JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Indocyanine הירוק אנגיוגרפיה (או ICGA) המבוצעת על ידי הזרקה לוריד זנב מספקת תמונות כמובן זמן ICGA באיכות גבוהה כדי לאפיין חריגות בדמו עין עכבר.

Abstract

Indocyanine הירוק אנגיוגרפיה (או ICGA) היא טכניקה המבוצעת על ידי רופאי עיניים לאבחון מומים בכלי הדם של רשתית וכורוידאלית של מחלות עיניים שונות, כגון ניוון הקשורה לגיל (AMD). ICGA שימושי במיוחד לתמונת כלי הדם כורוידאלית האחוריים של העין בשל יכולתה לחדור דרך שכבת פיגמנט עם ספקטרום האינפרה אדום שלה. כמובן זמן ICGA ניתן לחלק לתחילה, אמצע ושלבים מאוחרים. שלושה השלבים לספק מידע רב ערך על הפתולוגיה של בעיות עיניים. למרות ICGA זמן כמובן על ידי תוך ורידי (IV) הזרקה היא בשימוש נרחב במרפאת לאבחון והניהול של בעיות דמית העין, ICGA ידי זריקת intraperitoneal (IP) הוא נפוץ במחקר בבעלי חיים. כאן אנו מדגימים את הטכניקה כדי להשיג תמונות ICGA זמן כמובן ברזולוציה גבוהה בעכברים על ידי הזרקה לוריד זנב וophthalmoscopy סריקת לייזר confocal. אנחנו השתמשנו בטכניקה זו לתמונה כורוידאלית leהוא קונה במודל של עכברים של ניוון מקולרי הקשור לגיל. למרות שזה הרבה יותר קל להציג את ICG לכלי דם העכבר על ידי ה-IP, הנתונים שלנו מצביעים על כך שקשה להשיג תמונות כמובן הזמן לשעתק ICGA ידי ה-IP-ICGA. לעומת זאת, ICGA באמצעות הזרקה לוריד זנב מספק תמונות באיכות גבוהה ICGA זמן קורס דומות למחקרים בבני אדם. בנוסף, הראינו כי ICGA שבוצע על עכברי בקן נותן תמונות ברורות יותר של כלי כורוידאלית מזה שבוצע על עכברי פיגמנט. אנו מציעים כי IV-ICGA זמן כמובן צריך להיות מקובל במחקר AMD מבוסס על מודלים של בעלי חיים.

Introduction

אנגיוגרפיה הירוקה Indocyanine (ICGA) היא בדיקת אבחון לבעיות של תמונה הקשורים לכלי דם בעין. ספקטרום הספיגה של ICG נע 790-805 ננומטר בעוד ספקטרום הפליטה נע 770-880 ננומטר עם פליטת השיא ב835 1 ננומטר. זה שונה מהצבע האחר הפופולרי, והעמסת נתרן, קשת שנופל בטווח הנראה לעין. ספקטרום האינפרה אדום מאפשר ICG לחדור דרך אפיתל הפיגמנט ברשתית (RPE), נוזל serosanguineous, ולפליטות שומנים בדם, כל מה שיכול בקלות לחסום את ההדמיה על ידי צנתור והעמסת המבוסס נתרן והעמסת (FA). ICG הוא בכלי הדם וכתוצאה מכך פחות extravasation מאוגד חלבון 98%, המאפשר הדמיה משופרת של כלי כורוידאלית ונגעים כורוידאלית 1,2. ICGA היא כמעט הברירה היחידה כדי לחזות בכלי דם כורוידאלית, שהוא אחורי לרשתית. איור 1 מציג ההשוואה של ICGA וFA בכלי דם הדמיה בעיני עכבר. FA יכול bדואר משמש לתמונה גם ברשתית כלי דם, אך לא בכלי הדם כורוידאלית. לעומת זאת, ICGA יכול לשמש לתמונת שני רשתית וכלי דם כורוידאלית. ICGA מתבצע עם מערכות ברזולוציה גבוהה הדמיה דיגיטלית או אומטלמוסקופ לייזר סריקה (SLO) יחד עם מצלמות וידאו אינפרא אדום רגישות, שאנו נשתמש במחקר זה.

במרפאת, ICGA כבר המליץ ​​באבחון מספר הפרעות chorioretinal מעורב כלי הדם כורוידאלית כולל polypoidal Choroidal vasculopathy (PCV), רשתית Angiomatous למניעת הפצת נשק (RAP), פסי angioid, ניוון מקולרי vitelliform, chorioretinopathy הצפק המרכזי, כלי דם כורוידאלית, רשתית דימום macroaneurysms arteriolar, גידולים כורוידאלית, וצורות מסוימות של אובאיטיס אחורי 1,3. השילוב של ICGA עם FA והאופטי קוהרנטיות טומוגרפיה (אוקטובר) מספק כלים רבי עוצמה לרופאים באבחון והניהול של קולרים הקשור לגיל exudativeקולרים (AMD) 4-10. ICGA שימושי במיוחד לאבחון מצבים מעורבים דמית העין. למעשה, ICGA נחשב את תקן הזהב לאבחון PCV, וריאנט של יפליט AMD 11-13. PCV מאופיין על ידי רשת של הסתעפות כלי עם dilations polypoidal מסוף בכלי הדם כורוידאלית 11-13. PCV קשור לעתים קרובות עם פלוגות serosanguineous חוזרות ונשנות של הרשתית ורשתית עם דליפה ודימום מרכיבי polypoidal 11,14,15. לאחרונה דיווחו הדור של מודל החיה PCV תחילה על ידי transgenically להביע HTRA1 האנושי, פרוטאז סרין רב תפקודי, באפיתל הפיגמנט ברשתית עכבר (הרשתית) 16. הראינו כי HTRA1 המוגבר מושרה תכונות אופייניות של PCV, למשל נגעי polypoidal.

כאן אנו מדגימים את השימוש בICGA זמן כמובן על ידי הזרקה לוריד זנב במחקר AMD שימוש במודל עכבר HTRA1 שלנו. הנתונים שלנו מראים כיIV-ICGA עדיף על ה-IP (או תת עורית (SC))-ICGA שכרגע נמצאים בשימוש בתחום 17,18 לאפיון נגעים בדמה העין.

הצהרה על מחקר בבעלי חיים

ניסויים בבעלי חיים בוצעו על פי פרוטוקולים שאושרו על ידי טיפול בבעלי חיים המוסדי ועדת שימוש (IACUC), ובוצעו בהתאם להצהרת ארוו לשימוש בבעלים חיים ברפואת עיניים וחזון מחקר.

Protocol

1. הכנת מכשירים

  1. ההליך מבוצע בהליך חדר במתקן בעלי חיים.
  2. לובש מסכות, כובעי שיער, שמלות כירורגית, רגל כיסויים סטריליים, וכפפות לפני תחילת הניסוי.
  3. מחממים מים בכוס ל~ 40 ° C על פלטה חמה.
  4. הנח כרית כחולה סטרילי על גבי כרית חימום שישמש מאוחר יותר כדי לשמור על טמפרטורת הגוף של העכבר במהלך הדמיה. הפעל את כרית החימום.
  5. הכן את מערכת ההדמיה:
    1. הסר את מכסה האבק ולהפעיל את הלייזר.
    2. להוציא את עדשת 55 ° ולהעלות אותו על גבי המכונה.
    3. פתח את תוכנת הדמיה מהמחשב וקלט את המידע של העכבר להדמיה מתחת לסדין של חולה חדש (למשל גנוטיפ, גיל, וכו '.). תחת "סוג ההתקן", בחר מצב אינפרא אדום (IR).

הערה: זה כבר דווח כי o השימושf עדשה אספריים כפולה חיצונית יכולה לשפר את איכות תמונת 17-20 אם כי אין לנו בעיה בקבלת תמונות באיכות גבוהה על ידי IV-ICGA ללא שימוש בעדשות חיצוניות (ראה תוצאות נציג, איורים 1-4).

2. הזרקה לוריד זנב של ICGA

  1. להתרחב עיני עכבר עם 1% פתרון עיני Tropicamide ולהמתין 5 דקות.
  2. לשקול את העכבר כדי לקבוע את הסכום של הרדמה (65-100/10-20/1-3 מ"ג / קילוגרם קטמין / Xylazine / acepromazine) לפי צורך.
  3. אחזר מזרק 1 מ"ל סטרילי יחד עם מחט G 32. הזרק את העכבר intraperitoneally עם ההרדמה (13 מ"ג / מיליליטר קטמין, 2.6 מ"ג / מיליליטר Xylazine, 0.3 מ"ג / מיליליטר acepromazine בסטרילי PBS). חכה עד שהעכבר הוא בהרדמה מלאה (~ 5 דקות).
  4. מניחים את זנב העכבר ל40 מים חמים C ° לגרום vasodilatation של הווריד.
  5. אחזר מזרק 1 מיליליטר עם מחט G 32. למשוך את הסכום הרצוי של ICG, בדרך כלל 50 μl של מ"ג / מיליליטר ICG 1, שהוא סטרילי מסונן עם מסנן מזרק 0.2 מיקרומטר לתוך צינור סטרילי, לעכבר 25 g (2 מ"ג / קילוגרם). היזהר שלא להציג את כל אוויר לתוך המזרק.
  6. נגב את הזנב עם ספוגית אלכוהול כדי לחטא את האזור להיות מוזרקים.
  7. החזק את הזנב ביד אחת, כך שוריד הזנב לרוחב הוא כלפי מעלה. עם השיפוע של המחט פונה כלפי מעלה, להזריק את המחט ~ 2 מ"מ לתוך הווריד בזווית מינימאלית. היזהר שלא לחורר את הווריד. צייר את הבוכנה מעט ולחפש עקבות של זרימת דם לרכזת המחט, אשר מצביעה על כך שהמחט הוכנסה בהצלחה לווריד.
  8. לאט לאט להזריק ICG לווריד. לא צריך להיות התנגדות מינימאלית כאשר הזרקה. הסר את המחט ולהחיל ספוגית אלכוהול ישירות לאתר הזרקה ל~ 5-10 שניות כדי לעצור את דימום. העכבר הוא אז מוכן הדמיה. על מנת לתפוס את השלב המוקדם (0-4 דקות לאחר הזרקה), זה הוא essential לתמונה את העכבר במהירות.

הערה: עיני עכבר יכולות לקבל בקלות יבשה ויכולות לפתח קטרקט תחת הרדמה. זה חשוב לשמור על העיניים לחות על ידי יישום סטרילי PBS במהלך ההליך. נגב את PBS העודף עם מקלון צמר גפן סטרילי לפני הקלטת ICGA. מעבדות אחרות השתמשו בעדשות מגע כדי למנוע התייבשות של 17-20 הקרנית.

3. אנגיוגרפיה ICG

  1. להתחיל לקחת תמונות 30-40 שניות לאחר הזרקת ICG, המאפשרת לכידתו של השלב המוקדם של מילוי כורוידאלית עד תפוצה רשתית וכורוידאלית נמצאות בבהירות מקסימלית (0-4 דק '). כלי הדם ברשתית הוא מדמיין הטוב ביותר במוקד ~ 35-45 דיופטריות וכלי דם כורוידאלית היא דמיינו ב10-15 דיופטריות.

    הערה: במהלך הבדיקה הראשונה של מודל חיה, מומלץ ללכוד תמונות מכל הזוויות (האף, זמני, הגב וגחון) לזהות את כל abno האפשריrmalities בכלי הדם. במהלך השלב המוקדם, שני עורקים כורוידאלית בינוניים וגדולים וורידים הם דמיינו היטב. במודל של בעלי החיים המשמשים בפרוטוקול זה, נגעים כורוידאלית (למשל polypoidal dilations) עשויים להתחיל להופיע 1 דקות לתוך השלב מוקדם.
  2. הגדר את מיקוד תמונה על כלי הדם. שליטה על בהירות ולהתמקד באמצעות מודול הבקרה וידית פוקוס, בהתאמה. ערכים אלה הם מתכווננת דיגיטלית ונשמרים בקלות קבועה. שמור על המרחק מהעין העכבר כדי קבוע עדשת מצלמה כדי להבטיח איכות תמונה היא שחזור תוך שימוש בטכניקה הבאה.

    הערה: מאחר והמכשיר יכול רק תמונה חלק של העין האחורית, אנחנו מנסים לשמור את הפוקוס, בהירות, ואת המרחק בין עדשת המצלמה ואת העין העכבר קבועה כפי שתמונת העין כולה האחורית מזוויות שונות. המפתח לכך הוא כדי ליישר את הארה בצורת העיגול הנפלטת על ידי ICG דרך עין עם השדה של view של המצלמה. המטרה זו מושגת על ידי הפיכת משמאל לימין, התאמות למעלה ולמטה, וב- and-out של מיקום המצלמה עד שיש את התמונה כולה אין אזורים כהים. כאשר הארה ואת שדה הראיה של המצלמה הן בשורה, המרחק מהעין לעדשה יהיה לשעתק לסדרה הבאה של תמונות, כמו גם במרחק אופטימלי להדמיה באיכות.
  3. ברגע שכלי הדם הוא בפוקוס, ללכוד את מסגרות תמונה על ידי לחיצה על הכפתור השחור העגול במודול הרכישה. גם הכפתור העגול השחור יכול לשמש כדי להפחית או לשפר את האות של ICG לאיכות תמונה הטובה ביותר.
  4. לקבוע את הזווית האופטימלית תצוגה ועומק התמקדות לנגעים כורוידאלית תמונה. זה חשוב כדי לשמור על העמדה של העין, עומק ההתמקדות, והגדרות מכשיר אחרות שנקבעו לICGA זמן כמובן כולו. התמונות נשמרות על ידי לחיצה על לחצן לרכוש בפנל מסך מגע של מודול הרכישה.
  5. לרכוש תמונות בשלב ביניים ב6-15 ירכתי דקותהזרקה אה.

    הערה: שני כורוידאלית וכלי רשתית נעשים פחות ברורים. כלי דם Choroidal מופיע הקרינה מפוזרת כ. נגעי Choroidal מציגים hyperfluorescence לצוץ בניגוד לדהייה סביב הקרינה רקע נורמלית.
  6. לרכוש תמונות בשלב מאוחר ב17-25 דקות לאחר הזרקה.

    הערה: Hyperfluorescence נמוג. שני כלי כורוידאלית ורשתית הם כבר לא נראים לעין. ראש עצב הראייה הופך לשחור. יש נגעים כורוידאלית Hyperfluorescent ניגוד מקסימאלי עם רקע הדהיה.
  7. לאחר שסיים את הרכישה של תמונות, להחיל ג'ל עיני סיכה ברור לעיני עכבר ולעזוב את העכבר על כרית חימום להתאוששות.
  8. להחזיר עכברים לכלובים והאזור מחזיק. יצוא תמונות כקובצי TIFF או JPEG לניתוח נוסף.

הערה: התזמון של כל שלב אינו מוחלט. מצאנו כי העיתוי של eaשלב ch עשוי להשתנות בהתאם לכמות של ICG המוזרק. יותר ICG נוטה להאריך כל שלב. הדרך הטובה ביותר להגדיר את השלב היא על פי התכונות העיקריות של כל שלב המפורט לעיל.

תוצאות

ביצענו כמובן זמן ICGA בעכברים הטרנסגניים HTRA1 והמלטת WT שליטה, אשר שניהם על רקע CD1. רקע CD1 בקן נבחר כדי להקל על אנגיוגרפיה הירוקה indocyanine הדמיה (ICGA) (ראה דיון). חלק מהפרצה כמו dilations החלה להופיע בשלב מוקדם בעכבר HTRA1 (איור 2, חץ אדום מציין את התרחבות בקצה של כלי ועיגול אדום...

Discussion

במחקר זה, שהדגמנו את השימוש בICGA לנגעים כורוידאלית תמונה בעכברים הטרנסגניים HTRA1. המאפיינים של תחילת, האמצע ושלבים מאוחרים של ICGA במודל של העכברים שלנו להתאים את מהלך הזמן גם במחקרים בבני אדם 1. זה חשוב לעשות השוואות טובות יותר בין פנוטיפים פתולוגיה וחיה אנושיים, א?...

Disclosures

פותחי עתיד הוא ממציא של שני פטנטים בהמתנה שהם רלוונטיים למודל עכבר AMD משמש בעבודה זו. SK, ZB, ומתכוונן אין לי מה לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי מענק NIH 1R01EY022901, פיתוח פרס קריירה ממחקר למניעת עיוורון (RPB), קרן CMReeves & MA ריבס, א 'מטילדה זיגלר קרן לעיוור, אבירי טמפלרים עיניים קרן, ומענק בלתי מוגבל למחלקה רפואת עיניים באוניברסיטת יוטה מRPB. אנו מודים Balamurali Ambati לקבלת סיוע טכני בשיטה רב מערכת Spectralis ההדמיה וטאו ז'אנג לדיונים והערות על כתב היד.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Spectralis Multi-Modality Imaging SystemHeidelberg Engineering, GermanySPECTRALIS HRA+OCT
Tropicamide ophthalmic solution (1%)Bausch & LombNDC 24208-585-64for dilation of pupils
GenTeal GelGentealNDC 58768-791-15 clear lubricant eye gel 
KetamineVedco IncNDC 50989-996-06
XylazineLloyd LaboratoriesNADA 139-236
AcepromazineVedco IncNDC 50989-160-11
32-G NeedleSterijectPRE-32013
1-ml syringeBD309659
Indocyanine GreenPfaltz & BauerI01250

References

  1. Duane, T. D., Tasman, W., Jaeger, E. A. . Chapter 4a, Indocyanine Green Angiography. Duane's clinical ophthalmology on CD-ROM. , (2002).
  2. Alfaro, D. V. . Age-related macular degeneration : a comprehensive textbook. , (2006).
  3. Yannuzzi, L. A. Indocyanine green angiography: a perspective on use in the clinical setting. Am. J. Ophthalmol. 151, 745-751 (2011).
  4. Destro, M., Puliafito, C. A. Indocyanine green videoangiography of choroidal neovascularization. Ophthalmology. 96, 846-853 (1989).
  5. Scheider, A., Schroedel, C. High resolution indocyanine green angiography with a scanning laser ophthalmoscope. Am. J. Ophthalmol. 108, 458-459 (1989).
  6. Guyer, D. R., et al. Digital indocyanine-green angiography in chorioretinal disorders. Ophthalmology. 99, 287-291 (1992).
  7. Yannuzzi, L. A., Slakter, J. S., Sorenson, J. A., Guyer, D. R., Orlock, D. A. Digital indocyanine green videoangiography and choroidal neovascularization. Retina. 12, 191-223 (1992).
  8. Regillo, C. D., Benson, W. E., Maguire, J. I., Annesley, W. H. Indocyanine green angiography and occult choroidal neovascularization. Ophthalmology. 101, 280-288 (1994).
  9. Scheider, A., Kaboth, A., Neuhauser, L. Detection of subretinal neovascular membranes with indocyanine green and an infrared scanning laser ophthalmoscope. Am. J. Ophthalmol. 113, 45-51 (1992).
  10. Kuck, H., Inhoffen, W., Schneider, U., Kreissig, I. Diagnosis of occult subretinal neovascularization in age-related macular degeneration by infrared scanning laser videoangiography. Retina. 13, 36-39 (1993).
  11. Imamura, Y., Engelbert, M., Iida, T., Freund, K. B., Yannuzzi, L. A. Polypoidal choroidal vasculopathy: a review. Surv. Ophthalmol. 55, 501-515 (2010).
  12. Ciardella, A. P., Donsoff, I. M., Yannuzzi, L. A. Polypoidal choroidal vasculopathy. Ophthalmol. Clin. N. Am. 15, 537-554 (2002).
  13. Spaide, R. F., Yannuzzi, L. A., Slakter, J. S., Sorenson, J., Orlach, D. A. Indocyanine green videoangiography of idiopathic polypoidal choroidal vasculopathy. Retina. 15, 100-110 (1995).
  14. Coppens, G., Spielberg, L., Leys, A. Polypoidal choroidal vasculopathy, diagnosis and management. Bull. Soc. belge d'Ophtalmol.. , 39-44 (2011).
  15. Tsujikawa, A., et al. Pigment epithelial detachment in polypoidal choroidal vasculopathy. Am. J. Ophthalmol. 143, 102-111 (2007).
  16. Jones, A., et al. Increased expression of multifunctional serine protease, HTRA1, in retinal pigment epithelium induces polypoidal choroidal vasculopathy in mice. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 14578-14583 (2011).
  17. Alex, A. F., Heiduschka, P., Eter, N. Retinal fundus imaging in mouse models of retinal diseases. Methods Mol. Biol. 935, 41-67 (2013).
  18. Seeliger, M. W., et al. In vivo confocal imaging of the retina in animal models using scanning laser ophthalmoscopy. Vision Res. 45, 3512-3519 (2005).
  19. Fischer, M. D., Zhour, A., Kernstock, C. J. Phenotyping of mouse models with OCT. Methods Mol. Biol. 935, 79-85 (2013).
  20. Jian, Y., Zawadzki, R. J., Sarunic, M. V. Adaptive optics optical coherence tomography for in vivo mouse retinal imaging. J. Biomed. Opt. 18, 56007 (2013).
  21. Ciardella, A. P., Donsoff, I. M., Huang, S. J., Costa, D. L., Yannuzzi, L. A. Polypoidal choroidal vasculopathy. Surv. Ophthalmol. 49, 25-37 (2004).
  22. Sasahara, M., et al. Polypoidal choroidal vasculopathy with choroidal vascular hyperpermeability. Am. J. Ophthalmol. 142, 601-607 (2006).
  23. Silva, R. M., et al. Polypoidal choroidal vasculopathy and photodynamic therapy with verteporfin. Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 243, 973-979 (2005).
  24. Yannuzzi, L. A., et al. Polypoidal choroidal vasculopathy masquerading as central serous chorioretinopathy. Ophthalmology. 107, 767-777 (2000).
  25. Janssen, A., et al. Abnormal vessel formation in the choroid of mice lacking tissue inhibitor of metalloprotease-3. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 49, 2812-2822 (2008).
  26. Ding, X., Patel, M., Chan, C. C. Molecular pathology of age-related macular degeneration. Prog. Retin. Eye Res. 28, 1-18 (2009).
  27. Grossniklaus, H. E., Kang, S. J., Berglin, L. Animal models of choroidal and retinal neovascularization. Prog. Retin. Eye Res. 29, 500-519 (2010).
  28. Pennesi, M. E., Neuringer, M., Courtney, R. J. Animal models of age related macular degeneration. Mol. Aspects Med. 33, 487-509 (2012).
  29. Elizabeth Rakoczy, P., Yu, M. J., Nusinowitz, S., Chang, B., Heckenlively, J. R. Mouse models of age-related macular degeneration. Exp. Eye Res. 82, 741-752 (2006).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

IndocyanineICGAAMDpolypoidal Choroidal vasculopathyPCVconfocalIV ICGAICGA84

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved