Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

ההגברה מחזורית misfolding חלבון (PMCA) היא assay במבחנה לחקר גיור פריון ומחסומי מתח ומינים. זה גם יכול לשמש כבדיקת גילוי פריונים.

Abstract

פריונים הם גורמים מזהמים שגורמים ספג המוח המסיר תמיד הקטלני (TSE) בחיות ובני אדם 9,18. חלבון הפריון יש שני isoforms השונה, חלבון שאינו מדבק מארח בקידוד (PRP C) וחלבון המדבק (PRP Sc), איזופורם חריג מקופל של PRP C 8.

אחד האתגרים של עבודה עם סוכני פריונים הוא תקופת הדגירה הארוכה לפני התפתחות סימנים קליניים לאחר חיסון מארח 13. זה מנדט מסורתי מחקרי אסיי לבעלי חיים ארוכים ויקרים. יתר על כן, את התכונות הביוכימיות וbiophysical של PRP Sc מאופיינות גרוע עקב מצבי הצבירה קונפורמציה ויוצאת הדופן שלהם.

PRP Sc יכול לזרוע את ההמרה של PRP C כדי PRP Sc במבחנה 14. PMCA היא טכניקה במבחנה שלוקחת אדוהntage של יכולת זו באמצעות מחזורי sonication ודגירה כדי לייצר כמויות גדולות של PRP Sc, בקצב מואץ, ממערכת המכילה כמויות עודפות של PRP C וכמויות זעירות של זרע PRP Sc 19. טכניקה זו הוכיחה את היעילות לסכם את הספציפיות מינים וזן של PRP Sc המרה מPRP C, לחקות הפרעות מתח פריון, וכדי להגביר את הרמות נמוכות מאוד של PRP Sc מרקמות נגועות, נוזלים, ודגימות סביבתיות 6,7,16, 23.

פרטי נייר זה פרוטוקול PMCA, כולל המלצות לצמצום זיהום, שהניב תוצאות עקביות, וכימות תוצאות אלה. גם אנחנו דנים כמה יישומי PMCA, כולל דור ואפיון של זני זיהומיות פריון, הפרעות מתח פריון, וזיהוי של פריונים בסביבה.

Protocol

1. הכנת הציוד

  1. השתמש Misonix 3000 או 4000 sonicator Misonix (Farmingdale, ניו יורק) מחובר לThermo Electron Neslab אמבטית EX-7 מים (Newington, NH) כדי לשמור על טמפרטורה קבועה של 37 מעלות צלזיוס Sonicate את הדגימות ב200 רצועות μl בעלי קירות דקים PCR צינור עם כובעים כיפה מתקבלים מThermo Scientific (Waltham, MA).
  2. Sonicator מותג חדש דורש "פריצה" תקופת ההפעלה רציפה 9. פריצה של חודשי תקופה מורכבת של פרץ 40-sec sonication ומחזורי דגירה 10-דקה עם רמת המשרעת להגדיר עד 10. אדם צריך להתבונן בשחיקה לאורך פני השטח של טיטן microplate הצופר (1 איור, לוח ב '). המים זורמים ייראו עכורים לבן עקב שחיקה של טיטניום microplate הצופר. החלף את המים מדי יום.
  3. ההגברה של PRP Sc תשתנה לאורך קרן microplate. יעילות ההגברה הטובה ביותר PRP Sc ניתן לקבל בתוךברדיוס של 5 סנטימטר ממרכז microplate הקרן (ראה תרשים 1, לוח ג').
  4. סיבוב אחד PMCA מורכב 144 מחזורים. כל מחזור מורכב מsonication 5 שניות ודגירת דקות 10. זה בערך כרוך ל24 שעות בכל סבב של PMCA.
  5. תפוקת החשמל של sonication, מוצגת בלוח הבקרה של sonicator, משתנית עם המספר של צינורות הנמצאים במדף של sonicator והטמפרטורה של מים זורמים מאמבט מי PCR. ודא שהמים מתאזנים על 37 מעלות צלזיוס, ולא למלא יותר מ 30% ממתלת הצינור של sonicator (1 איור, לוח C). מורח את צינורות PCR דרך קרן microplate. יש שורה אחת לפחות של חלל ריק בין רצועות צינור PCR ולאפשר לא יותר מארבעה צינורות המחוברים יחדיו לרצועה (1 איור, לוח C).
  6. כוחו של sonication הוא קריטי להגברת לחץ פריון מוצלחת. בעוד sonicating, להתאים את המשרעת ליש כוח תפוקההנע בין 155 ~ 170 ואט. במעבדה שלנו ברמת הכח מוגדרת לשישה ושבעה לMisonix 3000 ו Misonix 4000, בהתאמה.
  7. השתמש במים מזוקקים באמבט המים כדי להימנע מצבירת כתמי מים קשים. חלף שבוע מים זה. במהלך מחזורי הדגירה וsonication, עיבוי מים יתרחש בתוך מכסת צופר microplate. כדי למנוע התעבות, לצרף פנקס חום אקווריום קטן לחלק העליון של תיבת המארז של sonicator כפי שמוצג באיור 1, לוח א '

2. הכנת הדוגמות

  1. כל ההליכים כרוכים בבעלי חיים אושרו על ידי הטיפול בבעלי החיים המוסדי אוניברסיטת קרייטון ומשתמשים ועדה ולעמוד במדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה. לפני כל אוסף רקמות, החיה חייבת להיות מורדמת וtranscardially perfused באמצעות פוספט קר כקרח שנאגר תמיסת מלח עם 5 מ"מ בEDTA pH 7.4 להסיר דם מהמוח ולהימנע מהעיכוב שלתגובת PMCA ידי דם 7. איסוף רקמות חיות במהירות באמצעות טכניקת aseptic ויש כלי נתיחה ייעודיים עבור כל זן פריון. לאחר נתיחה, הנח את הרקמה בצינור microcentrifuge מ"ל 1.5, פלאש להקפיא אותו על קרח יבש, ולאחסן אותו ב-80 ° C עד הומוגניות.
  2. כדי להכין את מצע PMCA פתרון (PRP C), הומוגני מוח אוגר אינו נגוע (האו"ם BH) לפתרון 10% משקל / נפח (W / V) עם חיץ המרת קרח קר (ראה חלק 3) באמצעות מטחנת רקמת Tenbroeck. בעוד מאחד, להיזהר לא להכניס אוויר בתוך המטחנה להימנע מוגזם קצף מהפתרון. הבהר את הפתרון על ידי צנטריפוגה XG ב 500 למשך 30 שניות וaliquot supernatant ב1.5 צינורות microcentrifuge מ"ל. חנות ב -80 ° C עד שימוש נוסף.
  3. כדי להכין את פתרון זרע PMCA (PRP Sc), הומוגני חומר זיהומיות (מוח, טחול, בלוטות הלימפה, רקמות אחרות או אדמה מזוהמת) כדי 10% פתרון w / v עם wate הקר כקרחr וaliquot הפתרון ב 0.6 צינורות microcentrifuge מ"ל. חנות ב -80 ° C עד שימוש נוסף.

3. הכנת מאגר המרות

  1. שוקל 0.5093 גרם של טריטון X-100 בנפח בקבוק 50 מ"ל (תוצאה היא 1% ריכוז סופי של טריטון X-100) (סיגמה אולדריץ GmbH; Steinheim, גרמניה).
  2. הוסף פרוטאז אינהיביטור Tablet אחת שלם (Roche Diagnostics GmbH; מנהיים, גרמניה).
  3. הוסף 0.0931 גרם של EDTA (זה יביא לריכוז סופי של 5 מ"מ EDTA) (Mallinckrodt ייקר Inc; Phillipsburg, ניו ג'רזי).
  4. התאם את ה-pH ל 7.4 עם 1N NaOH.
  5. התאם נפח 50 מ"ל עם פוספט של Dulbecco נאגר מלוח (DPBS) (Mediatech Inc; Manassas, VA).
  6. סנן את הפתרון דרך קרום ניטרוצלולוזה מיקרומטר 0.45 עם מנגנון סינון ואקום. חיץ ההמרה ניתן לאחסן ב 4 מעלות צלזיוס למשך לא יותר מפעם אחת בחודש.

4. הגברה של זני פריוני שימוש PMCA

  1. לדלל את זרע PMCA לתוך מצע PMCA ביחס של 1:20 (5 μl תמהיל כלומר מזרע PMCA ו95 μl של מצע PMCA) לתוך צינור PCR. הסר ולאחסן aliquot μl 15 ב-80 ° C לבקרת unsonicated; שליטת unsonicated זה ישמש לכמת הגברת PRP Sc דרך עיכול proteinase K (קי) ואחריו הניתוח מערבי כתם (WB). שליטת unsonicated נוספת יכולה להיות שנוצרה על ידי נחת aliquot μl 15 שניות על 37 מעלות צלזיוס למשך PMCA התגובה. מינימום שלוש חזרות נדרש למטרות סטטיסטיות.
  2. נושא שארית המדגם (70 μl) לסיבוב אחד של PMCA כמתואר בתרשים 1, לוח א 'Shake צינורות כל 5 hr כדי למנוע התעבות מים על כובע הכיפה של צינור PCR.
  3. הצינורות של המדגם צריכים להיות סובבים למטה ועדינות vortexed (נזהר שהפתרון אינו נכנס כיפה) לפני הפתיחה אחרי כל הליך כדי להבטיח homogeneity ולמנוע אפשרות של זיהום.
  4. לPMCA הסידורי (sPMCA) של זני תקופת דגירה קצרים (כלומר ח.י. TME, HaCWD, או 263K), לדלל את החומר בsonicated יחס של 1:20 ידי העברת 5 μl של מדגם sonicated מסיבוב אחד ל95 μl של נגוע טרי המוח homogenate (איור 2, לוח ב ').
  5. לsPMCA של זני תקופת דגירה ארוכים (כלומר ד.י. TME, 139H, 22CH, 22AH, או ME7H), לדלל את חומר sonicated ביחס של 1:1 על ידי העברת 50 μl של מדגם sonicated מסיבוב אחד ל50 μl של נגוע טרי המוח homogenate (איור 2, לוח ב ').
  6. הסרת שתי 15 aliquots μl מתערובת sonicated דילול בעבר (מצעדי 4.4 או 4.5) ולאחסן את אחד מהם ב-80 ° C והשני על 37 מעלות צלזיוס (פתרוני בקרה unsonicated לPMCA סיבוב השני). להכפיף את השרידים לPMCA סיבוב שני.
  7. הליך זה ניתן לחזור ללא הגבלה זמן. במעבדה שלנו, אנחנובצע עד 15 סיבובי PMCA, עם מאפייני הזן שנותרו ללא שינוי.
  8. PK לעכל את הדגימות. לWB טיפוסי, לערבב 5 μl של קי μl 80 מיקרוגרם / מ"ל ​​עד 5 מתוך מדגם (פתרון זה יהיה ריכוז PK סופי של 40 מיקרוגרם / מ"ל) ולדגור על 37 מעלות צלזיוס במשך שעה אחת. הוסף 10 μl של חיץ טעינת ג'ל. פתרון זה מרתיח למשך 10 דקות. בואו הפתרון להתקרר ולטעון 10 μl לג'ל.
  9. כדי לחשב את ההצלחה של הגברה לבצע ניתוח WB על דגימות PK-מתעכלים להעריך את הכמות המוגברת PRP Sc ידי ההשוואה לאחד, פקדי unsonicated 20,21 תרשים 2, לוח C או לסכומים ידועים של PK-מעוכלים רקומביננטי PRP.

5. הימנעות מזיהום צולב

שלבים קריטיים יש לנקוט כדי למזער את הזיהום צולב ואת המופע של תוצאות חיוביות שגויות עקב דה נובו היווצרות של מוצרים עמידים פרוטאז.

  1. שימוש בערכה ייעודית של כלי נתיחה (כלומר מלקחיים, פינצטה, מספריים) לאיסוף דגימה לכל זן פריון.
  2. לפני מאחד מוחות נגועים כדי לשמש כמצע PMCA, נגב את pipettes באקונומיקת 1%. משרה המדף של sonicator PCR הצינור, homogenizers רקמות, ומדפי אחסון צינור PCR באקונומיקת 1% למשך 10 דקות ולשטוף היטב במים מזוקקים.
  3. לכסות את אזור העבודה עם שתיין Versi-יבשת מעבדת טריה בכל פעם מדגם חדש הוא להיות homogenized, ניסוי PMCA חדש הוא להיות מוכן, או כאשר aliquoting בין סיבובי sPMCA.
  4. השתמש בכפפות בכל פעם חדשות דגימות חדשות מטופלות (במיוחד בעת העברת aliquots בין סיבובי sPMCA).
  5. השתמש פרצי sonication קצרים לכל מחזור PMCA. המחזורים של sonication 5 שניות בשילוב עם דגירת 10 דקות מספיקים כדי להגביר פריונים מבלי ליצור דה נובו PRP Sc 1,20,21,23,24. כמעבדות אחרות הראו, הגדלהזמן sonication, הגדלת המשרעת sonication, ולהרחיב את מספר מחזורי PMCA מגדילה את ההסתברות לדה נובו PRP Sc היווצרות 2.

תוצאות

הגברה מחזורית misfolding חלבון (PMCA) משמשת כדי להגביר PRP Sc במבחנת 7, 12, 14, 19, 24. הגברת Sc PRP מוצלחת מוצגת על ידי עלייה בעוצמת להקה על כתמים מערביים של חלבון פריון קי העמיד (נודד בין 19 ו 30 kDa לזני פריוני אוגר-derived) כפי שמוצג באיור 3. העלייה בעוצמת הלהקה ?...

Discussion

אתגרים של חלבוני פריונים זיהומיות הגברה הם תקופות ארוכות דגירה וההוצאות של בניסויי vivo. טכניקת PMCA היא אמצעי חסכוני לסוכנים להגביר את פריון זיהומיות. מספר מעבדות שאשרו את היכולת של PMCA במדויק כדי להגביר זני פריון במבחנה 7, 9, 12, 14, 19,24.

Disclosures

אין ניגודי האינטרסים הכריזו.

Acknowledgements

ברצוננו להודות לד"ר Vesper פה מארי ראמוס לקריאה ביקורתית של כתב היד. עבודה זו נתמכה על ידי המרכז הלאומי למשאבי מחקר (P20 RR0115635-6, C06 RR17417-01 וG20RR024001) ומכון הלאומי להפרעות נוירולוגיות ושבץ (2R01 NS052609).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
מגיב / ציוד יצרן חתול. מספר
Misonix 3000 Misonix S-3000
Misonix 4000 Misonix S-4000
מטחנות רקמות Tenbroeck Kontes 885000-0007
Neslab אמבטית EX-7 מים Thermo Electron Neslab EX-7
0.2 רצועות Tube PCR מ"ל Thermo Scientific AB-0451
טריטון X-100 סיגמה אולדריץ T9284-100 מ"ל
מעכב פרוטאז מלא רוש 11 697 498 001
EDTA JT בייקר 4040-00
DPBS Mallinckrodt ייקר Mediatech 21-031-CV
Soakers המעבדה Versi-יבש הפישר סיינטיפיק 14 206 28
מחמם Repti Therm גן החיות של מד מעבדות, Inc RH-4

References

  1. Ayers, J. I., Schutt, C. R., Shikiya, R. A., Aguzzi, A., Kincaid, A. E., Bartz, J. C. The strain-encoded relationship between PrP replication, stability and processing in neurons is predictive of the incubation period of disease. PLoS pathogens. 7, e1001317 (2011).
  2. Barria, M. A., Mukherjee, A., Gonzalez-Romero, D., Morales, R., Soto, C. De novo generation of infectious prions in vitro produces a new disease phenotype. PLoS Pathog. 5, e1000421 (2009).
  3. Bessen, R. A., Marsh, R. F. Biochemical and physical properties of the prion protein from two strains of the transmissible mink encephalopathy agent. J. Virol. 66, 2096-2101 (1992).
  4. Bessen, R. A., Marsh, R. F. Distinct PrP properties suggest the molecular basis of strain variation in transmissible mink encephalopathy. J. Virol. 68, 7859-7868 (1994).
  5. Bessen, R. A., Marsh, R. F. Identification of two biologically distinct strains of transmissible mink encephalopathy in hamsters. J. Gen. Virol. 73, 329-334 (1992).
  6. Castilla, J., Gonzalez-Romero, D., Saa, P., Morales, R., De Castro, J., Soto, C. Crossing the species barrier by PrP(Sc) replication in vitro generates unique infectious prions. Cell. 134, 757-768 (2008).
  7. Castilla, J., Morales, R., Saa, P., Barria, M., Gambetti, P., Soto, C. Cell-free propagation of prion strains. EMBO J. 27, 2557-2566 (2008).
  8. Caughey, B., Raymond, G. J. The scrapie-associated form of PrP is made from a cell surface precursor that is both protease- and phospholipase-sensitive. J. Biol. Chem. 266, 18217-18223 (1991).
  9. Deleault, N. R., Harris, B. T., Rees, J. R., Supattapone, S. Formation of native prions from minimal components in vitro. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 9741-9746 (2007).
  10. Dickinson, A. G., Fraser, H., Meikle, V. M., Outram, G. W. Competition between different scrapie agents in mice. Nat. New Biol. 237, 244-245 (1972).
  11. Gonzalez-Romero, D., Barria, M. A., Leon, P., Morales, R., Soto, C. Detection of infectious prions in urine. FEBS Lett. 582, 3161-3166 (2008).
  12. Green, K. M., Castilla, J., Seward, T. S., Napier, D. L., Jewell, J. E., Soto, C., Telling, G. C. Accelerated high fidelity prion amplification within and across prion species barriers. PLoS Pathog. 4, e1000139 (2008).
  13. Hadlow, W. J., Race, R. E., Kennedy, R. C. Temporal distribution of transmissible mink encephalopathy virus in mink inoculated subcutaneously. J. Virol. 61, 3235-3240 (1987).
  14. Kocisko, D. A., Come, J. H., Priola, S. A., Chesebro, B., Raymond, G. J., Lansbury, P. T., Caughey, B. Cell-free formation of protease-resistant prion protein. Nature. 370, 471-474 (1994).
  15. Kurt, T. D., Telling, G. C., Zabel, M. D., Hoover, E. A. Trans-species amplification of PrP(CWD) and correlation with rigid loop 170N. Virology. 387, 3235-3240 (2009).
  16. Maddison, B. C., Baker, C. A., Terry, L. A., Bellworthy, S. J., Thorne, L., Rees, H. C., Gough, K. C. Environmental sources of scrapie prions. J. Virol. 84, 11560-11562 (2010).
  17. Nichols, T. A., Pulford, B., Wyckoff, A. C., Meyerett, C., Michel, B., Gertig, K., Hoover, E. A., Jewell, J. E., Telling, G. C., Zabel, M. D. Detection of protease-resistant cervid prion protein in water from a CWD-endemic area. Prion. 3, 171-183 (2009).
  18. Prusiner, S. B. Novel proteinaceous infectious particles cause scrapie. Science. 216, 136-144 (1982).
  19. Saborio, G. P., Permanne, B., Soto, C. Sensitive detection of pathological prion protein by cyclic amplification of protein misfolding. Nature. 411, 810-813 (2001).
  20. Saunders, S. E., Bartz, J. C., Vercauteren, K. C., Bartelt-Hunt, S. L. An enzymatic treatment of soil-bound prions effectively inhibits replication. Appl. Environ. Microbiol. 77, 4313-4317 (2011).
  21. Saunders, S. E., Shikiya, R. A., Langenfeld, K., Bartelt-Hunt, S. L., Bartz, J. C. Replication efficiency of soil-bound prions varies with soil type. Journal of virology. , (2011).
  22. Schutt, C. R., Bartz, J. C. Prion interference with multiple prion isolates. Prion. 2, 61-63 (2008).
  23. Shikiya, R. A., Ayers, J. I., Schutt, C. R., Kincaid, A. E., Bartz, J. C. Co-infecting prion strains compete for a limiting cellular resource. Journal of. 84, 5706-5714 (2010).
  24. Shikiya, R. A., Bartz, J. C. In vitro generation of high titer prions. Journal of virology. , (2011).
  25. Weber, P., Giese, A., Piening, N., Mitteregger, G., Thomzig, A., Beekes, M., Kretzschmar, H. A. Generation of genuine prion infectivity by serial PMCA. Veterinary microbiology. 123, 346-357 (2007).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

69sonicationPRP CPRP ScPMCAsPMCA

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved