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Ce protocole décrit une méthode pour effectuer des fractures sur des souris adultes et surveiller le processus de guérison.
La réparation des fractures est une fonction essentielle du squelette qui ne peut pas être modélisée de manière fiable in vitro. Un modèle de blessure chez la souris est une approche efficace pour tester si un gène, un produit génétique ou un médicament influence la réparation osseuse, car les os murins récapitulent les étapes observées lors de la guérison des fractures humaines. Lorsqu’une souris ou un humain casse un os, une réponse inflammatoire est déclenchée et le périoste, une niche de cellules souches entourant l’os lui-même, est activé et se dilate. Les cellules résidant dans le périoste se différencient alors pour former un callosité molle vascularisée. La transition du callosité molle à un callosité dure se produit lorsque les cellules progénitrices squelettiques recrutées se différencient en cellules minéralisantes, et le pontage des extrémités fracturées entraîne l’union osseuse. Le cal minéralisé subit ensuite un remodelage pour restaurer la forme et la structure d’origine de l’os guéri. La guérison des fractures a été étudiée chez la souris à l’aide de divers modèles de blessures. Pourtant, la meilleure façon de récapituler l’ensemble de ce processus biologique est de percer la section transversale d’un os long qui englobe les deux cortex. Ce protocole décrit comment une fracture transversale du fémur stabilisée peut être réalisée en toute sécurité pour évaluer la guérison chez les souris adultes. Un protocole chirurgical comprenant des techniques détaillées de prélèvement et d’imagerie pour caractériser les différentes étapes de la cicatrisation des fractures est également fourni.
Les fractures, ruptures dans la continuité de la surface osseuse, se produisent dans tous les segments de la population. Ils deviennent graves chez les personnes dont les os sont fragiles en raison du vieillissement ou d’une maladie, et les coûts des soins de santé liés aux fractures de fragilité devraient dépasser 25 milliards de dollars dans 5 ans 1,2,3,4,5. Comprendre les mécanismes biologiques impliqués dans la réparation des fractures serait un point de départ dans le développement de nouvelles thérapi....
Toutes les expériences sur les animaux décrites ont été approuvées par l’Institutional Animal Care and Use Committee du Harvard Medical Area. Des souris C57BL/6J âgées de 12 semaines (mâles et femelles) ont été utilisées dans ce protocole. Les souris mâles et femelles C57BL/6J atteignent une masse osseuse maximale vers l’âge de 12 semaines avec des fémurs suffisamment larges pour s’adapter à une broche stabilisatrice, ce qui en fait une souche appropriée à utiliser pour ce protocole15.
1. Préparation à la chirurgie
Chez les souris C57BL / 6J, une chirurgie réussie complète les étapes de guérison mentionnées précédemment avec peu ou pas de réponse inflammatoire locale ou d’implication périostéale dans le fémur controlatéral opéré par simulacre. Un hématome se forme quelques heures après la chirurgie et le périoste est activé pour recruter des progéniteurs squelettiques pour la chondrogenèse. Diverses populations cellulaires, telles que les progéniteurs mésenchymateux Prx1+ , peuvent être tracées .......
Le modèle de blessure détaillé dans ce protocole englobe les quatre étapes significatives observées lors de la guérison des fractures spontanées, y compris (1) la réponse pro-inflammatoire avec la formation de l’hématome, (2) le recrutement de progéniteurs squelettiques du périoste pour former le callosité molle, (3) la minéralisation du callosité par les ostéoblastes et (4) le remodelage de l’os par les ostéoclastes.
L’intervention chirurgicale décrite dans ce manuscrit.......
Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.
Nous remercions la Dre Vicki Rosen pour son soutien financier et ses conseils dans le cadre du projet. Nous tenons également à remercier le personnel vétérinaire et IACUC de la Harvard School of Medicine pour leurs consultations concernant la technique stérile, le bien-être des animaux et les matériaux utilisés pour développer ce protocole.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
23 G x 1 TW IM (0.6 mm x 2 5mm) needle | BD precision | 305193 | Use as guide needle |
27 G x 1 ¼ (0.4 mm x 30 mm) | BD precision | 305136 | Use as stabilizing pin |
9 mm wound autoclip applier/remover/clips kit | Braintree Scientific, INC | ACS-KIT | |
Alcian Blue 8 GX | Electron Microscopy Sciences | 10350 | |
Ammonium hydroxide | Millipore Sigma | AX1303 | |
Circular blade X926.7 THIN-FLEX | Abrasive technologies | CELBTFSG633 | |
DREMEL 7700-1/15, 7.2 V Rotary Tool Kit | Dremel | 7700 1/15 | |
Eosin Y | ThermoScientific | 7111 | |
Fine curved dissecting forceps | VWR | 82027-406 | |
Hematoxulin Gill 2 | Sigma-Aldrich | GHS216 | |
Hydrochloric acid | Millipore Sigma | HX0603-4 | |
Isoflurane | Patterson Veterinary | 07-893-1389 | |
Microsurgical kit | VWR | 95042-540 | |
Orange G | Sigma-Aldrich | 1625 | |
Phloxine B | Sigma-Aldrich | P4030 | |
Povidone-Iodine Swabs | PDI | S23125 | |
SCANCO Medical µCT35 | Scanco | ||
Slow-release buprenorphine | Zoopharm |
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