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Method Article
Las heridas representan un desafío para la salud mundial. Este estudio desarrolló un fotomatón estandarizado que utiliza planimetría digital para minimizar la variabilidad de la medición de heridas. El seguimiento de las heridas en ratones durante 14 días reveló un aumento inicial en el área y el perímetro de la herida, seguido de un cierre gradual. Esta metodología puede ayudar a evaluar la cinética de cierre de heridas en modelos preclínicos.
Las heridas crónicas, debido a su alta prevalencia, son un grave problema de salud mundial. Las estrategias terapéuticas eficaces pueden acelerar significativamente la curación, reduciendo así el riesgo de complicaciones y aliviando la carga económica de los sistemas sanitarios. Aunque numerosos estudios experimentales han investigado la cicatrización de heridas, la mayoría se basan en observaciones cualitativas o mediciones directas cuantitativas. El objetivo de este estudio fue estandarizar un método de medición de heridas indirectas utilizando planimetría digital, incorporando escalamiento y segmentación digital. Este enfoque aborda la falta de metodologías detalladas y paso a paso para una evaluación precisa de las heridas. Se diseñó y construyó una cabina de fotodocumentación, y se emplearon herramientas de planimetría digital asistida por computadora para minimizar la variabilidad en las mediciones del área de la herida, el perímetro y la distancia desde el centro de la herida hasta sus bordes. Se creó una herida traumática circular (5 mm de diámetro) en la línea media dorsal a nivel del omóplato de ratones machos CD1 (n = 4, 10 semanas de edad, 30-35 g). La evolución de la herida se fotodocumentó durante 14 días utilizando el fotomatón diseñado a medida, que controló las condiciones de iluminación, la distancia focal y la posición del sujeto. Las mediciones de raspado y heridas se realizaron mediante segmentación en el software ImageJ, y el análisis estadístico se realizó mediante el software de análisis estadístico. La cinética de cierre de la herida mostró un ligero aumento en el tamaño y el perímetro de la herida entre el día 0 y el día 2, seguido de una disminución gradual hasta el cierre completo el día 14. La cabina de fotodocumentación y la planimetría digital asistida por ordenador permitieron realizar mediciones cuantitativas con una variabilidad mínima. En conclusión, estas herramientas proporcionan un método fiable y reproducible para evaluar la cinética de cierre de heridas en modelos preclínicos.
La cicatrización de heridas traumáticas tarda aproximadamente 21 días y tiene una secuencia bien definida de cuatro fases distintas: (1) hemostasia, (2) inflamación, (3) proliferación y (4) remodelación1. Si alguna fase de la cicatrización de la herida se prolonga, puede conducir al desarrollo de heridas crónicas1. Debido a su alta prevalencia, posibles complicaciones2 y una importante carga económica, se consideran un problema de salud mundial.
Los estudios preclínicos tienen como objetivo lograr una cicatrización más rápida al promover la reepitelización integral de la herida 3,4,5, prevenir complicaciones y reducir los costos del tratamiento. Estos estudios evalúan diversas estrategias, incluyendo el desarrollo de biomateriales, intervenciones farmacológicas y otros procedimientos de medicina regenerativa 6,7,8,9.
Se han desarrollado múltiples modelos experimentales para el estudio de las heridas traumáticas. Algunos se centran en las características cualitativas macroscópicamente visibles, como el tamaño, los indicadores de inflamación, la presencia de tejido de granulación, las secreciones y la formación de costras5. Otros analizan datos cuantitativos, como el área, el perímetro, el radio, el diámetro, el color, la profundidad y las distancias desde el centro hasta los bordes de las heridas.
En este sentido, la mayoría de las investigaciones in vivo miden directamente el radio y la profundidad de la herida. Sin embargo, la delineación manual de los bordes de la herida en una imagen macroscópica puede introducir sesgos en la medición10. Otros estudios utilizan planimetría mecánica, utilizando láminas de plástico cuadriculadas transparentes, donde se delinean previamente los bordes de la bobina; En ambos casos, la obtención del área o perímetro requiere de instrumentos manuales como reglas o planímetros digitales. Hoy en día, la planimetría digital asistida por ordenador permite el análisis computarizado de imágenes macroscópicas de heridas o láminas de plástico. La manipulación in situ y la calidad de la imagen macroscópica son una limitación, sin embargo, esta herramienta 11,12,13,14 reduce considerablemente la variabilidad entre las mediciones de área y perímetro.
Esta metodología propuesta ofrece ventajas significativas sobre las técnicas existentes para evaluar el cierre de heridas en ratones 15,16,17,18,19,20. Si bien la documentación fotográfica se ha considerado una herramienta precisa y consistente para evaluar la cinética de cierre de heridas, estudios previos21,22 han destacado las limitaciones de la medición manual de heridas, como el sesgo del observador y la variabilidad debido a la iluminación y el posicionamiento inconsistentes de la cámara. El enfoque actual aborda estos problemas mediante la estandarización de las condiciones de imagen a través de una cabina personalizada, lo que mejora la reproducibilidad y la precisión. Además, la planimetría digital computarizada permite evaluaciones cuantitativas más precisas, mejorando la evaluación de las intervenciones terapéuticas y minimizando los errores de medición, como se evidencia en otros estudios que comparan técnicas manuales y digitales12,22, lo que la hace particularmente adecuada para estudios de cinética de cierre de heridas en modelos murinos, permitiendo una evaluación precisa de los tratamientos al mantener un control estricto sobre las condiciones de adquisición de imágenes.
Todos los procedimientos experimentales con ratones de laboratorio se llevaron a cabo de acuerdo con las normas éticas y regulaciones establecidas en la Norma Oficial Mexicana (NOM-062-ZOO-1999) para el manejo y cuidado de animales de laboratorio. El protocolo fue revisado y aprobado por el Comité Interno para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio (CICUAL) del Instituto Nacional de Investigaciones Nucleares (ININ) bajo el número de referencia CICUAL-01-23. En este estudio se utilizaron ratones machos CD1 (n = 4), de 10 semanas de edad, con un peso corporal que osciló entre 28 y 32 g. Todos los animales fueron seleccionados para asegurar la uniformidad en la cepa, edad, sexo y peso corporal, minimizando la variabilidad en los resultados experimentales. Los detalles de los reactivos y el equipo utilizado se enumeran en la Tabla de Materiales.
1. Construcción de fotomatón para la adquisición de imágenes macroscópicas
NOTA: Se utilizó el software con licencia SolidWorks (versión 2015) para diseñar un fotomatón con el fin de eliminar las fuentes de iluminación externas. Se construyó un cubo de 40 cm × 40 cm utilizando un perfil de aluminio blanco de una pulgada de grosor. El cubo constaba de tres secciones, ensambladas secuencialmente: el techo, las paredes laterales y el suelo (Figura 1A).
Figura 1: Diagrama para la construcción del gabinete de adquisición de imágenes macroscópicas. (A) Secciones de la cabina (techo, paredes laterales, piso). (B)Orientación de los perfiles que forman la cubierta; delantero (A), trasero (B) y laterales (lado interior de los perfiles en rojo "C,D"). (C) Paneles de techo 1 y 2, instalación del tubo de luz LED, placa de lente de la cámara e instalación en el piso. (D) Instalación de la máscara de anestesia (ROJA), la plataforma del ratón (VERDE) y la plataforma rectangular para el posicionamiento de la regla de medición (AZUL) en la base de referencia. (E) Ubicación final de la base de referencia. (F) Instalación de paredes laterales, frontales y traseras. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
2. Mantenimiento de animales
3. Generación de heridas traumáticas
4. Adquisición de imágenes macroscópicas
5. Procesamiento de imágenes
Figura 2: Flujo de trabajo de la medición de heridas mediante planimetría digital y técnicas de segmentación. (A) Incisión dermoepidérmica con un punzón de biopsia estéril de 5 mm. (B) Colocar al ratón en una cámara de anestesia inhalada durante 3 min. (C) Documentación fotográfica colocando el ratón anestesiado en el fotomatón y asegurando su hocico dentro de una máscara de sevoflurano. (D) Abrir la imagen obtenida en ImageJ y escalarla usando la regla como referencia. (E) Extracción del área de la herida con la herramienta de rectángulo. (F) Separar la imagen en canales RGB y procesar el canal rojo. (G) Esbozar y gestionar la región de interés (ROI). (H) Validar la segmentación haciendo coincidir el ROI con la herida. (I) Medición de los parámetros de la herida y registro de los resultados para el análisis estadístico. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.
6. Eutanasia post-procedimiento
NOTA: El estudio concluye después de 14 días, momento en el que las heridas en roedores sanos suelen alcanzar etapas avanzadas de curación. En esta etapa, los ratones fueron sacrificados humanamente siguiendo el procedimiento de eutanasia establecido y aprobado institucionalmente.
Después de escalar las imágenes en el software ImageJ, se obtuvo el perímetro promedio (Tabla 1) y el área (Tabla 2) de las heridas, junto con sus respectivas desviaciones estándar, mediante segmentación digital. Estos valores se registraron desde el día cero hasta el día catorce (D0-D14).
<...Día | Perímetro (mm) |
En los modelos preclínicos, el análisis cuantitativo de la evolución de las heridas traumáticas en modelos preclínicos se enfrenta a retos debido a factores como el tamaño de la herida, la respuesta inflamatoria localizada34, la localización y/o la manipulación. Existen métodos de planimetría manual directa36 e indirecta digital 11,16,37,38 para estas mediciones.
Los autores declaran que no existen conflictos de intereses relacionados con esta investigación.
Los autores agradecen al Consejo Nacional de Humanidades, Ciencias y Tecnologías (CONAHCyT, CVU: 933600) por la subvención para el financiamiento, y al Laboratorio Nacional de Investigación y Desarrollo de Radiofármacos del Instituto Nacional de Investigaciones Nucleares (LANIDER-ININ) por su apoyo. Además, la Figura 2 se preparó con la ayuda del software BioRender (2020), disponible en BioRender.com/p67z056.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
5 mm Biopsy Punch | MILTEX, USA | 33-35 | To mark the wound edges |
Aluminum with polyethylene core | Alucobond,USA | Bright Silver 119 | For the construction of the macroscopic Image Acquisition Booth |
Camera Lens | Sony, Japan | SEL2470Z | To focus the images to photograph |
Electrocautery | Bonart, USA | ART-E1 | To eliminates bleeding points in the wound if present. |
Hook and loop fastener strips | VELCRO | ||
IBM SPSS Statistics Version 22 | IBM Corporation, USA | https://www.ibm.com/analytics/spss-statistics | Used for statistical analysis of wound measurements, including area and perimeter data. |
ImageJ Version 1.53t | National Institutes of Health, USA | https://imagej.nih.gov/ij/ | Used for processing macroscopic images, including scaling, segmentation, and measurement of wound parameters. |
Ketorolac | SIEGFRIED RHEIN, Mexico | 493977 | For postoperative pain management |
Miltex Iris Scissors, 4-1/8" Curved | MILTEX, USA | V95-306 | To cut the wound flap generated with the biopsy punch |
RGB LED Light Tube | ANDOER, China | B09F8RLMSY | To illuminate the Macroscopic Image Acquisition Booth |
Semi profesional camera | Sony, Japan | DSC-HX300 | To take the photos |
Serrated Forceps | MILTEX, USA | V96-118 | To hold the flap during the cut |
Sevoflurane | Baxter, USA | AMX2L9117PR | For inhaled anaesthesia |
Sodium Pentobarbital | Aranda, Mexico | 734.448.001.212 | For intraperitoneal anaesthesia |
SolidWorks Version 2015 | Dassault Systèmes, France | https://www.solidworks.com/ | Used to design and create 3D models for constructing accessories for the photodocumentation booth. |
Surgical blades | HERGOM, Mexico | H10 | To shave the hair in the area where the wound will be created |
Transparent Adhesive Dressing | 3M, USA | F51CA07 | To cover the traumatic wound |
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