L’établissement d’un modèle animal pour la dialyse péritonéale, MP, est très important. Nous espérons qu’il pourra améliorer la technologie et l’efficacité de la thérapie MP et éventuellement améliorer la survie du patient. Ce modèle murin de dialyse péritonéale est simple, facile à utiliser et visible par rapport aux autres modèles animaux de dialyse péritonéale.
Un modèle animal de dialyse péritonéale approprié peut aider les chercheurs à étudier le changement péritonéal, physiologique et pathologique au cours de la thérapie MP. La démonstration de la procédure sera assurée par Fang-Ling Liao, un assistant de recherche de mon laboratoire. Pour commencer, préparez l’irritant chimique en diluant 0,1% de gluconate de chlorhexidine dans de l’éthanol à 15%.
Ensuite, assignez trois souris comme groupe témoin et injectez un millilitre par kilogramme de solution saline normale à 0,9% par voie intrapéritonéale tous les deux jours pendant trois semaines pour un total de neuf fois. Ensuite, assignez trois souris au groupe de fibrose péritonéale et induisez une fibrose péritonéale en administrant une injection intrapéritonéale de solution de gluconate de chlorhexidine à 0,1% préparée plus tôt à une dose de 12,5 microlitres par kilogramme de poids corporel. Pour les tests de la fonction péritonéale, préparer une solution de dialyse contenant 4,25% de glucose.
Ensuite, utilisez une seringue pour prélever 0,5 millilitre d’échantillon de dialysat. Préparez une injection de zletil et de xylazine et anesthésiez les souris en administrant une injection intramusculaire. Effectuer l’installation intrapéritonéale de la solution de dialyse à une dose de deux millilitres par 20 grammes de poids corporel.
Faites une petite incision dans la ligne médiane de l’abdomen et recueillez le principal liquide intrapéritonéal avec une seringue. Après 30 minutes, effectuez une incision verticale dans la ligne médiane de l’abdomen sous le processus xiphoïde et ouvrez l’abdomen de la souris pour recueillir le liquide intrapéritonéal résiduel avec une seringue. Ensuite, mesurez le poids d’un coton-tige propre et sec.
Mettez le coton dans la cavité abdominale de la souris pour absorber le liquide intrapéritonéal résiduel, puis retirez-le. Mesurez à nouveau le poids du coton. La coloration trichrome de Masson a montré que le péritoine pariétal de la paroi abdominale dans le groupe exposé au gluconate de chlorhexidine était nettement plus épais et fibrotique que le groupe témoin.
Le péritoine viscéral des surfaces hépatiques était également significativement plus épais et fibrotique dans le groupe exposé au gluconate de chlorhexidine que dans le groupe témoin salin, ce qui indique que la fibrose péritonéale est plus grave dans le groupe exposé au gluconate de chlorhexidine. Le groupe exposé au gluconate de chlorhexidine a montré une diminution du taux d’ultrafiltration et une augmentation du transport de masse de glucose, indiquant que la perméabilité péritonéale augmente chez les souris exposées au gluconate de chlorhexidine. Lors d’une procédure d’injection intrapéritonéale, utilisez les pinces et prélevez la peau abdominale de la souris pour prévenir les dommages aux organes intrapéritonéaux induits par la ponction.
