Une approche expérimentale pour étudier les effets de la lumière artificielle la nuit sur les animaux en liberté: mise en œuvre, résultats et orientations pour la recherche future

Résumé

La lumière artificielle la nuit (ALAN) a des effets biologiques de grande portée. Cet article décrit un système de manipulation d’ALAN à l’intérieur des nichoirs tout en surveillant le comportement, composé de lumières LED couplées à une batterie, une minuterie et une caméra vidéo infrarouge compatible audio. Les chercheurs pourraient utiliser ce système pour explorer de nombreuses questions en suspens concernant les effets de l’ALAN sur les organismes.

Résumé

Les animaux ont évolué avec des motifs naturels de lumière et d’obscurité. Cependant, la lumière artificielle est de plus en plus introduite dans l’environnement à partir des infrastructures humaines et des activités récréatives. La lumière artificielle la nuit (ALAN) a le potentiel d’avoir des effets généralisés sur le comportement, la physiologie et la forme physique des animaux, ce qui peut se traduire par des effets à plus grande échelle sur les populations et les communautés. Comprendre les effets de l’ALAN sur les animaux en liberté n’est pas trivial en raison de défis tels que la mesure des niveaux de lumière rencontrés par les organismes mobiles et la séparation des effets de l’ALAN de ceux d’autres facteurs de perturbation anthropique. Nous décrivons ici une approche qui nous permet d’isoler les effets de l’exposition à la lumière artificielle sur des animaux individuels en manipulant expérimentalement les niveaux de lumière à l’intérieur des nichoirs. À cette fin, un système peut être utilisé composé de diodes électroluminescentes (LED) collées à une plaque et connectées à un système de batterie et de minuterie. La configuration permet d’exposer les individus à l’intérieur des nichoirs à des intensités et des durées variables d’ALAN tout en obtenant simultanément des enregistrements vidéo, qui incluent également l’audio. Le système a été utilisé dans des études sur les mésanges en liberté (Parus major) et les mésanges bleues (Cyanistes caeruleus) pour mieux comprendre comment ALAN affecte les habitudes de sommeil et d’activité chez les adultes et la physiologie et la dynamique des télomères dans le développement des oisillons. Le système, ou une adaptation de celui-ci, pourrait être utilisé pour répondre à de nombreuses autres questions de recherche intrigantes, telles que la façon dont ALAN interagit avec d’autres facteurs de perturbation et affecte l’équilibre bioénergétique. En outre, des systèmes similaires pourraient être installés dans ou près des nichoirs, des nids ou des terriers d’une variété d’espèces pour manipuler les niveaux d’ALAN, évaluer les réponses biologiques et travailler à la construction d’une perspective interspécifique. Surtout lorsqu’elle est combinée à d’autres approches avancées pour surveiller le comportement et le mouvement des animaux en liberté, cette approche promet d’apporter des contributions continues à notre compréhension des implications biologiques de l’ALAN.

Introduction

Les animaux ont évolué avec les motifs naturels de lumière et d’obscurité qui définissent le jour et la nuit. Ainsi, les rythmes circadiens dans les systèmes hormonaux orchestrent les schémas de repos et d’activité et permettent aux animaux de maximiser leur condition physique ^1,2,3. Par exemple, le rythme circadien dans les hormones glucocorticoïdes, avec un pic au début de l’activité quotidienne, incite les vertébrés à se comporter de manière appropriée tout au long de la période de 24 heures via des effets sur le métabolisme du glucose et la réactivité aux facteurs de stress^{environnementaux 4}. De même, l’hormone pinéale mélatonine, qui est libérée en réponse à l’obscurité, est intégralement impliquée dans la gouvernance des modèles de rythmicité circadienne et a également des propriétés antioxydantes ^5,6. L’entraînement de nombreux aspects de la rythmicité circadienne, tels que la libération de mélatonine, est affecté par la photoréception des niveaux de lumière dans l’environnement. Ainsi, l’introduction de lumière artificielle dans l’environnement pour soutenir l’activité humaine, les loisirs et les infrastructures a le potentiel d’avoir des effets de grande portée sur le comportement, la physiologie et la condition physique des animaux en liberté ^7,8. En effet, divers effets de l’exposition à la lumière artificielle la nuit (ALAN) ont été documentés ^9,10, et ALAN a été mis en évidence comme une priorité pour la recherche sur le changement global au^21ème siècle¹⁰.

Mesurer les effets de l’ALAN sur les animaux en liberté pose des défis non triviaux pour un certain nombre de raisons. Tout d’abord, les animaux mobiles se déplaçant dans l’environnement subissent constamment différents niveaux de lumière. Ainsi, comment quantifier le niveau de lumière auquel les animaux individuels sont exposés? Même si les niveaux de lumière sur le territoire de l’animal peuvent être quantifiés, l’animal peut employer des stratégies d’évitement qui affectent les modèles d’exposition, exigeant ainsi un suivi simultané de l’emplacement de l’animal et des niveaux de lumière. En effet, dans la plupart des études sur le terrain, la moyenne et la variation des niveaux d’exposition à la lumière sont inconnues¹¹. Deuxièmement, l’exposition à l’ALAN est souvent corrélée à l’exposition à d’autres facteurs de perturbation anthropique, tels que la pollution sonore, l’exposition chimique et la dégradation de l’habitat. Par exemple, les animaux occupant des habitats le long des bords des routes seront exposés à la lumière des lampadaires, au bruit de la circulation automobile et à la pollution atmosphérique due aux émissions des véhicules. Comment alors isoler efficacement les effets de l’ALAN des effets des variables confondantes ? Des expériences rigoureuses sur le terrain qui permettent de bien mesurer les niveaux d’exposition à la lumière et les variables de réponse sont essentielles pour évaluer la gravité des effets biologiques de l’ALAN et pour élaborer des stratégies d’atténuation efficaces¹¹.

Cet article décrit une approche expérimentale qui, bien que non sans limites (voir la section de discussion), aide à apaiser, sinon à éliminer les difficultés identifiées ci-dessus. L’approche consiste à manipuler expérimentalement les niveaux d’ALAN à l’intérieur des nichoirs d’une espèce d’oiseau diurne vivant librement, la mésange charbonnière (Parus major), à l’aide d’un système de lumières à diodes électroluminescentes (LED) et d’une caméra infrarouge (IR) installée dans les nichoirs. La configuration permet l’acquisition simultanée d’enregistrements vidéo, y compris audio, ce qui permet aux chercheurs d’évaluer les effets sur les comportements et les vocalisations. Les mésanges utilisent des nichoirs pour la reproduction et dorment dans les nichoirs entre novembre et mars. Les femelles dorment également à l’intérieur des nichoirs pendant la saison^{de reproduction 12}. Le système a également été utilisé dans une moindre mesure pour étudier les effets de l’ALAN sur les mésanges bleues (Cyanistes caeruleus). La première difficulté, consistant à connaître les niveaux de lumière rencontrés par l’animal, est atténuée en ce que, étant donné qu’un individu est prêt à entrer dans le nichoir (ou se trouve déjà dans le nichoir dans le cas d’oisillons immobiles), les niveaux de lumière peuvent être déterminés avec précision par le chercheur. La deuxième difficulté, impliquant des corrélations avec des variables confondantes, peut être contrôlée en utilisant des nichoirs dans des environnements similaires et/ou en mesurant les niveaux de variables confondantes près des nichoirs. De plus, chez les oiseaux nichant dans des cavités, l’adoption d’une approche expérimentale est puissante parce que les nichoirs ou les cavités naturelles peuvent protéger les oisillons et les adultes de l’ALAN^{13, ce} qui peut expliquer pourquoi certaines études corrélatives trouvent peu d’effet de l’ALAN (ou du bruit anthropique)¹⁴, alors que les études expérimentales trouvent plus souvent des effets clairs (voir ci-dessous). En outre, un plan expérimental de mesures répétées peut être adopté dans lequel les individus servent de leur propre contrôle, ce qui augmente encore la puissance statistique et la probabilité de détecter des effets biologiques significatifs. Les sections ci-dessous : (1) expliquer les détails de la conception et de la mise en œuvre du système, (2) résumer les résultats importants qui ont été obtenus jusqu’à présent à l’aide du système, et (3) proposer des orientations de recherche futures qui pourraient être poursuivies, tant chez les mésanges que chez d’autres animaux.

Protocole

Toutes les applications de ce système à l’expérimentation animale ont été approuvées par le comité d’éthique de l’Université d’Anvers et menées conformément aux lois belges et flamandes. La méthodologie a respecté les directives ASAB / ABS pour l’utilisation des animaux dans la recherche comportementale. L’Institut royal des sciences naturelles de Belgique (Koninklijk Belgisch Instituut voor Natuurwetenschappen; KBIN) a fourni des licences à tous les chercheurs et au personnel.

1. Création du système expérimental

1. Obtenez des LED à large spectre à utiliser dans la création d’ALAN. Prenez la ou les lumières LED d’un phare à LED. Utilisez une seule lumière LED ou plusieurs (p. ex., 4) lumières DEL à large spectre pour un éclairage plus diffus (Figure 1).
   REMARQUE: À titre de modification, des LED ayant des propriétés spectrales différentes (par exemple, rouge ou bleu) pourraient être utilisées, mais devraient être obtenues à partir d’une source différente (voir le matériel supplémentaire de Grunst et al. 2019¹⁵ pour les propriétés spectrales des LED utilisées dans des études antérieures utilisant ce système).
2. Concevez un système pour monter les LED avec une caméra IR pour permettre la surveillance comportementale. Les chercheurs peuvent atteindre cet objectif de plusieurs façons.
   1. Option 1. Insérez une seule LED à large spectre dans le nichoir séparément dans un tube en plastique adjacent à une caméra infrarouge montée avec de l’adhésif sur une plaque en plastique ou en métal qui s’insère dans le nichoir (Figure 1A, B).
   2. Option 2. Montez une caméra IR en position centrale sur une plaque en plastique ou en métal, puis montez des lumières LED dans des positions fixes sur la plaque entourant la caméra IR (Fig. 1C).
3. Concevez un moyen de connecter le système à une source d’alimentation (batterie) et à une minuterie.
   1. Utilisez un couteau ou une perceuse pour fabriquer des bosquets sur le côté du nichoir à travers lesquels les connecteurs de fil peuvent s’étendre pour connecter le système à une batterie Fe (12 V; 120 Wh) et à une minuterie maison (12 V).
   2. Concevez un enclos en bois vert foncé qui correspond à la couleur, à la longueur et à la largeur du nichoir (p. ex., les nichoirs utilisés dans les études antérieures avaient les dimensions suivantes : 120 mm x 155 mm x 250 mm), et avec une ouverture latérale via une charnière pour loger la batterie, l’enregistreur pour la vidéo et le système de minuterie pour les LED (Figure 2; Figure supplémentaire 1 et figure supplémentaire 2).
4. Concevez un moyen d’ajuster l’intensité ALAN.
   1. Procurez-vous une résistance (valeur dépendante de la tension et de l’éclairage de la batterie) et connectez-la en série avec la ou les LED.
5. Concevez des boîtes « factices » avec les mêmes dimensions que les boîtiers qui abritent la minuterie et la batterie pour les habituer aux oiseaux au système (c.-à-d. comme à la figure 2A, mais sans l’électronique interne).
   REMARQUE : Les sections 2 et 3 traitent des méthodes étape par étape utilisées pour étudier les effets de l’ALAN sur l’organisme focal.

Figure 1 : Deux systèmes composés de caméras infrarouges et de lumières LED utilisées pour manipuler ALAN à l’intérieur des nichoirs. (A) Vue de dessus du nichoir avec plaque maintenant l’ancien système en place. (B) Système plus ancien avec 1 LED à large spectre pour manipuler ALAN et caméra centrale avec 10 LED IR (c) Système plus récent avec 4 LED à large spectre et caméra IR centrale avec 4 LED IR. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

Figure 2 : Batterie et minuterie maison utilisées pour manipuler le comportement de l’ALAN et de l’enregistrement vidéo. (A) L’unité est enfermée dans une boîte en bois montée sur le dessus du nichoir. (B) Vue de l’électronique à l’intérieur de l’unité. Les connecteurs s’étendent de l’intérieur du nichoir jusqu’au boîtier en bois pour connecter l’électronique à la caméra IR et aux LED à large spectre. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.

2. Planification de l’expérience et ajustement de l’intensité et du timing alan

1. Déterminez l’intensité lumineuse souhaitée à laquelle exposer les animaux.
   1. Examinez attentivement l’intensité lumineuse expérimentale à utiliser afin de produire des résultats significatifs qui répondent à la question de recherche. En général, cela signifie qu’il faudra choisir une intensité lumineuse écologiquement pertinente, que les animaux en liberté sont susceptibles de rencontrer (voir le tableau 1 pour plus d’informations).
2. Ajuster les lumières LED à l’intensité lumineuse souhaitée (par exemple, 1-3 lux, comme utilisé dans des études antérieures; Tableau 1 et tableau 2).
   1. Avant de le placer sur le terrain, placez le système sur un nichoir pris en laboratoire pour calibrer l’intensité lumineuse. Connectez les voyants à la source d’alimentation, comme décrit plus en détail ci-dessous (section 3 du protocole).
   2. Ajustez la lumière émise par les LED à l’intensité souhaitée (lux) en plaçant un photomètre au niveau de l’oiseau dans le nichoir (~8 cm du bas) et en ajustant simultanément la résistance en série avec les LED.
      REMARQUE: Il est possible d’obtenir de très faibles intensités lumineuses (par exemple, des niveaux de lueur du ciel rural; 0,01 lux).
3. Déterminez la période pendant laquelle exposer les animaux à l’ALAN.
   1. Déterminez la durée et le moment de l’exposition tout au long de la nuit. Par exemple, on peut exposer les animaux à l’ALAN pendant toute la nuit, pendant une partie seulement de la nuit, ou laisser une période d’obscurité au milieu de la nuit pour réduire le degré de perturbation.
   2. Dans les cas où un animal doit entrer dans le nichoir (ou une zone spécifique) pour être exposé à l’ALAN, déterminez également si la lumière doit être allumée avant ou après que l’événement d’entrée soit susceptible de se produire.
4. Réglez la minuterie pour contrôler la période d’exposition à la lumière pendant la nuit.
   1. Réglez la minuterie connectée aux LED à large spectre de sorte que la lumière s’allume et s’éteigne à des périodes spécifiées (par exemple, allumée au moins 2 h avant le coucher du soleil; éteinte 2 h après le lever du soleil).
      REMARQUE: La caméra IR permet d’enregistrer simultanément le comportement de l’animal pendant toute la durée de l’exposition à la lumière et sera allumé tant qu’il est connecté à une batterie chargée.
5. Déterminer la conception expérimentale appropriée à utiliser pour la ou les questions de recherche cibles.
   REMARQUE: Pour certaines questions, une conception expérimentale de mesures répétées sera l’option la plus puissante (par exemple, Comment l’exposition à ALAN affecte-t-elle le comportement de sommeil?). Pour d’autres, des groupes témoins et expérimentaux appariés seront nécessaires (p. ex., Comment l’exposition à l’ALAN affecte-t-elle la perte de télomères chez les oisillons en développement?).

Source/niveau d’exposition	Intensité (lux)
Plein soleil	103000
Plein clair de lune	0.05–1
Ciel urbain briller	0.2–0.5
Exposition des merles européens vivant en liberté	0.2 (0.07–2.2)
Études expérimentales antérieures utilisant le système	1–3
Lampadaires LED	~10
Lampadaires au sodium basse pression	~10
Sodium haute pression	~10
Éclairage fluorescent	300
Halogénure métallique	400–2000

Tableau 1 : Intensités lumineuses caractéristiques dans l’environnement ^3,9, niveaux d’exposition des oiseaux en liberté⁴¹ et intensités utilisées dans des études antérieures utilisant ce système (références dans le tableau 2).

3. Mise en œuvre de l’exposition à ALAN

1. Habituer les animaux à la configuration expérimentale.
   1. Si possible dans le cadre de l’expérience, habituer les animaux à la configuration en plaçant des boîtes factices sur le dessus des nichoirs au moins 1 jour avant l’expérience afin de minimiser les effets de l’aversion à la nouveauté.
2. Enquêtez sur les personnes focales.
   1. Adapter les animaux de la population étudiée avec des étiquettes de transpondeur intégratif passif (PIT) pour permettre l’identification dans les nichoirs sans déranger les oiseaux.
   2. Dans les expériences impliquant l’effet de l’ALAN sur le comportement de sommeil, visitez les nichoirs la nuit précédant l’expérience et scannez les boîtes avec un lecteur d’identification par radiofréquence (RFID) pour déterminer quels oiseaux se reposent à l’intérieur.
   3. Dans les expériences menées pendant la saison de reproduction impliquant l’exposition d’oisillons en développement à l’ALAN, surveillez systématiquement (par exemple, tous les deux jours) les nichoirs et vérifiez le contenu des nids et l’identité des adultes. Sélectionnez soigneusement les nichoirs contenant des couvées présentant certaines caractéristiques (c.-à-d. la taille modale de la couvée, les deux parents présents et l’alimentation) à utiliser dans l’expérience.
3. Sélectionnez et implémentez l’expérience.
   1. Pour les expériences impliquant un comportement de sommeil, mettre en œuvre une conception de mesures répétées en enregistrant d’abord les personnes dormant dans des conditions d’obscurité pendant au moins une nuit pour enregistrer un sommeil non perturbé en l’absence d’ALAN (traitement de contrôle) en suivant les étapes 3.3.2-3.3.21.
   2. À cette fin, assurez-vous de synchroniser l’heure sur les caméras IR avec l’heure locale avant de les emmener sur le terrain.
   3. Insérez une carte SD dans l’emplacement SD du mini enregistreur DVR adjacent à la batterie (Figure 2B ; Figure supplémentaire 2). Vérifiez que la carte SD est vide et, dans le cas contraire, effacez les données qu’elle contient.
   4. Au moins 2 heures avant le début de l’obscurité, retirez le nichoir factice du dessus du nichoir.
   5. Ouvrez le couvercle du nichoir.
   6. Placez la plaque contenant la caméra IR à l’intérieur du nichoir avec l’objectif de la caméra orienté vers le bas.
   7. Étendez les connecteurs électroniques hors du bosquet dans le nichoir.
   8. Fermez le couvercle du nichoir.
   9. Placez le boîtier contenant la batterie, l’enregistreur et la minuterie sur le dessus du nichoir.
   10. Connectez les connecteurs d’alimentation de la batterie. Connectez le connecteur rouge de l’enregistreur au connecteur blanc de l’appareil photo (audio), le connecteur jaune de l’enregistreur au connecteur jaune de l’appareil photo (vidéo) et le connecteur noir de la batterie au connecteur rouge de l’appareil photo (alimentation) (Figure supplémentaire 1 et Figure supplémentaire 2).
   11. Appuyez sur le bouton d’enregistrement pour lancer l’enregistrement de la caméra.
       REMARQUE: La minuterie ne sera pas réglée et / ou l’alimentation ne sera pas connectée à la minuterie contrôlant les LED, de sorte qu’aucun ALAN ne sera produit les nuits de contrôle.
   12. Vérifiez avec un petit écran tft pour vous assurer que l’enregistrement a commencé et que l’image est correcte. Un port pour connecter l’écran tft se trouve sous l’enregistreur (Figure supplémentaire 2).
   13. Environ 1 h après la tombée de la nuit, retournez au nichoir et vérifiez l’identité de l’oiseau qui dort à l’intérieur en déplaçant un lecteur de transpondeur RFID autour du fond et des côtés du nichoir et en enregistrant le numéro d’identification unique communiqué par l’étiquette PIT.
   14. Le matin suivant l’enregistrement de contrôle, au moins 2 h après le lever du soleil, retournez au nichoir et récupérez le système de batterie et la caméra IR.
   15. Encore une fois, placez un bidon factice sur le dessus du nichoir.
   16. Dans le laboratoire ou le bureau, chargez la batterie et retirez et téléchargez la carte SD de l’enregistreur pour collecter les données comportementales.
       REMARQUE: Les batteries ont une durée de vie d’environ 30 h par temps froid pour permettre l’enregistrement pendant toute la nuit, mais doivent être complètement rechargées entre des nuits consécutives d’enregistrement.
   17. Après avoir téléchargé les données avec succès, effacez les données de la carte SD, puis réinsérez-les dans le mini enregistreur DVR.
   18. La nuit suivante, mettre en œuvre le traitement d’exposition à la lumière (p. ex., 1 à 3 lux, tel qu’utilisé dans les expériences antérieures utilisant le système; Tableau 1 et tableau 2).
   19. Réglez le système de minuterie pour la période d’exposition à la lumière souhaitée.
   20. Suivez les mêmes étapes (3.3.2-3.3.17) décrites ci-dessus pour l’enregistrement de la commande, mais connectez également la minuterie à l’alimentation et les voyants à la minuterie (Figure supplémentaire 1 et Figure supplémentaire 2).
   21. Si vous le souhaitez, répétez l’enregistrement de contrôle (du comportement de sommeil dans des conditions d’obscurité, c’est-à-dire l’absence d’ALAN) la troisième nuit.
   22. Pour les expériences impliquant l’exposition d’oisillons à l’ALAN, utilisez des couvées témoins et expérimentales comme décrit aux étapes 3.3.23 à 3.3.25.
   23. Placez des boîtes factices (dépourvues d’électronique) sur les nichoirs des couvées de contrôle et manipulez les oisillons de contrôle et expérimentaux de manière équivalente.
   24. Mettre en œuvre l’exposition expérimentale ALAN pour les boîtes expérimentales. Pendant la période expérimentale, montez le système LED et la caméra IR dans le nichoir, comme décrit ci-dessus, et réglez la minuterie pour contrôler la période d’exposition à la lumière souhaitée.
   25. Rechargez les batteries. Pour les expériences impliquant plusieurs nuits d’exposition à la lumière et d’enregistrement vidéo, collectez les systèmes chaque matin pour recharger les batteries pendant la journée, puis remplacez le système le soir.
4. Recueillir des données sur la ou les variables de réponse qui vous intéressent.
   1. Si le comportement à l’intérieur du nichoir est la variable d’intérêt, la caméra IR permettra de documenter simultanément le comportement (par exemple, le comportement de sommeil; Graphique 3).
   2. Recueillir toute autre donnée d’intérêt au moyen de méthodes de surveillance supplémentaires, l’échantillonnage ayant lieu à des moments variables dans le temps (p. ex., échantillons de sang prélevés avant et après l’exposition à la lumière¹⁵).

Figure 3 : Image infrarouge d’une mésange charbonnière à l’intérieur d’un nichoir exposé à ALAN. (A) Sommeil et (B) Alerte de mésange charbonnière Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.

Résultats

Les articles de recherche évalués par des pairs publiés à l’aide de ce système sont résumés dans le tableau 2. Plusieurs autres manuscrits sont en cours. Ces études portent sur trois grandes séries de questions de recherche. Tout d’abord, le système a été utilisé pour étudier les effets de l’exposition à la lumière sur le comportement de sommeil et les niveaux d’activité chez les adultes. À cette fin, un plan expérimental de mesures répétées a été utilisé, dans lequel le ...

Discussion

Ce système de nichoirs à LED et une caméra infrarouge jumelée a permis aux chercheurs d’évaluer une série de questions intrigantes concernant les effets biologiques de l’ALAN. De plus, il y a beaucoup plus d’orientations de recherche qui peuvent être poursuivies avec le système. De plus, l’élargissement de l’utilisation du système à d’autres espèces pourrait aider à mieux comprendre les différences interspécifiques de sensibilité à l’ALAN. Ci-dessous, quelques possibilités non exhaustives ...

matériels

Name	Company	Catalog Number	Comments
Broad spectrum; 15 mm x 5 mm; LED headlight	RANEX; Gilze; Nederlands	6000.217	A similar model could also be used
Battery	BYD	R1210A-C	Fe-battery 12 V 120 Wh ( lithium iron phosphate battery)
Dark green paint			Optional. To color nest boxes/electronic enclosures
Electrical tape			For electronics
Homemade timer system	Amazon	YP109A 12V	A similar model could also be used
Infrared camera	Koberts-Goods, Melsungen, DE	205-IR-L	Mini camera; a similar model could also be used
Light level meter	ISO-Tech ILM; Corby; UK	1335	To calibrate light intensity
Mini DVR video recorder	Pakatak, Essex, UK	MD-101	Surveillance DVR Recorder Mini SD Car DVR with 32 GB
Passive integrated transponder (PIT) tags	Eccel Technology Ltd, Aylesbury, UK	EM4102	125 Kh; Provides unique electronic ID
Radio frequency identification (RFID) Reader	Trovan, Aalten, Netherlands	GR-250	To scan PIT tags and determine bird identity
Resistor	RS Components		Value depending on voltage battery and illumination
SD card	SanDisk		64 GB or larger
SongMeter	Wildlife Acoustics; Maynard, MA		Optional. Provides a means of monitoring vocalizations outside of nest boxes
TFT Color LED Portable Test Monitor	Walmart		Allows verification that the camera is on and recording the image correctly
Wood			To construct nest boxes/electronic encolsures