Los autores desean agradecer a Yabin Wu para el cultivo de tejidos que se presentan en la Figura 2, la foto fue tomada por Bart van Overbeeke. El trabajo fue apoyado financieramente por SenterNovem, ISO 42022 donación.

1. Cultura de mioblastos murinos células progenitoras o células C2C12 <ol><li> Aislar las células de acuerdo con el protocolo publicado inicialmente por Shefer y colegas 10 y más tarde adaptado por Collins et al. 11 y Boonen et al. 12 y almacenarlas en nitrógeno líquido. Esto requiere ratones, por ejemplo C57Bl / 6. Los métodos alternativos se utilizan en otros laboratorios, por ejemplo, un método publicado en Journal of experimentos visualizados por Li Y et al. 13. Para los reactivos y el equipo que se hace referencia a la tabla de la página 7 y 8. Desde el músculo de un ratón que generalmente obtener suficientes células para criopreservar aproximadamente 20 viales en nitrógeno líquido. A continuación, se inicia el protocolo de descongelar las células del almacenamiento en nitrógeno líquido. </li><li> Colocar las células de 1 vial en un 25 cm 2 Matrigel (1 mg / ml) matraz de cultivo de tejido recubierto y se añade medio de crecimiento (GM) que consiste en (335 ml DMEM avanzada, 100 ml bovin fetale suero (FBS), 50 ml HS, 5 ml de penicilina / estreptomicina, 5 ml de L-glutamina, 5 ml de extracto de embrión de pollo (CEE)). </li></ol> Nota: la capa por 2 horas a temperatura ambiente y eliminar el Matrigel por aspiración. <ol start="3"><li> Subcultura de las células aproximadamente 1:03 cada 3 días. Esto significa: el día 3: Células paso de un 2 a 25 cm a 75 cm 2 frasco, en el día 6: Células pasaje de un 75 cm 2 frasco a dos 150 cm 2 frascos (con 30 min preplating en frascos sin recubrimiento). El día 9 transferencia de un matraz de 150 cm 2 a 1 triple 150 cm 2 matraz, o si no está disponible a tres matraces de 150 cm 2 (si es necesario la presiembra de nuevo dependiendo del fenotipo de las células). En el día 12 las células están listas para la siembra en una construcción de músculo. </li></ol> Notas: - Por triples 150 cm 2 el número de células será de aproximadamente 4,5 x 10 6 células. - Utilice víals de diferentes aislamientos de mezclarlos para obtener una población mixta de células en el momento de la siembra. Nota: Si decide no trabajar con células primarias, C2C12 mioblastos son una buena alternativa. 2. Ingeniería de tejidos del músculo esquelético <ol><li> Preparar pegamento de silicona mezclando el &quot;elastómero&quot; con el &quot;agente de curado&quot; (10:1). Cortar + / - 5 mm segmentos cuadrados de velcro con una cara triangular (casa-como la forma, la figura 1). Pegamento el Velcro en los pocillos de una placa de cultivo de 6-así en un espacio de aproximadamente 12 mm entre los cuadrados. </li></ol> Notas: - Utilice sólo el lado suave del velcro y la cara hacia arriba el lado este. - Asegúrese de que los tejados se enfrentan entre sí. - Sólo cubrir el velcro con pegamento de silicona, no se extienden a lo largo de la cola también. - Para la estimulación eléctrica posterior es importante hacer coincidir los constructos en dirección vertical del pozo plcomió (a lo largo del eje largo). <ol start="2"><li> Deje secar durante la noche en horno de vacío, no se calienta, principalmente para eliminar burbujas de aire. Esterilizar mediante la adición de 70% de EtOH a los pocillos e incubar durante 15 min. Enjuagar 3 veces con PBS y sometido a UV durante 15 min. Eliminar todo PBS de los pocillos y el Velcro y el lugar en la incubadora hasta su uso. </li><li> Descongelar solución Matrigel en la nevera y preparar la solución de colágeno a la concentración deseada poco antes de hacer los constructos 3D. Se diluye el stock de colágeno con estéril ácido acético 0,02% (concentración final 3,2 mg / ml). </li></ol> Nota: dejar todo en hielo. <ol start="4"><li> Tripsinizar las células, resuspender en GM y contar. Deja células en tubo de centrífuga en la incubadora. </li><li> Agregue la cantidad deseada de solución de colágeno valores para el número de construcciones que quieres hacer a un tubo (de acuerdo a la Tabla 1), añadir 0,5 M de NaOH a la solución de colágeno hasta que una luz colo rosar indica un pH de 7,5. Mezclar suavemente pipeteando arriba y abajo y evitar la formación de burbujas. A continuación, añadir el Matrigel y mezclar muy suavemente pero a fondo. Por último, agregue el GM a la mezcla de colágeno / Matrigel (para las cantidades apropiadas véase el cuadro 1). </li></ol> Notas: - Realice cada paso en el hielo! Matrigel y colágeno fácilmente gel a temperatura creciente. - Cuidado con que el color en realidad es de color rosa! Un aumento de pH también inducir gelificación rápida. - La concentración final de colágeno: 1,6 mg / ml. <ol start="6"><li> Centrifugar la cantidad deseada de las células a 1.000 rpm durante 5 min y eliminar el sobrenadante. </li></ol> Nota: - En función de la actividad de las células el número de células por construir necesario ajustar. Típicamente, el número de células se encuentra entre 750.000 y 1.250.000 células por constructo. <ol start="7"><li> Use un poco de la mezcla de gel para resuspender el pellet celulary transferir las células a la mezcla restante y mezclar a fondo, pero sin introducir burbujas de aire. </li><li> Tomar las placas precalentadas fuera de la incubadora y la pipeta 0,35 -0,4 ml de la mezcla de células-gel en la primera Velcro. A continuación, comienzan a pipetear la mezcla desde el centro entre los sitios de unión y se extienden hasta el Velcro. Por último, utilizar el resto de gel para llenar la brecha entre los dos anclajes de Velcro y la pipeta alrededor de las piezas de velcro. </li><li> Revise cuidadosamente después de 5-10 minutos si los geles son lo suficientemente sólido como para ser transferidos, es decir, golpear suavemente los platos e inspeccionar visualmente si el gel es rígido. Si es así, coloque cuidadosamente los platos en una incubadora. Por lo general, pueden ser recogidos después de diez minutos. Entonces, después de 1-2 horas, suavemente superponer cada gel con 4 ml de GM caliente. </li></ol> Nota:-No haga movimientos vigorosos al manipular las placas. <ol start="10"><li> Reemplace GM por medio de diferenciación (medio de crecimientosin extracto de embrión de pollo) a las 24 h, y sustituirlo por un nuevo medio cada 2-3 días. En el día 7 que debería haber obtenido fibras musculares maduras orientadas, como se puede evaluar con la tinción para el desarrollo estriación transversal de las fibras musculares fusionados. </li></ol> 3. Estimulación eléctrica <ol><li> Esterilizar los electrodos de la placa de ionoptix (véase la tabla de reactivos y equipos) antes de su uso con 70% de etanol y posteriormente se seca bajo UV en una cabina de seguridad. Colocar la placa con unos electrodos sobre la placa de cultivo con las construcciones y cubre con la tapa de la placa de cultivo y la transferencia a una incubadora. Conecte el Ionoptix C-pacer con los cables adecuados. </li></ol> Nota: Los electrodos se colocan en paralelo junto a la construcción de músculo (Figura 2). <ol start="2"><li> Aplicar el protocolo de estimulación como se esperaba. </li></ol> Nota: Por lo general, utilizan 4 V / cm,Pulsos de 6 ms a una frecuencia de 2 Hz. Cambiar medio de cultivo cada 24 horas durante la estimulación.

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	<li>Langelaan, M. L. P., Boonen, K. J. M., Polak, R. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Meet+the+new+meat:+tissue+engineered+skeletal+muscle.">Meet the new meat: tissue engineered skeletal muscle.</a> Trends Food Sci. Tech. 21 (2), 59-66 (2010).</li><li>Shansky, J., Chromiak, J., Tatto, M., Vandenburgh, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simplified+method+for+tissue+engineering+skeletal+muscle+organoids+in+vitro.">A simplified method for tissue engineering skeletal muscle organoids in vitro.</a> In Vitro Cell Dev. Biol. Animal. 33 (9), 659-661 (1997).</li><li>Vandenburgh, H., Del Tatto, M., Shansky, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-engineered+skeletal+muscle+organoids+for+reversible+gene+therapy.">Tissue-engineered skeletal muscle organoids for reversible gene therapy.</a> Hum. Gene Ther. 7 (17), 2195-2200 (1996).</li><li>Yaffe, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retention+of+differentiation+potentialities+during+prolonged+cultivation+of+myogenic+cells.">Retention of differentiation potentialities during prolonged cultivation of myogenic cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 61 (2), 477-483 (1968).</li><li>Rando, T. A., Blau, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primary+mouse+myoblast+purification,+characterization,+and+transplantation+for+cell-mediated+gene+therapy.">Primary mouse myoblast purification, characterization, and transplantation for cell-mediated gene therapy.</a> J. Cell Biol. 125 (6), 1275-1287 (1994).</li><li>Koning, M., Werker, P. M. N., vander Schaft, D. W. J., Bank, R. A., Harmsen, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MicroRNA-1+and+MicroRNA-206+Improve+Differentiation+Potential+of+Human+Satellite+Cells:+A+Novel+Approach+for+Tissue+Engineering+of+Skeletal+Muscle.">MicroRNA-1 and MicroRNA-206 Improve Differentiation Potential of Human Satellite Cells: A Novel Approach for Tissue Engineering of Skeletal Muscle.</a> Tissue Eng. Part A. , (2011).</li><li>Darabi, R., Pan, W., Bosnakovski, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+myogenic+engraftment+from+mouse+iPS+cells.">Functional myogenic engraftment from mouse iPS cells.</a> Stem Cell Rev. 7 (4), 948-957 (2011).</li><li>Langelaan, M. L. P., Boonen, K. J. M., Rosaria-Chak, K. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Advanced+maturation+by+electrical+stimulation:+Differences+in+response+between+C2C12+and+primary+muscle+progenitor+cells.">Advanced maturation by electrical stimulation: Differences in response between C2C12 and primary muscle progenitor cells.</a> J. Tissue Eng. Regen. Med. 5 (7), 529-539 (2011).</li><li>van der Schaft, D., van Spreeuwel, A. C., van Assen, H. 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S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cell+function,+self-renewal,+and+behavioral+heterogeneity+of+cells+from+the+adult+muscle+satellite+cell+niche.">Stem cell function, self-renewal, and behavioral heterogeneity of cells from the adult muscle satellite cell niche.</a> Cell. 122 (2), 289-301 (2005).</li><li>Boonen, K. J. M., Rosaria-Chak, K. Y., Baaijens, F. P. T., van der Schaft, D. W. J., Post, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Essential+environmental+cues+from+the+satellite+cell+niche:+optimizing+proliferation+and+differentiation.">Essential environmental cues from the satellite cell niche: optimizing proliferation and differentiation.</a> Am. J. Physiol. Cell Physiol. 296 (6), C1338-C1345 (2009).</li><li>Li, Y., Pan, H., Huard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolating+Stem+Cells+from+Soft+Musculoskeletal+Tissues.">Isolating Stem Cells from Soft Musculoskeletal Tissues.</a> J. Vis. Exp. (41), e2011 (2010).</li><li>Boonen, K. J. M., Langelaan, M. L. P., Polak, R. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+a+combined+mechanical+stimulation+protocol:+Value+for+skeletal+muscle+tissue+engineering.">Effects of a combined mechanical stimulation protocol: Value for skeletal muscle tissue engineering.</a> J. Biomech. 43 (8), 1514-1521 (2010).</li><li>Gawlitta, D., Boonen, K. J. M., Oomens, C. W. J., Baaijens, F. P. T., Bouten, C. V. 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Los autores no tienen nada que revelar.

La ingeniería de tejidos musculares tiene un gran potencial para el uso como un modelo de enfermedad, para la selección de fármacos, en medicina regenerativa y la producción de carne. Sin embargo, los requisitos para estas aplicaciones varían. Elegimos trabajar con una combinación de colágeno y Matrigel, colágeno porque permite la alineación celular y porque las células progenitoras de mioblastos requieren la presencia de proteínas de la membrana basal derivados como se determinó en estudios previos de 2D <s...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nombre del reactivo </td><td> Empresa </td><td> Número de catálogo </td><td> Comentarios (opcional) </td></tr><tr><td> Matrigel-factor de crecimiento reducido </td><td> Beckton y Dickinson </td><td></td><td></td></tr><tr><td> DMEM (glucosa alta) * </td><td> Gibco </td><td> 42430 </td><td></td></tr><tr><td> Advanced DMEM </td><td> Gibco </td><td> 12491 </td><td></td></tr><tr><td> El suero de caballo </td><td> Gibco </td><td> 65050-122 </td><td></td></tr><tr><td> El suero fetal bovino </td><td> Greiner </td><td> 758075 </td><td></td></tr><tr><td> 0,45 y 0,22 micras filtro de jeringa * </td><td> Whatmann (Schleicher y Scheull) </td><td> 10462100 </td><td></td></tr><tr><td> L-glutamina </td><td> Gibco </td><td> 25030024 </td><td></td></tr><tr&gt; <td> Penicilina / estreptomicina </td><td> Gibco </td><td> 10378016 </td><td></td></tr><tr><td> Anfotericina </td><td> Gibco </td><td> 15290-018 </td><td></td></tr><tr><td> Cultura plástico </td><td> Greiner </td><td></td><td> Incluye frascos de cultivo y pipetas </td></tr><tr><td> Polluelo extracto de embrión </td><td> Estados Unidos Biológica </td><td> C3999 </td><td></td></tr><tr><td> Pipeta Pasteur * </td><td> Hilgenberg </td><td></td><td> Pipetas Pasteur, con constricción, con algodón, L punta abierta: 230 mm de diámetro con punta de 0,9 - 1,1 mm </td></tr><tr><td> Pipeta Pasteur * </td><td> Hilgenberg </td><td></td><td> Pipetas Pasteur, con constricción, con algodón, L punta abierta: 230 mm de diámetro con punta de 1,4 - 1,6 mm </td></tr><tr><td> Pipeta Pasteur </td><td> VWR </td><td> 612-1702 </td><td></td></tr><tr><td> La colagenasa tipo I* </td><td> Sigma </td><td> C0130-16 </td><td></td></tr><tr><td> 40 micras filtro de células * </td><td> BD Falcon </td><td> 352340 </td><td></td></tr><tr><td> Aguja 19G </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Elastómero </td><td> Dow Corning Corporation </td><td> 3097358-1004 </td><td> Silastic MDX 4-4210 # </td></tr><tr><td> Agente de curado </td><td> Dow Corning Corporation </td><td></td><td> Silastic MDX 4-4210 # </td></tr><tr><td> Velcro </td><td> Tienda Regular </td><td></td><td> Usted puede comprar en una tienda normal, utilice únicamente el lado suave </td></tr><tr><td> El colágeno tipo I, cola de rata </td><td> BD Biosciences </td><td> 3544236 </td><td></td></tr><tr><td> C-Pace EP Pacer Cultura </td><td> Ionoptix </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 6-y las placas de cultivo para la estimulación eléctrica </td><td> Beckton Dickinson-Falcon </td><td> BD Falcon # 353846 </td><td></td></tr><tr><td> Dish C-electrodos cultura plato </td><td> Ionoptix </td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> * Necesaria para el aislamiento de células (punto 1,1) # Juntos en un kit </td></tr></tbody></table>

engineering skeletal muscle tissues from murine myoblast progenitor cells and application of electrical stimulation

Engineered tejidos musculares se pueden utilizar para diferentes propósitos, que incluyen la producción de tejidos para su uso como un modelo de enfermedad in vitro, por ejemplo, para estudiar las úlceras por presión, para la medicina regenerativa y como una alternativa de la carne 1. Las primeras construcciones del músculo informaron 3D se han hecho desde hace muchos años y pioneros en el campo son Vandenburgh y sus colegas 2,3. Los avances en la ingeniería de los tejidos musculares no son sólo el resultado de la ganancia enorme en el conocimiento de los factores bioquímicos, células madre y células progenitoras, pero en especial basada en los conocimientos adquiridos por los investigadores que los factores físicos juegan un papel esencial en el control del comportamiento de las células y tejido de desarrollo. State-of-the-art músculo ingeniería construye actualmente consisten en construcciones de hidrogel de células pobladas. En nuestro laboratorio éstas generalmente constan de células mioblastos murinos progenitoras, aislado de músculos de las extremidades traseras murinos o una línea celular de mioblastos de ratón C2C12, millasjado con una mezcla de colágeno / Matrigel y se sembraron entre dos puntos de anclaje, imitando los ligamentos musculares. Otras células pueden ser considerados también, por ejemplo, líneas celulares alternativas tales como mioblastos de rata L6 4, 5 neonatales musculares derivadas de células progenitoras, células derivadas de tejidos musculares adultos de otras especies, tales como humano 6 o incluso células madre pluripotentes inducidas (células iPS) 7 . Contractilidad celular provoca la alineación de las células a lo largo del eje largo de la construcción de 8,9 y la diferenciación de las células progenitoras de músculo después de aproximadamente una semana de cultivo. Además, la aplicación de la estimulación eléctrica puede mejorar el proceso de diferenciación, hasta cierto punto 8. Debido a su tamaño limitado (8 x 2 x 0,5 mm) del tejido completa se pueden analizar utilizando microscopía confocal para controlar la viabilidad por ejemplo, la diferenciación celular y la alineación. Dependiendo de la aplicación específica de los requisitos para la ingetejido muscular rojo variarán, por ejemplo, uso para la medicina regenerativa requiere la ampliación de tamaño del tejido y la vascularización, mientras que para servir como una traducción alternativa de la carne de otras especies es necesario.

El producto final será constructos musculares, como se indica en la Figura 3. El tamaño del tejido será de aproximadamente 8 mm de largo, 2 mm de ancho y 0,5 mm de espesor. La estimulación eléctrica durante la diferenciación cambiará la expresión de las isoformas de cadena pesada de miosina, pero no mejoran en gran medida el proceso de diferenciación inducida por el medio de diferenciación 8, pero la estimulación eléctrica se puede aplicar también al final del proceso para comprobar la func...

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Engineering Skeletal Muscle Tissues from Murine Myoblast Progenitor Cells and Application of Electrical Stimulation

Tejido muscular Engineered tiene un gran potencial en medicina regenerativa, como modelo de la enfermedad y también como una fuente alternativa para la carne. Aquí se describe la ingeniería de una construcción de músculo, en este caso a partir de células progenitoras de mioblastos de ratón y la estimulación por impulsos eléctricos.

Los tejidos de ingeniería músculo esquelético de células mioblastos murinos progenitoras y aplicación de estimulación eléctrica

Engineered muscle tissues can be used for several different purposes, which include the production of tissues for use as a disease model in vitro, e.g. to ...

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20.8K vistas.  Eindhoven University of Technology, The Netherlands. Tejido muscular Engineered tiene un gran potencial en medicina regenerativa, como modelo de la enfermedad y también como una fuente alternativa para la carne. Aquí se describe la ingeniería de una construcción de músculo, en este caso a partir de células progenitoras de mioblastos de ratón y la estimulación por impulsos eléctricos.