JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

תארנו פרוטוקול לביצוע חלקי hepatectomy (PHx), השתלת תא באמצעות הטחול ב במנוד ראש. SCID (הנהון. CB17-Prkdcscid/J) עכברים. ב פרוטוקול זה, חתך לחשוף ולאחר נכרות האונה השמאלית של הכבד, ואחריו עוד חתך השתלת intrasplenic של תאים.

Abstract

Hepatectomy חלקית היא שיטה לשחזור רב-תכליתי ללמוד התחדשות הכבד ואת השפעת התא מבוסס הרפוי בתנאים פתולוגיים שונים. Hepatectomy חלקית מקלה גם engraftment מוגבר של התפשטות התאים המושתלים על ידי מאיץ כורוידאלית ואת נדידת תאים לכיוון הכבד. כאן, אנו מתארים פרוטוקול פשוט עבור מבצע 30% hepatectomy והשתלת תאי הטחול של שאינו שמנים סוכרת/חמור בשילוב הנד immunodeficient. SCID (הנהון. CB17-Prkdcscid/J) העכבר.

בהליך זה, מתבצעים שני חתכים קטנים. החתך הראשוני היא לחשוף ולאחר נכרות האונה השמאלית של הכבד, והוא חתך קטן אחר עשוי לחשוף את הטחול כבר intrasplenic של תאים. הליך זה אינו דורש כל כישורים מיוחדים, ניתן להשלים אותו תוך 5-7 דקות עם פחות לחץ, כאב, התאוששות מהירה יותר של הישרדות טוב יותר. הראו את השתלת של hepatocytes מבודד של חלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP) המבטאת העכבר (הטרנסגניים C57BL/6-Tg (UBC-GFP) 30Scha/J), כמו גם hepatocyte כמו תאים ממקור אנושי (NeoHep) ב חלקית hepatectomized במנוד ראש. SCID עכברים.

Introduction

כיום, השתלת hepatocyte מוצע כחלופה השתלת איברים כל בטיפול בחולים לאחר הפרעות כבד קשות. הוא האמין כי זה יכול לגשר בין חולים השתלת איברים כל1. בנוסף allogenic hepatocytes2, xenogenic hepatocytes3 ו hepatocytes שמקורם בתאי גזע4 גם נחקר במודלים של בעלי חיים. בהקשר זה, יונת, engraftment הפוטנציאל של התאים המושתלים של הנמען הוא קריטריון חשוב עבור טיפול בתאי מבוסס על כשל של הכבד חריפה (AHF).

עבור חוקרים את השתלת hepatocytes או תאים דמויי hepatocyte5, AHF נוצרת במודל חיה כירורגי6 או תרופתי7 נהלים, ואחריו משתילים תאים. כדי להפוך מודל חיה AHF על ידי ריאגנטים תרופתי, hepatotoxins רבים כגון d-galactosamine8, פרצטמול9, פחמן tetrachloride10, thioacetamide11, Concanavalin A12, ליפופוליסכריד13 , ועוד., היו בשימוש. מתוך רשימה זו, כל ריאגנט יוצר קבוצת תכונות ייחודיות עבור AHF, אך למרבה הצער לא מגיב יחיד מחקה את AHF האנושית. יתר על כן, AHF שנגזרות hepatotoxins אורכת זמן רב, אשר מעמידה חיות תחת מתח כרוני, ויש תוצאות לשחזור קשה להשיג.

מצד שני, ההליך הכירורגי של חלקי hepatectomy (PHx) היא מיומנות התלויים, תוצאות לשחזור קל להשיג לאחר פיתוח הכישורים הנדרשים. כדי לגרום AHF על ידי התערבות כירורגית לבד, נדרשת כריתה של יותר מ 70% של הכבד; עם זאת, פחות ממה hepatectomy 70% עדיין יכול להיות מנוצל כדי ללמוד engraftment והתפשטות של מושתלים תאי הכבד לניתוח יכולת טיפולית שלהם במהלך פגיעה בכבד14. ההשתלה של hepatocytes כבר hepatectomy פוסט שבוצעו דרך ה צפק15, וריד הזנב16, וריד הכבד17או את הטחול18. כיום, וריד הכבד אינפוזיה והשתלות intrasplenic של hepatocytes הן ההליכים מועדף, הם יותר קל להתרבות.

בנייר זה, תארנו הליך של hepatectomy חלקי 30% ב במנוד ראש. SCID (הנהון. CB17-Prkdcscid/J) שבו טוחנות האונה השמאלית של הכבד הוא עכברים. זה ואחריו השתלת hepatocytes העכבר (6/C57BL-Tg (UBC-GFP) 30Scha/J) לביטוי GFP 0.2 מיליון וכן מקור אנושי NeoHep19 של הטחול. הליך זה מוביל engraftment של התאים המושתלים בכבד. ההליך זה לפחות פולשני, טכניקה כואב מינימלית.

Protocol

נהלים הוצג פרוטוקול זה אושרו על ידי ועדת אתיקה מוסדית חיה של המכון הלאומי לאימונולוגיה, ניו דלהי. מספר האישור הפניה טורי הוא IAEC #319/13.

הערה: ישנם משאבים מעולה על נהלים כירורגיה כללית20 ופרוטוקולים ספציפיים עבור ניתוח מכרסמים21. אלה עושים את הניתוח בעלי חיים בפעם הראשונה, מומלץ לתרגל בהרחבה ניתוחים על בובות ההפעלה על בעלי חיים.

1. הכנה

  1. לפני הניסוי, שמור תמיסת מלח סטרילית פוספט buffered (PBS) או מוכן מלוחים.
  2. להרכיב ערכה ניתוח המכיל מספריים מלקחיים משוננות, רקמות מלקחיים, כותנה, צמר גפן, חוטי ניילון, מחט מיקרו שונים. אוטוקלב ערכת ניתוח. טיפול מיוחד יש לנקוט אם הנהון החיסון-לסיכון. SCID העכבר נכלל בפרוטוקול.
  3. בצע את ההליך ניסיוני מלאה, משלב הכנת בסוף הניתוח, הביו-הבטיחות מחלקה אני ארון.
  4. שוקלים הנהון. SCID בעכבר של 6-8 שבועות לפני הניתוח. עכברים במשקל בין 14-18 גרם משמשים במחקר זה.
  5. לגלח העליון המרכזי, היפוכונדרית אזור הבטן של העכבר הקוצץ שיער. להחיל שיער הסרת קרם אחיד בכל רחבי האזור עם מרית כדי להסיר לחלוטין את השערות החתוך. להסיר את השיער בעדינות בעזרת פיסת צמר גפן סטרילי רטוב אחרי 2-5 דקות.
  6. הנח את העכבר בתא איזופלוריין ולפתוח את הברז של הגליל חמצן. לשמור על זרימת חמצן בשיעור של 4 L/דקה את אידוי איזופלוריין ב 4% כדי לגרום הרדמה.
    1. ודא כי העכבר יש כבר מורדם כראוי על ידי הבוהן עדין לצבוט.
  7. להציב לוח ניתוח בפנים אבטחה בארון. במקום החיה על ניתוח הלוח, כך פונה מעלה, בחלק הבטני של העכבר ואת החלק הקדמי של העכבר ממוקם בתוך אצטרובל האף מחובר את איזופלוריין ואת אספקת החמצן.
  8. להפחית את אידוי איזופלוריין ל- 2%, לשמור עליו לאורך כל הליך כירורגי.
  9. לחטא את העור של העכבר ולחטא אותו על ידי מנגב עם ספוג אתנול 70% כותנה סטרילי.

2. ניתוח

  1. Hepatectomy חלקית
    1. לבצע חתך רוחבי של 1 ס מ של העור מתחת החזה, בניצב תהליך מצאתי ואת במקביל בית החזה, בעזרת מספריים הפעלה ישר.
    2. נפרדים בעדינות את העור המצורפת עם השכבה שריר הבטן בקרבת האזור חרות עם מלקחיים או ניתוח סטרילי כותנה בטעימת טיפים כדי להבחין בין העור לבין שכבת שריר הבטן. משרים את האזור intradermal עם PBS באמצעות צמר גפן סטרילי טיפים כדי להתחמק לייבוש.
    3. לחשוף את האזור של האונה השמאלית בצורה חלקה על ידי ביצוע חתך רוחבי דרך השכבה הצפק מתחת מצאתי. השתמש בעצות כותנה בטעימת שני לחשוף ולהרים האונה השמאלית של הכבד.
    4. מקום אחד הטיפים כותנה בצד הבטן של החתך, ולמקם עוד טיפ כותנה בצד הסרעפת. בעדינות את הטיפ להציב כלפי הסרעפת ואת לתת דחיפה הזזה. על ידי אחרים כדי להרים את האונה השמאלית של הכבד.
    5. להחליק חוט ניילון עם לולאה דרך האונה השמאלית המורמת והחלק הלולאה לעבר הבסיס של האונה השמאלית קרוב hilum בעזרת העצות מיקרו-מלקחיים או כותנה. לדחוף בעדינות את הלולאה בחוט ניילון בבסיס האונה השמאלית.
    6. לקשור שני קצוות של חוט ניילון מעל החלק העליון של האונה השמאלית באמצעות בעל מחט למיקרו המלקחיים מיקרו. לעשות שני קשרים נוספים בצד השני.
    7. שווייץ האונה קשור בעזרת מספריים. אל תנסו לחתוך מאוד קרוב החוט. למקרה ההליך נמשך יותר מ- 5 דקות, לשמור את חלל הצפק איברים לח עם PBS סטרילי כדי להימנע לייבוש בשל אובדן נוזלים.
    8. לתפור את הצפק באמצעות רציף הפתולוגיים בתפר לאללה 4-0. לאחר מכן, לסגור את העור על-ידי תפירת מקוטע מהר ככל האפשר.
  2. השתלת תא
    הערה: hepatocytes מבטאים ה-GFP הם בודדו אותנו מהמתרחש העכברים הטרנסגניים GFP (6/C57BL-Tg (UBC-GFP) 30 Scha/J), על-פי ההליך המתואר על ידי Lee ואח. 22 , שן ואח. 23 תאים, כמו hepatocyte (NeoHep) ממוצא האנושי תריז ומונוציטים24 שימשו גם השתלת. עם זאת, תאים שמקורם מקורות אחרים עשוי לשמש גם בפרוטוקול.
    1. להשעות את התאים קיימא 0.2 מיליון ב בסביבות 50 µL של המדיום של Iscove שונה Dulbecco (IMDM), תשאף את זה בתוך מזרק אינסולין 1 מ"ל כתרים עם המחט 30 גרם. לשמור את המזרק קר על ידי הצבתו על קרח.
    2. הצב את העכבר בדרך בחלק הלטראלי השמאלי כלפי מעלה לכיוון האדם שמבצע ניתוח. לזהות את אזור הטחול ומנתחים באופן רוחבי על העור ליד האזור היפוכונדרית, ואחריו חתך קצר דרך השכבה הצפק רק כדי לחשוף את הטחול.
    3. בעדינות להרים את הטחול והחזק שאותו החוצה חלל הבטן בעזרת שני PBS לחלח טיפים כותנה.
    4. החזיקו הטחול בזהירות עם שתי עצות כותנה ביד אחת, ולמקם את המחט של המזרק בדיוק אנכית כדי הטחול. פירס הטחול ולדחוף את המחט בעדינות באיטיות פנימה; המחט לא צריך לקבל עמוקות יותר מ- 2 מ מ.
    5. לוחץ את הבוכנה של המזרק לאט כדי להזריק את התאים לתוך הטחול. לאחר ההשתלה, להשאיר את המחט של המזרק יציב ומסירים אותו לאט לאט הטחול כדי למנוע דימום או אובדן של תאים.
    6. לאחר הצבת הטחול בחזרה לתוך חלל הצפק עם העצות כותנה, לסגור את השכבה הצפק על ידי תפירת רציף 4-0 בתפר לאללה. לתפור את העור באורח מקוטע עם התפר אותו. הימנע משימוש הפצע קליפים לסגירת העור; במקום זאת, לסגור את זה על ידי בתפר 4-0. הקליפים הפצע להגביל את התנועה הטבעית של העכבר, לעיתים קרובות קליפים להיות משוחרר. וצא החוצה במהירות.

3. לאחר הניתוח טיפול

  1. לאחר סגירת העור, נגב את הסביבה של שני האתרים תפר עם יודיפלור תמיסה (betadine) באמצעות טיפ כותנה סטרילי.
  2. תזריק מנה של אנטיביוטיקה cefotaxime כמו 600 מ"ג/ק"ג משקל (בדרך כלל 12 מ"ג cefotaxime ב µL 100 של תמיסת מלח/עכבר) גוף intraperitoneally באמצעות מזרק 1 מ"ל.
  3. לתת במינון יומי של Meloxicam כאבים בתור 1 מ"ג/ק"ג משקל גוף (בדרך כלל 12 µg Meloxicam ב µL 100 של תמיסת מלח/עכבר) לחיה intraperitoneally, במשך שלושה ימים אחרי הניתוח.
  4. לאחר סיום הניתוח, מפסיקים את זרימת הגז איזופלוריין ומניחים את העכבר חזרה לכלוב מאוורר בנפרד.

4. euthanization, אפיוני

  1. לאחר ניסיוני והגישור (יום 1 ו- 10 ימים לאחר הניתוח), המתת חסד העכברים על פי הנחיות מוסדיים אתיקה בעלי חיים.
  2. לאסוף דם על ידי סופני דימום החיות, ניקב את מקלעת מסוף עינית.
  3. לבודד נסיוב מהדם.

תוצאות

Hepatocyte התפשטות לאחר hepatectomy חלקי 30%: התפשטות hepatocytes הנותרים הכבד לאחר 30% hepatectomy נבדק על ידי immunohistochemical (IHC) צביעת עבור סמן התפשטות תאים, Ki-67. פוסט יום אחד hepatectomy, העכברים היו מורדמים, האונות הכבד הנותרים היו טוחנות, פרפין מקטעים התקבלו. הסעיפים היו מוכתמים נוגדן Ki-67, ואחריו labelling עם חזרת pero...

Discussion

Hepatectomy חלקית היא טכניקה הוקמה עבור החקירה התחדשות הכבד, hepatectomy מוגזמת הוא דיווח כדי לחקות את מודל AHF. בין מודלים חייתיים של AHF, מכרסמים, עכברים במיוחד, הם המודל הכי חקר. כדי להשיג פגיעה בכבד מודל בעכברים, עד hepatectomy 70% דווח עם הישרדות טוב שיעור25,26. עם זאת בעירום, עכ...

Disclosures

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי המענק הליבה קיבל את המחלקה לביוטכנולוגיה, ממשלת הודו על המכון הלאומי לאימונולוגיה, ניו דלהי. הכתובת הנוכחית של ד ר Bhattacharjee הוא חטיבת לגסטרואנטרולוגיה, Hepatology, תזונה, החולים בלוס אנג'לס לילדים.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Gas Anesthesia SystemUgo Basile; Italy211000
Weighing machineGoldtech ; IndiaLocal Procurement
Biological safety cabinet ( Class I)Kartos international;  IndiaLocal Procurement
Hair TrimmerPanasonic ;  Japan ER-GY10 
Straight operating scissor with sharp /sharp bladesMajor Surgicals; IndiaLocal Procurement
Forceps with SerrationsMajor Surgicals; IndiaLocal Procurement
Micro needle holders  straight & curved Mercian ;  England BS-13-8
1 ml insulin syringe with 30G *5/16 needles Dispo Van; India
1 ml syringe with 26 G * 1/2 needleBD ; US REF 303060
Nylon Threads  Mighty ; India(1-0) Local Procurement
MERSUTURES 4-0 Sterilised Surgical Needled SutureEthicon, Johnson & Johnson, IndiaNW 5047
TRUGUT 76 cm 4-0 absorbable surgical sutureSutures India Pvt. Ltd; IndiaSN 5048Sterilised Surgical Needled Suture Catgut Chromic
Cotton BudsPure Swabs Pvt Ltd ;  IndiaLocal Procurement
Surgical Tape3M India ; India1530-1Micropore Surgical Tape
MicrotomeHisto-Line Laboratories, ItalyMRS3500
Shandon Cryotome E CryostatThermo Electron Corporation ; US
Confocal laser scanning microscopeCarl Zeiss ; Germany LSM 510 META
Bright Field MicroscopeOlympus, JapanLX51
Automated analyserTulip, Alto Santracruz, IndiaScreen Maaster 3000Biochemical analyser for liver functional test
Flow CytometerBD ; US BD FACSverseAssesment of presence of cells post transplantation
Veet hair removal cream Reckitt Benckiser , India
FORANEAbbott ; USisoflurane USP 99.9% 
TaximAlKem ; Indiacefotaxime sodium injection
Povidone-Iodine solution Win-Medicare;  IndiaBetadine
ParaformaldehydeHimedia; IndiaGRM 3660
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM)Life technologies, Thermo Fisher scientific ; US12200-036
SucroseSigma ; USS0389
Tissue-TekSakura; US25608-930O.C.T compound
DAPIHimedia; IndiaMB 097
anti-Albumin goat PolyclonalThermo Scientific,Pierce, USPA126081
anti-connexin 32/GJB1 Polyclonalabcam, UKab64609-500
antiGFP rabbit polyclonal Santa Cruz biotechnology; USSC 8334
Alexa Fluor 594 donkey anti-goat Molecular Probes , Thermo Fisher Scientific ;  USA11058
Alexa Fluor 488 donkey anti-sheep Molecular Probes , Thermo Fisher Scientific ;  USA11015
Alexa Fluor 594 chicken anti rabbit Molecular Probes , Thermo Fisher Scientific ;  USA21442
Goat anti rabbit IgG HRPInvitrogen, Thermo Fisher Scientific; US 65-6120
anti-Ki67 antibodyabcam, UKab15580
Antigen Unmasking Solution, Citric acid baseVector laboratories, USH-3300
ProLong Diamond antifade mountantLife technologies, Thermo Fisher scientific ; USP36966
SGOT (ASAT) KITCoral Clinical System, India
SGPT (ALAT) KITCoral Clinical System, India
Alkaline Phosphatase Kit (DEA)Coral Clinical System, India
Hematoxylin Solution, Mayer'sSigma ; USMHS16
Eosin Y solution, alcoholicSigma ; USHT110132
DPX Mountant Sigma ; US6522
Melonex (Pain Killer)Intas Pharmaceuticals Ltd; IndiaMeloxicam injection 
DAB enhanced liquid substrate system tetrahydrochlorideSigma ; USD3939

References

  1. Nussler, A., et al. Present status and perspectives of cell-based therapies for liver diseases. J. Hepatol. 45 (1), 144-159 (2006).
  2. Ponder, K. P., et al. Mouse hepatocytes migrate to liver parenchyma and function indefinitely after intrasplenic transplantation. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 88 (4), 1217-1221 (1991).
  3. Kokudo, N., Horimoto, H., Ishida, K., Takahashi, S., Nozawa, M. Allogeneic hepatocyte and fetal liver transplantation and xenogeneic hepatocyte transplantation for Nagase's analbuminemic rats. Cell Transplant. 5 (5 Suppl 1), S21-S22 (1996).
  4. Christ, B., Bruckner, S., Stock, P. Hepatic transplantation of mesenchymal stem cells in rodent animal models. Methods Mol. Biol. 698, 315-330 (2011).
  5. Fox, I. J., Roy-Chowdhury, J. Hepatocyte transplantation. J. Hepatol. 40 (6), 878-886 (2004).
  6. Glanemann, M., et al. Transplantation of monocyte-derived hepatocyte-like cells (NeoHeps) improves survival in a model of acute liver failure. Ann. Surg. 249 (1), 149-154 (2009).
  7. Rahman, T. M., Hodgson, H. J. Animal models of acute hepatic failure. Int. J. Exp. Pathol. 81 (2), 145-157 (2000).
  8. Zhang, L., et al. Granulocyte colony-stimulating factor treatment ameliorates liver injury and improves survival in rats with D-galactosamine-induced acute liver failure. Toxicol. Lett. 204 (1), 92-99 (2011).
  9. Gardner, C. R., et al. Role of nitric oxide in acetaminophen-induced hepatotoxicity in the rat. Hepatology. 27 (3), 748-754 (1998).
  10. Nardo, B., et al. Successful treatment of CCL4-induced acute liver failure with portal vein arterialization in the rat. Transplant Proc. 38 (4), 1187-1189 (2006).
  11. Sathyasaikumar, K. V., et al. Fulminant hepatic failure in rats induces oxidative stress differentially in cerebral cortex, cerebellum and pons medulla. Neurochem. Res. 32 (3), 517-524 (2007).
  12. Wu, J., et al. Laennec protects murine from concanavalin A-induced liver injury through inhibition of inflammatory reactions and hepatocyte apoptosis. Biol. Pharm. Bull. 31 (11), 2040-2044 (2008).
  13. Kaur, G., Tirkey, N., Chopra, K. Beneficial effect of hesperidin on lipopolysaccharide-induced hepatotoxicity. Toxicology. 226 (2-3), 152-160 (2006).
  14. Rupertus, K., et al. Major but not minor hepatectomy accelerates engraftment of extrahepatic tumor cells. Clin. Exp. Metastasis. 24 (1), 39-48 (2007).
  15. Selden, C., Casbard, A., Themis, M., Hodgson, H. J. Characterization of long-term survival of syngeneic hepatocytes in rat peritoneum. Cell Transplant. 12 (6), 569-578 (2003).
  16. Tang, T. H., et al. The role of donor hepatocytes and/or splenocytes pre-injection in reducing islet xenotransplantation rejection. Hepatobiliary. Pancreat. Dis. Int. 2 (3), 344-350 (2003).
  17. Goto, Y., Ohashi, K., Utoh, R., Yamamoto, M., Okano, T. Hepatocyte transplantation through the hepatic vein: a new route of cell transplantation to the liver. Cell Transplant. 20 (8), 1259-1270 (2011).
  18. Gabelein, G., et al. Intrasplenic or subperitoneal hepatocyte transplantation to increase survival after surgically induced hepatic failure?. Eur. Surg. Res. 41 (3), 253-259 (2008).
  19. Bhattacharjee, J., et al. Autologous NeoHep Derived From Chronic Hepatitis B Virus Patients' Blood Monocytes by Upregulation of cMET Signaling. Stem Cells Transl. Med. , (2016).
  20. . . Basic surgical skills. Emergency and Essential Surgical Care (EESC) programme. , (2017).
  21. Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. Principles of rodent surgery for the new surgeon. J. Vis. Exp. (47), (2011).
  22. Lee, S. M., Schelcher, C., Demmel, M., Hauner, M., Thasler, W. E. Isolation of human hepatocytes by a two-step collagenase perfusion procedure. J. Vis. Exp. (79), (2013).
  23. Shen, L., Hillebrand, A., Wang, D. Q., Liu, M. Isolation and primary culture of rat hepatic cells. J. Vis. Exp. (64), (2012).
  24. Bhattacharjee, J., et al. Autologous NeoHep Derived from Chronic Hepatitis B Virus Patients' Blood Monocytes by Upregulation of c-MET Signaling. Stem Cells Transl. Med. 6 (1), 174-186 (2017).
  25. Hori, T., et al. Simple and sure methodology for massive hepatectomy in the mouse. Ann. Gastroenterol. 24 (4), 307-318 (2011).
  26. Hori, T., et al. Simple and reproducible hepatectomy in the mouse using the clip technique. World J. Gastroenterol. 18 (22), 2767-2774 (2012).
  27. Vidal, I., Richert, L. The nude mouse as model for liver deficiency study and treatment xenotransplantation. Int. J. Hepatol. , 1400147 (2012).
  28. Mitchell, C., Willenbring, H. A reproducible and well-tolerated method for 2/3 partial hepatectomy in mice. Nat. Protoc. 3 (7), 1167-1170 (2008).
  29. Ahmed, S. U., et al. Generation of subcutaneous and intrahepatic human hepatocellular carcinoma xenografts in immunodeficient mice. J. Vis. Exp. (79), e50544 (2013).
  30. Krikri, A., et al. Laparoscopic vs. open abdominal surgery in male pigs: marked differences in cortisol and catecholamine response depending on the size of surgical incision. Hormones (Athens). 12 (2), 283-291 (2013).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

132HepatectomyHepatocytesIntrasplenicSCIDNeoHep

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved