Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Белки неправильного сворачивания циклической амплификации (PMCA) является в пробирке анализа для изучения преобразования прионных и деформаций и виды барьеров. Она также может быть использована в качестве теста обнаружения прионов.

Аннотация

Прионы инфекционных агентов, которые вызывают неизбежно смертельный передающийся губчатой ​​энцефалопатии (TSE) у животных и человека 9,18. Прионных белков имеет два различных изоформ, неинфекционные хост-кодируемого белка (PrP C) и инфекционные белки (PrP Sc), неправильно сложенные изоформы PrP C 8.

Одна из проблем работы с прионных агентов длительный инкубационный период до развития клинических симптомов после прививки хозяин 13. Это традиционно поручил длительного и дорогостоящего исследования на животных биопроб. Кроме того, биохимических и биофизических свойств PrPSc, плохо характеризуется из-за их необычного экстерьера и агрегации государства.

PrPSc, может семена превращение PrP C в PrPSc, в пробирке 14. PMCA находится в технике пробирке, которая принимает ADVAntage этой возможностью использования ультразвука и инкубации циклов, чтобы производить большое количество PrPSc, в ускоренном темпе, с системой, содержащей избыточное количество PrP C и незначительное количество семян PrPSc, 19. Этот метод оказался эффективным повторять вида и штамма специфику PrPSc, преобразование из PrP C, подражать вмешательства прионных деформации, а для усиления очень низким уровнем PrPSc, из инфицированных тканей, жидкостей и проб окружающей среды, 6,7,16, 23.

Эта статья подробно протокол PMCA, включая рекомендации по минимизации загрязнения, создавая устойчивые результаты, и количественной оценки этих результатов. Мы также обсудим несколько приложений PMCA, в том числе производства и характеристика инфекционного штамма приона, интерференция прионных деформации и обнаружения прионов в окружающей среде.

протокол

1. Подготовка оборудования

  1. Используйте Misonix 3000 или 4000 Misonix ультразвукового (Farmingdale, Нью-Йорк), подключенных к Thermo Electron Neslab EX-7 водяной бане (Newington, Нью-Гэмпшир), чтобы сохранить постоянную температуру 37 ° C. Разрушать ультразвуком образца в 200 мкл тонкостенных труб ПЦР полосы с куполообразной крышки получены от Thermo Scientific (Waltham, MA).
  2. Новый ультразвукового требует "обкатки" период непрерывной работы 9. Двухмесячного перерыва в период состоит из 40-сек взрыв ультразвуком и 10-минутных циклов инкубации с амплитудой уровень установлен на 10. Следует заметить эрозию всей поверхности титана планшет рога (рис. 1, группа В). Циркулирующей воды будет выглядеть белой мутной из-за эрозии титана планшет рога. Заменить эту воду ежедневно.
  3. Усиление PrPSc, будет меняться на протяжении рога микропланшетов. Лучше PrPSc, усиление эффективности могут быть получены врадиусом 5 см от центра планшет рога (см. рисунок 1, панель C).
  4. Один цикл состоит PMCA 144 циклов. Каждый цикл состоит из 5 с ультразвуком и 10 мин инкубации. Это будет примерно влечет за собой до 24 часов в раунде PMCA.
  5. Выходная мощность ультразвука, отображаемые на панели управления ультразвукового автора, варьируется в зависимости от количества труб ПЦР присутствуют в стойку ультразвукового и температуры циркулирующей воды из ванны. Убедитесь, что вода находится в равновесии при 37 ° C, и не заполнять более 30% труб стойки ультразвукового (Рисунок 1, панель C). Распространение ПЦР пробирок через рог микропланшетов. Есть по крайней мере одна строка пустое пространство между ПЦР стирпов и позволит не более четырех труб, соединенных вместе в полосе (рис. 1, панель C).
  6. Сила ультразвуком имеет решающее значение для успешного усиления штамм прионов. В то время как ультразвуком, регулировки амплитуды иметь выходную мощностьв диапазоне между 155 ~ 170 Вт. В нашей лаборатории уровень мощности установлен на шесть и семь для Misonix 3000 и Misonix 4000, соответственно.
  7. Используйте дистиллированную воду в ванну с водой, чтобы избежать накопления жесткие пятна воды. Заменить эту воду раз в неделю. Во время инкубации и ультразвуком циклов, конденсации воды будет происходить внутри крышки рога микропланшетов. Чтобы избежать конденсации, приложите небольшое площадку тепла аквариума в верхнюю часть корпуса коробки ультразвукового, как показано на рисунке 1, панель A.

2. Подготовка образцов

  1. Все процедуры, связанные с животными были одобрены Университет Крейтон Институциональные уходу и использованию животных комитета и соблюдать Руководство по уходу и использованию лабораторных животных. Перед любой ткани коллекции, животное должно быть под наркозом и transcardially перфузировались использованием ледяной фосфатный буферный солевой раствор с 5 мМ ЭДТА при рН 7,4 для удаления крови от головного мозга и избежать торможенияPMCA реакции крови 7. Сбор ткани животных быстро с использованием асептических условиях и иметь специальные инструменты диссекции для каждого прионных напряжения. После вскрытия, поместите ткань в 1,5 мл трубки микроцентрифужных, флэш заморозить его на сухом льду, и хранить его при температуре -80 ° C до гомогенизации.
  2. Для приготовления субстрата PMCA (PrP C) раствор, гомогенизации неинфицированных мозг хомяка (ООН BH) до 10% вес / объем (вес / объем) раствор с ледяным буфером преобразования (см. часть 3) с помощью мясорубки Tenbroeck ткани. В то время гомогенизации, будьте осторожны, чтобы не получить воздух внутри мясорубки, чтобы избежать чрезмерного вспенивания раствора. Уточнение решения путем центрифугирования при 500 мкг в течение 30 сек и аликвоты супернатанта в пробирки на 1,5 мл микроцентрифуге. Хранить при температуре от -80 ° C до дальнейшего использования.
  3. Для подготовки семенного PMCA (PrP Sc) решение, гомогенизации инфекционный материал (головной мозг, селезенка, лимфатические узлы, другие ткани или загрязненной почвы) до 10% вес / объем раствора с ледяной водоснаг и аликвоты раствора в 0,6 мл пробирок микроцентрифуге. Хранить при температуре от -80 ° C до дальнейшего использования.

3. Подготовка преобразование буфера

  1. Взвесить 0,5093 г тритона Х-100 в 50 мл мерную колбу (результат 1% конечной концентрации Тритон Х-100) (Sigma-Aldrich GmbH; Steinheim, Германия).
  2. Добавить один полный ингибитор протеазы Tablet (Roche Diagnostics GmbH, Мангейм, Германия).
  3. Добавить 0,0931 г ЭДТА (это приведет к 5 мМ конечной концентрации ЭДТА) (Mallinckrodt Baker Инк; Phillipsburg, NJ).
  4. Отрегулируйте рН до 7,4 с помощью 1 н NaOH.
  5. Регулировка громкости до 50 мл с фосфатом Дульбекко буферном растворе (DPBS) (Mediatech Инк; Manassas, VA).
  6. Фильтр раствор через 0,45 мкм нитроцеллюлозные мембраны с аппаратом вакуумной фильтрации. Преобразование буфера можно хранить при температуре 4 ° С в течение не более одного месяца.

4. Усиление Prion штаммов Использование PMCA

  1. Развести PMCA семян в грунт PMCA в соотношении 1:20 (например, смесь 5 мкл семян PMCA и 95 мкл субстрата PMCA) в ПЦР-пробирку. Удалите и храните в 15 мкл при температуре -80 ° С в течение unsonicated контроля; это unsonicated управления будет использоваться для количественного усиления PrPSc, с помощью протеиназы К (PK) пищеварение последующим Вестерн-блот (WB) анализа. Дополнительных unsonicated управления может быть создан путем размещения второй 15 мкл при 37 ° C в течение реакция PMCA. Не менее трех повторений требуется для статистических целей.
  2. Тема оставшейся части образца (70 мкл) на один раунд PMCA, как показано на рисунке 1, Группа A. Шейк труб каждые 5 часов, чтобы избежать конденсации воды на куполообразной крышкой ПЦР-пробирку.
  3. Трубы образца должна быть развернулся вниз и слегка встряхивают (будьте осторожны, что решение не идти в куполообразной крышкой) перед открытием после любой процедуры для обеспечения homogeneity и избежать возможных загрязнений.
  4. Для последовательного PMCA (sPMCA) из короткий инкубационный период штаммов (т. е. HY TME, HaCWD, или 263K), разбавленные ультразвуком материала в соотношении 1:20 путем перевода 5 мкл образца ультразвуком от раунде в 95 мкл свежей неинфицированных гомогената мозга (рис. 2, группа B).
  5. Для sPMCA длинного инкубационного периода штаммов (т. е. DY TME, 139H, 22CH, 22AH, или ME7H), разбавить ультразвуком материала в соотношении 1:1 по передаче 50 мкл ультразвуком образца от раунде в 50 мкл свежей неинфицированных гомогената мозга (рис. 2, группа B).
  6. Удалите два 15 мкл аликвоты из предварительно разбавив смесь ультразвуком (с шагом 4,4 или 4,5) и сохранить одну из них при -80 ° C, а другой при 37 ° C (unsonicated решений для управления PMCA втором раунде). Подвергать остатки на PMCA раунде.
  7. Эта процедура может повторяться бесконечно. В нашей лаборатории мывыполнены до пятнадцати PMCA раундов, с механические свойства остаются неизменными.
  8. PK переварить образцов. Для типичного ВБ, смешайте 5 мкл PK 80 мкг / мл до 5 мкл образца (это решение будет иметь конечной концентрации PK 40 мкг / мл) и инкубируют при 37 ° C в течение одного часа. Добавить 10 мкл буфера геля нагрузки. Кипятить это решение в течение 10 мин. Пусть решение остыть и загрузите 10 мкл в гель.
  9. Для расчета успех усиления провести анализ ВБ по PK-переваривается образцы для определения суммы усиленного PrPSc, сравнивая их либо, unsonicated контроль 20,21 рисунке 2, Группа C или в известные суммы PK-непереваренной рекомбинантных PrP.

5. Как избежать перекрестное загрязнение

Критические шаги должны быть предприняты для минимизации перекрестного загрязнения и появления ложных срабатываний за счет De Novo образования продуктов протеазы устойчивостью.

  1. Используйте специальный набор инструментов рассечение (т.е. щипцы, пинцеты, ножницы) для отбора проб для каждого прионных напряжения.
  2. Перед гомогенизации неинфицированных мозги, которые будут использоваться в качестве субстрата PMCA, протрите пипетки с 1% хлорной извести. Замочить ПЦР ультразвуком в трубе стойки, ткани гомогенизаторы, и ПЦР стойки трубы хранение с 1% отбеливателя в течение 10 минут и тщательно промыть дистиллированной водой.
  3. Накройте рабочую зону с новым Versi-Dry Лаборатории Soaker каждый раз новый образец должен быть гомогенизируют, новый эксперимент PMCA должен быть подготовлен, или когда аликвоты между раундами sPMCA.
  4. Используйте новые перчатки каждый раз новые образцы обрабатываются (особенно при передаче аликвоты между раундами sPMCA).
  5. Используйте короткие всплески ультразвуком в течение каждого цикла PMCA. Циклы 5 сек в сочетании с ультразвуком 10 мин инкубации является достаточным для усиления прионы, не создавая заново PrPSc, 1,20,21,23,24. В других лабораториях, показали, что повышаетультразвуком время, увеличение амплитуды ультразвука, и расширение количества циклов PMCA увеличивает вероятность De Novo PrPSc, формирование 2.

Результаты

Белки неправильного сворачивания циклической амплификации (PMCA) используется для усиления PrPSc, в пробирке 7, 12, 14, 19, 24. Успешное PrPSc, усиление показали увеличение интенсивности полосы на Западной блоттинга PK-устойчивых прионных белков (миграция между 19 и 30 кДа для хо...

Обсуждение

Проблемы усиливающей инфекционных белков прионных являются длительные периоды инкубации и расходов в естественных условиях эксперименты. Техника PMCA является экономически эффективным средством для усиления инфекционных агентов прионов. Несколько лабораторий подтвердили спос?...

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Мы хотели бы поблагодарить д-ра Венеры Fe Мария Рамос за критическое прочтение рукописи. Эта работа была поддержана Национальным центром ресурсов исследований (P20 RR0115635-6, C06 RR17417-01 и G20RR024001) и Национального института неврологических расстройств и инсульта (2R01 NS052609).

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Реагент / Оборудование Производитель Кат. Номер
Misonix 3000 Misonix S-3000
Misonix 4000 Misonix S-4000
Tenbroeck тканей Grinder Kontes 885000-0007
Neslab EX-7 водяная баня Thermo Electron Neslab EX-7
0,2 мл ПЦР стирпов Thermo Scientific AB-0451
Triton X-100 Sigma Aldrich T9284-100ML
Полное ингибитор протеазы Roche 11 697 498 001
EDTA JT Baker 4040-00
DPBS Mallinckrodt Baker Mediatech 21-031-CV
Versi-Dry Soakers Лаборатории Fisher Scientific 14 206 28
Repti Therm нагревателя Zoo Med Laboratories, Inc RH-4

Ссылки

  1. Ayers, J. I., Schutt, C. R., Shikiya, R. A., Aguzzi, A., Kincaid, A. E., Bartz, J. C. The strain-encoded relationship between PrP replication, stability and processing in neurons is predictive of the incubation period of disease. PLoS pathogens. 7, e1001317 (2011).
  2. Barria, M. A., Mukherjee, A., Gonzalez-Romero, D., Morales, R., Soto, C. De novo generation of infectious prions in vitro produces a new disease phenotype. PLoS Pathog. 5, e1000421 (2009).
  3. Bessen, R. A., Marsh, R. F. Biochemical and physical properties of the prion protein from two strains of the transmissible mink encephalopathy agent. J. Virol. 66, 2096-2101 (1992).
  4. Bessen, R. A., Marsh, R. F. Distinct PrP properties suggest the molecular basis of strain variation in transmissible mink encephalopathy. J. Virol. 68, 7859-7868 (1994).
  5. Bessen, R. A., Marsh, R. F. Identification of two biologically distinct strains of transmissible mink encephalopathy in hamsters. J. Gen. Virol. 73, 329-334 (1992).
  6. Castilla, J., Gonzalez-Romero, D., Saa, P., Morales, R., De Castro, J., Soto, C. Crossing the species barrier by PrP(Sc) replication in vitro generates unique infectious prions. Cell. 134, 757-768 (2008).
  7. Castilla, J., Morales, R., Saa, P., Barria, M., Gambetti, P., Soto, C. Cell-free propagation of prion strains. EMBO J. 27, 2557-2566 (2008).
  8. Caughey, B., Raymond, G. J. The scrapie-associated form of PrP is made from a cell surface precursor that is both protease- and phospholipase-sensitive. J. Biol. Chem. 266, 18217-18223 (1991).
  9. Deleault, N. R., Harris, B. T., Rees, J. R., Supattapone, S. Formation of native prions from minimal components in vitro. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 9741-9746 (2007).
  10. Dickinson, A. G., Fraser, H., Meikle, V. M., Outram, G. W. Competition between different scrapie agents in mice. Nat. New Biol. 237, 244-245 (1972).
  11. Gonzalez-Romero, D., Barria, M. A., Leon, P., Morales, R., Soto, C. Detection of infectious prions in urine. FEBS Lett. 582, 3161-3166 (2008).
  12. Green, K. M., Castilla, J., Seward, T. S., Napier, D. L., Jewell, J. E., Soto, C., Telling, G. C. Accelerated high fidelity prion amplification within and across prion species barriers. PLoS Pathog. 4, e1000139 (2008).
  13. Hadlow, W. J., Race, R. E., Kennedy, R. C. Temporal distribution of transmissible mink encephalopathy virus in mink inoculated subcutaneously. J. Virol. 61, 3235-3240 (1987).
  14. Kocisko, D. A., Come, J. H., Priola, S. A., Chesebro, B., Raymond, G. J., Lansbury, P. T., Caughey, B. Cell-free formation of protease-resistant prion protein. Nature. 370, 471-474 (1994).
  15. Kurt, T. D., Telling, G. C., Zabel, M. D., Hoover, E. A. Trans-species amplification of PrP(CWD) and correlation with rigid loop 170N. Virology. 387, 3235-3240 (2009).
  16. Maddison, B. C., Baker, C. A., Terry, L. A., Bellworthy, S. J., Thorne, L., Rees, H. C., Gough, K. C. Environmental sources of scrapie prions. J. Virol. 84, 11560-11562 (2010).
  17. Nichols, T. A., Pulford, B., Wyckoff, A. C., Meyerett, C., Michel, B., Gertig, K., Hoover, E. A., Jewell, J. E., Telling, G. C., Zabel, M. D. Detection of protease-resistant cervid prion protein in water from a CWD-endemic area. Prion. 3, 171-183 (2009).
  18. Prusiner, S. B. Novel proteinaceous infectious particles cause scrapie. Science. 216, 136-144 (1982).
  19. Saborio, G. P., Permanne, B., Soto, C. Sensitive detection of pathological prion protein by cyclic amplification of protein misfolding. Nature. 411, 810-813 (2001).
  20. Saunders, S. E., Bartz, J. C., Vercauteren, K. C., Bartelt-Hunt, S. L. An enzymatic treatment of soil-bound prions effectively inhibits replication. Appl. Environ. Microbiol. 77, 4313-4317 (2011).
  21. Saunders, S. E., Shikiya, R. A., Langenfeld, K., Bartelt-Hunt, S. L., Bartz, J. C. Replication efficiency of soil-bound prions varies with soil type. Journal of virology. , (2011).
  22. Schutt, C. R., Bartz, J. C. Prion interference with multiple prion isolates. Prion. 2, 61-63 (2008).
  23. Shikiya, R. A., Ayers, J. I., Schutt, C. R., Kincaid, A. E., Bartz, J. C. Co-infecting prion strains compete for a limiting cellular resource. Journal of. 84, 5706-5714 (2010).
  24. Shikiya, R. A., Bartz, J. C. In vitro generation of high titer prions. Journal of virology. , (2011).
  25. Weber, P., Giese, A., Piening, N., Mitteregger, G., Thomzig, A., Beekes, M., Kretzschmar, H. A. Generation of genuine prion infectivity by serial PMCA. Veterinary microbiology. 123, 346-357 (2007).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

69PrP CPrP ScPMCAsPMCA

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены