danach wurden die Proben in frischem MMA III in Glasfläschchen in einem Wasserbad auf einer vorpolymerisierten Basis polymerisiert. Langsam wurde die Polymerisation, indem sie die Fläschchen bei 26 ° C über Nacht erreicht, Erhöhung der Temperatur auf 28 ° C am nächsten Morgen, und dann schrittweise Erhöhung der Temperatur um 0,5 ° C über 12 h, bis die Polymerisation aufgetreten. Die polymerisierten Blöcken wurden bei 5 mu m Dicke mit Hilfe eines MICROM HM 360 Mikrotom mit einer Wolframcarbid-Messer ausgestattet geschnitten.

Um den Ursprung der proliferierenden Zellen (1) zu identifizieren, skollidiert wurden mit Antikörpern identifiziert entweder das grün fluoreszierende Protein (GFP) oder Ratte gefärbt MHC-I und menschlichen glatten Muskelzellen. Für diese Studien wurde menschliches IMA mit dem GFP-Reportergen über Nacht unter Verwendung lentivirale Partikel für eine stabile Transduktion von IMA-Zellen inkubiert. Die Aufteilung Tochter Zellen aus menschlichen Ursprungs konnte durch Expression von GFP identifiziert werden. Nach der Entparaffinierung, wird die Wärme-induzierte Epitopdemaskierung durch Erhitzen der Folien in der Antigen-Retrieval-Lösung mit einem Dampfer durchgeführt. Der Image-iT FX Signal Enhancer kann für die Sperrung Schritt verwendet werden. Zellen menschlichen Ursprungs werden anhand der monoklonalen Maus-Antikörper gegen GFP (1:100 in primären Antibody Diluent (Dako), verdünnt), und weiter mit Ziege-anti-Maus-IgG, Alexa Fluor 488 (1:1000 verdünnt in sekundären Antikörper Verdünnungsmittel beschriftet ). Die glatten Muskelzellen wurden mit dem Kaninchen-polyklonale Anti-glatte Muskulatur α-Aktin (1:100 in primärem Antikörper verdünnt) markiert, gefolgt von Ziege-anti-Kaninchen-IgG, Alexa FluoR 555 (1:1000 in sekundären Antikörper Verdünnungsmittel verdünnt). Jeder Antikörper Inkubationsschritt bei 37 ° C für 1 Stunde mit PBS dreimal gewaschen zwischen durchgeführt. Die Zellkerne sind mit DAPI für 10 Minuten gefärbt. Nach der Montage der Folien mit Gold-Verlängern antifade Reagenz wurden die Proben analysiert mit Hilfe der konfokalen Mikroskopie.

Abbildung 1. Die Neointima Zellen wie humanen glatten Muskelzellen A:.. Grün = anti-GFP, die Markierung von Zellen menschlichen Ursprungs; rot = anti menschliche glatte Muskelzellen Aktin; blau = DAPI, Identifizierung Zellkerne B: Grün = anti Ratte MHC-I-, Etikettier Zellen der Ratte Herkunft, rot = anti menschliche glatte Muskelzellen Aktin; blau = DAPI, Identifizierung Zellkerne. Proliferierenden Zellen werden als glatte Muskelzellen und positiv für GFP identifiziert, aber negativ für den Ratten-MHC-I-Molekül. Daher sind proliferierenden Zellen menschlichen Ursprungs.

Diskussion

Obwohl verschiedene In-vivo-Forschung werden bestehende Modelle, die Entwicklung der Intimahyperplasie nach Stentimplantation zu untersuchen, diese Modelle noch immer vor translationale Hürden zu überwinden. Darüber hinaus sind Großtiermodellen teure und spezielle Haltungsbedingungen sowie chirurgische Geräte ist nicht für alle Laboratorien zur Verfügung.

Mit Hilfe eines menschlichen IMA, um die Entwicklung der menschlichen Intimaproliferation und In-Stent Restenose zu studie...

Materialien

Name	Company	Catalog Number	Comments
Name des Reagenzes	Firma	Katalog-Nummer	Kommentare
2 Französisch Fogarty-Katheter	Baxter Healthcare, Deerfield, IL, USA	120602F
Yukon-Stent	Translumina GmbH, Hechingen, Deutschland		Verwenden Sie den Stent Ihrer Wahl nach Ihren Studienprotokoll
RPMI-Medium	Biochrom	Nr.F1275
Heparin	Baxter	2B0953
Isofluran	Abt	B506
Provo-Jod	Betadine Puredue Pharma	EAN: 5995327165830
80% Ethanol	Geyer	ETV 80/0500
Micro Klemme	Harvard Apparatus	PY2-61 bis 0186
Nahtmaterial 8-0	Johnson & Johnson,	2808G
Nahtmaterial 6-0	Johnson & Johnson,	1698 H
Carprofen	Feizer Vet	PZN: 0110208
Metamizol	Ratiopharm
Target Retrieval Solution, pH 9	Dako	S2368
Bild-iT FX Signal Enhancer	Invitrogen	I36933
monoklonalen Maus-Anti-GFP-Antikörper	BD Living Colors	632381
Primärantikörper Verdünnungsmittel	Dako	S3022
Ziege-anti-Maus-IgG, Alexa Fluor 488	Invitrogen	A11017
sekundären Antikörper Verdünnungsmittel	Dako	S0809
Kaninchen polyklonale anti-smooth muscle α-Aktin	Abcam,	ab5694
Ziege-Anti-Kaninchen-IgG, Alexa 555	Invitrogen	A21430
Verlängern Sie Gold-Reagenz antifade	Invitrogen	P36930