Ce travail a été financé par l&#39;Ontario Mental Health Foundation, en sciences naturelles et en génie du Canada, and Associates Inc Med

1. Protocole de design <ol><li> Calibrage: Avant une série d&#39;expériences, d&#39;étalonner les haut-parleurs. Ceci est important afin que les haut-parleur afficher le volume exact qui a été fixé par l&#39;expérimentateur. Aussi calibrer la sensibilité de la plate-forme du transducteur des boîtes sursaut selon le manuel du fournisseur. Le transducteur convertit le mouvement vertical de la plate-forme en un signal de tension. Assurez-vous qu&#39;il n&#39;y ait pas des expériences en cours lors de l&#39;étalonnage du système, et que toutes les cases sont calibrés de la même façon. </li><li> i / o Fonction: Si de nouvelles souches de souris ou de rats est mesurée, une fonction d&#39;entrée / sortie doit être établi. Après une période d&#39;acclimatation de 5-10 minutes avec un bruit de fond constant blanche de 65 à 68 dB (voir ci-dessous), les stimuli sursaut (20 ms bruit blanc) doit être affichée toutes les 20 secondes, commençant à environ 70 à 75 dB. L&#39;intensité du stimulus sursaut sera accrue entre chaque stimulus de 2-5 dB jusqu&#39;à atteindre 120 à 130 dB, ce qui entraîne dans 10-30 essais avec des stimuli sursaut (voir figure 1). </li><li> Structure de protocole: l&#39;habituation et de préimpulsion inhibition peut être mesurée dans un protocole. Le protocole se divise en une période d&#39;acclimatation, un bloc I (accoutumance), immédiatement suivie par un bloc II (PPI, figure 2). Avant de mesurer l&#39;inhibition préimpulsion, les animaux doivent toujours subir accoutumance sursaut, de sorte que atténuations sursaut à cause de l&#39;accoutumance ne pas interférer avec les mesures PPI. </li><li> Période d&#39;acclimatation: Chaque fois qu&#39;un animal est testé, il subit d&#39;abord une phase d&#39;acclimatation afin d&#39;adapter au détenteur des animaux, la boîte de sursaut et un bruit de fond. Au cours d&#39;une période d&#39;acclimatation de 5-10 minutes, le bruit de fond constant de 65 68dB de bruit blanc (en fonction du bruit de l&#39;environnement) est affichée, mais aucun stimulus sursaut. Durant cette phase, l&#39;animal va se calmer, arrêter d&#39;explorer l&#39;environnement et arrêter de bouger autour. </li><li> Bloc I accoutumance: à court terme accoutumance (STH), entre 30 stimuli sursaut -100 doit être appliqué sur le fond. Stimuli sursaut sont des bruits blancs généralement de 20 ms et un temps de montée très raide (0, si possible). L&#39;intensité est idéalement au volume où la fonction I / O a atteint le plateau de réaction de sursaut au maximum, généralement de 105 à 115 dB. Les intervalles entre les essais unique devrait être soit toujours 20 secondes ou randomisés entre 10 et 30 sec (voir la discussion et figure 3). </li><li> Bloc II préimpulsion inhibition: Afin de mesurer l&#39;IPP, les essais avec une impulsion sursaut seul et essais avec un préimpulsion sont pseudorandomized dans le bloc II. Le bruit de fond et de relance de sursaut sont les mêmes que dans le bloc I. La préimpulsion est un bruit blanc de 4 ms et le temps de montée raide. Deux paramètres peuvent être variés: l&#39;intervalle entre les interstimulus préimpulsion et sursaut d&#39;impulsion et l&#39;intensité de la préimpulsion (voir la discussion). Nous proposons d&#39;utiliser deux différents couramment préimpulsion intensités (75 et 85 dB) et deux intervalles différents interstimulus (30 ms et 100 ms). Ainsi, il existe quatre différents préimpulsion impulsion des essais ainsi que le pouls sursaut seuls essais à pseudorandomized et affiché 10 fois chacun, ce qui totalise 50 essais. Inter-procès intervalles peut être 20 sec ou aléatoire entre 10 et 30 sec (voir la discussion). Dans certains cas, il pourrait être bénéfique d&#39;ajouter un sixième type d&#39;essais, qui est un essai préimpulsion seul (voir la discussion et la figure 4). </li><li> Habituation à long terme: Afin de mesurer LTH, l&#39;ensemble du protocole est exécuté sur au moins cinq jours suivants. Sinon, seule la phase d&#39;acclimatation et de bloquer je pourrais être exécuté, cependant, afin de voir LTH, bloc I doit contenir au moins 100 sursaut stimuli. La présentation de 30 stimuli par jour conduit à LTH très peu ou pas dans la plupart des animaux, en particulier chez la souris. Fonctionne devrait être approximativement le même temps de chaque jour, depuis amplitudes réaction de sursaut fluctuent avec le cycle diurne. </li></ol> 2. Manipulation et l&#39;acclimatation des animaux Il ya de grandes différences dans la manipulation et l&#39;acclimatation des rats par rapport souris. Souris sera placé dans le porte-animal approprié (ils ne devraient pas être retenu) pendant 2-5 minutes avec un bruit de fond, mais pas de stimuli sursaut (phase d&#39;acclimatation du programme). Cette procédure doit être répétée 3-5 fois, une ou deux fois par jour, jusqu&#39;à la défécation et la miction dans le support de la souris cesse ou diminue considérablement. Les détenteurs d&#39;animaux doivent toujours être remplacés ou nettoyés après qu&#39;un animal est retiré. Les rats doivent être manipulés pendant au moins trois sessions de 17 ans. A la fin des séances de manipulation troisième, ils sont placés dans un porte-animal approprié (pas de freiner) et exposés à un bruit de fond pendant plusieurs minutes. Après les enlever, ils peuvent être récompensés par des graines de tournesol pour former ples associations ositive à la procédure de test. Cette procédure est répétée deux fois plus, en élargissant progressivement le temps d&#39;acclimatation, avant l&#39;ensemble du protocole est exécuté. Pour tester les sessions, les animaux sont placés dans toutes les chambres, les portes fermées et le protocole avec la phase d&#39;acclimatation, je bloc et bloc II est exécuté. S&#39;il ya différents groupes d&#39;animaux (injections, génotypes), ils doivent être mélangés ou randomisées sur les différents passages et les différentes cases. Si un animal est testé à plusieurs reprises (par exemple avec des traitements différents), il devrait être re-testés dans la même boîte. Pour les tests PPI répétées chez le rat, nous recommandons également d&#39;exécuter un protocole complet avant la collecte effective des données a lieu. PPI améliore souvent entre la première et la session du second test (PPI apprentissage), et reste constante par la suite. Il permettra également d&#39;éliminer une grande partie de LTH. 3. Analyse des données <ol><li> À court terme accoutumance: Pour l&#39;analyse d&#39;habituation à court terme, toutes les réactions effarouchées du bloc I sont tracées pour chaque animal. Si les animaux dans un groupe ont les mêmes amplitudes réaction de sursaut, les valeurs peuvent être en moyenne entre les animaux. Dans la plupart des cas, cependant, absolue amplitudes sursaut diffèrent considérablement entre les animaux et les niveaux de sursaut sont pas distribuées normalement. Dans ce cas, il est plus rentable pour normaliser les données de chaque animal à sa première, ou la moyenne des deux premiers, réactions effarouchées dans le bloc I (animaux, parfois de s&#39;endormir pendant la phase d&#39;acclimatation résultant en une réaction de sursaut bas du premier et une haute sursaut seconde). Les données peuvent ensuite être normalisé en moyenne sur tous les animaux afin de tracer le cours de l&#39;habituation. Pour une évaluation quantitative de la quantité d&#39;accoutumance, un score peut être calculé pour chaque animal, par exemple, la moyenne des 10 dernières réactions effarouchées, divisé par la moyenne des deux premières réponses (figure 6). </li><li> Préimpulsion inhibition: Pour analyser l&#39;inhibition préimpulsion, les données du bloc II doit être trié selon le type d&#39;essai (par exemple en exportant toutes les colonnes de données pertinentes dans Excel et trier par préimpulsion intensité et la durée de l&#39;ISI). Les dix traces par type d&#39;essai sont alors en moyenne, et les valeurs obtenues pour les essais préimpulsion impulsions sont divisés par le pouls sursaut seuls valeur et multiplié par 100. Ceci révèle la quantité de sursaut restantes (en pour cent de base sursaut) sous différentes conditions préimpulsion pour chaque animal. Base sursaut (impulsions seul) est de 100%. Ces valeurs peuvent alors être en moyenne sur les animaux d&#39;un groupe et être tracée (figure 7a). Alternativement, le montant de l&#39;IPP peuvent être tracées en soustrayant la réponse reste sursaut de 100% (figure 7b). S&#39;il vous plaît être conscient: lorsque vous comparez PPI dans différents groupes d&#39;animaux, vous devriez toujours aussi signaler si il ya une différence dans la base amplitudes sursaut, par exemple en comparant les amplitudes sursaut absolue des essais sursaut seuls impulsion (ou amplitudes sursaut dans le bloc I) . </li><li> Habituation à long terme: Afin d&#39;analyser LTH les deux premières réponses de I bloc de chaque jour sont en moyenne et tracée sur le minimum de cinq séances d&#39;essais consécutifs. Cela élimine la possibilité que les différences de STH affecter le résultat de l&#39;analyse des LTH. S&#39;il a été établi que le gène de traitement / n&#39;affecte pas STH, alternativement toutes les réponses dans le bloc I peut être simplement la moyenne pour chaque jour et être tracées. LTH peut être quantifiée par le calcul d&#39;un score d&#39;habituation lorsque les derniers jours &quot;la valeur est divisée par les premiers jours« valeur et multiplié par 100, alors que le pourcentage du niveau de sursaut initial restant après LTH est affiché. L&#39;accoutumance scores peuvent ensuite être moyennée sur les animaux (figure 8). </li></ol> 4. Les résultats représentatifs: <ol><li> i / o Fonction: Rongeurs commencent généralement à partir de sursaut d&#39;un volume de 85-90 dB sur (avec 20 ms, un bruit blanc). La réaction de sursaut augmente avec le volume augmente et atteint normalement un maximum à 100-110 dB. Si les animaux s&#39;écartent considérablement de ces valeurs, les animaux pourraient avoir perturbé les capacités auditives ou des capacités motrices. Typiques d&#39;E / S des fonctions sont affichés dans la figure 5. </li><li> À court terme accoutumance: les rats traités normalement bien s&#39;habituer à environ 60% de leur réaction de sursaut initial, mais il ya d&#39;énormes différences individuelles et aussi des différences de contrainte. L&#39;effet le plus fort accoutumance survient normalement dans la première de plusieurs stimuli. Souris ne s&#39;habituent généralement moins de rats (généralement à environ 80%), mais les différences de souches peuvent être très grandes. Un cours d&#39;habituation typique est montré dans la figure 6. </li><li> Préimpulsion inhibition: La plupart des rats montrent IPP de l&#39;ordre de 90% avec une optimale préimpulsion (85dB, 4 ms, un bruit blanc). PPI est très robuste et les différences individuelles sont relativement petits avec ces paramètres expérimentaux. Préimpulsions faible volumerendement inférieur PPI et une plus grande variabilité (même au sein d&#39;un animal), mais semble aussi être plus vulnérables aux manipulations pharmacologiques ou génétiques. Différents résultats IPP sont tracées dans la figure 7. </li><li> Habituation à long terme: habituation à long terme peuvent être observés au cours des séances de tester plusieurs. LTH est très robuste chez les rats. Chez la souris, elle nécessite souvent la présentation d&#39;un grand nombre de stimuli sursauter à chaque session, afin d&#39;observer LTH. Les résultats typiques de LTH peut être vu dans la figure 8. </li></ol><img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/3446/3446fig1.jpg" /> Figure 1. Protocole de stimulation pour la fonction i / o. Après une période d&#39;acclimatation de 5-10 min. avec 65 dB le niveau de pression acoustique (SPL) et aucun bruit de fond des stimuli sursaut (non représenté), 20 ms stimuli bruit blanc sont présentées toutes les 20 secondes. L&#39;intensité augmente progressivement de 75 à 130 dB par incréments de 5 dB (bruit de fond bg =). <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/3446/3446fig2.jpg" /> Figure 2. Structure du protocole d&#39;accoutumance et de la mesure combinée PPI. Au cours de l&#39;ensemble du protocole, un bruit de fond constant de 65 dB est appliquée. Il ya une période d&#39;acclimatation de 5-10 min. sans aucune stimulation supplémentaire. Immédiatement après, l&#39;accoutumance est testé par des stimuli 30-100 sursaut (je bloquer, voir figure 3). Ceci est immédiatement suivie par IPP test (bloc II, voir figure 4). <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/3446/3446fig3.jpg" /> Figure 3. Protocole de stimulation pour la mesure de l&#39;accoutumance (bloc I). Un exemple typique d&#39;un bloc I pour les essais à court terme accoutumance est montrée. Il se compose de 30 100 essais identiques où un 20 ms à 105 dB de bruit blanc avec un temps de montée 0 est présenté avec un intervalle inter-essai (IIT) de 20 sec. Les variations de ce protocole peuvent inclure des intensités plus élevées de relance sursaut ou ITI variables <img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/3446/3446fig4.jpg" /> Figure 4. Protocole de stimulation pour la mesure de PPI (bloc II). Un exemple pour une partie typique d&#39;un bloc II pour le test PPI est montré. Bloc II se compose de 5-6 types d&#39;essais différents qui sont présentés 10 fois, chacune dans un ordre pseudorandomized. Ici, deux différentes intensités préimpulsion (75 dB et 85 dB) et deux intervalles différents interstimulus (ISIS, 30 et 100 ms) sont testées. Relance sursaut seuls essais et préimpulsion seuls essais sont intercalés. Ce bloc aurait 6x10 = 60 essais. Préimpulsions ya 4 ms impulsions de bruit blanc avec 0 temps de montée. Les variations de ce protocole consisterait à ITI variable, des intensités plus élevées de relance de sursaut, différentes intensités préimpulsion et / ou des durées, et les différents ISI entre préimpulsion et le pouls. <img alt="Figure 5" src="/files/ftp_upload/3446/3446fig5.jpg" /> Figure 5. Exemple d&#39;une fonction d&#39;E / S. Les courbes d&#39;entrée / sortie de 11 souris individuelles de la même souche sont affichés en gris. Dans ce cas, les amplitudes sursaut individuels varient considérablement (réactions effarouchées sont en unités arbitraires). La ligne noire indique les amplitudes moyennes de sursaut et erreurs standard à différentes intensités de stimulus sursaut. Ces souris ont atteint leur maximum de réaction de sursaut à environ 105 dB. <img alt="Figure 6" src="/files/ftp_upload/3446/3446fig6.jpg" /> Figure 6. Exemple pour les données d&#39;habituation à court terme. Typique courbe moyenne accoutumance à court terme de 20 souris est affiché. Amplitudes sursaut de chaque souris en réponse à des stimuli sursaut 30 ont été normalisées à la moyenne de ses deux premières réactions effarouchées dans les essais 1 et 2. Les données normalisées a ensuite été en moyenne sur les souris et l&#39;erreur-type a été calculé. <img alt="Figure 7" src="/files/ftp_upload/3446/3446fig7.jpg" /> Figure 7 Exemple de données PPI A:.. Données moyennes PPI de 8 souris est affiché. Les 10 essais sursaut seuls du bloc II ont été moyennées pour chaque souris et les moyennes des types d&#39;essais d&#39;autres exprimés en pourcentage du stimulus seuls amplitudes sursaut. La figure montre l&#39;amplitude de sursaut sous différentes conditions préimpulsion. Deux différents Isis (30 et 100 ms) et deux différentes intensités préimpulsion (75 et 85 dB) ont été mesurés. B: Mêmes données que dans le A, mais tracées comme quantité d&#39;IPP en pour cent du réflexe de sursaut de base. Les données présentées ci-dessus a été soustraite de 100. Ces souris ont montré un IPP maximum d&#39;environ 50%. S&#39;il vous plaît noter que le même protocole de rendement PPI dans la plupart des souches de rat d&#39;environ 90%. <img alt="Figure 8" src="/files/ftp_upload/3446/3446fig8.jpg" /> Figure 8 Exemple pour les données d&#39;habituation à long terme A:.. Données moyennes LTH pour les 18 souris est affiché. Til a d&#39;abord deux réponses sursaut dans le bloc I de chaque jour ont été en moyenne sur toutes les souris. Les barres de relativement grande erreur standard sont principalement causées par des différences dans l&#39;amplitude de sursaut absolue entre chaque souris. B: normalisé amplitudes sursaut de 18 souris sur cinq jours. Afin de réduire le bruit, des groupes de 6 mois consécutifs réactions effarouchées dans le bloc I (30 stimuli) étaient toujours en moyenne par animal, résultant en cinq valeurs pour le bloc I, pour chaque animal et par jour. Ils ont été normalisées pour chaque animal à la première valeur de la première journée (100%). La moyenne sur l&#39;ensemble des 18 animaux est affiché. Il montre STH au sein de chaque journée, ainsi que LTH à travers les cinq jours.

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La production de cet article a été partiellement financé par Med Associés, les fabricants de l&#39;instrument utilisé dans cet article.

Variations du protocole d&#39;essai Modulation des réactions effarouchées ont été étudiés depuis plusieurs décennies dans les humains et les animaux. Une grande variété de protocoles différents ont été utilisés dans le passé. Le protocole actuel est un test relativement court et facile à exécuter qui fonctionne bien chez les rongeurs, toutefois, selon le centre d&#39;intérêt et les travaux antérieurs sur les questions respectives, il pourrait être utile de faire varier ce protocole en vue d&#39;obtenir des données comparables aux précédentes études pertinentes. Une variation commune inclut l&#39;ajout de plus préimpulsion intensités allant de 3 dB au-dessus du bruit de fond à 20 dB au-dessus du bruit. En outre, le bloc de l&#39;accoutumance peut être divisé en un bloc court de stimuli 50-10 avant que le bloc IPP, plus un troisième bloc de stimuli 5-10 après le bloc PPI 18-20. Une étude approfondie de la littérature existante avant de concevoir un protocole de test est donc indispensable. Les différences entre les espèces et les souches Amplitudes réaction de sursaut et de la quantité d&#39;accoutumance diffèrent considérablement entre les animaux unique de la même espèce et de la souche, alors que PPI semble être relativement stable. Souris ne se déplacent généralement plus (volontairement) pendant les essais, ce qui pourrait être l&#39;une des raisons pour lesquelles leurs données ont généralement une plus grande variabilité que les données de rat. Souris ne s&#39;habituent pas non plus ainsi que chez les rats. Différences entre la souris individuelles ou souches de rats peut être 21-24 énorme, et il pourrait être nécessaire d&#39;adapter le paramètre de stimulation au comportement sursaut d&#39;une souche spécifique afin d&#39;obtenir des résultats optimaux. Il faut éviter d&#39;utiliser le même équipement à tester les souris et les rats. Si elle est inévitable, le matériel devrait être nettoyé avec de l&#39;éthanol. Facteurs de gain Parfois il ya des différences énormes dans les réponses individuelles sursaut dans un groupe. Afin de mesurer la PPI et l&#39;accoutumance, la ligne de base ou de premier réactions effarouchées devrait être idéalement couvrant la majeure partie de la gamme dynamique du système de mesure. Dépassements sont nuisibles, car ils conduisent à une erreur systémique, généralement sous-estimer la quantité d&#39;accoutumance ou IPP. Si réactions effarouchées sont trop petits, cependant, modulations peuvent être occultés par le bruit. Systèmes sursaut permettre l&#39;ajustement d&#39;un facteur de gain qui amplifie le signal plateforme. Facteurs de gain peut être ajusté en affichant deux ou trois stimuli sursaut pendant la session d&#39;acclimatation dernière (gain = 1), cependant, il faut garder à l&#39;esprit qu&#39;ils modifier l&#39;amplitude absolue sursaut de réponse et ne permettent donc pas d&#39;une comparaison des amplitudes absolues sursaut plus. Afin d&#39;éviter cet inconvénient, les trois réactions effarouchées qui sont utilisés pour les ajustements facteur de gain pourrait être utilisé pour déterminer l&#39;ampleur sursaut de base. Alternativement, les facteurs de gain peut être réglée seulement après je bloque, alors que le bloc II réactions effarouchées couvrir la plupart de la gamme dynamique, tandis que le bloc I peuvent être utilisés pour déterminer la réaction de sursaut de base. L&#39;accoutumance de sensibilisation par rapport L&#39;accoutumance diminue les amplitudes réaction de sursaut. Ceci est contestée par une sensibilisation, ce qui conduit à une augmentation des réactions effarouchées sur présentation répétée 25. L&#39;accoutumance et la sensibilisation sont deux processus indépendants qui affectent le même comportement 26. Afin de mesurer l&#39;habituation, la sensibilisation doit être minimisée. Animaux de sensibiliser si un stimulus aversif est donc trop fort sursaut stimuli doivent être évités pour des mesures de l&#39;habituation, pour revue, voir 27. Le stress, l&#39;anxiété et la peur ne aussi augmenter réactions effarouchées 28, s&#39;opposer à l&#39;accoutumance et affecter PPI 18. Les animaux doivent donc être bien manipulés et acclimaté à l&#39;appareil de test sursaut. En outre, les détenteurs d&#39;animaux qui sont trop petites et restreindre physiquement les animaux sont contre-productives, car elles induisent un stress dans les 29 animaux. Fixe par rapport randomisés IIT Commune protocoles sursaut utiliser soit un fixe entre le procès d&#39;intervalle (IIT) généralement de 20 ou 30 sec ou un intervalle variable qui pseudorandomizes sur des valeurs entre 15 et 30 sec. L&#39;avantage d&#39;un IIT randomisés réside dans le fait que l&#39;animal ne peut pas prédire le point de temps de la stimulation suivante. Il a été démontré que l&#39;attention, par exemple à l&#39;préimpulsion augmente son efficacité dans la répression de réactions effarouchées 13, 30. Mesure PPI avec un ITI fixe peut donc aussi la sonde pour les processus d&#39;attention. ITI-dessous de 15 secondes doit être évitée afin de prévenir les effets causés par la fatigue musculaire et les périodes réfractaires des réponses musculaires. Intensité et durée de préimpulsion Nous utilisons un préimpulsion très court de 4 ms dans ce protocole. De nombreuses autres études utilisent une 20 ms préimpulsion. Afin de pouvoir faire varier la InterVA interstimulusls (ISIS) et de mesurer aussi des intervalles très courts, ce court préimpulsion a été introduit. L&#39;efficacité de l&#39;préimpulsion semble être atténué par sa courte durée par rapport à une 20 ms préimpulsion du même volume. Nous utilisons donc préimpulsions relativement fort de 75 et 85 dB. Alors qu&#39;un sursaut de relance de 85 dB (20 ms) peut être au-dessus du seuil, un 85 dB préimpulsion (4ms) n&#39;a normalement pas d&#39;obtenir des réponses sursaut. Cependant, il est important d&#39;évaluer si il n&#39;ya pas de réactions effarouchées suscité par le soi préimpulsion qui causerait une fatigue musculaire et les Etats réfractaires pendant la relance sursaut. Certains traitements qui perturbent PPI ont montré pour améliorer la sensibilité préimpulsion 31 (indiquant l&#39;interruption PPI n&#39;est pas due à une perte de sensibilité acoustique), cependant, cela ne pouvait pas être trouvé chez les patients schizophrènes 32 évaluations de la sensibilité préimpulsion peut se faire soit en analysant les données plate-forme dans la période entre préimpulsion ou sursaut d&#39;impulsion ou en incluant des essais préimpulsion seuls dans le bloc II. Différents ISI par rapport différentes intensités préimpulsion IPP chez les humains était à l&#39;origine mesurée à une ISI de 100 ms, où son effet est à son maximum de 7. Chez les rats et les souris PPI est à son maximum à 30-50 ms ISI, probablement en raison de la taille plus petite des 33 cerveaux. Ces dernières années il est devenu évident que les différents récepteurs émetteur et transmetteur sont engagés dans une manière de série afin d&#39;exercer l&#39;inhibition rapide mais durable du réflexe de sursaut 3, 34. Selon le système affecté, de drogues ou les manipulations génétiques pourraient donc affecter IPP qu&#39;à spécifiques Isis. Nous recommandons donc varier l&#39;ISI entre 30 et 100 ms. Cela permet aussi des études récentes pour être comparés à des études précédentes qui utilisaient seulement 100 ms ISI. Le 85dB préimpulsion conduit à une très robuste PPI maximum d&#39;environ 90%. S&#39;il vous plaît être conscient que ce PPI ne peut pas nécessairement être augmentée sans se heurter à un effet plafond. IPP induite de cette manière semble aussi être assez robuste, toutefois, il est fortement perturbée par exemple 1 mg / kg d&#39;amphétamines. Nous vous recommandons d&#39;utiliser un deuxième préimpulsion de 75 dB qui mène à 50-60% IPP seulement. Ce PPI peut être augmentée (par exemple 1 mg / kg de nicotine SC), et semble être plus vulnérables aux manipulations génétiques et pharmacologiques, en général, cependant, il semble aussi être plus variables et contradictoires au sein même d&#39;un sujet. Des études antérieures ont utilisé une grande variété d&#39;intensités et préimpulsion ont souvent montré des effets des traitements sur l&#39;IPP avec des intensités et spécifiques préimpulsion aucune incidence sur l&#39;IPP avec d&#39;autres préimpulsion intensités. Des études approfondies de la littérature existante est donc indispensable avant de choisir préimpulsion intensités et intervalles interstimulus. Combinaison avec des injections systémiques / stéréotaxique L&#39;accoutumance et PPI test est souvent réalisée en combinaison avec des injections systémiques ou stéréotaxique. Il est évident que dans ces expériences les animaux du groupe témoin reçoivent des injections de contrôle des véhicules. La procédure d&#39;injection elle-même, cependant, pourrait être très stressant pour un animal, conduisant à un niveau élevé d&#39;anxiété et une potentialisation et / ou la sensibilisation de la réaction de sursaut (voir ci-dessus). Il est donc recommandé de contrôler pour l&#39;effet de la procédure d&#39;injection elle-même aussi bien. Si l&#39;accoutumance est étudié, injections avant pourrait être un obstacle majeur. Afin d&#39;atténuer l&#39;anxiété de l&#39;animal, les animaux devraient être remis dans leur cage maison aussi longtemps que possible avant l&#39;essai (sans la drogue se dissipe). Les injections doivent également être administré par une personne expérimentée, afin de minimiser l&#39;impact de la procédure sur l&#39;animal. Si les injections sont effectuées par stéréotaxie canules chroniquement implanté, le chirurgien qui implante les canules doivent éviter la rupture des tympans du rat avec les barres d&#39;oreille pointue. Cela pourrait conduire à l&#39;audition des déficits. Barres d&#39;oreilles Blunt ou poignets oreille qui ne tympans rupture sont disponibles pour tous les dispositifs de stéréotaxie. Lorsque les rats sont traités après chirurgie, les capuchons ou des mannequins doit être manipulé à chaque fois, de sorte que les animaux s&#39;habituent à elle. Sursaut acoustique comme un test auditif Enfin, il convient de noter que i / o des fonctions acoustiques sursaut et IPP peuvent servir de test auditif simple pour les rats et les souris 35-37. Déficits d&#39;audition déplacement d&#39;une fonction I / O à la droite. Une fois PPI est établi pour une souche de rats ou de souris, les animaux peuvent également être testés avec la variable préimpulsion intensités. Si un animal est sourd ou ne peut pas entendre la préimpulsion aussi fort comme un animal de contrôle, il affichera sans PPI ou moins que les animaux de contrôle. D&#39;autre part, un déficit constaté PPI pourrait toujours être causée par une déficience auditive, donc un i / o test de surprendre ou de comparaisons des réactions effarouchées de base sont des contrôles essentiels.

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom de l&#39;équipement </td><td> Société </td><td> Numéro de catalogue </td><td> Commentaires (optionnel) </td></tr><tr><td> Package boîte de sursaut </td><td> Associés Med </td><td> MED-ASR-PRO1-ADD </td><td> Comprend le matériel &amp; logiciels </td></tr><tr><td> Titulaire d&#39;animaux </td><td> Associés Med </td><td> ENV-264A </td><td> D&#39;autres tailles et types disponibles </td></tr><tr><td> Son USB de mesure de pression au niveau du package </td><td> Associés Med </td><td> ANL-929A-PC </td><td> Pour l&#39;étalonnage </td></tr></tbody></table>

habituation and prepulse inhibition of acoustic startle in rodents

La réaction de sursaut acoustique est une réponse protectrice, provoquée par une stimulation acoustique soudaine et intense. Les muscles du visage et du squelette sont activés en quelques millisecondes, ce qui conduit à un corps tout entier tressaillir chez les rongeurs 1. Bien que les réponses sont des réponses sursaut réflexif qui peut être fiable suscité, ils ne sont pas stéréotypés. Ils peuvent être modulés par les émotions comme la peur (peur sursaut potentialisé) et de la joie (joie atténué sursaut), par des processus d&#39;apprentissage non associatifs tels que l&#39;accoutumance et de sensibilisation, et par d&#39;autres stimuli sensoriels grâce à des processus de déclenchement sensoriels (préimpulsion inhibition), en tournant sursaut réponses dans un excellent outil pour évaluer les émotions, l&#39;apprentissage et filtrage sensoriel, pour revue, voir 2, 3. La voie principale médiatrice réactions effarouchées est très court et bien décrit, la qualification sursaut aussi comme un excellent modèle pour étudier les mécanismes sous-jacents de la plasticité comportementale au niveau cellulaire / moléculaire 3. Nous décrivons ici une méthode pour évaluer à court terme accoutumance, habituation à long terme et de l&#39;inhibition de la préimpulsion acoustiques réactions effarouchées chez les rongeurs. L&#39;accoutumance décrit la diminution de l&#39;amplitude de sursaut sur présentation répétée du même stimulus. L&#39;accoutumance au sein d&#39;une session de test est appelé à court terme accoutumance (STH) et est réversible après une période de plusieurs minutes sans stimulation. L&#39;accoutumance entre les sessions de test est appelé habituation à long terme (LTH) 4. L&#39;accoutumance est stimulus spécifique 5. Préimpulsion inhibition est l&#39;atténuation d&#39;un sursaut par une précédente non surprenante stimulus sensoriel 6. L&#39;intervalle entre préimpulsion et relance sursaut peut varier de 6 à jusqu&#39;à 2000 ms. La préimpulsion peut être n&#39;importe quelle modalité, cependant, préimpulsions acoustiques sont les plus couramment utilisés. L&#39;accoutumance est une forme de non-associatif apprentissage. Il peut également être considérée comme une forme de filtrage sensoriel, car elle réduit la réponse de l&#39;organisme à un stimulus non menaçant. Préimpulsion inhibition (PPI) a été initialement développé dans la recherche neuropsychiatriques humaines comme mesure opérationnelle pour le filtrage sensoriel 7. Déficits PPI peut représenter l&#39;interface de la «psychose et de la cognition», comme ils semblent prédire 80-10 déficience cognitive. Les deux accoutumance et PPI sont perturbés chez les patients souffrant de schizophrénie 11, et les perturbations PPI ont montré pour être, au moins dans certains cas, se prêtent à un traitement avec des antipsychotiques atypiques pour la plupart 12, 13. Toutefois, d&#39;autres maladies mentales et neurodégénératives sont également accompagnés de perturbations dans l&#39;accoutumance et / ou IPP, comme les troubles du spectre autistique (plus lent accoutumance), trouble obsessionnel compulsif, le syndrome de Gilles de la Tourette, maladie de Huntington, la maladie de Parkinson et la maladie d&#39;Alzheimer (PPI) 11, 14, 15 dopamine induit des déficits IPP sont un modèle animal couramment utilisé pour le dépistage de 16 médicaments antipsychotiques, mais les déficits PPI peut aussi être induite par de nombreux autres médicaments psychomimétiques, les modifications de l&#39;environnement et les procédures chirurgicales.

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Habituation and Prepulse Inhibition of Acoustic Startle in Rodents

L&#39;inhibition de l&#39;accoutumance et préimpulsion du réflexe de sursaut sont les mesures opérationnelles du filtrage sensoriel. Gating sensoriel est perturbé dans la schizophrénie, et certains autres troubles mentaux et les maladies neurodégénératives. Nous décrivons ici un protocole standard pour évaluer l&#39;habituation à court terme et à long terme ainsi que préimpulsion inhibition des réponses sursaut acoustique dans les rats et les souris.

Inhibition préimpulsion habituation et du réflexe de sursaut acoustique dans Rongeurs

The acoustic startle response is a protective response, elicited by a sudden and intense acoustic stimulus. Facial and skeletal muscles are activated ...

habituation-and-prepulse-inhibition-of-acoustic-startle-in-rodents

Research

JoVE Journal

Neuroscience

73.0K vues.  University of Western Ontario. L'inhibition de l'accoutumance et préimpulsion du réflexe de sursaut sont les mesures opérationnelles du filtrage sensoriel. Gating sensoriel est perturbé dans la schizophrénie, et certains autres troubles mentaux et les maladies neurodégénératives. Nous décrivons ici un protocole standard pour évaluer l'habituation à court terme et à long terme ainsi que préimpulsion inhibition des réponses sursaut acoustique dans les rats et les souris.

Vidéo: Habituation and Prepulse Inhibition of Acoustic Startle in Rodents

Preparing Undercut Model of Posttraumatic Epileptogenesis in Rodents

Partially isolated cortex ("undercut") is an animal model of posttraumatic epileptogenesis. The surgical procedure involves cutting through the sensorimotor cortex and the underneath white matter (undercut) so that a specific region of the cerebral cortex is largely isolated from the neighboring cortex and subcortical regions1-3. After a latency of two or more weeks following the surgery, epileptiform discharges can be recorded in brain slices from rodents1; and electrical or behavior seizures can be observed in vivo from other species such as cat and monkey4-6. This well established animal model is efficient to generate and mimics several important characteristics of traumatic brain injury. However, it is technically challenging attempting to make precise cortical lesions in the small rodent brain with a free hand. Based on the procedure initially established in Dr. David Prince's lab at the Stanford University1, here we present an improved technique to perform a surgery for the preparation of this model in mice and rats. We demonstrate how to make a simple surgical device and use it to gain a better control of cutting depth and angle to generate more precise and consistent results. The device is easy to make, and the procedure is quick to learn. The generation of this animal model provides an efficient system for study on the mechanisms of posttraumatic epileptogenesis.

Partially isolated cortex (&#x201C;undercut&#x201D;) is an efficient animal model of posttraumatic epileptogenesis. Here we demonstrate how to make a novel surgical device and use it to make more precise and consistent lesions to generate this model.

Préparer Modèle dépouille de épileptogenèse post-traumatique chez les rongeurs

Partially isolated cortex ("undercut") is an animal model of posttraumatic epileptogenesis. The surgical procedure involves cutting through the ...

Recherche

Neurosciences

Large-scale Recording of Neurons by Movable Silicon Probes in Behaving Rodents

A major challenge in neuroscience is linking behavior to the collective activity of neural assemblies. Understanding of input-output relationships of neurons and circuits requires methods with the spatial selectivity and temporal resolution appropriate for mechanistic analysis of neural ensembles in the behaving animal, i.e. recording of representatively large samples of isolated single neurons. Ensemble monitoring of neuronal activity has progressed remarkably in the past decade in both small and large-brained animals, including human subjects1-11. Multiple-site recording with silicon-based devices are particularly effective because of their scalability, small volume and geometric design.
Here, we describe methods for recording multiple single neurons and local field potential in behaving rodents, using commercially available micro-machined silicon probes with custom-made accessory components. There are two basic options for interfacing silicon probes to preamplifiers: printed circuit boards and flexible cables. Probe supplying companies (<a href="http://www.neuronexustech.com/" >http://www.neuronexustech.com/</a>; <a href="http://www.sbmicrosystems.com/">http://www.sbmicrosystems.com/</a>; <a href="http://www.acreo.se/">http://www.acreo.se/</a>) usually provide the bonding service and deliver probes bonded to printed circuit boards or flexible cables. Here, we describe the implantation of a 4-shank, 32-site probe attached to flexible polyimide cable, and mounted on a movable microdrive. Each step of the probe preparation, microdrive construction and surgery is illustrated so that the end user can easily replicate the process.

We describe methods for large-scale recording of multiple single units and local field potential in behaving rodents with silicon probes. Drive fabrication, probe attachment to the drive and probe implantation processes are illustrated in sufficient details for easy replication.

À grande échelle d&#39;enregistrement des neurones par des sondes de silicium mobiles à se comporter Rongeurs

A major challenge in neuroscience is linking behavior to the collective activity of neural assemblies. Understanding of input-output relationships of ...

A Low Cost Setup for Behavioral Audiometry in Rodents

In auditory animal research it is crucial to have precise information about basic hearing parameters of the animal subjects that are involved in the experiments. Such parameters may be physiological response characteristics of the auditory pathway, e.g. via brainstem audiometry (BERA). But these methods allow only indirect and uncertain extrapolations about the auditory percept that corresponds to these physiological parameters. To assess the perceptual level of hearing, behavioral methods have to be used. A potential problem with the use of behavioral methods for the description of perception in animal models is the fact that most of these methods involve some kind of learning paradigm before the subjects can be behaviorally tested, e.g. animals may have to learn to press a lever in response to a sound. As these learning paradigms change perception itself 1,2 they consequently will influence any result about perception obtained with these methods and therefore have to be interpreted with caution. Exceptions are paradigms that make use of reflex responses, because here no learning paradigms have to be carried out prior to perceptual testing. One such reflex response is the acoustic startle response (ASR) that can highly reproducibly be elicited with unexpected loud sounds in na&iuml;ve animals. This ASR in turn can be influenced by preceding sounds depending on the perceptibility of this preceding stimulus: Sounds well above hearing threshold will completely inhibit the amplitude of the ASR; sounds close to threshold will only slightly inhibit the ASR. This phenomenon is called pre-pulse inhibition (PPI) 3,4, and the amount of PPI on the ASR gradually depends on the perceptibility of the pre-pulse. PPI of the ASR is therefore well suited to determine behavioral audiograms in na&iuml;ve, non-trained animals, to determine hearing impairments or even to detect possible subjective tinnitus percepts in these animals. In this paper we demonstrate the use of this method in a rodent model (cf. also ref. 5), the Mongolian gerbil (Meriones unguiculatus), which is a well know model species for startle response research within the normal human hearing range (e.g. 6).

A fast and inexpensive method for the behavioral determination of hearing parameters like hearing thresholds, hearing impairments or phantom perceptions (subjective tinnitus) is described. It uses pre-pulse inhibition of the acoustic startle response and can be easily implemented in a personal computer using a programmable AD/DA-converter and a piezo sensor.

Une configuration à faible coût pour l&#39;audiométrie comportementale chez les rongeurs

In auditory animal research it is crucial to have precise information about basic hearing parameters of the animal subjects that are involved in the ...

Recording and Analysis of Circadian Rhythms in Running-wheel Activity in Rodents

When rodents have free access to a running wheel in their home cage, voluntary use of this wheel will depend on the time of day1-5. Nocturnal rodents, including rats, hamsters, and mice, are active during the night and relatively inactive during the day. Many other behavioral and physiological measures also exhibit daily rhythms, but in rodents, running-wheel activity serves as a particularly reliable and convenient measure of the output of the master circadian clock, the suprachiasmatic nucleus (SCN) of the hypothalamus. In general, through a process called entrainment, the daily pattern of running-wheel activity will naturally align with the environmental light-dark cycle (LD cycle; e.g. 12 hr-light:12 hr-dark). However circadian rhythms are endogenously generated patterns in behavior that exhibit a ~24 hr period, and persist in constant darkness. Thus, in the absence of an LD cycle, the recording and analysis of running-wheel activity can be used to determine the subjective time-of-day. Because these rhythms are directed by the circadian clock the subjective time-of-day is referred to as the circadian time (CT). In contrast, when an LD cycle is present, the time-of-day that is determined by the environmental LD cycle is called the zeitgeber time (ZT).
Although circadian rhythms in running-wheel activity are typically linked to the SCN clock6-8, circadian oscillators in many other regions of the brain and body9-14 could also be involved in the regulation of daily activity rhythms. For instance, daily rhythms in food-anticipatory activity do not require the SCN15,16 and instead, are correlated with changes in the activity of extra-SCN oscillators17-20. Thus, running-wheel activity recordings can provide important behavioral information not only about the output of the master SCN clock, but also on the activity of extra-SCN oscillators. Below we describe the equipment and methods used to record, analyze and display circadian locomotor activity rhythms in laboratory rodents.

Circadian rhythms in voluntary wheel-running activity in mammals are tightly coupled to the molecular oscillations of a master clock in the brain. As such, these daily rhythms in behavior can be used to study the influence of genetic, pharmacological, and environmental factors on the functioning of this circadian clock.

Enregistrement et analyse des rythmes circadiens dans la course roue-activité chez les rongeurs

When rodents have free access to a running wheel in their home cage, voluntary use of this wheel will depend on the time of day1-5. Nocturnal rodents, ...

Functional Interrogation of Adult Hypothalamic Neurogenesis with Focal Radiological Inhibition

The functional characterization of adult-born neurons remains a significant challenge. Approaches to inhibit adult neurogenesis via invasive viral delivery or transgenic animals have potential confounds that make interpretation of results from these studies difficult. New radiological tools are emerging, however, that allow one to noninvasively investigate the function of select groups of adult-born neurons through accurate and precise anatomical targeting in small animals. Focal ionizing radiation inhibits the birth and differentiation of new neurons, and allows targeting of specific neural progenitor regions. In order to illuminate the potential functional role that adult hypothalamic neurogenesis plays in the regulation of physiological processes, we developed a noninvasive focal irradiation technique to selectively inhibit the birth of adult-born neurons in the hypothalamic median eminence. We describe a method for Computer tomography-guided focal irradiation (CFIR) delivery to enable precise and accurate anatomical targeting in small animals. CFIR uses three-dimensional volumetric image guidance for localization and targeting of the radiation dose, minimizes radiation exposure to nontargeted brain regions, and allows for conformal dose distribution with sharp beam boundaries. This protocol allows one to ask questions regarding the function of adult-born neurons, but also opens areas to questions in areas of radiobiology, tumor biology, and immunology. These radiological tools will facilitate the translation of discoveries at the bench to the bedside.

The function of adult-born mammalian neurons remains an active area of investigation. Ionizing radiation inhibits the birth of new neurons. Using computer tomography-guided focal irradiation (CFIR), three-dimensional anatomical targeting of specific neural progenitor populations can now be used to assess the functional role of adult neurogenesis.

Interrogation fonctionnelle des adultes hypothalamique neurogenèse avec Focal radiologique inhibition

The functional characterization of adult-born neurons remains a significant challenge. Approaches to inhibit adult neurogenesis via invasive viral ...

Deep Brain Stimulation with Simultaneous fMRI in Rodents

In order to visualize the global and downstream neuronal responses to deep brain stimulation (DBS) at various targets, we have developed a protocol for using blood oxygen level dependent (BOLD) functional magnetic resonance imaging (fMRI) to image rodents with simultaneous DBS. DBS fMRI presents a number of technical challenges, including accuracy of electrode implantation, MR artifacts created by the electrode, choice of anesthesia and paralytic to minimize any neuronal effects while simultaneously eliminating animal motion, and maintenance of physiological parameters, deviation from which can confound the BOLD signal.&#160;Our laboratory has developed a set of procedures that are capable of overcoming most of these possible issues. For electrical stimulation, a homemade tungsten bipolar microelectrode is used, inserted stereotactically at the stimulation site in the anesthetized subject. In preparation for imaging, rodents are fixed on a plastic headpiece and transferred to the magnet bore. For sedation and paralysis during scanning, a cocktail of dexmedetomidine and pancuronium is continuously infused, along with a minimal dose of isoflurane; this preparation minimizes the BOLD ceiling effect of volatile anesthetics. In this example experiment, stimulation of the subthalamic nucleus (STN) produces BOLD responses which are observed primarily in ipsilateral cortical regions, centered in motor cortex. Simultaneous DBS and fMRI allows the unambiguous modulation of neural circuits dependent on stimulation location and stimulation parameters, and permits observation of neuronal modulations free of regional bias. This technique may be used to explore the downstream effects of modulating neural circuitry at nearly any brain region, with implications for both experimental and clinical DBS.

This protocol describes a standard method for simultaneous functional magnetic resonance imaging and deep brain stimulation in the rodent. The combined use of these experimental tools allows for the exploration of global downstream activity in response to electrical stimulation at virtually any brain target.

La stimulation cérébrale profonde avec simultanée IRMf chez les rongeurs

In order to visualize the global and downstream neuronal responses to deep brain stimulation (DBS) at various targets, we have developed a protocol for ...

Measuring Spinal Presynaptic Inhibition in Mice By Dorsal Root Potential Recording In Vivo

Presynaptic inhibition is one of the most powerful inhibitory mechanisms in the spinal cord. The underlying physiological mechanism is a depolarization of primary afferent fibers mediated by GABAergic axo-axonal synapses (primary afferent depolarization). The strength of primary afferent depolarization can be measured by recording of volume-conducted potentials at the dorsal root (dorsal root potentials, DRP). Pathological changes of presynaptic inhibition are crucial in the abnormal central processing of certain pain conditions and in some disorders of motor hyperexcitability. Here, we describe a method of recording DRP in vivo in mice. The preparation of spinal cord dorsal roots in the anesthetized animal and the recording procedure using suction electrodes are explained. This method allows measuring GABAergic DRP and thereby estimating spinal presynaptic inhibition in the living mouse. In combination with transgenic mouse models, DRP recording may serve as a powerful tool to investigate disease-associated spinal pathophysiology. In vivo recording has several advantages compared to ex vivo isolated spinal cord preparations, e.g. the possibility of simultaneous recording or manipulation of supraspinal networks and induction of DRP by stimulation of peripheral nerves.

Measuring Spinal Presynaptic Inhibition in Mice By Dorsal Root Potential Recording In Vivo

GABAergic presynaptic inhibition is a powerful inhibitory mechanism in the spinal cord important for motor and sensory signal integration in spinal cord networks. Underlying primary afferent depolarization can be measured by recording of dorsal root potentials (DRP). Here we demonstrate a method of in vivo recording of DRP in mice.

Mesure vertébrale présynaptique inhibition chez la souris par la racine dorsale enregistrement potentiel<em&gt; In Vivo</em

Presynaptic inhibition is one of the most powerful inhibitory mechanisms in the spinal cord. The underlying physiological mechanism is a depolarization of ...

Methods to Characterize Spontaneous and Startle-induced Locomotion in a Rotenone-induced Parkinson's Disease Model of Drosophila

Parkinson&#8217;s disease is a neurodegenerative disorder that results from the degeneration of dopaminergic neurons in the central nervous system, primarily in the substantia nigra. The disease causes motor deficiencies, which present as rigidity, tremors and dementia in humans. Rotenone is an insecticide that causes oxidative damage by inhibiting the function of the electron transport chain in mitochondria. It is also used to model Parkinson&#8217;s disease in the Drosophila. Flies have an inherent negative geotactic response, which compels them to climb upwards upon being startled. It has been established that rotenone causes early mortality and locomotion defects that disrupt the flies&#8217; ability to climb after they have been tapped downwards. However, the effect of rotenone on spontaneous movement is not well documented. This study outlines two sensitive, reproducible, and high throughput assays to characterize rotenone-induced deficiencies in short-term startle-induced locomotion and long-term spontaneous locomotion in Drosophila. These assays can be conveniently adapted to characterize other Drosophila models of locomotion defects and efficacy of therapeutic agents.

Methods to Characterize Spontaneous and Startle-induced Locomotion in a Rotenone-induced Parkinson&#039;s Disease Model of Drosophila

Parkinson&#8217;s disease is a neurodegenerative disorder that results from the degeneration of dopaminergic neurons in the central nervous system, causing locomotion defects. Rotenone models Parkinson&#8217;s disease in Drosophila. This paper outlines two assays that characterize both spontaneous and startle-induced locomotion deficiencies caused by rotenone.

Méthodes pour caractériser spontanée et induite par Locomotion sursaut dans un modèle de la maladie de Parkinson induite de la roténone-de<em&gt; Drosophila</em

Parkinson&#8217;s disease is a neurodegenerative disorder that results from the degeneration of dopaminergic neurons in the central nervous system, ...

Acrylic Resin Molding Based Head Fixation Technique in Rodents

Head fixation is a technique of immobilizing animal's head by attaching a head-post on the skull for rigid clamping. Traditional head fixation requires surgical attachment of metallic frames on the skull. The attached frames are then clamped to a stationary platform resulting in immobilization of the head. However, metallic frames for head fixation have been technically difficult to design and implement in general laboratory environment. In this study, we provide a novel head fixation method. Using a custom-made head fixation bar, head mounter is constructed during implantation surgery. After the application of acrylic resin for affixing implants such as electrodes and cannula on the skull, additional resins applied on top of that to build a mold matching to the port of the fixation bar. The molded head mounter serves as a guide rails, investigators conveniently fixate the animal&#8217;s head by inserting the head mounter into the port of the fixation bar. This method could be easily applicable if implantation surgery using dental acrylics is necessary and might be useful for laboratories that cannot easily fabricate CNC machined metal head-posts.

Traditional head fixation techniques have used metallic frames attached on the skull as an interface for head fixation apparatus. This protocol demonstrates a frameless, acrylic resin molding based head fixation technique for behavioral tasks in rodents.

Acrylique mouler à base Chef Fixation Technique chez les rongeurs

Head fixation is a technique of immobilizing animal's head by attaching a head-post on the skull for rigid clamping. Traditional head fixation requires ...

Hydraulic Extrusion of the Spinal Cord and Isolation of Dorsal Root Ganglia in Rodents

Traditionally, the spinal cord is isolated by laminectomy, i.e. by breaking open the spinal vertebrae one at a time. This is both time consuming and may result in damage to the spinal cord caused by the dissection process. Here, we show how the spinal cord can be extruded using hydraulic pressure. Handling time is significantly reduced to only a few minutes, likely decreasing protein damage. The low risk of damage to the spinal cord tissue improves subsequent immunohistochemical analysis. By performing hydraulic spinal cord extrusion instead of traditional laminectomy, the rodents can further be used for DRG isolation, thereby lowering the number of animals and allowing analysis across tissues from the same rodent. We demonstrate a consistent method to identify and isolate the DRGs according to their localization relative to the costae. It is, however, important to adjust this method to the particular animal used, as the number of spinal cord segments, both thoracic and lumbar, may vary according to animal type and strain. In addition, we illustrate further processing examples of the isolated tissues.

Here, we present a protocol for hydraulic extrusion of the spinal cord as well as identification and isolation of specific dorsal root ganglia (DRGs) in the same rodent. Compared to standard spinal cord isolation methods, this method is significantly faster and reduces the risk of tissue damage.

Extrusion hydraulique de la moelle épinière et isolement de ganglions rachidiens en Rongeurs

Traditionally, the spinal cord is isolated by laminectomy, i.e. by breaking open the spinal vertebrae one at a time. This is both time consuming and may ...