Work in Dr. Ogunwobi&#8217;s laboratory is supported by a Research Centers in Minority Institutions Program grant from the National Institute on Minority Health and Health Disparities (MD007599) of the National Institutes of Health. The contents of this manuscript are solely the responsibility of the authors and do not necessarily represent the official views of the NIMHD or the NIH.

Déclaration éthique: Toutes les études sur les animaux ont été approuvés par le Comité institutionnel de protection des animaux et l&#39;utilisation (IACUC) du Hunter College de la City University de New York. 1. Procédures pré-expérimentation <ol><li> À l&#39;arrivée à l&#39;animalerie, Maison initialement 3 souris BALB / c à une cage avec une literie de haut et de copeaux de bois filtré. Veiller à ce que les souris ont un accès libre à la nourriture, nourriture pour rongeurs Purina, et de l&#39;eau. Literie et la nourriture doivent être changés deux fois par semaine, alors que les cages doivent être nettoyés une fois par semaine. </li><li> Induire une anesthésie générale chez la souris en utilisant un vaporisateur isoflurane avec de l&#39;oxygène à un débit constant de 1 litre par minute. Le système est autonome et comprend un vaporisateur de précision. </li><li> Position animal dans une boîte en plastique sur lequel le vaporisateur de précision et / système de gaz anesthésique est connecté. Initialement fixé le vaporisateur à 2,5 jusqu&#39;à ce que l&#39;animal est inconscient, à quel point réduire le vaporisateur à 2. </li><li> À ce moment, mettez leLigne de soupape, en le scellant à la surface, et l&#39;ouvrir pour le cône de nez. </li><li> Déplacez l&#39;animal à la zone de préparation, avec le cône de nez placé et raccordé correctement (pour entretien de l&#39;anesthésie). </li><li> Préparer 5 × 10 6 cellules HCC de la souris BNL 1ME A.7R.1 pour l&#39;implantation par souris. BNL 1ME A.7R.1 devrait être de plus en plus dans le milieu (10% de FBS inactivé par la chaleur, 1% de pénicilline / streptomycine et 2 mM de L-glutamine) l&#39;incubation dans une boîte de culture de cellules à 37 ° C dans un incubateur humidifié avec de l&#39;air et 5% CO 2. </li><li> Avec une seringue ayant une aiguille G 20, l&#39;implant 100 pi de PBS contenant 5 x 10 6 cellules de carcinome hépatocellulaire de souris BNL 1ME A.7R.1 dans un lobe de le foie des souris BALB / c pour produire les tumeurs primaires. Post-implantation, maison, les souris BALB / c dans une cage avec les mêmes exigences de maison comme pré-implantatoire. </li><li> Au point de fin d&#39;expérimentation, des signes cliniques de carcinome hépatocellulaire est observable comme réduction significative de la condition corporellemarquer (généralement détectée après 4 semaines). À ce stade, il est probable que les tumeurs primaires ont développé dans le foie tandis que les dépôts métastatiques ont formé dans les poumons. Par la suite, commence le procédé de l&#39;isolement et la propagation des cellules tumorales circulantes. </li></ol> 2. Collecte de sang total pour la circulation des cellules tumorales Isolement REMARQUE: correctement filtrées la zone de la chirurgie et assurez-vous qu&#39;il est sans encombrement. Autoclave tous les instruments chirurgicaux ou faire tremper dans un désinfectant selon les recommandations du fabricant <ol><li> Sacrifiez souris par euthanasie au expérimentale point final (signes cliniques de développement de la tumeur). Euthanasie des souris devrait impliquer CO 2 asphyxie. Observez la souris correctement pour confirmer l&#39;anesthésie est correctement distribué. Le dioxyde de carbone doit être libéré lentement dans la chambre sur une période de 5 à 10 min, ce qui provoque un arrêt respiratoire. Suivez par exsanguination intracardiaque et cervical dislocation. 5 </li><li> Utiliser une aiguille 25 G fixée à une seringue de 1 ml pour la collecte de sang total. Heparanize la seringue avec 0,01 ml d&#39;héparine. Ponction immédiatement la peau avec l&#39;aiguille inférieur au xyphisternum à environ 45 ° d&#39;angle. Avancez lentement aiguille pour percer le cœur, puis abaissez l&#39;angle de l&#39;aiguille. Maintenir fermement l&#39;aiguille et la seringue en place, et d&#39;en tirer 500 pi - 1000 ul de sang entier du cœur. </li><li> Retirez la seringue et l&#39;aiguille et transférer le sang dans un tube apyrogène 1,5 ml pré-étiquetés. Centrifuger le sang total recueilli dans tube de 1,5 ml apyrogène à 1167 g pendant 5 min. REMARQUE: La centrifugation sépare l&#39;échantillon de sang en trois couches: la couche inférieure ou de l&#39;hématocrite constitué de globules rouges, une couche mince intermédiaire de couche leuco-plaquettaire, et une couche supérieure de plasma. </li><li> Retirer soigneusement le plasma par pipetage et la collecte dans un tube de 1,5 ml apyrogène séparé pour Furthexpériences telles que la détection des acides nucléiques sans cellules 7 RE. </li><li> Pour l&#39;isolement de cellules tumorales circulantes (CTC), de recueillir la couche leucocytaire dans un tube de 1,5 ml apyrogène séparée en préparation de globules rouges (RBC) lyse. Cela est nécessaire pour éliminer les globules rouges résiduels dans la couche leuco-plaquettaire. </li></ol> 3. Recette pour Red Blood Cell (RBC) tampon de lyse <ol><li> Ajouter une solution à 1 L de tampon de lyse RBC. </li><li> Faire un 500 ml de chlorure d&#39;ammonium et 500 ml de Tris. Puis mélanger pour créer une solution à 1 L de tampon de lyse RBC avec une concentration finale de 155 mM de chlorure d&#39;ammonium et 10 mM de Tris. </li><li> Tamponner la solution à un pH de 7,5. Conservez le tampon de lyse RBC à +2 et +8 ° C, et porter à RT immédiatement avant l&#39;utilisation. </li></ol> 4. RBC Lysis de Buffy Coat <ol><li> Ajouter 1 ml de tampon de lyse RBC au tube de 1,5 ml apyrogène stérile contenant la couche leucocyto-plaquettaire collectée. </li><li> Mélanger le contenu du tube parinverser plusieurs fois. Incuber le contenu mélangé du tube pendant 5 min à température ambiante sur le banc. Centrifuger les contenus mixtes pendant 5 min à 1167 x g. </li><li> Après centrifugation, un culot blanchâtre sera obtenu. Jeter le surnageant rougeâtre lentement et avec précaution dans l&#39;eau de Javel à 10% sans aucune interruption au culot. Si la pastille est pas blanchâtre, refaire les étapes 03.01 à 03.05. L&#39;augmentation de la durée d&#39;incubation dans un tampon de lyse RBC à 10 - 15 min peut également être utile. </li><li> Éliminer en toute sécurité les déchets biologiques, une fois la décontamination des déchets biologiques dans 10% de javel est complète après 24 h. </li></ol> 5. Propagation dans la culture cellulaire REMARQUE: Les cellules tumorales sont généralement des cellules en croissance rapide des globules blancs qui sont abondants dans le mélange initial de cellules ensemencées dans le plat. Suite à changement répété de support, et les passages subséquents de CTC, les globules blancs sont éliminés et une population relativement pur de CTC reste. <ol><li> Aprèsélimination du surnageant dans 10% d&#39;agents blanchissants, laver le culot dans une solution saline blanchâtre ml tamponnée au phosphate (PBS) au moins une fois, et remettre en suspension dans un milieu de culture complet pour une propagation dans la culture cellulaire. </li><li> Une fois lavage est terminée, ajouter 1 ml de milieu de culture complet A.7R.1 BNL 1ME (10% de FBS inactivé par la chaleur, 1% de pénicilline / streptomycine et 2 mM de L-glutamine) à la pastille et remise en suspension du culot dans du milieu de culture. </li><li> Ensemencer le mélange remis en suspension de cellules dans une boîte de culture cellulaire. Incuber la boîte de culture cellulaire à 37 ° C dans un incubateur humidifié avec de l&#39;air et 5% de CO 2. </li><li> Changer le milieu de culture cellulaire toutes les deux à trois jours. Après cinq à sept jours, CTC aura adhéré à la boîte de culture cellulaire et a commencé à proliférer. Ces cellules vont rester viable au-delà de 25 passages et après plusieurs cycles gel et de dégel 5. </li></ol> 6. La vérification du carcinome hépatocellulaire circulation Tumor Cell Line <ol><li> Effectuer APolymerase réaction en chaîne (PCR) à base, pour amplifier un seul segment d&#39;ADN spécifique du gène β-globine souris pour confirmer que le roman a créé des lignées de cellules de la CCT sont des cellules de souris, comme la ligne BNL 1ME A.7R.1 HCC implanté originale. Méthode a été décrite et validée par Steube et al. 5,8 </li><li> Effectuer immunocoloration pour le spécifique hépatocytes marqueur AMPc protéine de liaison 3-like 3 (CREB3L3) en utilisant un anticorps spécifique élément sensible. Cela confirmera ce roman CTC sont en effet établies hépatocytes comme la ligne originale implanté des cellules BNL 1ME A.7R.1. 5 </li></ol>

<ol>
	<li>Ashworth, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+case+of+cancer+in+which+cells+similar+to+those+in+the+tumors+were+seen+in+the+blood+after+death.">A case of cancer in which cells similar to those in the tumors were seen in the blood after death.</a> Australian Medical Journal. 1869, 146-147 (14).</li><li>van de Stolpe, A., den Toonder, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circulating+Tumor+Cells:+What+Is+in+It+for+the+Patient?+A+Vision+towards+the+Future.">Circulating Tumor Cells: What Is in It for the Patient? A Vision towards the Future.</a> Cancers. 6, 1195-1207 (2014).</li><li>Sheng, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Capture,+release+and+culture+of+circulating+tumor+cells+from+pancreatic+cancer+patients+using+an+enhanced+mixing+chip.">Capture, release and culture of circulating tumor cells from pancreatic cancer patients using an enhanced mixing chip.</a> Lab on a chip. 14, 89-98 (2014).</li><li>George, T. J., Ogunwobi, O. O., Sheng, W., Fan, Z. H., Liu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=&#34;Tissue+is+the+issue&#34;:+circulating+tumor+cells+in+pancreatic+cancer.">&#34;Tissue is the issue&#34;: circulating tumor cells in pancreatic cancer.</a> Journal of gastrointestinal cancer. , (2014).</li><li>Ogunwobi, O. O., Puszyk, W., Dong, H. J., Liu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epigenetic+upregulation+of+HGF+and+c-Met+drives+metastasis+in+hepatocellular+carcinoma.">Epigenetic upregulation of HGF and c-Met drives metastasis in hepatocellular carcinoma.</a> PloS one. 8, e63765 (2013).</li><li>Cheng, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transparent,+biocompatible+nanostructured+surfaces+for+cancer+cell+capture+and+culture.">Transparent, biocompatible nanostructured surfaces for cancer cell capture and culture.</a> International journal of nanomedicine. 9, 2569-2580 (2014).</li><li>Yu, M., Stott, S., Toner, M., Maheswaran, S., Haber, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circulating+tumor+cells:+approaches+to+isolation+and+characterization.">Circulating tumor cells: approaches to isolation and characterization.</a> The Journal of cell biology. 192, 373-382 (2011).</li><li>Steube, K. G., Koelz, A. L., Drexler, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+and+verification+of+rodent+cell+lines+by+polymerase+chain+reaction.">Identification and verification of rodent cell lines by polymerase chain reaction.</a> Cytotechnology. 56, 49-56 (2008).</li><li>Pantel, K., Alix-Panabieres, C., Riethdorf, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cancer+micrometastases.">Cancer micrometastases.</a> Nature reviews. Clinical oncology. 6, 339-351 (2009).</li><li>Pantel, K., Brakenhoff, R. H., Brandt, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Detection,+clinical+relevance+and+specific+biological+properties+of+disseminating+tumour+cells.">Detection, clinical relevance and specific biological properties of disseminating tumour cells.</a> Nature reviews. Cancer. 8, 329-340 (2008).</li><li>Cristofanilli, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circulating+tumor+cells,+disease+progression,+and+survival+in+metastatic+breast+cancer.">Circulating tumor cells, disease progression, and survival in metastatic breast cancer.</a> The New England journal of medicine. 351, 781-791 (2004).</li><li>De Giorgi, U., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Circulating+tumor+cells+and+bone+metastases+as+detected+by+FDG-PET/CT+in+patients+with+metastatic+breast+cancer.">Circulating tumor cells and bone metastases as detected by FDG-PET/CT in patients with metastatic breast cancer.</a> Annals of oncology : official journal of the European Society for Medical Oncology / ESMO. 21, 33-39 (2010).</li><li>Eloubeidi, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endoscopic+ultrasound-guided+fine+needle+aspiration+biopsy+of+patients+with+suspected+pancreatic+cancer:+diagnostic+accuracy+and+acute+and+30-day+complications.">Endoscopic ultrasound-guided fine needle aspiration biopsy of patients with suspected pancreatic cancer: diagnostic accuracy and acute and 30-day complications.</a> The American journal of gastroenterology. 98, 2663-2668 (2003).</li><li>O'Toole, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessment+of+complications+of+EUS-guided+fine-needle+aspiration.">Assessment of complications of EUS-guided fine-needle aspiration.</a> Gastrointestinal endoscopy. 53, 470-474 (2001).</li></ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

In this study, how to isolate and propagate CTCs from the whole blood of a syngeneic mouse with HCC were described. The objective of this work is to enhance the ongoing studies of the mechanisms of cancer metastasis. 
A factor that contributes to the poor prognosis of many cancers is the lack of timely detection and consequent widespread dissemination of the malignancy3. CTCs originate from primary cancers and spread via the blood stream to distant organs. As such, CTCs are importan...

The cancer research community has known of the existence of circulating tumor cells (CTCs) since first being observed by Thomas Ashworth in 18691. Since then, CTCs have been shown to be important in tumor metastasis and disease progression2-5. Today, solid tumors are a major cause of morbidity and mortality worldwide. CTCs are rare cells that originate from primary tumors and travel through the blood stream to different organs of which only a small fraction ultimately develop into metastasis2-5. Notably, there is positive correlation between tumor size and CTC number3,4. 
An understanding of CTC biology can contribute to the search for targeted therapy. Furthermore, CTCs may have diagnostic applications. To achieve these potential clinical applications, one needs to overcome some current challenges to studying CTCs. One challenge is related to the fact that CTCs may be present as single cells or as clusters and they may even be able to change their phenotype in response to the blood microenvironment2. Moreover, detection can be very challenging, in part, due to the low count of CTCs (a few to hundreds per milliliter) among one billionhematologic cells per milliliterin the blood6. Nevertheless, in recent years, research into the potential clinical applications of CTCs from solid organ cancers has intensified.
Despite these efforts, the challenges of studying and understanding the role of CTCs persist due to the rarity of CTCs and the inadequacy of the technological tools currently available. Despite these challenges, the tremendous potential for clinical applications continues to be an incentive to pursue research into the role of CTCs in cancer metastasis.
We were recently successful in isolating and propagating in cell culture CTCs from an orthotopic syngeneic mouse model of hepatocellular carcinoma (HCC) metastasis5. The purpose of the current paper is to describe in detail all aspects of the successful methodology. The significance of this methodology lies in the fact that this approach may be modified in order to successfully isolate and propagate in culture human CTCs, thus enhancing the possibility of in vitro studies of CTC biology. 
There are multiple potential clinical applications for the use of CTCs. CTCs may be useful for prognosis, response monitoring, screening, dynamic monitoring of tumor molecular alterations, and personalized therapy4. Therefore, a better understanding of the biology of CTCs has high potential for clinical impact.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Heparin Sodium Salt 1G</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89508-852</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BTX Tube Micro 1.5mL Clear NS</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89511-254</td>
			<td>1.5mL&#160; pyrogen-free eppendorf Tubes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle Sterile Disp BD 25GX1IN</td>
			<td>VWR</td>
			<td>BD305125</td>
			<td>25G Needle</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slp Tip SRNG 1ml 200 each per pack</td>
			<td>VWR</td>
			<td>BD309659</td>
			<td>1mL syringe tip</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe 1ml leur lok Pk 100</td>
			<td>VWR</td>
			<td>BD309628</td>
			<td>1 mL syringe</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VWR Forceps Tissue 6</td>
			<td>VWR</td>
			<td>82027-446</td>
			<td>Forceps</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cyromold intrm 15X15X5MM PK 100</td>
			<td>VWR</td>
			<td>25608-924</td>
			<td>Cyromold</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cryo-oct compund 4oz</td>
			<td>VWR</td>
			<td>25608-930</td>
			<td>Oct compound</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VWR Slide sprfrst 25X75MM PK72</td>
			<td>VWR</td>
			<td>48311-703</td>
			<td>Slides</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VWR Cover Glass #2 22X5oMM OZ</td>
			<td>VWR</td>
			<td>48-382-128</td>
			<td>Cover Glass</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VWR Slide Box True North Fm Pu</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89140-278</td>
			<td>Slide Box</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Super HT PAP Pen</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89427-058</td>
			<td>PAP pen</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Water RNASe and DNAse free 2L</td>
			<td>VWR</td>
			<td>101454-204</td>
			<td>Nuclease Free Water</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buffer Tris Ultra Pure Grade 500G</td>
			<td>VWR</td>
			<td>97061-796</td>
			<td>Tris Buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ammonium Chloride ACS Grade 2&#160; 5KG</td>
			<td>VWR</td>
			<td>97062-048</td>
			<td>Ammonium Chloride Buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Falcon Tissue Culture Dish 60 x 15mm Style polystyrene</td>
			<td>VWR</td>
			<td align="right">353002</td>
			<td>Tissue Culture Dish</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clorox&#174; Germicidal Bleach, Regular</td>
			<td>VWR</td>
			<td>89501-620</td>
			<td>Clorox Bleach</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS, 1X (Phosphate-Buffered Saline) without calcium &#38; magnesium (500mL)</td>
			<td>Thermo Fischer Scientific</td>
			<td>21-040-CV</td>
			<td>PBS, 1X</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM, 1X&#160; with 4.5 g/L glucose &#38; L-glutamine without sodium pyruvate</td>
			<td>Thermo Fischer Scientific</td>
			<td>10-017-CV</td>
			<td>DMEM 1X media for BNL 1ME A.7R.1 cells</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Bovine Seru8m</td>
			<td>Thermo Fischer Scientific</td>
			<td>35-010-CV</td>
			<td>FBS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin Streptomycin Solution, 100X</td>
			<td>Thermo Fischer Scientific</td>
			<td>30-002-Cl</td>
			<td>Penicillin Streptomycin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sorvall Biofuge pico</td>
			<td>Thermo Fischer Scientific</td>
			<td align="right">75002411</td>
			<td>13000rpm Centrifuge</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

isolation and propagation of circulating tumor cells from a mouse cancer model

Cancer metastasis is the foremost cause of cancer-associated deaths. Recent studies have shown that circulating tumor cells (CTCs) are important in cancer metastasis. Indeed, the number of CTCs correlates with tumor size. Here, a detailed description is provided of a methodology for isolation and propagation of CTCs from a syngeneic mouse model of hepatocellular carcinoma (HCC) which allows for downstream analysis of potentially important molecular mechanisms of solid organ tumor metastasis. This method is efficient and reproducible. It is a non-invasive technique and, therefore, has potential to replace the invasive biopsy of tissues from humans which may be associated with complications. Therefore, the method discussed here allows for the isolation and propagation of CTCs from whole blood samples such that they can be examined and characterized. This has potential for future adaptation for clinical applications such as diagnosis, and personalized targeted therapy.

La méthodologie décrite ici a montré que les CTC peuvent être isolés. Les souris ont été euthanasiés au expérimentale point final. Le processus impliqué asphyxie du dioxyde de carbone, l&#39;exsanguination intra-cardiaque et dislocation cervicale. Un schéma d&#39;étapes de cette intervention sont illustrées sur la figure 2. Des échantillons de sang total prélevé par exsanguination intracardiaque ont été traitées selon le protocole décrit ci-dessus. Après quoi, la ce...

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Isolation and Propagation of Circulating Tumor Cells from a Mouse Cancer Model

Circulating tumor cells (CTCs) have been shown to play an important role in tumor metastasis. Here, a method for the isolation and propagation of CTCs from the whole blood of a syngeneic mouse tumor model of hepatocellular carcinoma (HCC) metastasis is described.

L&#39;isolement et la propagation des cellules tumorales circulantes d&#39;un cancer Modèle Souris

Cancer metastasis is the foremost cause of cancer-associated deaths. Recent studies have shown that circulating tumor cells (CTCs) are important in cancer ...

isolation-propagation-circulating-tumor-cells-from-mouse-cancer

Research

JoVE Journal

Medicine

11.9K vues.  Hunter College of The City University of New York. Circulating tumor cells (CTCs) have been shown to play an important role in tumor metastasis. Here, a method for the isolation and propagation of CTCs from the whole blood of a syngeneic mouse tumor model of hepatocellular carcinoma (HCC) metastasis is described.