JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

כאן אנו מתארים assay צמיחה סטפילוקוקוס אוראוס באמצעות ההמוגלובין כמקור היחידי של ברזל תזונתי זמין. בדיקה זו קובעת את התפקיד של גורמי חיידקים המעורבים ברכישת ברזל המוגלובין נגזר.

Abstract

ס aureus הוא חיידק הפתוגני שדורש ברזל כדי למלא תפקידים מטבוליים חיוניים ובגורמים למחלות. המאגר העשיר ביותר של ברזל בתוך המארח האנושי הוא heme, שהוא cofactor של המוגלובין. לרכישת ברזל מהמוגלובין, ס סטפילוקוקוס מנצל מערכת מורכבת ידועה כגורם המשטח ברזל המוסדר (ISD) 1 המערכת. מרכיבי ההמוגלובין ISD המערכת הראשון לאגד המארח, ואז לחלץ ולייבא heme, ולבסוף לשחרר ברזל ממקור צמחי בציטופלסמה החיידקים 2,3. מסלול זה כבר נתח באמצעות מספר רב של מחקרים במבחנת 4-9. יתר על כן, תרומתה של מערכת ISD לזיהום הודגמה שוב ושוב במודלי עכבר 8,10-14. הקמת התרומה של מערכת ISD לרכישת ברזל המוגלובין-נגזר וצמיחה הוכיחה להיות יותר מאתגר. מבחני צמיחה באמצעות ההמוגלובין כמקור ברזל בלעדי מסובכים בy חוסר היציבות של המוגלובין הזמין מסחרי, מזהם ברזל חופשי במדיום הגידול, והרעילות הקשורה chelators ברזל. כאן אנו מציגים שיטה המתגברת על מגבלות אלה. המוגלובין באיכות הגבוהה מוכן מדם טרי ומאוחסן בחנקן נוזלי. המוגלובין מטוהר הוא בתוספת ברזל לימוצה בינוני מחקה את סביבת ברזל העניים נתקלה ידי פתוגנים בתוך מארח החוליות. על דרך רעבה ס סטפילוקוקוס של ברזל חופשי ולהשלים עם צורת מניפולציות מינימאליות של המוגלובין נזרז את הצמיחה באופן שתלוי לחלוטין ביכולת לקשור המוגלובין, לחלץ heme, יעבור heme דרך מעטפת תא החיידק ולבזות heme בציטופלסמה. assay זה יהיה שימושי לחוקרים המבקשים להבהיר את המנגנונים של רכישת הברזל hemoglobin-/heme-derived בס סטפילוקוקוס ואולי חיידקים פתוגנים אחר.

Protocol

1. טיהור של המוגלובין מדם טרי

  1. לרכוש דם אדם טרי בתוספת נוגדי קרישה. לשמור על דם על קרח או ב 4 ° C בכל הטיהור.
  2. צנטריפוגה דם במשך 20 דקות ב1500 x גרם. תאי הדם האדומים (RBCs) יהיו בתחתית של התחתית. בזהירות לשאוב supernatant והעדינות resuspend גלול ב 0.9% (w / v) פתרון NaCl קר כקרח. חזור צנטריפוגה ולשטוף 3 פעמים.
  3. Resuspend הגלולה בנפח 1 מתוך קרים כקרח 10 מ"מ טריס-HCl (pH 8.0). זה יניע תמוגה של RBCs עקב לחץ האוסמוטי. הוסף ל~ טולואן נפח סופי של 20%.
  4. לדגור על 4 מעלות צלזיוס בצלייה למשך לילה.
  5. צנטריפוגה lysate ב20000 XG לשעה 1. לאסוף את שבר hemolysate האמצע עוזב טולואן (צף על גבי) וגלולה ללא פגע. השתמש פיפטה-צוואר ארוך כדי לאסוף את שבר האמצע.
  6. עובר דרך מסנן מזרק 0.44 מיקרומטר. אם הפתרון מכיל חלקיקיםעניין ולא יכול להיות מועבר דרך המסנן, חזור על שלב 1.5.
  7. לטהר המוגלובין (HB) עם כרומטוגרפיה נוזלית ביצועים גבוהי עמודה (HPLC) אניון חליפין (ריאן, 1000 8 מיקרומטר PL-סקסופון, 150 מ"מ × 4.6 מ"מ). השלב הנייד הוא 10 mM טריס-HCl (pH 8.0) ושלב ב 'נייד הם 10 mM טריס-HCl (pH 8.0) + 0.5 M NaCl. 0% -100% שיפוע של B ממס נדרס 2 דקות בשיעור 2.0 מ"ל / דקת זרימה. Elution מנוטר על בסיס קליטה (λ: 410 ננומטר ו 280 ננומטר). לאסוף רק השבריר מתאפיין בצבע אדום בהיר ושיא ספיגה בולט (איור 1).
  8. דיאליזת elution נגד פוספט נאגר מלוח (PBS) למשך הלילה ולאחר מכן לכמה שעות שוב. לעקר על ידי עובר דרך מסנן מזרק מיקרומטר 0.22.
  9. כדי למדוד את ריכוז המוגלובין, להכין פתרוני המוגלובין סטנדרטיים של ריכוזים ידועים בPBS. לקבוע את הריכוז של המוגלובין במדגם על ידי ערבוב את הפתרונים הסטנדרטיים (ראה טבלה עם ריאגנטיםed) או פתרון לדוגמא עם ריאגנט של 2x דרבקין (שהוכן מאבקה) ביחס 1:1. לדוגמה, לערבב פתרון Hb 100 μl עם מגיב 100 μl 2x של דרבקין בצלחות 96-כן. דגירה במשך 15 דקות וספיגה במידה 540 ננומטר. להתוות עקומת סטנדרט ולקבוע את ריכוז המוגלובין במדגם. חמש עד 15 תשואות מ"ג / מ"ל ​​הן טיפוסיות.
  10. הפעל מיקרוגרם 15-20 המטוהרים המוגלובין על 15% SDS-PAGE בשני עותקים. כתם אחד מהג'לי; להעביר את החלבונים מג'ל אחר על גבי קרום ניטרוצלולוזה וimmunoblot למוגלובין (איור 2).
  11. להקפיא ולאחסן 1 aliquots מ"ל של המוגלובין בחנקן נוזלי.

2. הכנת הברזל פוגע תקשורת צמיחה

  1. הכן Roswell Park Memorial מכון (RPMI) מרק על ידי המסת אבקת RPMI במים, מוסיף סודה לשתייה כפי שהומלץ על ידי היצרן וחומצות cassamino% 1 (CA) (W / V). לעקר על ידי עובר דרך מסנן 0.2 מיקרומטר והחנות refrigמקורר.
  2. הכן מתכת מדולדלת RPMI (NRPMI) על ידי הוספת 7% (w / v) Chelex 100 וערבוב במשך הלילה על צלחת ומערבבים. הסר Chelex 100 על ידי עובר דרך מסנן וחנות בקירור 0.2 מיקרומטר. תוספת תקשורת עם מתכות שאינן ברזל חיוניים: 25 מיקרומטר ZnCl 2, 25 מיקרומטר MnCl 2, 100 מ"מימ CaCl 2 ו1 המ"מ MgCl 2 הוכן מראש כפתרון x סטרילי 1000. השתמש בכלי פלסטיק חד פעמים לצעד זה כדי למנוע זיהום מאספקת ברזל מחדש שמישה.

3. צמיחת סטפילוקוקוס אוראוס באמצעות המוגלובין כמקור ברזל Sole

  1. הרצף ס סטפילוקוקוס לבידוד באגר סויה tryptic (TSA) ממניות קפוא. לדגור על 37 מעלות צלזיוס במשך 20-24 שעות.
  2. Resuspend ethylenediamine-N, ניצבת בין bis (חומצה 2-hydroxyphenylacetic) (EDDHA) באתנול נטול מים עד 100 מ"מ. EDDHA אינו נכנס פתרון אבל מעוקרת על ידי אתנול.
  3. הוסף לEDDHA RPMI לריכוז סופי של 0.5 מ"מ. להתירEDDHA לפזר לפחות 30 דקות לפני שתמשיך לשלב הבא. עקב וריאציה תצווה לתצווה, ריכוז EDDHA סופי ייתכן שיהיה הצורך הוריד ל0.25 מ"מ כדי לאפשר התפתחות חיידקים.
  4. לחסן מושבות בודדות של ס סטפילוקוקוס לתוך 5 מ"ל של RPMI מכיל EDDHA ב15 צינורות חרוטי פקק מ"ל. לדגור על 37 ° C עם הרעד ב180 סיבובים לדקה (סל"ד) ל16-20 שעות.
  5. צנטריפוגה תרבויות הלילה עבור 5 דקות ב7500 XG וresuspend בגלולה המכילה NRPMI EDDHA 0.5 מ"מ. לנרמל OD 600 ל ~ 3.
  6. הכן NRPMI המכיל 2.5 מיקרוגרם למ"ל והמוגלובין EDDHA 0.1-1.0 מ"מ. בשל שונות בין הקבוצות, ריכוז EDDHA נדרש Chelate ברזל חופשי בNRPMI עשוי להשתנות.
  7. 10 μl תת השעיה של חיידקים מצעד 3.5 לתוך 1 מ"ל NRPMI + + EDDHA המוגלובין בצינור 15 מיליליטר פקק חרוטים.
  8. דגירת התרבויות על 37 מעלות צלזיוס למשך עד 48 שעות עם הרעד ב180 סל"ד או בתוף מתגלגל.
  9. כל 6-12 שעות תיקח 600 קריאות OD על ידי הסרת 50 μl של התרבות ולערבב אותו עם 150 μl של PBS בצלחות 96-כן.

תוצאות

יש לנו מטוהר ההמוגלובין אנושי מhemolysate עם HPLC (צעד הפרוטוקול 1.7). איור 1 הקלטות ספיגת eluate ב 280 ואורכי גל 410 ננומטר. חלק 5 נאסף ומקטעים אחרים שנזרקו. תשואות של 5-15 מיליגרם של המוגלובין למ"ל של eluate נרכשות בדרך כלל. המוגלובין מטוהר נותח על ידי SDS-PAGE במשוכפל וג'לים היה...

Discussion

ברזל הוא חומר מזין חיוני הנדרש על ידי אורגניזמים מכל הממלכות של 15 חיים. בבעלי חוליות, ברזל מבודד את להימנע מרעילות הנגרמת על ידי רכיב זה. תפיסה זו גם מסתירה ברזל מפלישת חיידקים בתהליך המכונה חסינות תזונתית 16. בתגובה, פתוגנים התפתחו אסטרטגיות עוקפות חסינות ...

Disclosures

אין לנו מה למסור.

Acknowledgements

מחקר זה נתמך על ידי מענקים בארה"ב שירות בריאות ציבור AI69233 וAI073843 מהמכון הלאומי לאלרגיה ומחלות זיהומיות. EPS הוא עמית בורוז Wellcome בפתוגנזה של מחלות זיהומיות. קמ"ש מומן על ידי התאית ומולקולרית מיקרוביולוגיה הדרכת מענק תכנית 5 T32 A107611-10.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
שם מגיב / חומרים חברה מספר קטלוגים תגובות
טור חילופי אניון HPLC ריאן PL1551-3802
המגיב של דרבקין סיגמא D5941-6VL
סטנדרטי המוגלובין פואנטה מדעית H7506-STD
RPMI HyClone SH30011.02
צורת נתרן Chelex 100 סיגמא C7901
EDDHA LGC התקנים GmbH ANC 001
המוגלובין נוגדן סנט קרוז ביוטכנולוגיה, Inc SC-21005
אגר סויה Tryptic BD 236920

References

  1. Mazmanian, S., et al. Passage of heme-iron across the envelope of Staphylococcus aureus. Science. 299, 906-909 (2003).
  2. Pishchany, G., Skaar, E. P. Taste for blood: hemoglobin as a nutrient source for pathogens. PLOS Pathogens. 8, e1002535 (2012).
  3. Haley, K. P., Skaar, E. P. A battle for iron: host sequestration and Staphylococcus aureus acquisition. Microbes and infection. Institut Pasteur. 14, 217-227 (2012).
  4. Krishna Kumar, K., et al. Structural basis for hemoglobin capture by Staphylococcus aureus cell-surface protein. IsdH. The Journal of biological chemistry. 286, 38439-38447 (2011).
  5. Grigg, J. C., Mao, C. X., Murphy, M. E. Iron-coordinating tyrosine is a key determinant of NEAT domain heme transfer. Journal of Molecular Biology. 413, 684-698 (2011).
  6. Villareal, V. A., et al. Transient weak protein-protein complexes transfer heme across the cell wall of Staphylococcus aureus. Journal of the American Chemical Society. 133, 14176-14179 (2011).
  7. Muryoi, N., et al. Demonstration of the iron-regulated surface determinant (Isd) heme transfer pathway in Staphylococcus aureus. J. Biol. Chem. 283, 28125-28136 (2008).
  8. Reniere, M. L., Skaar, E. P. Staphylococcus aureus haem oxygenases are differentially regulated by iron and haem. Mol. Microbiol. 69, 1304-1315 (2008).
  9. Liu, M., et al. Direct hemin transfer from IsdA to IsdC in the iron-regulated surface determinant (Isd) heme acquisition system of Staphylococcus aureus. J. Biol. Chem. 283, 6668-6676 (2008).
  10. Pishchany, G., et al. Specificity for human hemoglobin enhances Staphylococcus aureus infection. Cell Host Microbe. 8, 544-550 (2010).
  11. Pishchany, G., Dickey, S. E., Skaar, E. P. Subcellular localization of the Staphylococcus aureus heme iron transport components IsdA and IsdB. Infect. Immun. 77, 2624-2634 (2009).
  12. Torres, V. J., Pishchany, G., Humayun, M., Schneewind, O., Skaar, E. P. Staphylococcus aureus IsdB is a hemoglobin receptor required for heme iron utilization. J. Bacteriol. 188, 8421-8429 (2006).
  13. Kim, H. K., et al. IsdA and IsdB antibodies protect mice against Staphylococcus aureus abscess formation and lethal challenge. Vaccine. 28, 6382-6392 (2010).
  14. Cheng, A. G., et al. Genetic requirements for Staphylococcus aureus abscess formation and persistence in host tissues. Faseb J. 23, 3393-3404 (2009).
  15. Andreini, C., Bertini, I., Cavallaro, G., Holliday, G. L., Thornton, J. M. Metal ions in biological catalysis: from enzyme databases to general principles. J. Biol. Inorg. Chem. 13, 1205-1218 (2008).
  16. Weinberg, E. D. Iron availability and infection. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - General Subjects. 1790, 600-605 (2009).
  17. Drabkin, D. Metabolism of the Hemin Chromoproteins. Physiological Reviews. 31, 345-431 (1951).
  18. Graversen, J. H., Madsen, M., Moestrup, S. K. CD163: a signal receptor scavenging haptoglobin-hemoglobin complexes from plasma. The international journal of biochemistry & cell biology. 34, 309-314 (2002).
  19. Torres, V. J., et al. Staphylococcus aureus Fur regulates the expression of virulence factors that contribute to the pathogenesis of pneumonia. Infect. Immun. 78, 1618-1628 (2010).
  20. Hammer, N. D., Skaar, E. P. Molecular Mechanisms of Staphylococcus aureus Iron Acquisition. Annu. Rev. Microbiol. , (2011).
  21. Hurd, A. F., et al. The iron-regulated surface proteins IsdA, IsdB, and IsdH are not required for heme iron utilization in Staphylococcus aureus. Fems. Microbiology Letters. 329, 93-100 (2012).
  22. Boys, B. L., Kuprowski, M. C., Konermann, L. Symmetric behavior of hemoglobin alpha- and beta- subunits during acid-induced denaturation observed by electrospray mass spectrometry. Biochemistry. 46, 10675-10684 (2007).
  23. Williams, R. C., Tsay, K. Y. A convenient chromatographic method for the preparation of human hemoglobin. Analytical Biochemistry. 54, 137-145 (1973).
  24. Shen, T. J., et al. Production of unmodified human adult hemoglobin in Escherichia coli. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 90, 8108-8112 (1993).
  25. Manjula, B. N., Acharya, S. A. Purification and molecular analysis of hemoglobin by high-performance liquid chromatography. Methods Mol. Med. 82, 31-47 (2003).
  26. Neilands, J. B. Microbial envelope proteins related to iron. Annual review of microbiology. 36, 285-309 (1982).
  27. Chart, H., Buck, M., Stevenson, P., Griffiths, E. Iron regulated outer membrane proteins of Escherichia coli: variations in expression due to the chelator used to restrict the availability of iron. Journal of General Microbiology. 132, 1373-1378 (1986).
  28. Rogers, H. J. Iron-Binding Catechols and Virulence in Escherichia coli. Infection and Immunity. 7, 445-456 (1973).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

72micronutrients

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved