Ce travail a été soutenu par les subventions accordées à J.H. par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (n° 81800207). L’aide de Beckman Coulter, Inc. pour fournir un soutien pour la cytométrie en flux et l’étalonnage des paramètres est grandement appréciée. Nous remercions Jiao Chen du Laboratoire clé d’État des maladies bucco-dentaires de l’Hôpital de stomatologie de l’Ouest de la Chine de l’Université du Sichuan, et Yu Qi du Centre de recherche en médecine régénérative de l’Hôpital de l’Ouest de l’Université du Sichuan pour leur aide dans l’acquisition de données de cytométrie en flux.

Les expériences de cette étude ont utilisé un total de 10 souris C57BL/6 âgées de 8 à 12 semaines. Les opérations expérimentales ont été menées conformément à un protocole approuvé par le Comité institutionnel de protection et d’utilisation des animaux de l’Université du Sichuan (#201609309). Les matériaux expérimentaux et les paramètres de cytométrie en flux utilisés dans cet article sont répertoriés dans la Table des matériaux.
1. Isolement et prélèvement de cellules de moelle osseuse de souris
<ol><li>Euthanasier les souris en stricte conformité avec les directives de l’établissement. Pour induire une perte de conscience chez la souris, administrer des anesthésiques par inhalation en commençant par 2 % d’isoflurane, suivi d’une augmentation progressive de la dose à 5 % d’isoflurane jusqu’à l’arrêt de la respiration.</li>
	<li>Disséquez les souris dans le bloc opératoire ou dans le placard à fumée. Nettoyez et stérilisez les souris avec de l’éthanol à 70 %.</li>
	<li>Coupez complètement la peau et le muscle de la jambe avec des ciseaux tranchants et disséquez les fémurs.</li>
	<li>Écrasez doucement le fémur avec une tige de broyage dans un mortier et rincez les cellules de la moelle osseuse avec un milieu DMEM jusqu’à ce que l’os devienne blanc.</li>
	<li>Filtrer les cellules de moelle osseuse obtenues à l’aide d’un filtre de 100 μm dans des tubes de 15 mL. Centrifugeuse à 800 x g pendant 5 min à 4 °C.</li>
	<li>Jeter le surnageant et lyser les globules rouges résiduels avec 1 mL de tampon de lyse des globules rouges pendant 1 min à 4 °C. Centrifugeuse à 800 x g pendant 5 min à 4 °C. Après centrifugation, laver à nouveau avec un milieu DMEM.</li>
	<li>Remettre les cellules en suspension dans 2 mL de solution d’incubation (milieu DMEM + 5 % FBS), compter les cellules à l’aide d’un compteur automatique de cellules et ajuster la concentration cellulaire à 1,0 x 106 cellules/mL avec la solution d’incubation.</li>
</ol>2. Coloration cellulaire
<ol><li>Compléter 2 mL de suspension de cellules de moelle osseuse de chaque souris avec 5 μg/mL de Hoechst 33342. À 1 mL d’aliquote supplémentaire, ajouter 100 μM de vérapamil comme témoin négatif.</li>
	<li>Incuber au bain-marie à 37 °C pendant 90 min avec une légère agitation toutes les 30 min.</li>
	<li>Après l’incubation, refroidissez les cellules sur de la glace pendant 5 min, puis centrifugez-les à 250 x g pendant 5 min à 4 °C. Remettre les cellules en suspension dans une solution à froid (HBSS + 2 % FBS). Centrifuger à 4 °C pendant 5 min et jeter le surnageant.</li>
	<li>Remettre en suspension la pastille cellulaire obtenue dans 500 μL de solution courante par échantillon. Avant l’analyse FCM, compléter les cellules avec 2 μg/mL d’iodure de propidium (IP) et les placer sur de la glace pendant environ 5 min.</li>
</ol>3. Cytométrie en flux
REMARQUE : Pour un résumé des différents systèmes et configurations utilisés, veuillez consulter le Tableau 1.
<ol><li>Étalonnez les valeurs du coefficient de variation (CV) des canaux requis à l’aide de fluorosphères de contrôle de la qualité (CQ) quotidiennes dans les FCM et effectuez des tests d’échantillons après la réussite du contrôle de la qualité.<ol><li>Sélectionnez le raccourci du logiciel sur le bureau et lancez-le.</li>
		<li>Sélectionnez Démarrer le contrôle qualité/normalisation dans le menu Contrôle qualité/Normalisation pour accéder à l’expérience de contrôle qualité.</li>
		<li>Insérez le tube d’échantillon de fluorosphères QC dans le support de tube.</li>
		<li>Sélectionnez Démarrer pour charger l’échantillon et commencer à exécuter la procédure de contrôle qualité. Les FCM sont prêts à l’emploi après le passage du contrôle qualité.</li>
	</ol></li>
	<li>Excitez le colorant Hoechst 33342 des mêmes échantillons avec un laser de 355 nm, 375 nm et 405 nm, respectivement, pour la détection du rouge Hoechst dans le canal 690/50 nm et du bleu Hoechst dans le canal 450/50 nm.<ol><li>Créez une nouvelle expérience en sélectionnant Nouvelle expérience dans le menu Fichier, spécifiez le chemin d’accès au fichier et enregistrez l’expérience.</li>
		<li>Sélectionnez Définir la chaîne dans le menu Paramètres. Cochez la case du signal de canal (Y585, V450, V660, NUV450, NUV660, UV450, UV660), puis ajoutez le nom du réactif dans la colonne Étiquette (Y585 : PI ; V450 : Bleu Hoechst-405 mn ; V660 : rouge Hoechst-405 mn ; NUV450 : Bleu Hoechst-375 mn ; NUV660 : Bleu Hoechst-375 mn ; UV450 : Bleu Hoechst-355 nm ; UV660 : Bleu Hoechst-355 nm).</li>
		<li>Cliquez sur les icônes Pseudo Color Plots dans la zone de tracé pour créer des tracés. Sélectionnez un nom d’axe pour modifier le canal affiché.</li>
		<li>Cliquez sur Ajouter un tube dans l’écran Tube à essai pour créer de nouveaux tubes d’échantillon et modifier leurs noms.</li>
		<li>Sélectionnez Exécuter pour charger l’échantillon, afficher les tracés et établir les portes. Ajustez les paramètres de gain et de seuil. Sélectionnez Enregistrer pour enregistrer les données.</li>
	</ol></li>
	<li>Concevez la logique de réglage des portes.<ol><li>Pour le premier graphique, cliquez sur l’axe X pour sélectionner FSC-W et cliquez sur l’axe Y pour sélectionner FSC-A. Sélectionnez Porte polygonale pour dessiner la porte A afin d’entourer la cellule individuelle et d’exclure les cellules adhérentes (Figure 1A).</li>
		<li>Pour le deuxième graphique, cliquez sur l’axe des X pour sélectionner FSC-A et cliquez sur l’axe des Y pour sélectionner SSC-A. Sélectionnez Porte polygonale pour dessiner la porte B afin de séparer les cellules non fragmentaires et d’exclure les débris cellulaires (Figure 1B).</li>
		<li>Pour le troisième graphique, cliquez sur l’axe X pour sélectionner PI-A et cliquez sur l’axe Y pour sélectionner SSC-A. Sélectionnez la porte polygonale pour dessiner la porte D. Sélectionnez Cellules actives présentant un PI négatif (Figure 1C) et dessinez la porte C pour obtenir des cellules actives.</li>
		<li>Pour le quatrième graphique bidimensionnel, cliquez sur l’axe X pour sélectionner Hoechst Red et cliquez sur l’axe Y pour sélectionner Hoechst Blue. Cliquez avec le bouton droit de la souris sur le tracé et sélectionnez Propriété dans le menu déroulant. Sélectionnez Format linéaire fou les axes X et Y. Sélectionnez Porte polygonale pour dessiner la porte SP afin d’obtenir les cellules SP (Figure 1D).</li>
	</ol></li>
	<li>Pour évaluer l’éligibilité de l’échantillon, utilisez 355 nm d’un cytomètre en fluxspécifique 23 pour la détection des cellules SP.</li>
	<li>Utilisez simultanément les lasers 355 nm (puissance laser : 20 mW) et 405 nm (puissance laser : 80 mW) pour détecter à la fois les cellules de contrôle (avec l’ajout de vérapamil) et les cellules expérimentales.</li>
	<li>Acquérir des signaux de fluorescence sur les canaux 690/50 nm et 450/50 nm correspondant aux deux lasers. Observez la stimulation efficace du colorant Hoechst 33342 par des lasers de 355 nm et 405 nm avec des cellules SP transparentes (Figure 2B-C).</li>
	<li>Pour les mêmes échantillons, utilisez les lasers 375 nm (puissance laser : 60 mW) et 405 nm (puissance laser : 80 mW) pour la détection des cellules.</li>
</ol>

Méthode alternative d’excitation laser pour une détection facile des cellules de population latérale

<ol>
	<li>Goodell, M. A., Brose, K., Paradis, G., Conner, A. S., Mulligan, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+functional+properties+of+murine+hematopoietic+stem+cells+that+are+replicating+in+vivo.">Isolation and functional properties of murine hematopoietic stem cells that are replicating in vivo.</a> J Exp Med. 183 (4), 1797-1806 (1996).</li><li>Zhou, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+ABC+transporter+Bcrp1/ABCG2+is+expressed+in+a+wide+variety+of+stem+cells+and+is+a+molecular+determinant+of+the+side-population+phenotype.">The ABC transporter Bcrp1/ABCG2 is expressed in a wide variety of stem cells and is a molecular determinant of the side-population phenotype.</a> Nat Med. 7 (9), 1028-1034 (2001).</li><li>Camargo, F. D., Chambers, S. M., Drew, E., McNagny, K. M., Goodell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hematopoietic+stem+cells+do+not+engraft+with+absolute+efficiencies.">Hematopoietic stem cells do not engraft with absolute efficiencies.</a> Blood. 107 (2), 501-507 (2006).</li><li>Challen, G. A., Boles, N. C., Chambers, S. M., Goodell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+hematopoietic+stem+cell+subtypes+are+differentially+regulated+by+TGF-beta1.">Distinct hematopoietic stem cell subtypes are differentially regulated by TGF-beta1.</a> Cell Stem Cell. 6 (3), 265-278 (2010).</li><li>Asakura, A., Seale, P., Girgis-Gabardo, A., Rudnicki, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myogenic+specification+of+side+population+cells+in+skeletal+muscle.">Myogenic specification of side population cells in skeletal muscle.</a> J Cell Biol. 159 (1), 123-134 (2002).</li><li>Terrace, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Side+population+cells+in+developing+human+liver+are+primarily+haematopoietic+progenitor+cells.">Side population cells in developing human liver are primarily haematopoietic progenitor cells.</a> Exp Cell Res. 315 (13), 2141-2153 (2009).</li><li>Martin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adult+lung+side+population+cells+have+mesenchymal+stem+cell+potential.">Adult lung side population cells have mesenchymal stem cell potential.</a> Cytotherapy. 10 (2), 140-151 (2008).</li><li>Challen, G. A., Bertoncello, I., Deane, J. A., Ricardo, S. D., Little, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Kidney+side+population+reveals+multilineage+potential+and+renal+functional+capacity+but+also+cellular+heterogeneity.">Kidney side population reveals multilineage potential and renal functional capacity but also cellular heterogeneity.</a> J Am Soc Nephrol. 17 (7), 1896-1912 (2006).</li><li>Mouthon, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+stem+cells+from+mouse+forebrain+are+contained+in+a+population+distinct+from+the+'side+population'.">Neural stem cells from mouse forebrain are contained in a population distinct from the 'side population'.</a> J Neurochem. 99 (3), 807-817 (2006).</li><li>Cordon-Cardo, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cancer+stem+cells.">Cancer stem cells.</a> Ann Oncol. 21 (Suppl 7), 93-94 (2010).</li><li>Lapidot, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+cell+initiating+human+acute+myeloid+leukaemia+after+transplantation+into+SCID+mice.">A cell initiating human acute myeloid leukaemia after transplantation into SCID mice.</a> Nature. 367 (6464), 645-648 (1994).</li><li>Yun, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeting+cancer+stem+cells+in+castration-resistant+prostate+cancer.">Targeting cancer stem cells in castration-resistant prostate cancer.</a> Clin Cancer Res. 22 (3), 670-679 (2016).</li><li>Lupia, M., Cavallaro, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ovarian+cancer+stem+cells:+still+an+elusive+entity.">Ovarian cancer stem cells: still an elusive entity.</a> Mol Cancer. 16 (1), 64 (2017).</li><li>Zhao, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=AQP5+complements+LGR5+to+determine+the+fates+of+gastric+cancer+stem+cells+through+regulating+ULK1+ubiquitination.">AQP5 complements LGR5 to determine the fates of gastric cancer stem cells through regulating ULK1 ubiquitination.</a> J Exp Clin Cancer Res. 41 (1), 322 (2022).</li><li>Liu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+lncRNA+ROPM-mediated+lipid+metabolism+governs+breast+cancer+stem+cell+properties.">A novel lncRNA ROPM-mediated lipid metabolism governs breast cancer stem cell properties.</a> J Hematol Oncol. 14 (1), 178 (2021).</li><li>Ho, M. M., Ng, A. V., Lam, S., Hung, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Side+population+in+human+lung+cancer+cell+lines+and+tumors+is+enriched+with+stem-like+cancer+cells.">Side population in human lung cancer cell lines and tumors is enriched with stem-like cancer cells.</a> Cancer Res. 67 (10), 4827-4833 (2007).</li><li>Chiba, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Side+population+purified+from+hepatocellular+carcinoma+cells+harbors+cancer+stem+cell-like+properties.">Side population purified from hepatocellular carcinoma cells harbors cancer stem cell-like properties.</a> Hepatology. 44 (1), 240-251 (2006).</li><li>Haraguchi, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+a+side+population+of+cancer+cells+from+human+gastrointestinal+system.">Characterization of a side population of cancer cells from human gastrointestinal system.</a> Stem Cells. 24 (3), 506-513 (2006).</li><li>Zhou, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activation+of+the+PTEN/mTOR/STAT3+pathway+in+breast+cancer+stem-like+cells+is+required+for+viability+and+maintenance.">Activation of the PTEN/mTOR/STAT3 pathway in breast cancer stem-like cells is required for viability and maintenance.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (41), 16158-16163 (2007).</li><li>Ota, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ADAM23+is+downregulated+in+side+population+and+suppresses+lung+metastasis+of+lung+carcinoma+cells.">ADAM23 is downregulated in side population and suppresses lung metastasis of lung carcinoma cells.</a> Cancer Sci. 107 (4), 433-443 (2016).</li><li>Wang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ALCAM+regulates+multiple+myeloma+chemoresistant+side+population.">ALCAM regulates multiple myeloma chemoresistant side population.</a> Cell Death Dis. 13 (2), 136 (2022).</li><li>Wang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Homoharringtonine+synergizes+with+quizartinib+in+FLT3-ITD+acute+myeloid+leukemia+by+targeting+FLT3-AKT-c-Myc+pathway.">Homoharringtonine synergizes with quizartinib in FLT3-ITD acute myeloid leukemia by targeting FLT3-AKT-c-Myc pathway.</a> Biochem Pharmacol. 188, 114538 (2021).</li><li>Dong, X. L., Wei, Y. Y., Xu, T., Tan, X. Y., Li, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+side+population+in+solid+tumor+cell+lines.">Analysis of side population in solid tumor cell lines.</a> J Vis Exp. (168), e60658 (2021).</li><li>Bhowmick, D., Sheridan, R. T. C., Bushnell, T. P., Spalding, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Practical+guidelines+for+optimization+and+characterization+of+the+Beckman+Coulter+CytoFLEX+platform.">Practical guidelines for optimization and characterization of the Beckman Coulter CytoFLEX platform.</a> Cytom Part A. 97 (8), 800-810 (2020).</li></ol>

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Nous avons utilisé le protocole décrit pour mener trois expériences, chaque essai impliquant 3 à 4 souris, ce qui a donné un total de 10 souris. La proportion de cellules SP variait de 0,05 % à 0,76 %. Il est important de noter que des variations individuelles ont été observées chez les souris. Nous avons utilisé quatre cytomètres en flux pour analyser les échantillons de Hoechst. On observe que l’excitation du colorant Hoechst par un laser de 20 mW 355 nm sur la nouvelle version de la cytométrie en flux e...

Les cellules de la population latérale (SP) sont identifiées par coloration Hoechst 33342 et analysées par cytométrie en flux (FCM). Les cellules SP sont caractérisées par le pompage du colorant d’ADN fluorescent hors des cellules par le biais deleur transporteur 1,2 de la cassette de liaison à l’ATP (ABC). La méthode a été établie à l’origine pour isoler les cellules souches hématopoïétiques (CSH) de la moelle osseuse murine1. Les cellules SP de la moelle osseuse ont été enrichies d’une population de CSH caractérisée par unefaible expression de CD117+Sca-1+Lin-Thy1 3,4. Par la suite, la méthode a été largement utilisée pour isoler et enrichir les cellules souches d’autres tissus, notamment le muscle cardiaque5, le foie6, le poumon7, le rein8 et le cerveau antérieur9. En particulier, la méthode a été appliquée pour isoler des cellules souches cancéreuses (CSC) au cours de la dernière décennie. Les CSC représentent une petite population de cellules qui possèdent les propriétés d’initiation tumorale, d’auto-renouvellement, de résistance à la chimiothérapie et de potentiel métastatique10. Les CSC ont d’abord été identifiés dans les tumeurs malignes hématopoïétiques11 et ont ensuite été observés dans diverses tumeurs solides telles que les carcinomes de la prostate12, de l’ovaire13, de l’estomac14, du sein15 et du poumon16. Malgré la disponibilité de diverses techniques d’identification des CSC, la technique SP reste un choix privilégié en raison de sa large applicabilité à divers tissus et lignées cellulaires. De plus, il s’agit d’une technique précieuse qui isole les CSC à l’aide du tri cellulaire activé par fluorescence (FACS)16,17,18. Les résultats expérimentaux démontrent que les cellules SP présentent une tumorigénicité prononcée et des niveaux d’expression élevés des gènes associés aux cellules souches19,20. Notre étude précédente21 a également démontré que l’analyse transcriptomique des cellules SP isolées dans le myélome multiple révèle un enrichissement des voies de signalisation associées aux cellules souches, telles que la voie du hérisson. Pendant ce temps, nous avons effectué des analyses d’enrichissement des voies sur les gènes exprimés de manière différentielle dans les cellules SP de la leucémie myéloïde aiguë22. Les gènes modifiés ont été enrichis dans des voies liées aux cellules souches (Wnt/β-caténine, TGF-β, Hedgehog, Notch). Nous avons constaté que 1 x 105 cellules SP pouvaient former des tumeurs chez les souris nulles BALB/c22, alors que les cellules non SP ne le pouvaient pas, ce qui indique que les cellules SP présentaient des caractéristiques des cellules souches de leucémie. L’efficacité de la méthode SP de Hoechst dans l’identification des CSC est évidente.
Le protocole Hoechst SP a été affiné et amélioré au fur et à mesure de la progression de la recherche. Le protocole implique un contrôle rigoureux de la concentration du colorant, de la densité cellulaire, de la température et de la durée d’incubation, de la composition du tampon et de la valeur du pH. Les échantillons de cellules préparés conformément à ce protocole ont été soumis à une analyse par cytométrie en flux. En raison de l’excitation du colorant Hoechst avec un laser UV à 355 nm et de la détection de son émission de fluorescence à l’aide d’un filtre 690/50 nm (Hoechst Red) et d’un filtre 450/50 nm (Hoechst Blue), un laser 350 nm est nécessaire pour FCM. Cependant, les lasers 350 nm ne sont pas couramment équipés dans la plupart des FCM en raison de leur coût élevé. Par conséquent, nous avons tenté de trouver une approche alternative pour l’excitation du colorant afin de détecter efficacement les cellules SP par cytométrie en flux. Dans cette étude, la capacité des lasers de 375 nm et de 405 nm à détecter les cellules SP a été évaluée et comparée à celle du laser de 355 nm. Nos résultats démontrent une similitude remarquable entre les cellules SP détectées par les lasers de 355 nm, 375 nm et 405 nm. Ces résultats suggèrent que les lasers haute puissance de 375 nm et 405 nm peuvent servir d’alternatives réalisables au laser 355 nm pour la détection de cellules SP. L’inclusion de sources lumineuses d’excitation supplémentaires pour Hoechst 33342 facilite l’utilisation d’un plus grand nombre de modèles de cytométrie en flux.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Automatic cell counter</td>
			<td>Countstar</td>
			<td>1M1200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell Filter(100 &#181;m)</td>
			<td>BIOFIL</td>
			<td>CSS-013-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Daily quality control fluorospheres</td>
			<td>Beckman Coulter</td>
			<td>B5230</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#39;s Modification of Eagle&#39;s Medium with 4.5g/L glucose (DMEM medium)</td>
			<td>CORNING</td>
			<td>10-013-CVRC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal bovine serum</td>
			<td>CORNING</td>
			<td>35-081-CV</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HBSS</td>
			<td>Hyclone</td>
			<td>SH30030.02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hoechst 33342</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>B2261</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propidium iodide (PI)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P4170</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Red blood cell lysis buffer</td>
			<td>Beyotime</td>
			<td>C3702</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Verapamil</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>V4629</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

effective detection of hoechst side population cells by flow cytometry

Les cellules de la population latérale (SP) sont identifiées par coloration Hoechst 33342 et analysées par cytométrie en flux (FCM). La méthode SP de Hoechst est utilisée pour l’isolement des cellules souches en fonction des propriétés d’efflux de colorant des transporteurs de cassette de liaison à l’ATP (ABC). La méthode a d’abord été utilisée pour l’identification et l’isolement des cellules souches hématopoïétiques (CSH), mais elle a maintenant évolué pour se concentrer principalement sur l’identification et l’isolement des cellules souches cancéreuses (CSC). La méthode de détection traditionnelle de la FCM utilise un laser de 355 nm pour exciter le colorant afin de détecter les cellules SP. Grâce à cette étude, nous avons réussi à identifier des approches alternatives pour l’excitation du colorant qui peuvent remplacer efficacement la détection des cellules SP à l’aide d’un laser de 355 nm. Ceci est réalisé grâce à l’utilisation de lasers haute puissance de 375 nm ou 405 nm. Cela nous permet d’exercer une sélectivité accrue dans la détection des cellules SP plutôt que de nous limiter uniquement à la cytométrie en flux laser de 355 nm.

The side population (SP) cells are identified through Hoechst 33342 staining and analyzed using flow cytometry (FCM). The SP cells are characterized by the pumping of the fluorescent DNA dye out of the cells through their ATP-binding cassette (ABC) transporter1,2. The method was originally established for isolating murine bone marrow hematopoietic stem cells (HSCs)1. The bone marrow SP cells were enriched with a population of HSCs characterized by &#160;CD117+Sca-1+Lin-Thy1low&#160;expression3,4. Thereafter, the method was widely used to isolate and enrich stem cells from other tissues, including cardiac muscle5, liver6, lung7, kidney8, and forebrain9. In particular, the method has been applied to isolate cancer stem cells (CSCs) in the past decade. CSCs represent a small population of cells that possess the properties of tumor initiation, self-renewal, resistance to chemotherapy, and metastatic potential10. CSCs were initially identified in hematopoietic malignancies11 and subsequently observed in various solid tumors such as the prostate12, ovarian13, gastric14, breast15, and lung16 carcinomas. Despite the availability of various techniques for CSC identification, the SP technique remains a favored choice owing to its broad applicability across diverse tissues and cell lines. Moreover, it is a valuable technique that isolates CSCs using fluorescence-activated cell sorting (FACS)16,17,18. The experimental findings demonstrate that SP cells exhibit pronounced tumorigenicity and display elevated expression levels of stem cell-associated genes19,20. Our previous study21 has also demonstrated that transcriptomic analysis of isolated SP cells in multiple myeloma reveals enrichment of signaling pathways associated with stem cells, such as the hedgehog pathway. Meanwhile, we performed pathway enrichment analyses on the genes differentially expressed in the SP cells of acute myelogenous leukemia22. The altered genes were enriched in stem cell-related pathways (Wnt/&#946;-catenin, TGF-&#946;, Hedgehog, Notch). We found that 1 x 105 SP cells could form tumors in BALB/c null mice22, whereas non-SP cells could not, indicating that SP cells had characteristics of leukemia stem cells. The efficacy of the Hoechst SP method in the identification of CSCs is evident.
The Hoechst SP protocol has been refined and enhanced through the progression of research. The protocol entails stringent control of the dye concentration, cell density, incubation temperature and duration, buffer composition, and pH value. The cell samples prepared in accordance with this protocol were subjected to flow cytometric analysis. Due to the excitation of Hoechst dye with a UV laser at 355 nm and detection of its fluorescence emission using both a 690/50 nm filter (Hoechst Red) and 450/50 nm filter (Hoechst Blue), a 350 nm laser is required for FCM. However, 350 nm lasers are not commonly equipped in most FCMs because of their high cost. Hence, we attempted to find an alternate approach for&#160;dye excitation for the effective detection of SP cells by flow cytometry. In this study, the capability of the 375 nm and 405 nm lasers in detecting SP cells was assessed and compared with that of the 355 nm laser. Our findings demonstrate a remarkable similarity between the SP cells detected by the 355 nm, 375 nm, and 405 nm lasers. These results suggest that the high-power 375 nm and 405 nm lasers can serve as feasible alternatives to the 355 nm laser for SP cell detection. The inclusion of additional excitation light sources for Hoechst 33342 facilitates the use of more flow cytometry models.

Pleins feux sur l’auteur : Techniques laser innovantes pour la coloration de Hoechst afin d’analyser les cellules de population latérale

Détection efficace des cellules de la population du côté de Hoechst par cytométrie en flux

Dans la figure 2, le groupe témoin a été traité avec du vérapamil, qui bloque les transporteurs ABC dans les cellules souches pour empêcher l’élimination de Hoechst 33342. Ainsi, les cellules souches du groupe non-vérapamil expulsent Hoechst 33342 et forment une population cellulaire négative connue sous le nom de cellules SP. Le laser de 355 nm a efficacement excité le colorant Hoechst 33342, ce qui a permis une observation claire des cellules SP de la moelle osseuse (<strong cl...

Ici, nous montrons que les lasers haute puissance de 375 nm et 405 nm peuvent exciter efficacement Hoechst 33342 et servir d’alternative viable au laser 355 nm pour la détection de cellules de population latérale (SP), élargissant ainsi la gamme de lasers disponibles dans les applications de cytométrie en flux.

The side population (SP) cells are identified through Hoechst 33342 staining and analyzed using flow cytometry (FCM). The Hoechst SP method is utilized ...

effective-detection-of-hoechst-side-population-cells-by-flow-cytometry

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Effective Detection of Hoechst Side Population Cells by Flow Cytometry

574 vues.  Sichuan University. Nous utilisons la méthode de population de coloration de Hoechst pour détecter les cellules initiatrices de tumeurs. Dans cet article, nous essayons de trouver des approches alternatives pour l’excitation de Hoechst. Nous avons constaté que les lasers haute puissance de 375 nanomètres et 405 nanomètres peuvent servir d’alternatives réalisables au laser traditionnel de 355 millimètres.Conventionnellement, le colorant Hoechst est excité avec ...

Vidéo: Pleins feux sur l’auteur : Techniques laser innovantes pour la coloration de Hoechst afin d’analyser les cellules de population latérale

The side population (SP) cells are identified through Hoechst 33342 staining and analyzed using flow cytometry (FCM). The Hoechst SP method is utilized for the isolation of stem cells based on the dye efflux properties of ATP-binding cassette (ABC) transporters. The method was initially employed for the identification and isolation of hematopoietic stem cells (HSCs), but it has now evolved to primarily focus on the identification and isolation of cancer stem cells (CSCs). The traditional detection method of FCM uses a 355 nm laser to excite the dye to detect SP cells. Through this study, we have successfully identified alternative approaches for dye excitation that can effectively replace the detection of SP cells using a 355 nm laser. This is achieved through the utilization of high-power 375 nm or 405 nm lasers. This allows us to exercise enhanced selectivity in the detection of SP cells rather than being solely limited to the 355 nm laser flow cytometry.

Here, we show that high-power 375 nm and 405 nm lasers can effectively excite Hoechst 33342 and serve as a viable alternative to the 355 nm laser for side population (SP) cell detection, thereby expanding the range of available lasers in flow cytometry applications.

Recherche

Recherche en cancérologie

Staining Mouse Bone Marrow Cells with Hoechst to Detect Side Population Cells by Flow Cytometry

Coloration de cellules de moelle osseuse de souris avec Hoechst pour détecter les cellules de population latérale par cytométrie en flux

Flow Cytometry of Hoechst-Stained Mouse Bone Marrow Cells for Effective Detection of Side Population Using High-Power 375 nm and 405 nm Lasers

Cytométrie en flux de cellules de moelle osseuse de souris colorées à Hoechst pour une détection efficace de la population latérale à l’aide de lasers haute puissance de 375 nm et 405 nm