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Ce protocole décrit une procédure permettant d’isoler de petites vésicules extracellulaires des macrophages par ultracentrifugation différentielle et d’extraire le peptidome pour l’identification par spectrométrie de masse.
Les petites vésicules extracellulaires (sEV) sont généralement sécrétées par l’exocytose des corps multivésiculaires (MVB). Ces nanovésicules d’un diamètre de <200 nm sont présentes dans divers fluides corporels. Ces sEV régulent divers processus biologiques tels que la transcription et la traduction des gènes, la prolifération et la survie des cellules, l’immunité et l’inflammation par le biais de leurs cargaisons, telles que les protéines, l’ADN, l’ARN et les métabolites. À l’heure actuelle, diverses techniques ont été mises au point pour l’isolation des sEV. Parmi eux, la méthode basée sur l’ultracentrifugation est considérée comme l’étalon-or et est largement utilisée pour l’isolation des sEV. Les peptides sont naturellement des biomacromolécules de moins de 50 acides aminés de longueur. Ces peptides participent à une variété de processus biologiques ayant une activité biologique, tels que les hormones, les neurotransmetteurs et les facteurs de croissance cellulaire. Le peptidome est destiné à l’analyse systématique des peptides endogènes dans des échantillons biologiques spécifiques par chromatographie liquide-spectrométrie de masse en tandem (LC-MS/MS). Ici, nous avons introduit un protocole permettant d’isoler les sEVs par ultracentrifugation différentielle et d’extraire le peptidome pour l’identification par LC-MS/MS. Cette méthode a permis d’identifier des centaines de peptides dérivés de sEVs à partir de macrophages dérivés de la moelle osseuse.
De petites vésicules extracellulaires (sEV) d’un diamètre inférieur à 200 nm sont présentes dans presque tous les types de fluides corporels et sécrétées par toutes sortes de cellules, y compris l’urine, la sueur, les larmes, le liquide céphalo-rachidien et le liquide amniotique1. Initialement, les sEV étaient considérés comme des réceptacles pour l’élimination des déchets cellulaires, ce qui a conduit à un minimum de recherches au cours de la décennie suivante2. Récemment, de plus en plus de preuves indiquent que les sEV contiennent des protéines, des lipides, des acides nucléiques et d’autres métabolites spécifiques. C....
1. Isolement de petites vésicules extracellulaires
REMARQUE : Effectuez toute la centrifugation aux étapes 1.1 à 1.11 à 4 °C.
Pour les sEVs isolés par ultracentrifugation différentielle (Figure 1), nous avons évalué leur morphologie, leur distribution granulométrique et leurs marqueurs protéiques selon l’International Society for Extracellular Vesicules (ISEV)17.
Tout d’abord, la morphologie des sEVs a été observée par MET, montrant une structure typique en forme de coupe (Figure 2A). NTA a montré que les sEV isolés ét.......
Lors de l’étude de la fonction des sEV, il est impératif d’obtenir des sEV de haute pureté à partir d’échantillons biologiques complexes afin d’éviter toute contamination potentielle. Diverses méthodes d’isolement des sEVs ont été mises au point13 et, parmi ces méthodes, les méthodes basées sur l’ultracentrifugation différentielle ont montré une pureté relativement élevée des sEV. Dans cette étude, 200 mL de surnageant cellulaire ont été prélevés pendant 6 h, et e.......
Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.
Cette étude a été financée par des subventions de la Fondation des sciences naturelles de Chine (3157270). Nous remercions le Dr Feng Shao (Institut national des sciences biologiques, Chine) pour la mise à disposition de l’iBMDM.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
BCA Protein Assay Kit | Beyotime Technology | P0012 | |
CD9 | Beyotime Technology | AF1192 | |
Centrifugal filter tube | Millipore | UFC5010BK | |
Centrifuge bottles polypropylene | Beckman Coulter | 357003 | High-speed centrifuge |
Chemiluminescent substrate | Thermo Fisher Scientific | 34580 | |
Dithiothreitol | Solarbio | D8220 | 100 g |
DMEM culture medium | Cell World | N?A | |
GRP94 | Cell Signaling Technology | 20292 | |
High-speed centrifuge | Beckman Coulter | Avanti JXN-26 | Centrifuge rotor (JA-25.50) |
Immortalized bone marrow-derived macrophages (iBMDM) | National Institute of Biological Sciences, China | Provided by Dr. Feng Shao (National Institute of Biological Sciences, China) | |
Iodoacetamide | Sigma | l1149 | 5 g |
Microfuge tube polypropylene | Beckman Coulter | 357448 | 1.5 mL, Tabletop ultracentrifuge |
nano-high-performance LC system | Thermo Fisher Scientific | EASY-nLC 1000 | |
Nanoparticle tracking analysis | Malvern Panalytical | NanoSight LM10 | NanoSight NTA3.4 |
Orbitrap Q Exactive HF-X mass spectrometer | Thermo Fisher Scientific | N/A | |
Phosphate-buffered saline | Solarbio | P1020 | |
Polyallomer centrifuge tubes | Beckman Coulter | 326823 | Ultracentrifuge |
Protease inhibitor | Bimake | B14002 | |
SpeedVac vacuum concentrator | Eppendorf | Concentrator plus | |
Tabletop ultracentrifuge | Beckman Coulter | Optima MAX-XP | Ultracentrifuge rotor (TLA 55) |
Transmission electron microscope | HITACHI | H-7650B | |
TSG101 | Sigma | AF8258 | |
Ultracentrifuge | Beckman Coulter | Optima XPN-100 | Ultracentrifuge rotor (SW32 Ti) |
Ultrasonic cell disruptor | Scientz | SCIENTZ-IID | |
Western Blot imager | Bio-Rad | ChemiDocXRs | Image lab 4.0 (beta 7) |
β-actin | Sigma | A3853 |
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