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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Ce protocole présente une technique optimisée de perfusion hépatique de collagénase en deux étapes dans un modèle de rat et montre l’utilisation d’hépatocytes isolés pour la culture in vitro à long terme d’organoïdes 3D.

Résumé

Les hépatocytes primaires sont un outil couramment utilisé pour les études in vitro liées au foie. Cependant, l’entretien de ces cellules a toujours été un défi en raison de la perte rapide de morphologie, de viabilité et de fonctionnalité en culture. Une approche récente de la culture à long terme est la génération d’organoïdes tridimensionnels (3D), un outil in vitro qui permet de récapituler les tissus d’une boîte en fonction de la merveilleuse capacité du foie à se régénérer. Des protocoles publiés ont été conçus pour obtenir des organoïdes 3D fonctionnels à long terme à partir d’hépatocytes adultes primaires (Hep-Orgs). L’outil de pointe des organoïdes 3D nécessite la capacité d’isoler des cellules de tissus adultes, et cette étape initiale est cruciale pour un résultat final de haute qualité. La perfusion de collagénase en deux étapes, introduite dans les années 1970, est toujours une procédure valable pour obtenir des hépatocytes uniques. Le présent article vise à décrire toutes les étapes cruciales de l’intervention chirurgicale, optimisant ainsi la procédure d’isolement des hépatocytes primaires dans le modèle de rat. En outre, une attention particulière est accordée aux directives PREPARE afin d’augmenter les chances de réussite des procédures et de garantir des résultats de haute qualité. Un protocole détaillé permet aux chercheurs d’accélérer et d’optimiser le travail en aval pour établir des organoïdes 3D à partir d’hépatocytes primaires de rats adultes. Comparativement aux hépatocytes 2D, les Hep-Org étaient encore viables et en prolifération active au 15e jour, démontrant un potentiel à long terme.

Introduction

Les hépatocytes primaires sont un outil important et largement utilisé pour les études in vitro liées au foie. Cependant, leur expansion et leur entretien ont toujours été difficiles, car ils perdent leur morphologie et leur fonctionnalité après quelques jours dans la culture1. La culture 2D est une condition limitante, en particulier, pour les hépatocytes de forme polygonale et de structure polarisée avec des membranes apicales et basolatérales différenciées. En fait, l’adhésion des hépatocytes à la plaque interfère avec leur activité normale car elle conduit à un cytosquelette plat avec une interacti....

Protocole

Toutes les procédures et l’hébergement des animaux ont été effectués conformément aux directives de la loi italienne et de la directive de la Communauté européenne. Le protocole expérimental a été approuvé par le Comité local de protection des animaux et par le ministère italien de la Santé (permis n° 321/2022-PR) conformément à l’article 31 du décret 26/2014.

1. Préparation à la procédure animale

REMARQUE : Veuillez vous référer au tableau 1 pour la composition du support et du tampon et au tableau des matériaux pour les détails c....

Résultats

À la fin des procédures de mise en place (étape 6.13), nous avons obtenu un rendement cellulaire allant jusqu’à 1 x 108 cellules par isolement à partir du foie d’environ 300 g d’un rat. La viabilité cellulaire entre 78 % et 97 % a été établie par comptage au bleu de trypan.

Comme déjà décrit dans des études précédentes 1,18,19, les hép.......

Discussion

Les organoïdes 3D sont une frontière pour la médecine personnalisée et permettent une culture hépatocytaire à long terme. La qualité de cette technique innovante nécessite un bon rendement en hépatocytes primaires viables et une perfusion hépatique et une isolation des hépatocytes bien réalisées. Cette ancienne procédure est encore largement utilisée ; Cependant, il comprend différentes étapes qui peuvent être difficiles. En abordant la procédure, nous avons rencontré.......

Déclarations de divulgation

Tous les auteurs ont divulgué tout conflit d’intérêts.

Remerciements

Nous remercions le Dr Davide Selvestrel et le professeur Giovanni Sorrentino du SorrentinoLab de l’Université de Trieste de nous avoir aidés à réaliser le test de prolifération EdU. Le travail a été soutenu par une subvention ad hoc de la Banca d’Italia et des subventions internes du FIF.

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matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
A83-01- ALK5 Inhibitor IVTwin Helix T3031
B27Thermofisher Scientific0080085SA
CFX Connect Real-Time PCR Detection System  Bio-Rad
CHIR99021Twin HelixT2310
Click EdU Alexa 488 imaging kitThermofisher ScientificC10499
Collagen, Type I, solution from rat tailMerckC3867-1VL
Dexamethasone MerckD4902
EGFMerck E9644
Fetal bovine serum (FBS)EurocloneECS0180L
GELTREX LDEV FREE RGF BMEThermofisher ScientificA1413202
Heparin Sodium 25000 IU/5 mlB. Braun Melsungen AGB01AB01
HGFPeprotech 100-39H 
Insulin-Transferrin-Selenium solution 100x Thermofisher Scientific41400045
L-Glutamine solutionEurocloneECB3000D
Liver Digest Medium Thermofisher Scientific 17703-034
Liver Perfusion MediumThermofisher Scientific17701038
N2 supplementThermofisher Scientific17502048
N-acetylcysteineMerckA9165
NicotinamideMerck N-0636
Non-Essential Amino AcidsMerckM7145
NormocinAurogeneant-nr-1
PBS buffer 1XPanReac AppliChemA0964,9050
Penicillin-streptomycin solution 100xEurocloneECB3001D
PercollSanta Cruzsc-296039A
Peristaltic pumpIsmatec™ MS-4/12 Reglo Digital Pump
TNFaPeprotech 300-01A
TRI ReagentMerckT9424
Tubing Ismatec™  ID.2,79mm
Williams' E Medium, no glutamineThermofisher Scientific31415029
Y27632Twin HelixT1725

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Neurosciencesnum ro 213

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