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Les modèles murines de l'athérosclérose sont des outils utiles pour étudier les voies pathogènes au niveau moléculaire, mais exigent une quantification normalisée du développement des lésions. Ce protocole décrit une méthode optimisée pour déterminer la taille de lésion dans les vaisseaux artériels principaux comprenant la racine aortique, l'arc aortique, et l'artère brachiocéphalique.
Les maladies cardiovasculaires sont la principale cause de décès dans le monde. La cause sous-jacente dans la plupart des cas est l'athérosclérose, qui est en partie une maladie inflammatoire chronique. Des études expérimentales sur l'athérosclérose ont élucidé le rôle du cholestérol et de l'inflammation dans le processus de la maladie. Ceci a mené aux essais cliniques réussis avec des agents pharmaceutiques qui réduisent des manifestations cliniques de l'athérosclérose. Des expériences minutieuses et bien contrôlées dans des modèles murins de la maladie pourraient encore élucider la pathogénie de la maladie, qui n'est pas entièrement comprise. L'analyse normalisée des lésions est importante pour réduire la variabilité expérimentale et augmenter la reproductibilité. La taille de lésion de détermination dans la racine aortique, l'arc aortique, et l'artère brachiocéphalique sont des points de terminaison communs dans l'athérosclérose expérimentale. Ce protocole fournit une description technique pour l'évaluation de l'athérosclérose à tous ces emplacements dans une seule souris. Le protocole est particulièrement utile lorsque le matériel est limité, comme c'est souvent le cas lorsque des animaux génétiquement modifiés sont caractérisés.
Les maladies cardiovasculaires sont la principale cause de décès dans le monde, les cardiopathies ischémiques et les accidents vasculaires cérébraux représentant un décès sur quatre1. La plupart des cas sont provoqués par l'athérosclérose, une maladie caractérisée par une accumulation lente de plaques chargées de lipides avec des signes d'inflammation chronique dans les artères de grande et moyenne taille2. La maladie reste habituellement inaperçue pendant plusieurs décennies jusqu'à ce qu'une rupture ou une érosion de la plaque provoque une thrombose artérielle qui mène aux dommages ischémiques de tissu.
Une artère normale se compose d'une couche d'intima avec des cellules endothéliales et des cellules musculaires lisses peu distribuées, une couche média avec des cellules musculaires lisses et des lamelles élastiques, et une couche adventitielle environnante avec le tissu conjonctif lâche3. Une rétention intimale de LDL compense le développement de l'athérosclérose4. L'accumulation et la modification des lipoprotéines conduisent à l'agrégation et au piégeage dans l'intima artérielle5. Une réponse inflammatoire est évoquée par les lipoprotéines piégées et modifiées6. Les cellules endothéliales commencent à exprimer des molécules d'adhérence, telles que VCAM-1 aux emplacements dans l'arbre artériel avec le flux sanguin turbulent, menant au recrutement des monocytes circulants et d'autres leucocytes7. Les monocytes infiltrants se différencient en macrophages qui engloutissent les lipides avec la transformation qui s'ensuit en cellules de mousse de macrophage8.
L'athérosclérose a été étudiée dans des modèles de souris avec une fréquence croissante depuis le milieu des années 1980. C57BL/6 est la souche de souris consanguine la plus couramment utilisée pour ces études, et elle est utilisée comme fond génétique pour la majorité des souches génétiquement modifiées9. Cette souche a été établie dans les années 192010, et son génome a été publié en 200211. Les expériences sur les modèles murins présentent plusieurs avantages : les colonies se reproduisent rapidement, le logement est économe en espace et la consanguinité réduit la variabilité expérimentale. Le modèle permet également des manipulations génétiques, telles que des suppressions de gènes ciblées et l'insertion de transgènes. Cela a conduit à une nouvelle compréhension pathophysiologique de la maladie et de nouvelles cibles de thérapie12.
Les souris de type sauvage C57BL/6 sont naturellement résistantes à l'athérosclérose. Ils ont la plupart du cholestérol circulant dans HDL, et les lésions athérosclérotiques complexes ne sont pas formées même lorsqu'elles sont alimentées un régime riche en graisses et en cholestérol13. Les souris hypercholestérolémiques, comme Apoe-/- sur le c57BL/6-arrière-plan, sont donc utilisées comme modèles expérimentaux de l'athérosclérose14,15. L'absence d'ApoE altère l'upprise hépatique des lipoprotéines restantes et perturbe sévèrement le métabolisme des lipides. Dans Apoe-/- souris, le cholestérol circulant est principalement dans les particules de VLDL, et les souris développent des plaques athérosclérotiques complexes sur un régime régulier de chow.
Ldlr-/- les souris imitent le développement de l'athérosclérose vue chez l'homme avec l'hypercholestérolémie familiale16. Les souris Ldlr-/- ont besoin d'un régime occidental de type pour développer l'athérosclérose17. Le régime occidental imite l'apport alimentaire humain et contient habituellement 0,15% de cholestérol. Le récepteur LDL reconnaît apoB100 et ApoE et médiatise l'apport de particules de LDL par endocytose. Les récepteurs de LDL sont fondamentaux pour le dégagement de foie du LDL de la circulation, alors que l'expression de récepteur de LDL dans les cellules hématopoietic n'influence pas ce processus. Ceci ouvre la possibilité pour la transplantation de moelle de Ldlr- / cellules dans l'hypercholestérolémie Ldlr-/- destinataires et évaluation du développement d'athérosclérose. Les chimères de moelle ont été couramment employées pour étudier la participation des cellules hématopoïétiques dans l'athérosclérose expérimentale. Cependant, la transplantation de moelle pourrait influencer la taille et la composition des plaques athérosclérotiques, rendant l'interprétation des résultats ambigu.
Différentes variantes d'Apoe-/et de Ldlr-/- des souris présentant d'autres altérations génétiques ont été développées pour étudier des processus spécifiques de la maladie18. Un exemple est l'homme APOB100-transgénique Ldlr-/- (HuBL) souris qui portent la pleine longueur humaine APOB100 gène19,20. Ces souris développent l'hypercholestérolémie et l'athérosclérose sur un régime régulier de chow. Cependant, le développement de plaques athérosclérotiques complexes prend au moins six mois et les protocoles expérimentaux plus courts utilisent habituellement le régime occidental21. Une grande fraction du cholestérol plasmatique circule dans les particules de LDL, ce qui donne aux souris HuBL un profil de lipoprotéines dyslipidémiques plus humains que les souris Apoe-/- et Ldlr-/- Les souris HuBL permettent également des études de l'apoB humain comme autoantigène22.
Les modèles de souris de l'athérosclérose développent des plaques athérosclérotiques complexes avec des dispositifs partagés de la maladie humaine. Cependant, les plaques sont assez résistantes à la rupture avec l'infarctus du myocarde qui s'ensuit. L'athérothromose n'est détectée que sporadiquement et expérimentalement difficile à évaluer23,24,25. Des modèles spéciaux de rupture de plaque ont été développés, mais le champ expérimental n'a pas de modèle fiable et reproductible pour l'évaluation des agents stabilisateurs de plaque.
Quantification de l'athérosclérose a été rapportée de nombreuses manières dans la littérature. Des efforts récents ont tenté de normaliser la conception expérimentale, l'exécution et la production de rapports sur les études sur les animaux26. Les chercheurs ont des préférences et des techniques différentes adaptées à leurs laboratoires. La plupart des projets de recherche sont également uniques d'une manière qu'ils nécessitent des modifications au protocole. En raison de la nature multifactorielle de la maladie, les contrôles optimaux varient d'un projet à l'autre. Les conditions locales et l'absence de normalisation peuvent entraîner des différences observées dans le développement de la maladie, ce qui entrave les progrès du domaine de la recherche. Les différences dans la variabilité expérimentale signifient également que les calculs statistiques de la puissance doivent être basés sur des études pilotes dans des conditions locales.
La quantification de l'athérosclérose est recommandée à plusieurs endroits dans l'arbre vasculaire. Ce protocole décrit comment obtenir des résultats de la racine aortique, de l'arc aortique, et de l'artère brachiocéphalique dans une souris simple, en plus de laisser le reste de l'aorte thoracoabdominale pour d'autres analyses. En préparations face permettent une quantification rapide des plaques chargées de lipides dans l'arc aortique. La charge de morbidité dans l'artère brachiocéphalique peut également être quantifiée si les spécimens sont soigneusement montrés. Le découpement plus long de la racine aortique laisse plusieurs sections disponibles pour l'évaluation détaillée de la composition de la plaque.
Toutes les expériences sur les animaux doivent être approuvées par les autorités éthiques.
1. Sacrifice de souris et microdissection d'Aorta
Figure 1 : Arche cardiaque et aortique in situ. (A) Les poumons, la trachée, l'œsophage et le thymus sont enlevés pour afficher l'arc aortique in situ dans un Apoe femelle de 20 semaines -/- souris sur le régime régulier de chow dans un micrographe, barre d'échelle ' 2 mm. Les lignes pointillées indiquent où couper l'arc aortique et ses branches. (B) Une représentation schématique du cœur et de l'aorte. La ligne pointillée en rouge indique où couper le cœur avant de cryomonter la racine aortique. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
2. En Face Analysis of Aortic Arch and Brachiocephalic Artery (en)
Figure 2 : Quantification des lésions arosclérotiques. (A) Arche aortique d'un homme de 20 semaines APOB100-transgénique Ldlr-/- (HuBL) souris nourrie régime occidental pendant dix semaines épinglé ouvert et taché pour les plaques riches en lipides avec le Soudan IV. La surface totale de l'arc aortique est décrite avec la ligne pointillée en blanc dans le micrographe, barre d'échelle de 2 mm. Les lignes pointillées en jaune décrivent la surface totale de l'artère brachiocéphalique. (B) Section transversale de racine aortique à 400 m du sinus aortique dans un Ldlr mâle de 20 semaines -/- la souris a alimenté le régime occidental pendant huit semaines visualisé dans un micrographe, barre d'échelle 500 m. Les lignes pointillées en noir décrivent la surface totale du navire et les lésions athérosclérotiques tachées d'huile rouge O localisées dans l'intima artérielle. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
3. Cryosectioning de la racine aortique
Figure 3 : Organisation de diapositives pour les sections sérielles de la racine aortique. Pendant la cryosection de la racine aortique, toutes les sections de 10 m d'épaisseur couvrant les 800 premiers mètres de l'aorte ascendante doivent être collectées. Une organisation systématique de diapositives est nécessaire pour obtenir des sections appropriées pour diverses applications. L'analyse de la composition de lésion inclut habituellement la coloration rouge d'huile d'O pour des lipides et la coloration rouge de Picrosirius pour le collagène. Les sections restantes sont rassemblées et acétone-fixées pour l'immunohistochimie et la coloration d'immunofluorescence. Ce chiffre a été modifié à partir de Gister et al30. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
4. Huile rouge O Coloration et Quantification de l'athérosclérose dans les racines aortiques
Dans les modèles de souris de l'athérosclérose les lésions les plus importantes ont tendance à se développer dans la racine aortique et l'arc aortique. Ce protocole décrit la quantification de l'athérosclérose dans la racine aortique, l'arc aortique, et l'artère brachiocéphalique dans une souris simple. Les lésions mesurables dans l'aorte descendante thoracique et l'aorte abdominale sont seulement présentes dans les animaux présentant la maladie avancée. Dans ce protocole, ces parties ne sont pas analysées pour la charge athérosclérotique, mais enregistrées pour l'analyse ultérieure des niveaux d'ARNm ou d'autres analyses. Les sections sérielles des lésions athérosclérotiques dans la racine aortique sont habituellement affichées dans un graphique avec la taille de lésion sur l'axe de yet la distance au sinus aortique sur le x-axe28. Les vraies coupes transversales sont cruciales pour la quantification de la taille des lésions. Les sections obliques peuvent surestimer la taille des lésions et une inclinaison de seulement 20 degrés pourrait surestimer la surface de lésion absolue de 15 %29. Toutefois, le calcul de la fraction de lésion de la superficie totale du navire rend le résultat moins sensible aux différences d'angle possibles au cours de la section (figure4A). Une méthode statistique appropriée pour détecter les différences entre les groupes est habituellement une analyse régulière à deux voies de la variance (ANOVA). Les tests post-tests Bonferroni sont ensuite effectués pour détecter les différences à certains niveaux. La différence la moins significative de Fisher pourrait également être utilisée comme test de suivi à ANOVA. Il réduit la probabilité d'erreurs statistiques de type II, mais ne tient pas compte de comparaisons multiples. En outre, il pourrait être illustratif de calculer la zone sous la courbe ou la taille moyenne des lésions par souris et de présenter les données dans une parcelle de point pour visualiser davantage la variation individuelle au sein des groupes (Figure 4B).
L'huile rouge O est un colorant diazo rouge vif liposoluble, qui tache les lipides neutres. Les lipides polaires dans les membranes cellulaires ne sont pas tachés. La coloration rouge O à l'huile peut être effectuée sur des échantillons frais, congelés ou fixés en formaline, mais pas sur des échantillons incorporés à la paraffine en raison de l'élimination des lipides dans le processus de déparaffinisation requis. Une quantification de l'accumulation de lipides lésions pourrait être effectuée en délimitant la zone positive de l'huile rouge O de la surface totale de lésion (Figure 4C). L'hématoxylin produit une coloration bleue des noyaux cellulaires, qui est utile pour visualiser la morphologie de plaque. Les artères coronaires droites et gauches divergent habituellement de l'aorte autour de 250 m du sinus aortique27,qui coïncident souvent avec les tailles de lésion les plus importantes. Les sections transversales de cette région sont souvent affichées comme des résultats représentatifs (figure 4D).
Figure 4 : Lésions atherosclérotiques dans la racine aortique. (A) Vingt-huit semaines de chimères mâles de moelle ont alimenté le régime occidental pendant huit semaines ont été évaluées pour déterminer l'effet des cellules T Smad7-déficientes sur le développement d'athérosclérose. Ldlr expérimental-/- les chimères ont reçu la moelle osseuse Cd4-Cre -Smad7fl/fl et les contrôles ont reçu la moelle osseuse Cd4-CreetSmad7fl/MD. Le graphique montre la quantification de la zone de lésion athérosclérotique de huit sections consécutives, 100 - 800 m du sinus aortique affiché comme fraction de lésion de la surface totale du navire (Cd4-Cre-Smad7fl //Ldlr-/- n-6, Cd4-Cre-Smad7fl/fl/Ldlr-/- n ' 9, 2 voies ANOVA avec le post-test de Bonferroni, graphique montre moyenne 'SEM, accolades indiquent le niveau d'importance pour la comparaison de souche). (B) L'intrigue à points combinés et le graphique à barres montre la zone moyenne de lésion athérosclérotique des sections de racine aortique (Cd4-Cre-Smad7fl //Ldlr-/- n -6, Cd4-Cre-Smad7fl/fl/ Ldlr-/- n ' 9, Student's t-test) (C) Fraction of Oil Red O-stained area in the lesions (Cd4-Cre-Smad7fl//Ldlr-/- n ' 4, Cd4-Cre'Smad7fl/fl /Ldlr-/- n -6, Student's t-test, ns'non-significant) (B-C) Lespoints représentent des souris individuelles et les barres montrent la moyenne des micrographies représentatives montrant la coloration de l'huile rouge O (en rouge couleur) de lipides neutres dans la racine aortique 300 m de sinus aortique (grossissement 50x), barre d'échelle de 500 m. Ce chiffre a été modifié à partir de Gister et al.31. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Huile Red O pourrait être utilisé pour la coloration des aortes en face préparée, mais ce protocole utilise Soudan IV, un autre colorant diazo liposoluble pratique. Soudan IV visualise clairement les plaques athérosclérotiques d'une couleur orange-rouge en taclant les lipides, les triglycérides et les lipoprotéines. Enlever le fond sombre dans les images représentatives des arcs aortiques en face pourrait améliorer l'affichage visuel (Figure 5A). Habituellement, la taille des lésions est normalement répartie en groupes, ce qui permet des tests statistiques avec le testt-test de l'étudiant entre les groupes. Une parcelle de point qui montre à la fois les souris individuelles et la moyenne, qui est comparée entre les groupes, est une façon informative d'afficher les résultats (Figure 5B-C). Puisque la variation au sein des groupes est typiquement différente entre les endroits dans l'arbre vasculaire, des calculs séparés de puissance sont habituellement nécessaires. La variation inutile peut être évitée par la compétence de méthode et la normalisation de protocole. Il est important d'obtenir des résultats statistiquement significatifs, mais la pertinence biologique d'une différence observée doit toujours être prise en considération.
Figure 5 : Lésions atherosclérotiques dans l'arc aortique et l'artère brachiocéphalique. (A) Représentant en visage micrographies d'arcs aortiques avec des plaques chargées de lipides tachées de Soudan IV (en couleur orange) de souris de 20 semaines nourri régime occidental pendant dix semaines, visualisé ensemble. Barre d'échelle de 2 mm. Les souris ldlr-/- ( HuBL)ont été utilisées comme témoins et le groupe expérimental était composé de souris transgéniques TCR avec des lymphocytes T réactifs LDL (BT1) croisés à des souris HuBL. (B) Lésions atherosclérotiques dans l'arc aortique (HuBL n 10, BT1xHuBL n 12; L'étudiant t-test). (C) Lésions atherosclérotiques dans l'artère brachiocéphalique (HuBL n 8, BT1xHuBL n - 9, Student's t-test). (B-C) Les points représentent des souris individuelles, les barres montrent la moyenne de 'SEM. 'p '0,05. Ce chiffre a été modifié à partir de Gister et al.32. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Figure supplémentaire 1 : Organisation alternative de diapositives pour les sections sérielles de la racine aortique. Une organisation systématique simplifiée de diapositives pour la collecte des sections de la racine aortique. La collection permet la coloration oil Red O pour les lipides et immunohistochemistry ou la coloration immunofluorescence. Des diapositives dédiées pour la coloration rouge Picrosirius de collagène sont omises. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Les maladies cardiovasculaires sont le principal tueur dans le monde et de nouvelles mesures préventives sont nécessaires2. Les modèles de souris de la maladie fournissent une plate-forme complète pour l'étude de la pathophysiologie et des traitements expérimentaux13. Une quantification fiable de la taille des lésions est essentielle à cette approche. Cependant, les méthodes de quantification diffèrent d'un laboratoire à l'autre. La normalisation et l'optimisation sont un processus continu depuis les années 198013,27,33,34. Les racines aortiques sont apparues comme le site le plus populaire pour quantifier l'athérosclérose expérimentale. Des coupes transversales de plaques permettent de comparer le volume de la plaque entre les groupes. En préparations face sont favorisés pour la quantification des lésions dans les segments plus grands de l'aorte. La méthode en face visualise la quantité de plaque et permet la quantification de la couverture de la plaque, mais ne tiennent pas compte de l'épaisseur de la plaque. La pertinence biologique des différences observées est étayée par des résultats cohérents à différents endroits dans l'arbre vasculaire. L'évaluation du développement de l'athérosclérose à différents endroits traite des effets spécifiques possibles au site. L'effet des cellules hématopoïétiques transplantées sur le développement d'athérosclérose peut être évalué dans le Ldlr hypercholestérolémique -/- chimères. Cependant, l'irradiation de corps entier affecte le processus d'athérosclérose avec des effets spécifiques de site. Des lésions atherosclérotiques plus proéminentes sont développées dans la racine aortique, tandis que le développement réduit de lésion est observé dans les arcs aortiques35.
Il est important de noter que non seulement la taille des lésions doit être abordée dans les études sur l'athérosclérose expérimentale. La composition des lésions est également un paramètre clé. Plusieurs dispositifs de plaque ont été associés aux manifestations de la maladie chez l'homme36. La section en série de la racine aortique laisse plusieurs sections disponibles pour une analyse minutieuse de la composition de la plaque. La rupture de plaque chez l'homme est caractérisée par un chapeau fibreux mince avec peu de cellules lisses de muscle, le contenu clairsemé de collagène et des signes d'inflammation dans les plaques36. Bien que la rupture de plaque soit un événement rare dans les modèles de souris de l'athérosclérose, les marqueurs pour la stabilité de plaque sont instructifs pour évaluer. Les approches translationnelles pourraient confirmer les résultats mécanistes des modèles de souris et découvrir des caractéristiques importantes de la maladie humaine31. L'état inflammatoire des plaques atherosclérotiques pourrait être déterminé par la coloration immunohistochemistry de VCAM-1, de classe II de MHC, de macrophages, et de lymphocytes30. Certains protocoles utilisent des sections longitudinales dans le plan coronal de l'arc aortique ou de l'artère brachiocéphale pour mesurer la taille et la composition des lésions athérosclérotiques37. Cependant, cette méthode alternative ne laisse que peu de sections à analyser, ce qui limite ses applications.
Une première étape critique dans ce protocole est la capacité de récolter les aortes efficacement. La coordination œil-main sous le microscope nécessite de la pratique et est cruciale à la fois pour la microdissection et l'épinglage ultérieur de l'arc aortique. La prochaine étape critique de ce protocole est la collecte de sections série à partir de la racine aortique. Quatre-vingts sections consécutives doivent être collectées pour chaque souris, ce qui nécessite à la fois de la concentration et de la patience. La compétence méthodologique pourrait accélérer considérablement les processus décrits. Néanmoins, la quantification de la lésion athérosclérotique est toujours une tâche longue. Les nouvelles technologies, la manipulation automatisée et l'imagerie des petits animaux pourraient faciliter la quantification de l'athérosclérose expérimentale à l'avenir. La progression de l'athérosclérose est lente et la plupart des protocoles expérimentaux dans les modèles de souris prennent plus de quatre mois pour compléter13. Par conséquent, les aortes doivent être collectées de manière optimisée aux points de terminaison d'étude. Ce protocole fournit un guide complet pour récolter efficacement les aortes et le traitement proposé prépare les aortes pour une utilisation polyvalente, y compris la quantification des lésions dans la racine aortique, l'arc aortique et l'artère brachiocéphalique. Espérons que le protocole peut réduire la variabilité expérimentale, améliorer la fiabilité des résultats, et conduire à des résultats qui ouvriront la voie à de nouveaux traitements contre l'athérosclérose.
Les auteurs n'ont rien à révéler.
Nous remercions tous les anciens membres de l'unité expérimentale de recherche cardiovasculaire de Gâran K Hansson qui a contribué à l'élaboration de ce protocole au cours du dernier quart de siècle. Nous sommes particulièrement reconnaissants pour les contributions d'Antonino Nicoletti, Xinghua Zhou, Anna-Karin Robertson et Inger Bodin. Ces travaux ont été soutenus par la subvention du projet 06816 et le soutien de Linné 349-2007-8703 du Conseil suédois de la recherche, et par des subventions de la Fondation suédoise Heart-Lung, du Conseil du comté de Stockholm, de la Fondation du professeur Nanna Svartz, de Loo et de Hans Osterman. Foundation for Medical Research, Karolinska Institutet's Research Foundation et Foundation for Geriatric Diseases à l'Institut Karolinska.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Acetone | VWR Chemicals | 20066.296 | For fixation of sections for immunohistochemistry. |
Black electrical insulation tape (50 mm wide) | Any specialized retailer | - | To create pinning beds for aortic arches. |
Centrifuge | Eppendorf | 5417C | Benchtop microcentrifuge. |
Cork board | Any specialized retailer | - | For cutting hearts in the preparation to cryomount aortic roots. |
Cryostat | Thermo Scientific | Microm HM 560 | For serial cryosectioning of aortic roots. |
Deionized water | - | - | For rinsing and preparation of solutions. |
Digital camera | Leica Microsystems | DC480 | 5.1 megapixel CCD for high-resolution images of aortic arches and aortic root sections. |
Dissecting scissors (10 cm, straight) | World Precision Instruments | 14393 | For general dissection of organs. |
Dumont forceps #5 (11 cm, straight) | World Precision Instruments | 500341 | For microdissection of aorta. |
Ethanol 70% (v/v) | VWR Chemicals | 83801.290 | Highly flammable liquid and vapour, store in a well-ventilated place, and keep cool. |
Ethanol absolute ≥99.8% | VWR Chemicals | 20821.310 | Highly flammable liquid and vapour, store in a well-ventilated place, and keep cool. |
Formaldehyde 4% stabilised, buffered (pH 7.0) | VWR Chemicals | 9713.1000 | Harmful by inhalation, in contact with skin and if swallowed. |
ImageJ | NIH | - | Image analysis software. |
Iris forceps (10 cm, curved, serrated) | World Precision Instruments | 15915-G | Used as anatomical forceps. |
Isopropanol | Merck | 1096341011 | Flammable liquid, causes serious eye irritation, and may cause drowsiness or dizziness. |
Kaiser's glycerol gelatine | Merck | 1092420100 | Aqueous mounting medium containing phenol. Suspected of causing genetic defects. |
Light microscope | Leica Microsystems | DM LB2 | For analysis during sectioning and documentation of Oil Red O stained micrographs. |
Mayer's hematoxylin | Histolab | 1820 | Non-toxic staining solution without chloral hydrate, but causes serious eye irritation. |
Mayo scissors (17 cm, straight) | World Precision Instruments | 501751-G | For general dissection. |
Micro Castroviejo needle holder (9 cm, straight) | World Precision Instruments | 503376 | For pinning of aortic arches. |
Microcentrifuge tubes | Corning | MCT-175-C | Polypropylene microtubes with snaplock cap. |
Microlance 3 needles, 23 gauge | BD | 300800 | For blood collection. |
Microlance 3 needles, 27 gauge | BD | 302200 | For perfusion of mice. |
Microvette 500 µL, K3 EDTA | Sarstedt | 20.1341.100 | For blood collection. |
Microvette 500 µL, Lithium Heparin | Sarstedt | 20.1345.100 | For blood collection. |
Minutien insect pins, 0.10 mm | Fine Science Tools | 26002-10 | For pinning of aortic arches. |
Oil Red O | Sigma-Aldrich | O0625 | Not classified as a hazardous substance or mixture. |
Optimum cutting temperature (OCT) cryomount | Histolab | 45830 | For embedding tissue. |
Parafilm M | Bemis | PM992 | Paraffin wax film used to create pinning beds for aortic arches. |
Petri dishes (100 mm x 20 mm) | Any cell culture supplier | - | Proposed as a storage container for pinned aortas. |
Phosphate buffered saline (PBS) | - | - | Sterile and RNase-free solution is required for perfusion of mice. |
Qualitative filter paper (grade 1001) | Munktell | 120006 | For filtering Oil Red O working solution (typical retention 2-3 µm). |
RNAlater RNA stabilization reagent | Qiagen | 76106 | For stabilization of RNA in tissue samples |
RNaseZap RNase Decontamination Solution | Invitrogen | AM9780 | A surface decontamination solution that destroys RNases on contact. |
Scalpel handle #3 (13 cm) | World Precision Instruments | 500236 | For cutting hearts in the preparation to cryomount aortic roots. |
Standard scalpel blade #10 | World Precision Instruments | 500239 | For cutting hearts in the preparation to cryomount aortic roots. |
Stereomicroscope | Leica Microsystems | MZ6 | For dissection and en face documentation |
Sudan IV | Sigma-Aldrich | S4261 | Not classified as a hazardous substance or mixture. |
Superfrost Plus microscope slides | Thermo Scientific | J1800AMNZ | To collect aortic root sections. |
Tissue forceps (15 cm) | World Precision Instruments | 501741-G | For general dissection. |
Tissue-Tek cryomolds (10 mm x 10 mm x 5 mm) | Sakura | 4565 | For embedding aortic roots in OCT. |
Vannas scissors (8 cm, straight) | World Precision Instruments | 503378 | For microdissection of aorta. |
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