Développement d'un algorithme d'exécution d'une étude approfondie des Autonomic Dysréflexie chez les animaux avec High Spinal Cord Injury utilisation d'un périphérique Télémétrie

Résumé

The catheter of a telemetry device is implanted into the abdominal aorta in order to continuously collect beat-by-beat hemodynamic data from animals pre and post-high thoracic spinal cord transection. A novel JAVA software was employed to analyze hemodynamic parameters as well as frequency and intensity of spontaneous episodes of autonomic dysreflexia.

Résumé

Spinal cord injury (SCI) is a debilitating neurological condition characterized by somatic and autonomic dysfunctions. In particular, SCI above the mid-thoracic level can lead to a potentially life-threatening hypertensive condition called autonomic dysreflexia (AD) that is often triggered by noxious or non-noxious somatic or visceral stimuli below the level of injury. One of the most common triggers of AD is the distension of pelvic viscera, such as during bladder and bowel distension or evacuation. This protocol presents a novel pattern recognition algorithm developed for a JAVA platform software to study the fluctuations of cardiovascular parameters as well as the number, severity and duration of spontaneously occurring AD events. The software is able to apply a pattern recognition algorithm on hemodynamic data such as systolic blood pressure (SBP) and heart rate (HR) extracted from telemetry recordings of conscious and unrestrained animals before and after thoracic (T3) complete transection. With this software, hemodynamic parameters and episodes of AD are able to be detected and analyzed with minimal experimenter bias.

Introduction

Dysréflexie Autonomic (AD) est une urgence menaçant la vie chez les individus après une lésion de la moelle épinière aiguë ou chronique (SCI) au col de l' utérus ou de segments de haut-thoracique et est généralement caractérisée par des épisodes d'hypertension persistante et bradycardie ^1. AD est principalement causée par une perturbation des voies descendantes de la colonne vertébrale qui fournissent habituellement entrée des centres supraspinales aux neurones sympathiques préganglionnaires épinière qui contrôlent l' activité sympathique et le tonus vasculaire ^1-4. Épisodes AD sont caractérisés par un pic de pression artérielle systolique (SBP) jusqu'à 300 mmHg et l' absence de traitement peut entraîner des convulsions, une hémorragie intracrânienne, l' infarctus du myocarde, et même la mort ^5-8. Une variété de stimuli nocifs et non nocifs agir comme un déclencheur d'AD, y compris l' intestin et de la vessie distension, des spasmes, des plaies de pression, de la vessie cathétérisme ou procédures iatrogènes ^9-12.

L'évolution temporelle de la MA dans response à la SCI a été étudié dans les deux ⁹ et modèles animaux humains ^13,14. Généralement , ces études ont utilisé une méthode «AD induite» (c. -à- urodynamique, vibrostimulations du pénis chez l' homme ou distension colorectale chez les animaux) afin de déterminer l'évolution temporelle de la MA. Une telle approche est limitée par la nécessité d'évaluations répétées à isolés points de temps qui peuvent empêcher une détermination précise de l'évolution temporelle de la MA. L'utilisation de 24 heures de surveillance de la pression sanguine chez les humains permet des mesures en série de la tension artérielle à effectuer à des intervalles prédéterminés. Cette technique a été récemment utilisée pour surveiller survenant spontanément AD chez les patients atteints SCI chronique. Dans les modèles animaux, des capteurs de pression à semi-conducteurs sont de plus en plus utilisés pour surveiller de façon chronique battre par battement de la pression artérielle. Récemment, Rabchesvky et al. (2012), mis au point un algorithme qui extrait une seconde moyenne de la pression artérielle moyenne (MAP), unD par rapport à un seuil moyenne mobile ^15. AD événements spontanés ont été caractérisés sur la base de pics de MAP qui sont 10 mmHg ou plus simultanément au dessus du seuil avec une chute de HR de 10 battements par minute ou plus.

Voici un logiciel JAVA roman qui a intégré dans l'algorithme de détection de AD est présenté. Cet algorithme fonctionne en détectant des motifs prédéterminés de la pression artérielle (ABP) et la fréquence cardiaque (HR) qui sont le signe d'un événement AD survenant spontanément. L'utilisateur peut régler manuellement l'ensemble des variables d'entrée dans le logiciel tel que le «algorithme de détection» peut être facilement personnalisé pour les paramètres d'intérêt spécifiques. Le logiciel est également capable de dichotomiser ABP et HR dans une époque donnée telle que la rythmicité diurne des paramètres hémodynamiques peut être analysé ^16. Dans le présent manuscrit, une explication détaillée est donnée de la technique chirurgicale utilisée pour implanter les appareils de télémétrie et d'effectuer la chirurgie SCI. ExDes exemples sont également fournis par rapport aux capacités de post-traitement de logiciel de détection de AD et comment la fonction cardiovasculaire est altérée post-SCI. Aux fins de comparaison, la méthodologie et les résultats obtenus à partir d'une méthode de AD induite connu sous le nom distension colorectale (CRD) est également illustrée.

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Protocole

Homme Wistar (HSD: WI Wistar) rats à 7 semaines et pesant 300-350 g ont été utilisés dans cette expérience. Tous les rats ont été maintenus sur un cycle de 12 heures de lumière / obscurité et reçu chow rat de laboratoire standard et de l'eau ad libitum. Toutes les procédures expérimentales conformes avec le guide sur le soin et l'utilisation des animaux d'expérimentation mis en place par le Conseil canadien de protection des animaux et de l'approbation éthique accordée par l'Université de la Colombie-Britannique. La chirurgie et les soins aux animaux ont été effectués selon les procédures standard dans notre laboratoire (Ramsey et al. , 2010) ^17.

1. Préparation des animaux: Interventions chirurgicales

1. Implantation de l'appareil télémétrique
   Note: protocole a été mis en œuvre conformément aux spécifications du fabricant et notre expérience précédente avec l'implantation du dispositif: ¹⁶
   1. Pré-traiter les animaux avec enrofloxacine, une fois par jour pendant 3 jours (10 mg / kg, s.c.) pré-opératoire.
   2. Retirer les aliments solides de cage 9-13 h avant la chirurgie. Doux régime alimentaire substitut de repas peut être fourni au cours de cette période.
   3. Anesthésier les animaux en utilisant une dose d'induction de 4% d'isoflurane dans une chambre d'induction et une dose d'entretien d'environ 1,5% d'isoflurane (avec 1 à 1,5 L / min d'oxygène) à l'aide d'un circuit Bain. Utilisez le réflexe orteil de pincement et les réflexes cornéens pour déterminer si les animaux sont au plan chirurgical de l'anesthésie. Respiration doit être surveillée afin d' évaluer si la profondeur de l' anesthésie est trop élevée (taux de respiration très lente et haletant, pâle membranes muqueuses) ou trop faible (c. -à , respirations rapides et peu profonds indiquant que l'animal ne peut pas être dans un plan chirurgical de l' anesthésie ). la dose nécessaire surveillance répétée du plan chirurgical de l'anesthésie environ toutes les 5 min pendant la chirurgie et ajuster isoflurane.
      Remarque: Toutes les chirurgies sont effectuées en utilisant une technique aseptique: spécifiquement, les chirurgiens portentscrubs chirurgicales, casquette, masque et gants stériles. procédure de gantage ouverte est observée, autoclavé pansement chirurgical contenant des instruments chirurgicaux est ouvert à l'aide d'une technique stérile et l'animal est drapée avant de commencer la chirurgie. outils chirurgicaux sont tip-stérilisés dans des billes chaudes entre les chirurgies (jusqu'à cinq interventions chirurgicales). éponges chirurgicales et de la gaze sont autoclavés avant utilisation. Pendant la chirurgie, les animaux sont gardés sur une couverture à circulation d'eau maintenue à 37 ° C.
   4. Administrer buprénorphine (0,02 mg / kg; sc) immédiatement avant la chirurgie. En outre, l'administration kétoprofène (5 mg / kg, sc) avant l'intervention chirurgicale pour fournir une analgésie multimodale. Administrer bupivacaïne (5 mg / kg; sc) immédiatement avant la chirurgie pour fournir un bloc de ligne locale. Après le rasage l'abdomen, appliquer des tampons de chlorhexidine et 70% d'éthanol (trois fois chacun), suivis par l'iode povidone pendant au moins 1 min en alternance, et enlever avec 70% d'éthanol (à chaque fois avec un alcool nouvellement ouvert essuyer). Écouvillonnage de la peauest faite de façon concentrique en commençant au centre de la ligne d'incision et indirecte vers l'extérieur (afin de ne pas contaminer la zone par "avant / arrière" mouvements). Utiliser des tampons de gaze stériles et jeter entre chaque application. Ce processus est répété trois fois avant de commencer la chirurgie des animaux. Alors que écrêté et chirurgicalement grattées, garder les animaux sur un cône de nez relié à un circuit non-réinspiration Bain sous environ la dose d'entretien de 1,5% d'isoflurane. Régler le niveau isoflurane que nécessaire pour maintenir l'animal à un plan chirurgical de l'anesthésie.
   5. Faire un 5 cm de long incision abdominale médiane coupant à travers les muscles et du péritoine exposant les intestins.
   6. Rentrez les intestins (cela va exposer l'aorte descendante à la paroi abdominale postérieure), couvrir l'intestin avec de la gaze chirurgicale stérile humidifié avec 2-3 ml de solution Ringers et garder humide avec Ringers supplémentaires aussi souvent que nécessaire pour éviter la dessiccation du tissu à travers la procédure .
   7. Émoussée disséquer autour de l'aorte et de séparer l'aorte de la veine cave inférieure en utilisant un spatules d'iris.
   8. La place des ligatures (8-0 sutures monofilamentaires) autour des extrémités rostrale et caudale de la couche la plus externe de l'adventice de l'aorte, juste en aval de l'artère rénale.
   9. Soulevez le ligatures brièvement obstruant la circulation sanguine et à la perforation de l'aorte au niveau de 1-2 mm en avant de la bifurcation iliaque avec une aiguille de calibre 25 plié à 90 ° à la pointe.
   10. Guide de la pointe du cathéter du dispositif de télémétrie dans l'aorte à l'aide d'une aiguille courbe 20-Gauge. Advance rostrale pour vous assurer que la pointe est juste en aval des artères rénales
       1. Fixer à l'aide d'une petite quantité de colle tissulaire. Supprimer les ligatures et assurer qu'il n'y a pas d'écoulement occlusion artérielle due au cathéter ou d'un tissu adhésif.
   11. Fixer le corps du dispositif de télémétrie dans la paroi abdominale en utilisant des sutures en soie 4-0. Utilisez 4-0 Vicryl et 4-0 sutures Prolène pour fermer la MUSCle et de la peau, respectivement.
2. Soins Telemetry Implantation post-chirurgicale
   Note: Pour les 14 premiers jours animaux post-opératoires doivent être vérifiés au moins 3 fois par jour, en plus d'une évaluation de suivi détaillé une fois par jour. Évaluer les animaux en 7 catégories: poids corporel, l'apparence physique (douleur est évaluée en fonction des signes tels que l'augmentation de la production de porphyrine vu autour des yeux, du nez et les pattes avant, et des signes de grimace du visage), le comportement / activité, la défécation, la peau (y compris courbant, horripilation , la guérison de l'incision et sérome), l'hydratation et la respiration.
   1. Nourrir les animaux avec des fruits, assortiment de céréales, doux régime alimentaire substitut de repas, et de fournir de l'eau ad libitum, pendant 6 jours après l'implantation de l'appareil de télémétrie. Les animaux doivent avoir un accès régulier chow de rongeur solide retenu pour le premier poste de jour fonctionnellement. Injecter animaux avec réchauffé solution Ringer lactate (5 ml) sous-cutanée pendant les 3 premiers jours après la chirurgie et sur l'apparencedes symptômes de déshydratation. Administrer solution Ringers (5 ml) en tant que de besoin, sur l'évaluation des animaux (signes de la tente de la peau, les oreilles pâles / muqueuses) lors des contrôles matin et soir.
   2. Administrer enrofloxacine (10 mg / kg, sc) et le kétoprofène (5 mg / kg, sc) une fois par jour, pendant 3 jours après l'opération. Administrer buprénorphine (0,02 mg / kg, sc) pendant le matin et le soir ( à savoir, toutes les 12 heures) pour les 3 jours suivants après la chirurgie. Une dose mi-journée de la buprénorphine (0,02 mg / kg, sc) peut être administré en cas de signes de douleur / détresse sont notés.
3. Transection complète de la moelle épinière
   Note: Permettre aux animaux de récupérer de la chirurgie d'implantation de télémétrie pendant au moins 14 jours avant la chirurgie T3 transection complète.
   1. animaux pré-traiter avec enrofloxacine prophylactique (10 mg / kg, sc) pendant trois jours avant la chirurgie SCI.
   2. Anesthésier les animaux sous une dose d'induction de 4% d'isoflurane comme décrit précédemment. Plus loin,injecter les animaux avec du chlorhydrate de kétamine (70 mg / kg, ip) et de chlorhydrate de dexmédétomidine (0,5 mg / kg, ip).
      Remarque: Pour les chirurgies de transection complètes, la vasodilatation provoquée par l'isoflurane présente assez souvent des problèmes avec l'hémostase une fois que le cordon est sectionnée. Ce problème peut être évité en utilisant la kétamine / dexmédétomidine cocktail. Les animaux doivent être anesthésiés pour 20-25 min, et inversés en utilisant atipamézole (1 mg / kg, sc) après la chirurgie cordon transection spinale.
   3. Pré-opératoire administrer par voie sous cutanée buprénorphine (0,02 mg / kg), et le kétoprofène (5 mg / kg). Administrer bupivacaïne (5 mg / kg; sc) immédiatement avant la chirurgie pour fournir un bloc de ligne locale. Après le rasage de l'abdomen, des brosses de chlorhexidine et 70% d'éthanol en alternance (trois fois chacun), suivis par la povidone iode doit être appliqué pendant au moins 1 min, et retiré avec 70% d'éthanol (à chaque fois avec un alcool nouvellement ouvert essuyer). Brosses doivent être faites de façon concentrique à partirau centre de la ligne d'incision et indirecte vers l'extérieur (afin de ne pas contaminer la zone par "avant / arrière" mouvements). Utiliser une gaze stérile et jeter entre chaque application. Répétez le processus à trois reprises avant de commencer la chirurgie des animaux. Alors que écrêté et chirurgicalement grattées, garder les animaux sur un cône de nez sous environ la dose d'entretien de 1,5% de l'isoflurane (ajusté au besoin pour maintenir plan chirurgical de l'anesthésie). Pendant toute la durée des animaux de chirurgie sont conservés sur une couverture à circulation d'eau maintenue à 37 ° C.
   4. Faire une incision dorsale médiane, 2 cm de longueur, dans le muscle superficiel recouvrant le C8-T3 vertèbres.
   5. Blunt disséquer afin de révéler la couche dure.
   6. Percer la couche dure avec microciseaux ou avec la pointe d'une aiguille de calibre 25.
   7. Ouvrez la dure à l'écart intervertébral T2-T3 et effectuer une section complète en utilisant microciseaux. Ouvrez les microciseaux mais pas assez latéralement pour éclater arterie vertébrales et les veines. En mouvement rapide sectionner la moelle épinière et la recherche d'une contraction exagérée dans les membres de derrière des animaux. Confirmer une section complète via la séparation visuelle des souches de la moelle épinière rostrale et caudale.
   8. Après confirmation, placez Gelfoam entre les souches pour atteindre l'hémostase. Appliquer Gelfoam suffisante pour arrêter le saignement et de séparer les souches de la moelle épinière.
   9. Utilisez 4-0 Vicryl et 4-0 sutures Prolène pour fermer le muscle et la peau, respectivement. Après la chirurgie SCI, donner animaux solution pré-chauffé de Ringer lactate (5 ml, sc à 30 ° C) et leur permettre de se rétablir dans un environnement à température contrôlée.
4. Spinal Cord Transection soins post-chirurgicaux
   Note: Pour les 14 premiers jours animaux post-opératoires doivent être vérifiés 3 fois par jour, en plus d'une évaluation de suivi détaillé une fois par jour. Après 14 jours d'évaluation de suivi détaillé peut être répété tous les jours. Évaluer les animaux dans 7 catéries: poids corporel, l'apparence physique (douleur est évaluée en fonction des signes tels que la porphyrine et grimace du visage), le comportement / activité, la défécation, la peau (y compris courbant, horripilation, incision guérison et sérome), l'hydratation et la respiration. Pour les 5-7 premières vessies de jours doit être vérifié et exprimé au moins 3 fois par jour.
   1. Nourrir les animaux avec des fruits, assortiment de céréales, de la nutrition de remplacement de repas de régime doux, et de fournir de l'eau ad libitum, pour 8-14 jours après la chirurgie de transection de la moelle épinière. Injecter animaux avec une solution de Ringer Lactate réchauffé (5 ml) sous-cutanée pendant les 3 premiers jours après la chirurgie et sur les symptômes de la déshydratation. Administrer la solution de Ringer (5 ml) en tant que de besoin, sur l'évaluation des animaux lors des contrôles.
      Remarque: Après la moelle transection de la moelle, les rats présentent une paralysie des membres postérieurs, et ambulate utilisant la flexion et l'extension des forelimbs, qui est conservé dans ce modèle de blessure. Les rats manquent tronc et de la queue de soutien. Faciliterleur mouvement dans la cage, une grille en caoutchouc doit être placé sous la literie d'avoine roulée. Cela permet à des rats à saisir la grille avec les pattes, et se déplacent facilement dans la cage pour accéder à la nourriture et de l'eau. La literie doit être changé tous les jours. Au jour 7 après la moelle transection de la moelle, la literie d'avoine devrait être remplacée par leur literie originale de copeaux de bois. La literie d'avoine roulée est utilisée depuis les rats ayant reçu la buprénorphine peut se développer pica dans lequel ils mangent literie et cela peut causer des impactions oesophagiennes. Flocons d'avoine sont impaction absorbant de l'oesophage avec des flocons d'avoine n'a pas été observée.
   2. Administrer enrofloxacine (10 mg / kg, sc) et le kétoprofène (5 mg / kg, sc) une fois par jour pendant 3 jours après l'opération. Administrer buprénorphine (0,02 mg / kg, sc) pendant le matin et le soir ( à savoir, toutes les 12 heures) pour les 3 jours suivants après la chirurgie. Une dose mi-journée de buprénorphine peut être administré si des signes de douleur / détresse sont notés.

2. télémétrieSurveillance des paramètres hémodynamiques

1. Collecter battu par battement pression artérielle (ABP) et la température du corps tous les jours pendant 24 heures, avant et après SCI. Exemple de la pression artérielle et la température du corps à 1000 Hz en 24 blocs h en utilisant le dispositif de télémétrie.
2. Placer une SmartPad sous la cage de l'animal pour la recharge sans fil du transducteur et pour recevoir des signaux numériques télémétriques provenant des transducteurs.
   Remarque: La tension de sortie est ensuite transmis à un configurateur connecté à un ordinateur, qui organise le flux de données provenant de chaque canal. La tension est convertie en des enregistrements continus de la pression artérielle et la température. Visualisez les données échantillonnées en utilisant le logiciel d'acquisition de données, tels que LabChart.
3. Jeter les données de télémétrie recueillies lors de la surveillance des animaux, ainsi que les 10 minutes précédant immédiatement la surveillance et le suivi après 10 min.

3. Évaluation des Spontaneous Incidrences de Autonomic Dysréflexie (AD)

Note: La fréquence, la gravité et la durée des événements spontanés AD ont été évalués en utilisant un algorithme développé pour notre propre roman AD Détection JAVA plate - forme logicielle (figure 4). Un nouvel algorithme a été développé pour détecter automatiquement les événements AD spontanés basé sur 24 h SBP et HR télémesure enregistrements avant et après SCI en utilisant les paramètres spécifiés dans la figure 2.

1. Extrait SBP et HR valeurs à partir des données de télémétrie brutes sur la période d'intérêt en utilisant un logiciel d'acquisition.
   Remarque: Le logiciel d' acquisition détecte et détermine la valeur des pics SBP à partir d' enregistrements continus ABP. La fréquence cardiaque est extrapolée en déterminant la distance de durée entre les pics SBP adjacents.
2. Télécharger un fichier CSV des enregistrements de télémétrie avec un intervalle Interbeat dans la colonne A, les valeurs SBP dans la colonne B, les valeurs du PAM dans la colonne C et le temps de la journée in colonne D (figure 4A).
3. Utilisation du logiciel (Figure 4B-D), spécifier la gamme HR physiologique pertinente (c. -à- R à intervalle R) pour les enregistrements SBP entre 180 bpm et 625 bpm. Spécifiez la plage des RH pertinents sur le logiciel sous les panneaux de fréquence cardiaque minimum et la fréquence cardiaque maximum.
4. Créer un seuil pour SBP et HR à travers une fenêtre moyenne mobile de 240 sec. Indiquez la longueur de la fenêtre du seuil moyenne mobile pour l'analyse dans le panneau de seuil AD Durée.
5. Définir un seuil transposé SBP à 20 mmHg au-dessus de la ligne de base moyenne mobile. Indiquez la valeur de transposition dans le Seuil moyen panneau Transposition BP Moving.
6. Isoler SBP amas de pics qui dépassent le seuil de transposition avec un intervalle de crête à crête inférieure à 2 secondes et pendant une durée supérieure à 10 secondes. Spécifiez le pic à pic d' intervalle à l' aide du Interpeak Interval BP et duintervalle de ration à l' aide des panneaux Cluster pic Interval BP.
7. Groupe SBP grappes de pointe qui sont à moins de 120 secondes de l'autre.
   Remarque: Détecté événements AD potentiels qui sont à moins de 120 secondes de l'autre seraient regroupés en un seul événement. Indiquez la durée maximale autorisée entre les clusters SBP consécutifs pour différencier les événements AD séparés dans le panneau AD Durée Seuil.
8. Confirmez si le groupe de clusters de pointe SBP sont associés à un événement potentiel AD spontanée en détectant une chute de HR de 40 bpm ou plus.
   1. Moyenne 10% des valeurs de RH sur le début de l'événement potentiel (préciser ce pourcentage dans la fréquence cardiaque supérieure déposer panneau de gamme moyenne). Moyenne 75% des valeurs de fréquence cardiaque à partir de la fin de l'événement potentiel (préciser ce pourcentage dans le bas fréquence cardiaque drop panneau de gamme moyenne).
   2. Soustraire le seuil de fréquence cardiaque inférieure du seuil supérieur de la fréquence cardiaque, afin d'assurer une correspondrop ding de 40 bpm ou plus. Spécifiez la restriction de baisse de la fréquence cardiaque à l' aide du panneau de limitation de baisse de la fréquence cardiaque.
9. Une fois les panneaux ont été remplis, appuyez sur OK. Une présentation graphique des événements AD détectés sont présentés, qui comprennent les pics de SBP et des données de ressources humaines associées (Figure 4C-D). Une sortie fichier Excel est également généré avec la réponse pressive (mmHg), la durée (s), max pression artérielle systolique (mmHg), HR minimum (bpm) et baisse des ressources humaines (bpm) de chaque événement AD détecté.

4. Colorectal Distension à ELICIT Intentionnellement AD

Note: La gravité de la MA induite peut être déterminée par distension colorectale (CRD), un stimulus cliniquement pertinente qui imite l'intestin de routine ^3,18,19.

1. Vérifier le ballon d'un cathéter français (droite, 10 Français, 3 ml, 35 cm, sans latex) ne fuit pas en le gonflant avec 2 ml d'air.
2. Retiens ee animale en enveloppant dans une serviette et permettre à BP et HR se stabiliser pendant une demi-heure.
3. Placez le lubrifiant sur la pointe du cathéter. Placez une marque sur le cathéter avec un marqueur permanent, 2cm à partir du milieu du ballon. Le cathéter est inséré par l'anus dans le côlon jusqu'à ce que la marque est tout juste visible à l'ouverture. Fixer le cathéter à la queue avec du ruban adhésif chirurgical. Replacez l'animal enveloppé dans sa cage placée sur le récepteur SmartPad correspondant du transducteur implanté à l'intérieur de l'animal. Permettre à l'animal de BP se normalise pendant 10 min.
4. Après l' insertion du cathéter et la période d'acclimatation associée ( à savoir, 10 minutes), infuser le ballon avec 2 ml d'air pendant 10 secondes, permettent BP et HR de se stabiliser. Maintenir distension pendant 1 min. Assurez-vous que la pointe du cathéter reste à l'intérieur du rectum. Il est important de ne pas trop gonfler le ballon (ie, 3 ml +) afin d'éviter la rupture du côlon.
   Remarque: La distension pendant une durée de 1 min &# 160; permet le temps approprié pour le développement de la réponse hypertensive et le barorécepteur médiée baisse des ressources humaines associée à un épisode induit de la MA. De plus, cette période de 1 min fournit également un temps suffisant pour la normalisation des indices cardiovasculaires.
5. Répétez distension 3 fois par essai, répéter les essais par jour avec un intervalle minimum de 10 min entre les essais. Une fois l'évaluation terminée, retirez la sonde de Foley de l'animal.
6. Les données moyennes battement par battement de plus de 1 seconde d'intervalle et signaler l'augmentation maximale de la PAS et de diminution maximale de HR sur plusieurs essais.

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Résultats

En utilisant la télémesure, la pression sanguine artérielle est échantillonné à une fréquence de 1000 Hz de façon continue pendant 24 heures. Dispositif d'enregistrement illustratif de la pression artérielle (ABP) à l' aide LabChart est représentée sur la figure 1B. L'échantillon de PAA a été surveillée par un capteur de pression statique inséré dans l'aorte descendante. Le logiciel roman de détection AD plate - forme JAVA est capable d'extraire des pics pertinents...

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Discussion

Le protocole décrit une mise en œuvre détaillée d'un logiciel de détection de AD plate - forme JAVA roman qui serait associé à un dispositif de télémétrie, pour une analyse approfondie à long terme de ABP SCI-animaux (figure 1B). Ceci est le premier logiciel qui permet de caractériser des profils ABP pour détecter des événements spontanés autobloquantes à mesure qu'elles surviennent de façon sporadique pendant toute la durée de la journée. Un modèle animal T3 SCI bien caract...

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matériels

Name	Company	Catalog Number	Comments
11 Male Wistar Rats -Hsd-WI (250-300g)	Envigo (formerly Harlan Laboratories)	141
Lab Chart (PowerLab® Data Acquisition System)	AD Instruments
Pressure Telemeter	Millar Inc.	RP-TRM54P
Configurator	Millar Inc.	TR190
SmartPad	Millar Inc.	TR180
Isoflurane (Aerrane)	Baxter Corp.	DIN: 02225875
Enrofloxacin (Baytril)	Bayer Healthcare	DIN: 02169428
5-0 Silk Sutures	Ethicon	S182
4-0 Vicryl Subcuticular	Ethicon	J496G
Buprenorphine (Temgesic)	Reckitt Benckiser	DIN: 0281250
Bupivicaine Hydrochloride (Marcaine 0.5%)	Hospira Healthcare Corp.	DIN: 02305909
Ketoprofen (Anafen)	Merial	DIN: 02150999
Ketamine Hydrochloride (Vetalar)	Bioniche	DIN: 01989529
Dexmedetomidine Hydrochloride (Domitor)	Pfizer	DIN: 02333929
Lactated Ringer's Solution	Braun Medical Inc.	DIN: 01931636
Gelfoam #12	Pharmacia & Upjohn Company	03603-14-1
Microscissors	Fine Science Tools	15003-008
Iris Spatulae	Fine Science Tools	10094-13
10 French 35 cm Foley Catheter	Coloplast	AA6110
Dietgel®	Clear H2O, Westbrook, ME	76A
LabDiet Rodent Diet 5001	Purina Mills (PMI®)	5001
Chlorhexadine (Hibitane)	Wyeth Animal Health, Guelph, Ontario	DIN 00245097
Atipamezole Hydrochloride(Antisedan)	Orion Pharma	DIN: 02237744