JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

פרוטוקול זה שואפת לתאר שיטה לבחון על Ca2 + שמירה קיבולת ו2 +Ca - עוררה מיטוכונדריאלי נפיחות של המיטוכונדריה מבודד של SH-SY5Y תאים צעד אחר צעד.

Abstract

הפקת ATP על ידי זרחון חמצוני הוא התפקיד העיקרי של המיטוכונדריה. במיטוכונדריה פרוקריוטים גבוה יותר גם להשתתף cytosolic Ca2 + אגירה, ייצור ATP ב מיטוכונדריאלי יכול להיות מתווכת על-ידי intramitochondrial חינם Ca2 + ריכוז. Ca2 + שמירה קיבולת יכול היה להיחשב ליכולת של המיטוכונדריה לשמור על הסידן המטריצה מיטוכונדריאלי. שהצטברו תאיים Ca2 + מוביל החדירות של קרום מיטוכונדריאלי הפנימי, כינה את הפתיחה של חדירות מיטוכונדריאלי המעבר נקבובית (mPTP), כשבסופו לדליפת של מולקולות עם מולקולרית משקל kDa פחות מ- 1.5. Ca2 +-עוררה המיטוכונדריה נפיחות משמש לציון פתיחת mPTP. כאן, אנו מתארים שני מבחני לבחון על Ca2 + שמירה קיבולת ו2 +Ca-עוררה נפיחות מיטוכונדריאלי בתוך המיטוכונדריה מבודד. לאחר כמויות מסוימות של Ca2 + מתווספים, כל השלבים ניתן יהיה להשלים ביום אחד, שהוקלט על ידי קורא microplate. לפיכך, מבחני שני אלה פשוט ויעיל ניתן לאמץ להעריך Ca2 +-הקשורים פונקציות מיטוכונדריאלי.

Introduction

המיטוכונדריה הם האיברים הסלולר העיקרי לייצר כמעט 95% מ- ATP המשמש בתאים בתרבית של זרחון חמצוני. הוא דיווח כי הריכוז micromolar מוחרמת של Ca2 + על ידי המיטוכונדריה, הנוכחות של ADP, פוספט אורגניים ניתן להשתמש כדי phosphorylate ADP סינתזת ATP1. כאשר הריכוז של Ca cytosolic2 + עובר מעל לסף מסוים, המיטוכונדריה יכול ספיגת Ca2 + במהירות, בזרימת אותו לאט לאט. לפיכך, המיטוכונדריה מתפקדת יכול זרם מוגברת cytosolic Ca2 +. לא רלוונטי-ההשתתפות זרחון חמצוני, מיטוכונדריאלי Ca2 + גם לקחת חלק אותות cytosolic סידן ו להפעיל את מנגנון מיטוכונדריאלי אפופטוטיים להיפגע על ידי גרימת הפתח של mPTP הפנימי מיטוכונדריאלי ממברנה2. זה הוכרה נרחב חריג על ידי העלאת Ca תאיים2 + יכול לגרום נפיחות מסיבית מיטוכונדריאלי על-ידי פתיחת mPTP3. לפיכך, פרוטוקול זה נועד להעריך את הפונקציה מיטוכונדריאלי מאת לכימות על Ca מיטוכונדריאלי2 + שמירה קיבולת ו Ca2 +-trigged מיטוכונדריאלי נפיחות.

Ca2 + שמירה התפוסה היא מידת היכולת של המיטוכונדריה ספיגת הסידן cytosolic. המיטוכונדריה ניתן מאגר הסידן חינם cytosolic, לווסת סידן תלוית תהליכים תאיים על ידי ספיגת הסידן בצורה של פוחת משקעים לא פעיל. Ca לקוי2 + שמירה קיבולת מתרחשת מתח תופעות הקשורות באנרגיה הגבלה,4,של מחלות ניווניות אפילו5. המיטוכונדריה מבודד או תאים digitonin permeabilized יכול לשמש כדי לזהות את Ca2 + השמירה קיבולת, ואת היכולת מוגברות לצבור Ca2 + על ידי המיטוכונדריה מבודד עם נוספים גלוטמט, בנויים לא מושפע על ידי בידוד מיטוכונדריאלי נוהל6. כמות titrated של digitonin צריך לשמש permeabilize של ממברנות פלזמה של סוגי תאים שונים. Hexapotassium מלח Ca2 +-איגוד ירוק הפלורסנט, Ca2 +-אינדיקטור רגיש תא-impermeant אור-טמפרמנט גלוי, היה בשימוש נרחב7. Ca2 +-איגוד ירוק הפלורסנט מחוון נמוך-זיקה ולא להשתמש בו כדי להראות כי תאיים חינם Ca2 + ריכוזים ימשיכו לעלות במהלך ממושך (5 דקות) stimulations8. שיטה זו היה פחות רגיש יותר הטכניקה מסנן רדיואקטיבי, אולם היה לפשוט מאוד. נוספים Ca2 + מעלה סידן ירוק פלורסצנטיות, Ca2 + תפיסה על ידי המיטוכונדריה ומחזירה את קרינה פלואורסצנטית בסיסית. תוספות רציפים של Ca2 + נעשו עד המיטוכונדריה נכשלה ספיגת extramitochondrial Ca2 + 9. קורא microplate קרינה פלואורסצנטית ניתן לדווח באופן רציף על ידי קרינה פלואורסצנטית סידן ירוק.

לאחר צבירת2 + Ca, המיטוכונדריה depolarized שוחרר Ca2 + לתוך המדיום, החלה להתנפח. Ca2 +-עוררה המיטוכונדריה נפיחות משמש לציון פתיחת mPTP. מיקרוסקופ אלקטרוני ו של הפחתת ספיגת האור-540 nm יכול לשמש כדי למדוד את Ca2 +-עוררה מיטוכונדריאלי נפיחות10,11. המיטוכונדריה נפח יכול להיקבע באופן ישיר על ידי קדימה זווית פיזור אור12, איפה ירידות ספיגת לשקף פסיבית נפיחות של המטריקס מיטוכונדריאלי.

כאן, אנחנו להמחיש את המתודולוגיה לבחון על Ca מיטוכונדריאלי2 + שמירה קיבולת ו2 +Ca-עוררה נפיחות מיטוכונדריאלי בתוך המיטוכונדריה מבודד מתאי SH-SY5Y.

Protocol

1. בידוד של המיטוכונדריה

הערה: כל פתרונות וציוד צריך להיות precooled 0 - 4 מעלות צלזיוס, נשמרים על קרח.

  1. זרעי בערך 3 x 106 SH-SY5Y תאים לכל מאכל תרבות תא 10 ס מ. התרבות התאים Dulbecco גבוהה-גלוקוז המתואמת של הנשר בינוני עם סרום שור עוברית 10%, פניצילין (100 U/mL)-סטרפטומיצין (100 µg/mL). לשמור על 37 מעלות צלזיוס בתוך אינקובטור המכילה 5% CO2 בן לילה.
    הערה: לפחות 1-2 x 10 תאים7 SH-SY5Y יש צורך בכל assay בידוד.
  2. להסיר את המדיום ולשטוף את התאים עם 1 מ"ל של PBS קר קרח בצלחת תרבות תא 10 ס מ 3 פעמים.
  3. הוסף חדש 1 מ"ל של PBS קר קרח לתוך צלחת תרבות תא 10 ס מ, לגרד את תאים חסיד לתוך צינור 1.5 mL החדש. צנטריפוגה ב 800 x g דקות 10-4 מעלות צלזיוס.
  4. במהלך צנטריפוגה, להכין מאגר בידוד מיטוכונדריאלי 5 מ"ל (250 מ מ סוכרוז, 10 מ מ HEPES (חומצה ethanesulfonic-(2-hydroxyethyl)-1-piperazine 4), 10 מ מ אשלגן כלורי, 1.5 mM MgCl2, 1 מ מ EDTA) בתוספת μL 50 מניות מעכבי פרוטאז פתרון (100 x ריכוז; 1 טבליה נטולת EDTA מומס µL 500 של ddH2O).
  5. הסר את תגובת שיקוע ולאחר resuspend בגדר עם 1 מ"ל בידוד מיטוכונדריאלי המאגר. דגירה הצינור 1.5 mL על קרח למשך 30 דקות.
  6. Lyse התאים מושעה עם מהמגן זכוכית (15-25 משיכות) למעלה ולמטה באופן ידני על קרח.
    הערה: ודא כי קיימים אין בועות כאשר התאים הם הומוגני. לספור את התאים שלם ואת הגרעינים חשופות על ידי מיקרוסקופ מבחינה ויזואלית, לאשר את זה > 90% תא שבירה אירעה.
  7. להעביר את homogenate לתוך צינור 1.5 mL צנטריפוגה ב 1,000 x g למשך 5 דקות ב 4 ° C לפנות את הפסולת (גרעינים, התאים שנותרו ללא פגע).
  8. להעביר את תגובת שיקוע לתוך צינור 1.5 mL החדש צנטריפוגה ב 1,000 x g למשך 5 דקות 4 ° C.
  9. להעביר את תגובת שיקוע צינור חדש ו צנטריפוגה ב 14,000 x g למשך 15 דקות 4 ° C.
  10. הסר את תגובת שיקוע, resuspend את גלולה המכילה המיטוכונדריה עם 1 מ"ל בידוד מיטוכונדריאלי המאגר.
  11. Centrifuge הפתרון למשך 15 דקות ב g 14,000 x 4 ° C, כדי לזרז את המיטוכונדריה.
  12. בגדר המיטוכונדריה וכתוצאה מכך חייב להיות כל הזמן על קרח, resuspended בתקשורת 50-100 μL אשלגן כלורי (125 מ מ אשלגן כלורי, 2 מ מ K2HPO4, 1 מ MgCl2, 20 מ מ. HEPES, גלוטמט 5 מ"מ, 5 מ"מ בנויים, ו- 2 μM rotenone, pH 7.4) על פי האחסון גלולה לפני כל התחת אחד בשני.
  13. השתמש μL 5 של פתרון מיטוכונדריאלי כדי למדוד את ריכוז חלבון מיטוכונדריאלי על ידי תקן assay BCA, מדידה OD562 באמצעות קורא13לצלחת.

2. קביעת מיטוכונדריאלי Ca2 + השמירה קיבולת

  1. להכין כלי התקשורת אשלגן כלורי ולהוסיף Ca2 +-איגוד הפלורסנט ירוק ריכוז סופי של 0.5 μM לפני הניסוי.
  2. העברת 1 מ"ל של המיטוכונדריה מבודד (0.4 מ"ג/מ"ל) באשלגן כלורי המדיה המכילה 0.5 μM Ca2 +-איגוד ירוק הפלורסנט לתוך כל צלחת 6-ובכן, ובכן.
  3. דגירה המיטוכונדריה ו- Ca2 +-איגוד הפלורסנט ירוקים בצלחת 6-ובכן בטמפרטורת החדר מוגן מפני אור מקיף עבור aliquots μL להוסיף 4 1 מינימלית של 20 מ מ פתרון2 CaCl (20 מ מ CaCl2, 127 מ מ אשלגן כלורי, 1 מ MgCl2 20 מ מ HEPES, גלוטמט 5 מ"מ, 5 מ"מ בנויים, pH 7.4) כל צלחת 6-ובכן ובכן באמצעות האוטומטי לוותר על הגדרת להציג 200 nmol Ca מיטוכונדריאלי2 +/mg/חלבון.
  4. להשתמש ספקטרומטר פלורסצנטיות לעקוב אחר שינויים פלורסצנטיות כל 3 s למשך 2 דקות עם אורך גל עירור של 506 ננומטר, אורך גל של פליטה של 531 ננומטר. הצלחת מצויד רועד ב 600 סל ד 3 s בין קריאות נשלט על ידי תוכנה (איור 1).
  5. להוסיף על aliquot 4 μL נוספים של 20 מ מ CaCl2 פתרון טוב לכל ולעקוב אחר השינויים פלורסצנטיות כל 3 s עבור 2 דק. חזור על שלב זה עד זריחה עולה עם הזמן.
    הערה: המיטוכונדריה מאותגרים עם מוסף Ca2 + שצוין על-ידי קרינה פלואורסצנטית ההקלטה מוגברת. עם פתיחת mPTP, זריחה עולה עם הזמן.
  6. לפרש את הסכום הכולל של Ca2 + להוסיף עד mPTP פותח לקיבולת Ca2 + השמירה.

3. קביעה של Ca 2 +-induced נפיחות מיטוכונדריאלי

  1. להכין כלי התקשורת אשלגן כלורי לפני הניסוי.
    1. להעביר 1 מ"ל של המיטוכונדריה מבודד (0.4 מ"ג/מ"ל) בתקשורת אשלגן כלורי לתוך כל צלחת 6-טוב טוב.
  2. להוסיף 10 μL של 20 מ מ CaCl2 תמיסה מימית (500 nmol/mg מיטוכונדריאלי חלבון) לתוך חלבון מיטוכונדריאלי לעורר מיטוכונדריאלי נפיחות.
  3. שיא הירידה ספיגת-540 nm כל 3 s על קורא microplate נשלט על ידי תוכנה עבור 10 דקות (איור 2). השינויים פלורסצנטיות נגרמות על ידי זרם של מומסים בגבול על פני קרום פנימי מיטוכונדריאלי.
    הערה: ספיגת ירד ב- 540 nm מקביל המיטוכונדריה נפוחות. אם הקורא לא לצפות לירידה ספיגת, יותר זמן קריאה מרווח או זמן קריאה יכול להיות מאומץ.

תוצאות

תוצאות נציג של Ca2 + שמירה קיבולת:
התוצאות היו הביע כערכים זריחה. עם פולסים נוספת של Ca2 + (200 nmols/mg מיטוכונדריאלי חלבון), ידי קרינה פלואורסצנטית מוגברת על ידי כפול מעל הבסיס עם פתיחת mPTP. 5 μM Bongkrekate (BKA), מעכב של Ca2 +-induced mPTP הפתיחה, או atractyloside μM 1 (ATR), activator Ca2 ...

Discussion

כאן, אנו המתואר פרוטוקול פשוטה ויעילה מיטוכונדריאלי Ca2 + שמירה קיבולת assay, Ca2 +-עוררה מיטוכונדריאלי assay נפיחות.

הבידוד מיטוכונדריאלי, ודא כי כל חומרי, צינורות הם על קרח, במיוחד כאשר homogenizing את התאים. 0.25% טריפסין-EDTA יכול לשמש גם כדי לנתק תאים מן המנה למשך 5 דקות ב 37 º C. לא...

Disclosures

אקס השמש פיקח הניסויים. ויי לי לבצע את הניסויים. חן ג'אנג, אקס שמש כתבה בעיתון.

Acknowledgements

מחקר זה נתמך על ידי מענקים מענק של מדען מצטיין של שאנדונג (JQ201421), מענק NSFC (81371226).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
SH-SY5Y cell lineATCC (The Global Bioresource Center)ATCC Number: CRL-2266
Calcium green-5NLife Technologiesc-3737Ca2+-binding green fluorescent dye
complete protease inhibitorsRoche Molecular Biochemicals4693116001
glass homogenizerKimble Chase9885303002
glutamateSigma-AldrichRES5063G-A7
malateSigma-Aldrich46940-U
rotenoneSigma-AldrichR8875
HEPESSigma-AldrichH3375
MgCl2Sigma-Aldrich00457
K2HPO4Sigma-AldrichV900050
KClSigma-AldrichP9541
CaCl2Sigma-AldrichV900266
Varioskan flash instrumentsThermo ScientificIC100E
BongkrekateBiovision1820-100
atractylosideSigma-AldrichC4992
high-glucose Dulbecco’s modified Eagle mediumHycloneSH300224.5 g/L glucose, L-glutamine, without sodium pyruvate
fetal bovine serumHycloneSV30087
penicillinSigma-AldrichP3032
streptomycinInvitrogen11860-038
BCA assay kitThermo ScientificNCI3225CH
PBSHycloneSH30256.01
10 cm cell culture dishNEST704001

References

  1. Rossi, C. S., Lehninger, A. L. Stoichiometry of respiratory stimulation, accumulation of Ca++ and phosphate, and oxidative phosphorylation in rat liver mitochondria. J Biol Chem. 239 (11), 3971-3980 (1964).
  2. Gunter, T. E., Buntinas, L., Sparagna, G., Eliseev, R., Gunter, K. Mitochondrial calcium transport: mechanisms and functions. Cell Calcium. 28 (5-6), 285-296 (2000).
  3. Crofts, A. R., Chappell, J. B. Calcium Ion Accumulation and Volume Changes of Isolated Liver Mitochondria. Reversal of Calcium Ion-Induced Swelling. Biochem J. 95, 387-392 (1965).
  4. Wojda, U., Salinska, E., Kuznicki, J. Calcium ions in neuronal degeneration. IUBMB Life. 60 (9), 575-590 (2008).
  5. Celsi, F., et al. Mitochondria, calcium and cell death: a deadly triad in neurodegeneration. Biochim Biophys Acta. 1787 (5), 335-344 (2009).
  6. Murphy, A. N., Bredesen, D. E., Cortopassi, G., Wang, E., Fiskum, G. Bcl-2 potentiates the maximal calcium uptake capacity of neural cell mitochondria. Proc Natl Acad Sci U S A. 93 (18), 9893-9898 (1996).
  7. Rajdev, S., Reynolds, I. J. Calcium green-5N, a novel fluorescent probe for monitoring high intracellular free Ca2+ concentrations associated with glutamate excitotoxicity in cultured rat brain neurons. Neurosci Lett. 162 (1-2), 149-152 (1993).
  8. Stout, A. K., Reynolds, I. J. High-affinity calcium indicators underestimate increases in intracellular calcium concentrations associated with excitotoxic glutamate stimulations. Neuroscience. 89 (1), 91-100 (1999).
  9. Bambrick, L. L., et al. Cyclosporin A increases mitochondrial calcium uptake capacity in cortical astrocytes but not cerebellar granule neurons. J Bioenerg Biomembr. 38 (1), 43-47 (2006).
  10. Zhao, K., et al. Cell-permeable peptide antioxidants targeted to inner mitochondrial membrane inhibit mitochondrial swelling, oxidative cell death, and reperfusion injury. J Biol Chem. 279 (33), 34682-34690 (2004).
  11. Muriel, M. P., et al. Mitochondrial free calcium levels (Rhod-2 fluorescence) and ultrastructural alterations in neuronally differentiated PC12 cells during ceramide-dependent cell death. J Comp Neurol. 426 (2), 297-315 (2000).
  12. Allman, R., Hann, A. C., Phillips, A. P., Martin, K. L., Lloyd, D. Growth of Azotobacter vinelandii with correlation of Coulter cell size, flow cytometric parameters, and ultrastructure. Cytometry. 11 (7), 822-831 (1990).
  13. Wiechelman, K. J., Braun, R. D., Fitzpatrick, J. D. Investigation of the bicinchoninic acid protein assay: identification of the groups responsible for color formation. Anal Biochem. 175 (1), 231-237 (1988).
  14. Petronilli, V., Nicolli, A., Costantini, P., Colonna, R., Bernardi, P. Regulation of the permeability transition pore, a voltage-dependent mitochondrial channel inhibited by cyclosporin A. Biochim Biophys Acta. 1187 (2), 255-259 (1994).
  15. Pastorino, J. G., et al. Functional consequences of the sustained or transient activation by Bax of the mitochondrial permeability transition pore. J Biol Chem. 274 (44), 31734-31739 (1999).
  16. Gunter, T. E., Sheu, S. S. Characteristics and possible functions of mitochondrial Ca(2+) transport mechanisms. Biochim Biophys Acta. 1787 (11), 1291-1308 (2009).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

assay neuroscience135Ca2mPTPSH SY5Y

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved