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* These authors contributed equally
Le protocole présente la transcription in vitro (IVT) d’ARNm chimiquement modifié, la préparation de liposomes cationiques et l’analyse fonctionnelle des transfections d’ARNm activées par les liposomes dans des cellules de mammifères.
Au cours des dernières années, l’ARN messager chimiquement modifié (ARNm) est apparu comme une puissante molécule d’acide nucléique pour le développement d’un large éventail d’applications thérapeutiques, y compris une nouvelle classe de vaccins, des thérapies de remplacement des protéines et des thérapies immunitaires. Parmi les vecteurs d’administration, les nanoparticules lipidiques se sont avérées plus sûres et plus efficaces pour délivrer des molécules d’ARN (par exemple, siRNA, miARN, mRNA) et quelques produits sont déjà utilisés en clinique. Pour démontrer l’administration d’ARNm médiée par des nanoparticules lipidiques, nous présentons un protocole optimisé pour la synthèse d’ARNm eGFP fonctionnels modifiés par me1Ψ-UTP, la préparation de liposomes cationiques, la formation de complexes électrostatiques d’ARNm avec des liposomes cationiques et l’évaluation de l’efficacité de la transfection dans les cellules de mammifères. Les résultats démontrent que ces modifications améliorent efficacement la stabilité de l’ARNm lorsqu’il est administré avec des liposomes cationiques et augmentent l’efficacité et la stabilité de la traduction de l’ARNm eGFP dans les cellules de mammifères. Ce protocole peut être utilisé pour synthétiser l’ARNm souhaité et le transfecter avec des liposomes cationiques pour l’expression des gènes cibles dans les cellules de mammifères.
En tant que molécule thérapeutique, l’ARNm offre plusieurs avantages en raison de sa nature non intégrative et de sa capacité à transfecter des cellules non mitotiques par rapport à l’ADN plasmidique (ADNp)1. Bien que l’administration d’ARNm ait été démontrée au début des années 1990, les applications thérapeutiques étaient limitées en raison de son manque de stabilité, de son manque d’activation immunitaire et de sa faible efficacité translationnelle2. Des modifications chimiques récemment identifiées, telles que la pseudouridine 5'-triphosphate (Ψ-UTP) et la méthyl pseudouridine 5'-tri....
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1. Production d’ARNm modifié par me1 Ψ-UTP
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Nous avons optimisé le protocole pour les expériences de production d’ARNm modifiés, de préparation de liposomes et de transfection d’ARNm avec des liposomes cationiques dans plusieurs cellules de mammifères (Figure 1). Pour synthétiser l’ARNm, la matrice eGFP IVT optimisée par le codon de mammifère a été amplifiée à partir du vecteur d’expression de mammifère mEGFP-N1 et purifiée par la méthode d’extraction organique/précipitation .......
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Les applications thérapeutiques des ARNm non modifiés ont été limitées en raison de leur demi-vie plus courte et de leur capacité à activer les réponses immunitaires innées intracellulaires, ce qui entraîne à son tour une faible expression des protéines dans les cellules transfectées11. Katalin et al. ont démontré qu’un ARN contenant des nucléosides modifiés tels que m5C, m6A, ΨU et me1Ψ-UTP pouvait empêcher l’activation de TLR
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Aucune divulgation
Le MS remercie le Département de biotechnologie de l’Inde pour son soutien financier (BT/PR25841/GET/119/162/2017), le Dr Alok Srivastava, Chef du CSCR de Vellore, pour son soutien et le Dr Sandhya, des plateformes du CSCR pour l’imagerie et les expériences FACS. Nous remercions R. Harikrishna Reddy et Rajkumar Banerjee, Division de Biologie Appliquée, CSIR-Institut Indien de Technologie Chimique Uppal Road, Tarnaka, Hyderabad, 500 007, TS, Inde, pour leur aide dans l’analyse des données physico-chimiques des liposomes. Vigneshwaran V, et Joshua A, CSCR pour leur aide dans la réalisation de vidéos.
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| Name | Company | Catalog Number | Comments |
|---|---|---|---|
| Agarose | Lonza | 50004 | |
| Bath sonicator | DNMANM Industries | USC-100 | |
| Cationic lipid | Synthesized in the lab | ||
| Chlorofrom | MP biomedicals | 67-66-3 | "Caution" |
| Cholesterol | Himedia | GRM335 | |
| DEPC water | SRL BioLit | 66886 | |
| DMEM | Lonza | 12-604F | |
| DNA Ladder | GeneDireX | DM010-R50C | |
| DOPE | TCI | D4251 | |
| EDTA sodium salt | MP biomedicals | 194822 | |
| Ethanol | Hayman | F204325 | "Caution" |
| Fetal bovine serum | Gibco | 10270 | |
| Flow cytometry | BD | FACS Celesta | |
| Fluroscence Microscope | Leica | MI6000B | |
| Gel documentation system | Cell Biosciences | Flurochem E | |
| Glacial acetic acid | Fisher Scientific | 85801 | "Caution" |
| mEGFP-N1, Mammalian expression vector | Addgene | 54767 | |
| N1-Methylpseudo-UTP | Jena Bioscience | NU-890 | |
| Phenol:chloroform:isoamyl alchol (25:24:1), pH 8.0 | SRL BioLit | 136112-00-0 | "Caution" |
| Phosphate Buffer Saline (PBS), pH 7.4 | CellClone | CC3041 | |
| Probe sonicator | Sonics Vibra Cells | VCX130 | |
| RNA ladder | NEB | N0362S | |
| RNase inhibitor | Thermo Scientific | N8080119 | |
| SafeView dye | abm | G108 | |
| Sodium acetate | Sigma | S7545 | |
| Thermocycler | Applied biosystems | 4375786 | |
| Thermomixer | Eppendrof | 22331 | |
| Tris buffer | SRL BioLit | 71033 | |
| Trypsin | Gibco | 25200056 |
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