JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

סחר קולט מודולציה היענות איתות ותא לligands והוא, עצמו, מגיב לתנאי תא, כוללים איתות מושרה ליגנד. כאן אנו מתארים טכניקה חזקה וגמישה לכמותית הערכת סחר קולט תוצאת משימוש בסמים באמצעות immunolabeling וניתוח colocalizational.

Abstract

The intracellular trafficking of receptors is a collection of complex and highly controlled processes. Receptor trafficking modulates signaling and overall cell responsiveness to ligands and is, itself, influenced by intra- and extracellular conditions, including ligand-induced signaling. Optimized for use with monolayer-plated cultured cells, but extendable to free-floating tissue slices, this protocol uses immunolabelling and colocalizational analysis to track changes in intracellular receptor trafficking following both chronic/prolonged and acute interventions, including exogenous drug treatment. After drug treatment, cells are double-immunolabelled for the receptor and for markers for the intracellular compartments of interest. Sequential confocal microscopy is then used to capture two-channel photomicrographs of individual cells, which are subjected to computerized colocalizational analysis to yield quantitative colocalization scores. These scores are normalized to permit pooling of independent replicates prior to statistical analysis. Representative photomicrographs may also be processed to generate illustrative figures. Here, we describe a powerful and flexible technique for quantitatively assessing induced receptor trafficking.

Introduction

קולטנים, במיוחד קולטני חלבון G בשילוב (GPCRs), באופן שיגרתי נסחרים intracellularly, ומתא השטח 1. תהליכי complexly מתוזמרים ופיקוח הדוק אלה מכתיבים משלים קולט זמין של התאים ולהסדיר את פעילות קולטן זמנית, הפחתת רגישות, וresensitization 2-4. חשוב לציין, תהליכים אלה מגיבים לסביבות סלולריות כוללים פעילות קולט תוצאת משימוש בסמים או חוסר פעילות. כלומר, הפעולות של ligands בקולטנים יכולות לשנות סחר תאיים של קולטנים אלה, ובכך לשנות את היענות תא. באופן זה, ligands החיצוני להפעיל עוד יותר השפעות על תפקוד תא, אפילו מעבר למפלי שליח למפעיל קלאסיים 5,6.

בחינת שינויים בסחר קולט מושרה היא קשה. כל הטכניקות הזמינות כרוכות מגבלות. מבחני הגנת ביוטין שימשו למוניםאוכלוסיות קולטנים משטח טור. קולטנים אלה biotinylated וtimecourse של immunoprecipitations מתבצע לכמת את הירידה בקולטנים biotinylated לאורך זמן. טכניקה זו בעצם עוקבת אחר השפלה ההדרגתית של ראשונית, שכותרתו, אוכלוסייה של קולטנים 7, והוא מאוד שימושי בבניית קורסים של תהליך זה זמן. למרבה הצער, assay זה אינו יכול לפקח על כל תהליך אחר מאשר השפלה של הבריכה המקורית של קולטנים, כגון הפנמה, מחזור, או קולטנים חדשים. כמו כן, התוספת של נוגדנים בטווח 150kDa לקולטן בטווח 50kDa יכולה לשנות הסחר של קולט 8,9, וטכניקה זו עלולה להיות קשה לשימוש עם קולטנים נמוכים ברמת ביטוי.

נהלים אחרים להשתמש בשיטות שונות כדי לזהות תאי סחר תאיים (למשל, endosomes, וכו ') ולהעריך colocalization עם קולטנים של עניין. זה כולל אותנודואר של מערכות Heterologous להביע ניאון חלבון מתויג מבני chimeric של קולטנים וסמני תא (GTPases למשל, ראב-המשפחתי). זה פוטנציאל מאפשר שימוש בLive- תא הדמיה, הסרת נושאים הקשורים לקיבעון וpermeabilization. בעוד רב עוצמה, אסטרטגיה כזו סובלת מאותן המגבלות של מערכות Heterologous באופן כללי: השפעות תג ורמת ביטוי בסחר בהתנהגות וחוסר תאימות עם סוגים יותר מבחינה פיזיולוגית נציג תא. יותר עממי, צבעים משמשים לתייג תאים תאיים בקלות (למשל, lysosomes, לכאורה) 10. צבעים, לעומת זאת, יכולים חסרי ייחוד (כל האברונים חומצי במקרה של צבעים לlysosomes) ולא להעריך סחר באמצעות תאים אחרים. ובכל זאת, טכניקות אלו מאפשרות שליטה רבה יותר במערכת ותנאי ניסוי ועשויות להפיק תועלת משיטות ניתוח colocalization שהוצגו כאן, למטה.

שיטת wדואר נוכח כאן מזקק את המעקב של סחר קולט ידי colocalization. באמצעות immunocytochemistry (ICC) לתייג סמנים מתאימים, ניתן לזהות תאים תאיים שונים מרובים. זה גם מאפשר השימוש בתרביות תאים ראשוניים מבחינה פיזיולוגית-רלוונטיות במקום של מערכות Heterologous. פרוטוקול ICC זה כרוך תיקון התאים של עניין לפני התיוג; זה מאפשר תיוג בנקודת זמן ספציפי הבאים טיפול תרופתי (ים). זה מייצר "תמונת מצב" של עמותות קולט-תא העולמיים בנקודת הזמן ש. עם נקודתי זמן מרובים, timecourse של שינויי סחר יכול גם להיות בנוי.

בקצרה, התאים שטופל בתרופה, שכותרתו לקולט והתא תאית של עניין, confocally צילם, וphotomicrographs מנותחים לכמת colocalization של קולט ותא 11 מתמטי. בשימוש שלנו, בדקנו את colocalization של קולט עם ראB5, Rab11, וlysosomal הקשורים חלבון הקרום 1 (LAMP1). סמנים אלה לזהות endosomes המוקדם, endosomes מחזור, וlysosomes, בהתאמה. צעדי colocalization אלה פועלים כשליחים לתהליכי העל של הפנמה, מחזור, והשפלה 12.

כמו בכל הטכניקות, כמה מגבלות יש לשקול. בשל הצורך לתמונה כל נוירון הבודד ניתח, טכניקה זו יכולה להיות די עתירת עבודה בהתאם למספר התנאים ונקודתי הזמן המעורב. גם כל immunolabeling חייב להתמודד עם ההשפעות על ultrastructure הסלולרי, לוקליזציה חלבון, ונגישות epitope נגרמות על ידי קיבוע וpermeabilization 13.

למרות מותאם במקור לשימוש עם תרבויות עיקריות של נוירונים חושיים ראשוניים, שיטה זו היא רחב תואמת עם מודלים תרבות מצופה monolayer אחרים.

השימוש בmeasur לכמת באופן מתמטידואר של colocalization הוא, בעיקר, הרבה יותר מאשר מתודולוגית קפדני טכניקות קודמות שימשו להערכת שינויים בסחר בקולט, שלעתים קרובות יש לסמוך על אמצעים מעורפלים, סובייקטיבי כגון שכבות רב-ערוצים חזותי-בדקו 14.

טכניקה זו שימושית במיוחד עבור תאימות רחבה עם in vivo התערבויות (לפני דור התרבות העיקרי), במבחנה התערבויות (בצמיחת התרבות), ותיוג שונים מטרות 15. ככזה, הוא יכול להיות מותאם לשאלות מחקר רבות ושונות.

Protocol

הערה: פרוטוקול זה הוא רחב תואם עם מודלים שונים מצופה monolayer תא / רקמת תרבות, משטרי טיפול תרופתי, ומטרות תיוג. כך בשימוש בפועל, פרמטרים ספציפיים רבים ישתנו בהתאם לעיצוב ניסיוני. כאן, אזכור של הפרמטרים המוגדרים על ידי משתמש אלה הם גנרי. תנאי דוגמא, כפי שכדי להשיג את תוצאות הנציג, כלולים בכתב נטוי.

1. פתרונות

  1. הכן חיץ כביסה ידי ערבוב 0.1M טריס שנאגרו hypertonic (300 מ"מ) ותמיסת מלח 0.05% Polysorbate 20; pH 7.4 ב RT.
  2. הכן חיץ חסימה. ל0.05 M טריס שנאגרו hypertonic (300 מ"מ) מלוח להוסיף 0.05% Polysorbate 20, 3% הסרום אלבומין שור (BSA) ושל 0.1% ג'לטין עור דג קר ולהתאים את ה- pH 7.4 ב RT.
  3. הכן diluent נוגדן ידי הוספת 0.05% Polysorbate 20, BSA 1%, 0.1% ג'לטין עור דג קר ל0.05 M טריס שנאגרו hypertonic (300 מ"מ) מלוח ולהתאים את ה- pH 7.4 ב 4 o C.
    הערה: pH של מאגרי טריס הוא טמפרטורה תלויה. כלומר, שינוי בטמפרטורה ישנה את ה- pH של התמיסה. לעקביות, מאגרים אלה תמיד צריכים להיות מותאמים pH בטמפרטורה שבה הם ישמשו.

תרבות 2. תא

הערה: פרוטוקולי תרבות התא מתאימים ישתנו בהתאם לסוג תא (ים) המשמש. נהלים אלה חייבים להיות מותאמים בנפרד. מתודולוגיות תרבית תאים מפורטות זמינות, כולל 16. הליך דומה שימש כדי להשיג את תוצאות הנציג, עם ההבדלים הראויים לציון:

  1. נוירונים גרעיני שורש הגבי תרבות מבעלי החיים מבוגרים כפי שתוארו 12. השתמש מדיום גידול המבוגר-נוירון לתרבות התאים. להפחית את צפיפות תאי גלייה ידי preplating, ולא גלוטמט. התוצאה היא תרבות נוירון גליה מעורבת גדלה על coverslips זכוכית 12 העגול עם לפחות 30-60 נוירונים לכל צלחת ותאי גלייה הנלווית גדלה approximatconfluency 40% איליי. יש לציין כי תאי עצב בתרבות עיקרי לא לשכפל ויהיה דחפו את הצלחת על ידי גליה תרבותית משותפת אם גליה מותרת לגדול יתר על המידה. על מנת להימנע המשפיע על תאי העצב, הפחתה פיזית של מספרי גליה עדיפה על שיטות תרופתיות כימיות /.
    הערה: למטרות פרוטוקול זה, אנו מניחים כי התאים של ריבית גדלו בניסוי-רצוי מדינה ומצופית שכבה. אנו מוצאים כי ציפוי על coverslips זכוכית 12-סיבוב ב 24 צלחות גם להיות נוח ביותר. כל הכרכים והנהלים שתוארו מתאימים לcoverslip אחד ובאחד מצלחת גם 24.

3. טיפול התרופתי של תאים בתרבית

הערה: רציף מרובה, או חופף, טיפולים תרופתיים אפשריות. התרופות, מינונים / ריכוזים, ומשכי חשיפת שימוש יהיה תלוי בניסוי הספציפי.

  1. הסר את מדיום גידול המקורי 16 ולהחליף אותו עם מדיום המכיל את התרופה (ים) של עניין בריכוז (ים) שנבחר. במקרה זה, להשתמש 10 מיקרומטר של מורפיום solubilized מלוחים או להשתמש מלוח בקרה.
    הערה: חשוב שכל אחד לשכפל עצמאי (בדרך כלל תרבות צלחת 24 גם יחידה) מכילים את אותו מצב שליטה משותף. זה יאפשר נורמליזציה של נתונים במשכפל, אשר מתקנת לשונות הבין-משפט.
  2. דגירה התאים בתנאי גידול המקורי 16 ל- 48 שעות.
  3. לטיפולים תרופתיים שלאחר מכן, חזור על שלבים 3.1 ו -3.2 עם 1 Deltorphin מיקרומטר, 1 SNC80 מיקרומטר, או רכב ודגירה של 60 דקות 12. Solubilize deltorphin השני במים וsolubilize SNC80 ב 10 מ"מ ב -40 מיקרומטר HCl וsonicate, בדילול מלא עד 1 מ"מ במים.
    הערה: פרוטוקול זה מניח את התרופה (ים) כבר solubilized כזה שהם יכולים להיות מומסים בריכוז הרצוי (ים) במדיום הגידול שנבחר. נהלים מתאימים לsolubilization כזה ישתנה בהתאם לסמים בשאלה וחייב להיות מותאם בנפרד.
  4. לשטוף את התאים בעדינות, שלוש פעמים, עם ~ 1 מיליליטר של חיץ כביסה לכביסה. לבצע כל לשטוף בעדינות על ידי aspirating הנוזל מהבאר, ואז מייד, ובעדינות, מילוי היטב עם פתרון טרי, כרצוי (במקרה זה עם חיץ כביסה).

4. קיבוע וImmunocytochemistry

הערה: מטרות התיוג הספציפיות תשתנה על ידי ניסוי. בשימוש שלנו, אנחנו כותרת קולטנים דלתא אופיואידים (דור) וRab5, 11 ראב, וLAMP1, כפי שנדון. הנוגדנים הספציפיים המשמשים יהיו תלויים בניסוי הספציפי. תנאי תיוג אופטימליים תלויים בנוגדן הספציפי (ies) משמש. דיון מלא יותר של נושא זה הוא בהמשך.

  1. תקן את התאים על ידי טבילה ב~ 300 paraformaldehyde μl 4% בנאגרו מלוח 0.1 M פוספט במשך 10 דקות ב 37 מעלות צלזיוס.
    הערה: חשוב שסעיף 4%פורמלדהיד להיות מוכן טרי בגלל autofluorescence שנגרם על ידי השימוש בparaformaldehyde בעבר-הקפוא.
  2. לשטוף את התאים בעדינות, 3 פעמים, עם ~ 1 מיליליטר של חיץ כביסה לכביסה, כפי שתואר ב3.3.
  3. דגירה התאים ב300 μl חיץ חסימה לשעה 2 ב RT.
  4. דגירה התאים עם נוגדנים עיקריים ב300 μl של diluent נוגדנים במשך 48 שעות ב 4 מעלות צלזיוס. בשימוש שלנו, נוגדנים עיקריים נגד דור (ארנב נגד דור) ואחד: Rab5 (עכבר אנטי-Rab5), ראב 11 (עכבר אנטי-Rab11), וLAMP1 (עז נגד LAMP1).
  5. לשטוף את התאים בעדינות, שלוש פעמים, עם ~ 1 מיליליטר של חיץ כביסה לכביסה, כפי שתואר ב3.3.
  6. דגירה התאים עם נוגדנים משני מצומדת לfluorophores שונה (ראה דיון בהמשך) ב300 μl של diluent נוגדן עבור שעה 1 ב RT. בזה, וכל השלבים הבאים, להגן על התאים מפני אור. כדי להשיג את תוצאות הנציג, להשתמש ירוק פולטות נגד ארנב fluorophore מצומדות וeithאה אנטי עכבר fluorophore מצומדות פולטות אדום או אנטי-עז fluorophore מצומדות פולטות אדום.
  7. לשטוף את התאים בעדינות, 3 פעמים, עם ~ 1 מיליליטר של חיץ כביסה לכביסה, כפי שתואר ב3.3.
  8. הסר את coverslips 12 העגול מ -24 צלחות גם על ידי השארה ~ 1 מיליליטר של חיץ כביסה בכל טוב, מחזיקה את הצלחת ב ~ 45 מעלות, ולמנף את coverslip מעל הרצפה גם באמצעות מלקחיים בסדר. Coverslip יבוא לנוח על הקיר גם, מהמקום שבו יכול בקלות להסיר באמצעות המלקחיים.
  9. הר coverslips, תא בצד למטה, על שקופיות מיקרוסקופ עם אנטי דהייה הרכבה בינונית.

5. הגדרות מיקרוסקופ

  1. באמצעות מטרת הגדלה גבוהה (100X), אתר ראשון תא נציג להיות צילם באמצעות epifluorescence.
  2. הגדר את ההגדרות לכידת תמונה כדי להקליט 8 ביט תמונות TIFF דחוסות של כל ערוץ שכותרתו (לצורך זיהוי של כל fluorophore משמש דוגמא, 488 ננומטר ו -594 ננומטר), לתמונה כל רצף ערוץ (או על ידי קו או מסגרת), ו4-6 סריקות ממוצעת לתמונה הסופית. רזולוציית תמונה אופטימלית תהיה מיקרוסקופ ספציפי, אבל 1024 x 1024 בדרך כלל מניבה תוצאות טובות.
  3. לעבור לנתיב ההדמיה confocal ולהתמקד לZ-מטוס דרך מרכז התא.
  4. לייעל (בדרך כלל יחידת 1 אוורירי) חריר, כוח הלייזר, ומתח צינור מכפיל (רווח) וקוזז לכל ערוץ. לשמור / להקליט את ההגדרות האלה. השתמש באותן הגדרות מיקרוסקופ הדמיה כל התאים שכותרתו לכל זוג יעד נתון באותו לשכפל.
    הערה: תהליך זה בדרך כלל יגרום photobleaching די בכך שתא זה לא צריך להיות צילם לניתוח.

6. הדמיה

  1. באמצעות מטרת הגדלה גבוהה (למשל, 100X), אתר ראשון תא להיות צילם באמצעות epifluorescence.
  2. לעבור לנתיב ההדמיה confocal ולהתמקד לZ-מטוס דרך מרכז התא. אניו זמין, זום תוכנת שימוש / יבול כדי להגביל את אזור הסריקה לתא של עניין.
  3. צלם תמונות בכל ערוץ שכותרתו באמצעות ההגדרות שנקבעו בעבר. חזור על שלבים 6.1-6.3 לתמונה 15 או יותר תאים לכל מצב ללשכפל כדי להבטיח מדגם מספיק.

7. colocalization ניתוח

  1. פתח את הזוג של תמונות (לדוגמא, 'ירוק' ו 'אדום') של תא בImageJ. השתמש בתמונה> צבע> מיזוג ערוצים ... הפקודה כדי ליצור תמונת RGB.
  2. צייר בחירה סביב התא של עניין. השתמש בתוסף ImageJ "PSC colocalization" (11; זמין מhttps://www.cpib.ac.uk/tools-resources/software/psc-colocalization-plugin/) לכמת colocalization של המטרות בתא שנבחר.
  3. רשום את המידה הרצויה colocalization (בדרך כלל r של פירסון 17). חזור על שלבים 7.1-7.3 לכל תא הדמיה.

8. נתונים נורמליזציה

  1. לחשב את הממוצע של ערכי colocalization המוקלטים של תנאי שליטה המשותפים של כל לשכפל של כל מצב תיוג.
    הערה: לדוגמא, הממוצע של ערכי colocalization של נוירונים ב" רכב 48 שעות, רכב 60-דק "מצב סמים בכל אחד מ3 משכפל עצמאי בכל אחד מתנאי 3 תיוג (קולטן וכל אחד מתאים 3).
  2. הכפל את האמצעים (-1) להניב לקזז עבור כל לשכפל בכל מצב תיוג. הוסף את הקיזוז לכל לשכפל בכל מצב תיוג לכל ערך colocalization בלשכפל את זה.
    הערה: זה לנרמל את הנתונים כך שמדד colocalization ממוצע למצב שליטה המשותף הוא 0 בכל אחד לשכפל של כל מצב תיוג.
  3. בריכה את הנתונים מכל משכפל של כל תנאי תיוג.
    הערה: שינויים בcolocalization כעת ניתן לנתח על פני משכפל. אנאלי סטטיסטייסיס יהיה תלוי עיצוב ניסיוני, אבל יהיה בדרך כלל כרוך בניתוח-של-שונות (ANOVA) ואחרי בדיקות מתאימות פוסט הוק (למשל, Tukey). למשאבים סטטיסטיים, ראה, למשל, 18.

תוצאות

שימוש בטכניקה זו, ניתן לכמת שינויים בסחר בהודעת הפנמת קולטן הבאים שני טיפולים תרופתיים כרוניים / ממושכים וחריפים. לאחר טיפולים תרופתיים, קיבעון, ותיוג, photomicrographs שני ערוצים ברזולוציה גבוהה נלכדים של כל תא של עניין. נציג תמונות עשויות להיות משולבות עם colocalization כוזב בצבע...

Discussion

יש לנו מותאם פרוטוקול זה לניתוח תרבויות העיקריות של נוירונים גנגליון שורש הגבי בוגרים (תאי עצב תחושתיים ראשוניים). גם זה יכול לשמש, עם שינוי קטן או לא, לתאים בתרבית מצופה monolayer רחב. ניתוח colocalizational ניתן גם בחתכי רקמה והכנות אחרות כגון 11, לעומת זאת רכיבי הטיפול התרו...

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי מענק מCIHR (MOP394808) וקנדה מחקר קתדרה לCMCEWO היה הנמען של מלגת פוסט-בוגר מNSERC.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Trizma BaseSigma AldrichT1503-500G
Sodium ChlorideSigma AldrichS9888-500G
Tween 20Fisher ScientificBP337-500
Hydrochloric AcidSigma Aldrich258148
Albumin from Bovine SerumSigma AldrichA7906-100G
Gelatin from cold water fish skinSigma AldrichG7041-100G
Corning Costar Cell Culture Plates: 24-wellFisher Scientific720084
12 circle Microscope Cover GlassFisher Scientific1254580
Aqua/Poly-MountPolysciences18606-20
Sodium Phosphate MonobasicSigma AldrichS9638-500G
Sodium Phosphate DibasicSigma AldrichS9763-500G
ParaformaldehydePolysciences00380-1
Dumont #5 Forceps - Standard/DumoxelFine Science Tools11251-30
Rabbit anti-DOR antibodyMyBioSourceMBS316175Used at 1:1,500
Mouse anti-Rab5 antibodySigma AldrichR7904Used at 1:750
Mouse anti-Rab11 antibodyMillipore05-853Used at 1:500
Goat anti-LAMP1 antibodySanta CruzSC8098Used at 1:750
Donkey anti-rabbit Alexa 488 conjugated antibodyLife TechnologiesA-21206Used at 1:200 to 1:2,000
Goat anti-mouse Alexa 594 conjugated antibodyLife TechnologiesA-11005Used at 1:200 to 1:2,000
Donkey anti-goat Alexa 594 conjugated antibodyLife TechnologiesA-11058Used at 1:200 to 1:2,000

References

  1. Drake, M. T., Shenoy, S. K., Lefkowitz, R. J. Trafficking of G protein-coupled receptors. Circ. Res. 99 (6), 570-582 (2006).
  2. Hanyaloglu, A. C., von Zastrow, M. Regulation of GPCRs by endocytic membrane trafficking and its potential implications. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 48, 537-568 (2008).
  3. Hislop, J. N., von Zastrow, M. Role of ubiquitination in endocytic trafficking of G-protein-coupled receptors. Traffic. 12 (2), 137-148 (2011).
  4. Nagi, K., Piñeyro, G. Regulation of opioid receptor signalling: implications for the development of analgesic tolerance. Mol. Brain. 4 (1), 25 (2011).
  5. Whistler, J. L., Enquist, J., et al. Modulation of postendocytic sorting of G protein-coupled receptors. Science. 297 (5581), 615-620 (2002).
  6. Von Zastrow, M. Regulation of opioid receptors by endocytic membrane traffic: mechanisms and translational implications. Drug Alcohol Depend. 108 (3), 166-171 (2010).
  7. Milan-Lobo, L., Whistler, J. L. Heteromerization of the µ- and δ-opioid receptors produces ligand-biased antagonism and alters µ-receptor trafficking. J. Pharmacol. Exp. Ther. 337 (3), 868-875 (2011).
  8. Wang, H. -. B., Guan, J. -. S., Bao, L., Zhang, X. Distinct subcellular distribution of delta-opioid receptor fused with various tags in PC12 cells. Neurochem. Res. 33 (10), 2028-2034 (2008).
  9. Scherrer, G., Tryoen-Tóth, P., et al. Knockin mice expressing fluorescent delta-opioid receptors uncover G protein-coupled receptor dynamics in vivo. Proc. Natl. Acad. Sci. 103 (25), 9691-9696 (2006).
  10. He, S. -. Q., Zhang, Z. -. N., et al. Facilitation of µ-opioid receptor activity by preventing δ-opioid receptor-mediated codegradation. Neuron. 69 (1), 120-131 (2011).
  11. French, A. P., Mills, S., Swarup, R., Bennett, M. J., Pridmore, T. P. Colocalization of fluorescent markers in confocal microscope images of plant cells. Nat. Protoc. 3 (4), 619-628 (2008).
  12. Ong, E. W., Xue, L., Olmstead, M. C., Cahill, C. M. Prolonged morphine treatment alters δ opioid receptor post-internalization trafficking. Br. J. Pharmacol. 172 (2), 615-629 (2014).
  13. Schnell, U., Dijk, F., Sjollema, K. a. Immunolabeling artifacts and the need for live-cell imaging. Nature Methods. 9 (2), 152-158 (2012).
  14. Rozenfeld, R., Gupta, A., Devi, L. A. Cell surface targeting of mu-delta opioid receptor heterodimers by RTP4. Proc. Natl. Acad. Sci. 105 (41), 16045-16050 (2008).
  15. Gupta, A., Mulder, J., et al. Increased abundance of opioid receptor heteromers after chronic morphine administration. Sci. Signal. 3 (131), ra54 (2010).
  16. Seibenhener, M. L., Wooten, M. W. Isolation and culture of hippocampal neurons from prenatal mice. J. Vis. Exp. (65), 1-7 (2012).
  17. Bolte, S., Cordelières, F. P. A guided tour into subcellular colocalization analysis in light microscopy. J. Microsc. 224 (Pt 3), 213-232 (2006).
  18. Field, A., Miles, J., Field, Z. . Discovering Statistics Using R. , (2012).
  19. Mattioli, T. -. A. M., Milne, B., Cahill, C. M. Ultra-low dose naltrexone attenuates chronic morphine-induced gliosis in rats. Mol. Pain. 6, 22 (2010).
  20. Vogt, R. F., Phillips, D. L., Henderson, L. O., Whitfield, W., Spierto, F. W. Quantitative differences among various proteins as blocking agents for ELISA microtiter plates. J. Immunol. Methods. 101 (1), 43-50 (1987).
  21. Johnson, I., Spence, M. . The Molecular Probes Handbook. , (2010).
  22. Morris, T. J., Stanley, E. F. A simple method for immunocytochemical staining with multiple rabbit polyclonal antibodies. J. Neurosci. Methods. 127 (2), 149-155 (2003).
  23. Pawley, J. . Handbook of Biological Confocal Microscopy. , (2006).
  24. North, A. J. Seeing is believing? A beginners’ guide to practical pitfalls in image acquisition. J. Cell Biol. 172 (1), 9-18 (2006).
  25. Zinchuk, V., Zinchuk, O., Okada, T. Quantitative colocalization analysis of multicolor confocal immunofluorescence microscopy images: pushing pixels to explore biological phenomena. Acta Histochem. Cytochem. 40 (4), 101-111 (2007).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

101GcolocalizationImmunocytochemistry

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved