JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

מטרת פרוטוקול זה היא להדגים מודל דום לב חזירי ומעגל זלוף קשת אבי העורקים סלקטיבי שנבנה במיוחד למחקר תרגומי.

Abstract

דימום מהווה את רוב מקרי המוות הניתנים למניעה מטראומה. יש עניין הולך וגובר בטכניקות החייאה אנדווסקולריות כגון זלוף קשת אבי העורקים סלקטיבי (SAAP) לחולים בדום לב. זה כרוך בזלוף פעיל של מחזור הדם הכלילי באמצעות קטטר בלון אבי העורקים החזה ומתקרב ליישום קליני. עם זאת, הטכניקה מורכבת ודורשת חידוד במודלים של בעלי חיים לפני שניתן לשקול שימוש בבני אדם. מאמר זה מתאר מודל חיה גדול של דום לב שטופל במערכת SAAP מותאמת אישית.

חזירים הורדמו, הוכנסו למכשירים ובוצעה כריתת טחול לפני שהחלה אקסנגווינציה לוגריתמית מבוקרת. בעלי החיים עברו הפרין והדם שנשפך נאסף במאגר. לאחר שנצפה דום לב, הדם נשאב דרך מעגל חוץ-גופני לתוך מחמצן ולאחר מכן הועבר דרך קטטר בלון 10 Fr שהונח באבי העורקים החזי.

זה הביא להחזרת מחזור ספונטני (ROSC) כפי שמודגם על ידי א.ק.ג וצורת גל לחץ שורש אבי העורקים. מודל זה ומערכת SAAP הנלווית מאפשרים התאוששות סטנדרטית וניתנת לשחזור מדום לב.

Introduction

דימום מהווה את רוב מקרי המוות הניתנים למניעה1. בשלבים הסופיים של האקסנגווינציה, הזלוף הכלילי מצטמצם, מה שמוביל לדום לב ומוות. האסטרטגיות הנוכחיות - עירוי תוך ורידי ועיסוי לב - אינן יעילות מכיוון שהן אינן מטפלות בכישלון הזלוף הכלילי.

SAAP היא טכניקת החייאה מבוססת צנתר שמטרתה לטפל בבעיה זו על ידי עירוי של נוזל החייאה מחומצן ותרופות ישירות לאבי העורקים הפרוקסימלי, תוך החדרת זרימת הדם הכלילית והמוחית. מחקרי חזירים מוגבלים הראו תוצאות מבטיחות בשיקום פעילות הלב לאחר פרפור חדרים ודום לב דימומי 2,3,4. עם זאת, מחקר SAAP נמשך והטכניקה נותרה בשלבים הפרה-קליניים.

ישנם מספר אתגרים טכניים עם SAAP. זה קריטי שכמות מסוימת של פרפוזה תועבר דרך הצנתר בקצב עירוי מדויק, ונכון לעכשיו אין צנתר זמין מסחרית, מאושר על ידי ה-FDA לשימוש ב-SAAP. הטכניקה דורשת מעגל ספציפי המסוגל לאחסן, לחמצן ולספק ביעילות פרפוזה במהלך SAAP. מטרת מחקר זה היא להציג מודל של דום לב טראומטי ללא דופק (PEA) ומערכת SAAP אמינה ומותאמת אישית לשימוש בחקר כלי זה במחקר בבעלי חיים.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

מחקר זה נערך במתקן ההוראה של בית הספר לרפואה (MSTF, אוניברסיטת מרילנד, בולטימור, מרילנד, ארה"ב), המוסמך על ידי האגודה האמריקאית למדעי חיות מעבדה. פרוטוקול המחקר אושר על ידי הוועדה המוסדית המקומית לטיפול ושימוש בבעלי חיים.

1. בחירת בעלי חיים ודיור

  1. השתמש בחזירים זכרים בוגרים (Sus Scrofa) במשקל 60-80 ק"ג.
  2. לאחר ההגעה למתקן החיות, יש לשכן את בעלי החיים אחד לכל כלוב אך עם יכולת אינטראקציה עם בעלי חיים בכלובים הסמוכים.
  3. שכן את בעלי החיים למשך 48 שעות לפחות כדי להבטיח התאקלמות. אפשרו לבעלי החיים גישה חופשית למים והאכילו אותם בתזונה סטנדרטית עד הלילה שלפני הניסוי כאשר יש לצום את בעלי החיים כדי למזער את הסיכון לשאיפה במהלך האינטובציה.
  4. עקוב אחר בעלי החיים באופן קבוע כדי לוודא שהם במצב בריאותי טוב.

2. טשטוש ואינדוקציה של הרדמה כללית

  1. הרדימו את בעל החיים כשהוא עדיין באזור המגורים שלו על ידי הזרקה תוך שרירית של טלזול (4-5 מ"ג/ק"ג)/קסילזין (1.8-2.2 מ"ג/ק"ג) לאוזן או לשריר העכוז.
  2. העבר את בעל החיים מאזור הדיור לחדר הניתוח והניח אותו בשכיבה גבית על שולחן הניתוחים.
  3. הניחו בדיקת אוקסימטריית דופק על אוזן החיה, הניחו מסכת פנים על חוטם החיה ותנו איזופלורן ב-100% O2, עד שהלסת התחתונה נרגעת, כדי לגרום להרדמה.
  4. הנח צינור אנדוטרכיאלי (ET) באמצעות לרינגוסקופ. יש להשיג זאת על ידי החזקת הלסתות פתוחות, שליפת הלשון, זיהוי האפיגלוטיס, העברת קצה הגרון לתוך האורופרינקס ועקירת האפיגלוטיס מהחיך הרך. קדם את צינור ה-ET דרך קפלי הקול 6-10 ס"מ ולאחר מכן סובב אותו במצב עקומה כלפי מטה ביחס לחלק העליון של ראש החיה.
  5. נפחו את שרוול ה-ET באוויר עם 10 ס"מ3, הצמידו את צינור ה-ET לחוטם החיה באמצעות קשרי גזה והאזינו לחזה החיה כדי לאשר את המיקום הנכון של הצינור.
  6. חבר את צינור ה-ET למאוורר מכני באמצעות מחליף חום ולחות.
  7. אשר הגדרות מתאימות של מכונת הנשמה מכנית כדי לספק שבר O2 מעורר השראה של 30%, עם נפח גאות של 7-10 מ"ל לק"ג מסת גוף, קצב נשימה של 10-15 נשימות לדקה, במטרה להגיע למתחCO2 סופי של 38-42 מ"מ כספית.
  8. כדי לשמור על הרדמה, השתמש ב-1.5-3% איזופלורן. מעריך באופן קבוע את פרמטרי הנשימה של החיה.

3. ניתוח

  1. עיקור והכנה של אתר הניתוח
    1. הסר את השיער המכסה את המקום עבור חתך הלפרוטומיה ואתרי הגישה המלעורית באמצעות קוצץ שיער חשמלי.
    2. שפשפו את כל אתרי החתכים ואתרי הניקוב המלעורי עם בטדין והניחו להתייבש.
    3. הניחו וילונות סטריליים סביב אתרי הניתוח כדי לשמר את שדות הניתוח הסטריליים ולמנוע זיהום. אבטח אותם במקומם בעזרת סיכות.
    4. משוך את הפרסות הקדמיות והאחוריות בכיפוף קל ורסן במקומם בעזרת חבל או סרט.
    5. הנח את אלקטרודות הדבק של האק"ג על הגפה הקדמית הימנית, הגפה הקדמית השמאלית, הגפה האחורית הימנית והגפה האחורית השמאלית ומעל הקסיפואיד. חבר את מובילי האק"ג הנכונים לאלקטרודות הדבק.
  2. לפרוטומיה
    1. השתמש בצריבה חשמלית כדי לבצע חתך בטן בקו האמצע של 20 ס"מ.
    2. השתמש בצריבה חשמלית כדי לנתח דרך הרקמה התת עורית ולינאה אלבה. היכנסו לחלל הצפק בראייה ישירה באמצעות מספריים.
  3. כריתת טחול
    1. הסר את הטחול כדי למנוע עירוי אוטומטי בתגובה להוצאה.
    2. העבירו את הטחול לפצע קו האמצע, הידקו את כלי ההילום בשני המוסטטים והעבירו בין ההמוסטטים. קשירת הקצוות הטרנסקטים עם 0 קשרי משי.
    3. זהה את כלי הקיבה הקצרים העמוקים יותר, הנח שני המוסטטים, חצה את הכלים בין ההמוסטטים וקשר את הקצוות עם 0 קשרי משי.
    4. בדוק בזהירות את הכלים הקשורים כדי לוודא המוסטזיס. לקשור כל כלי דימום.
    5. בדוק את הטחול באתרו כדי לוודא שהוא מנותח חופשי והסר אותו.
  4. ציסטוסטומיה
    1. העבירו את שלפוחית השתן דרך פצע הלפרוטומיה.
    2. אחוז בחלק הגחון של שלפוחית השתן בין שני מהדקי DeBakey ובצע חתך של 1 ס"מ בעזרת מספריים.
    3. העבירו קטטר יניקה לתוך הפתח והוציאו את השתן משלפוחית השתן.
    4. הכנס קטטר שתן 14 Fr לשלפוחית השתן. נפחו את בלון הצנתר ב-10 מ"ל מי מלח.
    5. הנח תפר חוט ארנק באמצעות תפר ניילון 3.0 כדי לאבטח את הקטטר בשלפוחית השתן כדי למנוע שפיכת שתן.
    6. חבר את הקטטר לשקית איסוף.
    7. סגור את פצע הלפרוטומיה עם תפר רץ באמצעות תפר ניילון 3'0.

4. מכשור

הערה: ראה טבלה 1 לשלבי מפתח בחיבור מעגל SAAP.

  1. גישה מלעורית לכלי הדם
    1. קנולציה של וריד הצוואר הפנימי הימני והשמאלי (איור 1)
      1. באמצעות הנחיית אולטרסאונד (US), דמיין את וריד הצוואר הפנימי; הוא ממוקם בדרך כלל בעומק של כ-2-3 ס"מ לעור בתלם הצוואר.
      2. לנקב את העור עם מחט 18 גרם המונחת בזווית של 45 מעלות לעור ולהחדיר אותו ללומן הוורידי תחת ראייה אמריקאית. העבירו חוט מנחה של סלדינגר בגודל 0.035 אינץ' דרך המחט.
      3. הסר את המחט, הקפד להשאיר את חוט ההנחיה בלומן הוורידי.
      4. בצע חתך עור של 5 מ"מ בסמוך לחוט, והשחיל נדן 7 Fr עם מרחיב לתוך הווריד מעל חוט המנחה.
      5. הסר את חוט ההנחיה ואת המציג, והשאיר את הנדן במקומו. אבטח את הנדן במקומו על ידי תפירתו לעור עם 1.0 תפרי משי.
      6. חזור על השלבים לעיל כדי לשרוף את וריד הצוואר הפנימי הנגדי.
        הערה: אחד ממעטפות וריד הצוואר משמש לניטור לחץ פרוזדורים ימני, השני יכול לשמש למתן תרופות בהתאם לפרוטוקול המחקר. לחלופין, ניתן להשתמש בוורידי צוואר חיצוניים לקנולציה.
    2. קנולציה של עורק הצוואר (איור 1)
      1. אתר את עורק הצוואר ממש לרוחב קנה הנשימה באמצעות הנחיית ארה"ב.
      2. לנקב את העור עם מחט 18 גרם המונחת בזווית של 45 מעלות לעור ולהחדיר אותו ללומן העורקי תחת ראייה אמריקאית, להעביר חוט מנחה של סלדינגר בגודל 0.035 אינץ' דרך המחט.
      3. הסר את המחט, הקפד להשאיר את חוט ההנחיה בלומן העורקי.
      4. בצע חתך עור של 5 מ"מ בסמוך לחוט, והשחיל נדן 7 Fr עם מרחיב לתוך העורק מעל חוט ההנחיה.
      5. הסר את חוט ההנחיה ואת המציג, והשאיר את הנדן במקומו. אבטח את הנדן במקומו על ידי תפירתו לעור עם 1.0 תפרי משי.
    3. קנולציה של עורק הירך הימני והשמאלי
      1. אתר את עורק הירך הימני בתעלת הירך באמצעות הנחיית ארה"ב.
      2. יש לנקב את העור עם מחט של 18 גרם בזווית של 45 מעלות לעור ולהחדיר אותו ללומן העורקי תחת ראייה אמריקאית. העבירו חוט מנחה של סלדינגר בגודל 0.035 אינץ' דרך המחט.
      3. הסר את המחט, הקפד להשאיר את חוט ההנחיה בלומן העורקי.
      4. בצע חתך עור של 10 מ"מ בסמוך לחוט.
      5. השחילו נדן 14 Fr עם מרחיב לתוך העורק מעל חוט המנחה.
      6. הסר את חוט ההנחיה ואת המציג, והשאיר את הנדן במקומו. אבטח את הנדן במקומו על ידי תפירתו לעור עם 1.0 תפרי משי.
      7. לגישה לעורק הירך השמאלי, אתר את עורק הירך השמאלי בתעלת הירך באמצעות US.
      8. יש לנקב את העור עם מחט של 18 גרם בזווית של 45 מעלות ולהחדיר אותו ללומן העורקי תחת ראייה אמריקאית. העבירו חוט מנחה של סלדינגר בגודל 90 ס"מ 0.035 אינץ' דרך המחט.
      9. הסר את המחט, הקפד להשאיר את חוט ההנחיה בלומן העורקי.
      10. בצע חתך עור של 10 מ"מ בסמוך לחוט.
      11. השחילו צינורית ECMO באורך 18 ס"מ ו-15 Fr לתוך העורק מעל חוט ההנחיה.
      12. הסר את חוט ההנחיה יחד עם המרחיב והדק את הקצה הדיסטלי של הצינורית כדי למנוע דימום בגב.
    4. קנולציה של וריד הירך
      1. אתר את וריד הירך בתעלת הירך בהנחיית ארה"ב.
      2. נקב את העור עם מחט של 18 גרם בזווית של 45 מעלות והכניס אותו ללומן הוורידי תחת ראיית ארה"ב, העביר חוט מנחה של סלדינגר בגודל 0.035 אינץ' דרך המחט.
      3. הסר את המחט, הקפד להשאיר את חוט ההנחיה בלומן הוורידי.
      4. בצע חתך עור של 5 מ"מ בסמוך לחוט, והשחיל קטטר ורידי מרכזי 9 Fr עם מכניס לווריד מעל חוט המנחה.
      5. הסר את חוט ההנחיה ואת המציג, והשאיר את הקטטר במקומו. אבטח את הקו במקומו על ידי תפירתו לעור עם 1.0 תפרי משי.
  2. ניטור כלי דם מלעורי (איור 1)
    1. לחץ שורש אבי העורקים
      1. באמצעות פלואורוסקופיה הכנס קטטר מיקרומנומטר לתוך מעטפת 7 Fr בעורק הצוואר הימני.
      2. ודא שקצה הצנתר נמצא בקשת אבי העורקים על ידי הדמיית צורת גל הלחץ של אבי העורקים המוצגת במסך איסוף הנתונים.
    2. לחץ פרוזדורי ימני
      1. באמצעות פלואורוסקופיה הכניסו קטטר מיקרומנומטר מכויל בעבר לתוך מעטפת 7 Fr בווריד הצוואר הפנימי הימני.
      2. אשר את מיקום קצה הצנתר באטריום הימני על ידי התבוננות בצורת גל הלחץ המוצגת על מסך איסוף הנתונים.

5. אקסנגווינציה

  1. הכנת ההתקנה
    1. הזרקו 15,000 יחב"ל של הפרין לא מפורק דרך זרוע הצד של מעטפת ה-IJV.
    2. טען את צינור האקסנגינציה לתוך הגלגלת של המשאבה הפריסטלטית המשמשת לאקסנגינציה.
    3. חבר קצה אחד של הצינור למאגר המעגל באמצעות צינורות IV רגילים.
    4. חבר את הקצה השני של צינור משאבת האקסנגינציה באמצעות מצמד ישר וקטע בגודל 2 אינץ' של צינורות זיהוי בגודל 1/4 אינץ' לקצה צינורית ה-ECMO 15 Fr בעורק הירך.
    5. הסר את המהדק מצינורית 15 Fr.
    6. חשב מרווחי קצב אקסנגינציה לוגריתמית באמצעות הנוסחה5. אורך המרווח וקצב האקסנגווינציה תלויים בפרוטוקול המחקר.
      figure-protocol-8838
    7. הגדר את קצב המשאבה הרצוי בהתאם לפרוטוקול באמצעות תוכנת מחשב המשאבה הספציפית הניתנת לתכנות -PUMPTERM.
    8. חבר למחשב את המשאבה הניתנת לתכנות באמצעות יציאת Ethernet רגילה. לאחר שהמשאבה המבוקרת מתוכנתת עם קצב זרימה ראשוני מעודכן המוצג בתצוגה הדיגיטלית, ניתן לנתק אותה מהמחשב.
  2. משאבה מבוקרת
    1. התחל את ההוצאה על ידי לחיצה על כפתור START/STOP במשאבה.
    2. המשיכו את האקסנגינציה לפי הפרוטוקול עד להדגמת PEA על ידי אובדן לחץ אבי העורקים (SBP <10 מ"מ כספית) עם אובדן פעימות בצורת הגל של לחץ שורש אבי העורקים המלווה בקצב א.ק.ג בסינוסים.
    3. עצור את ההוצאה על ידי לחיצה ידנית על כפתור START/STOP במשאבה.

6. SAAP

  1. הכנת מעגל SAAP
    1. בנה את צינורות המעגל באמצעות מחברי Y דוקרניים וישרים וצינורות ID בגודל 3/8 אינץ' כדי לשלב גפה רפרפוזיה, גף זלוף ראשי, גף זלוף SAAP וגף זלוף היקפי (איור 2). אבטח את החיבורים באמצעות קשרי כבלים.
    2. חבר את הצינור הפרוקסימלי למאגר הדם.
    3. חבר את הצינור למשאבה הצנטריפוגלית.
    4. חבר את הצינור למחמצן.
    5. חבר את המחמצן למקור החמצן באמצעות צינור חמצן רגיל על ידי הכנסתו ליציאת עירוי החמצן במחמצן.
    6. טען את איבר הזלוף הראשי של המעגל לראש המשאבה הפריסטלטית.
    7. ספק את החמצן במהירות של 6 ליטר לדקה על ידי סיבוב החוגה על בלון החמצן.
    8. הוסף 15,000 יחב"ל של הפרין לא מפוצל למאגר המעגל.
    9. ודא שגף הזלוף של המעגל מהודק, וגף הרפרפוזיה פתוח כאשר הדם שנשפך נשאב למאגר הדם במהלך האקסנגווינציה. הפעל את המשאבה הצנטריפוגלית במעגל SAAP על ידי לחיצה על כפתור START/STOP והגדר את הזרימה בכל קצב. זה יאפשר לדם להסתובב ומונע קרישה.
    10. סמן את אורך החדרת הבלון על ידי הצבתו חיצונית כנגד ציוני דרך אנטומיים. כוונו שהבלון ישב באבי העורקים הפרוקסימלי של בית החזה.
    11. שטוף את קטטר ה-SAAP וודא שיש לו תא עצירה תלת-כיווני המחובר לרכזת הצנתר.
    12. ודא שהבלון מנופח לחלוטין וודא שלקטטר יש תא עצירה דו-כיווני בפתח הבלון.
    13. מלאו מראש מזרק של 60 מ"ל בתמיסה של 0.1 מ"ג אפינפרין (ב -1 מ"ל), 10 מ"ל ניגודיות ו -49 מ"ל מי מלח. פתרון זה הוא בולוס סגירת המסתם האאורטלי (AV) שיוזרק מיד לפני זלוף SAAP כדי למנוע מילוי לאחור של החדר השמאלי.
    14. מלאו מזרק נוסף ב-15 מ"ל של תמיסת מלח/ניגודיות (1:1). זה ישמש לניפוח בלון הצנתר.
    15. הגדר את המשאבה הפריסטלטית במעגל ה-SAAP כדי לספק את הפרפוזה (דם מחומצן) בקצב של 10 מ"ל/ק"ג ממשקל גופו של בעל החיים על ידי תכנות ידני של המשאבה באמצעות הלחצנים "למעלה" ו"למטה" בחוגת המשאבה.
  2. משלוח SAAP
    1. הכנס את קטטר ה-SAAP לתוך מעטפת 14 Fr בעורק הירך לאורך שנקבע בעבר, חבר את המזרק הממולא מראש ב-15 מ"ל של תמיסת ניגודיות מלוחה ליציאת הבלון (איור 2) והזריק את נפח המזרק כדי לנפח את הבלון.
    2. אשר את מיקום הבלון באמצעות פלואורוסקופיה.
    3. חבר את גף הזלוף SAAP לצנתר SAAP ואת גף הזלוף ההיקפי לצנתר הוורידי (איור 3).
    4. סגור את איבר הרפרפוזיה של מעגל ה-SAAP על ידי החלת המהדק עליו ופתח את איבר הזלוף על ידי הסרת המהדק ממנו (איור 2).
    5. חבר את מזרק ה-60 מ"ל שמולא מראש עם בולוס סגירת AV ליציאת הצד של תא העצירה התלת-כיווני בלומן העורקי של קטטר SAAP (איור 3) והזריק במהירות ידנית את כל נפח המזרק, ולאחר מכן סגור את הפתח הצדדי למזרק.
    6. פתח מיד את יציאת הקצה של תא העצירה של יציאת העורקים.
    7. הפעל את המשאבה הפריסטלטית במעגל SAAP על ידי לחיצה על כפתור RUN/STOP .
    8. לאחר שישים שניות עצור את המשאבה הפריסטלטית על ידי לחיצה על כפתור RUN/STOP .
    9. רוקן את בלון ה-SAAP על ידי שאיבת כל הנפח מיציאת הבלון של SAAP.
    10. סגור את הזרימה לקטטר עם עצירה בלומן העורקי של הצנתר.
    11. העריכו את קצב ה-SBP וה-ECG.
      הערה: אם לאחר 2 דקות מתחילת SAAP SBP < 90 מ"מ כספית, ניתן להחדיר עד 7 בולוסים של 200 מ"ל של דם שפוך הפריני או דם מלא ציטראט שנרכש מראש דרך SAAP כדי לשמור על SBP >90 מ"מ כספית.
      1. אם משתמשים בדם מאוחסן ל-SAAP, יש צורך בעירוי משותף עם סידן גלוקונאט כדי למנוע קשירת סידן ציטראט בשריר הלב. הזריק סידן גלוקונאט מיד לפני זלוף SAAP באמצעות מזרק המחובר ליציאת הצד של תא העצירה התלת-כיווני המחובר לצנתר SAAP. יש להשתמש ב-1 גרם סידן גלוקונאט ליחידת RBC ארוזה וב-3 גרם ליחידת דם מלאה5.
      2. אם בעל החיים מפתח פרפור חדרים או טכיקרדיה חדרית, נסה דפיברילציה על ידי הנחת משוטים על עצם החזה והקודקוד, ולאחר אישור כוח אדם ליצור קשר עם החיה.
        1. המשך אוורור, מיד לפני מתן זעזועים נתק את מתמרי הלחץ מיחידות מיזוג האותות - חבר אותם מחדש מיד לאחר מתן ההלם.
        2. תן שוק חשמלי באמצעות דפיברילטור דו-פאזי החל מ-150 J, הערך מחדש את הקצב עד דקה לאחר מכן. אם קיימים טכיקרדיה חדרית או פרפור, יש לספק עד שני זעזועים נוספים ב-200 J לאחר דקה אחת של הערכת קצב לאחר כל שוק.
          הערה: אלגוריתם הדפיברילציה המשמש כאן מיועד לדפיברילטור דו-פאזי, דפיברילטורים חד-פאזיים בדרך כלל ידרשו פחות אנרגיה. אם מזוהים מקצבים לבביים אחרים - אין לנסות פרפור פרוזדורים, PEA וכו', ויש לטפל בבעל החיים על פי פרוטוקול מחקר ספציפי.

7. זלוף היקפי

הערה: לאחר החייאת SAAP מוצלחת בהתאם לפרוטוקול המחקר, ניתן להמשיך בהחלפת נפח נוספת באופן היקפי באמצעות מעגל SAAP.

  1. מהדק את איבר הזלוף SAAP של איבר הזלוף הראשי.
  2. ודא כי גף הזלוף ההיקפי של מעגל ה- SAAP מחובר לזרוע הצד של הקטטר בווריד הירך והעצירה והצינורות פתוחים.
  3. ודא שנוזל ההחייאה והנפח המתאימים נמצאים במאגר SAAP.
  4. ודא כי איבר המחזור של מעגל ה- SAAP מהודק.
  5. להחדיר את הנוזל בהתאם לצרכי הפרוטוקול על ידי הגדרת הגדרות הזרימה המתאימות במשאבה הפריסטלטית.

8. המתת חסד

  1. בסיום הניסוי, המתת חסד של בעל החיים על ידי הזרקת >2 מילימול לק"ג אשלגן כלורי לווריד מרכזי והמתנה לדקה אחת של אסיסטולה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

תוצאות

לחץ הדם של שורש אבי העורקים היה 83/58 מ"מ כספית בנקודת ההתחלה וירד בהדרגה ל-0-10 מ"מ כספית במהלך האקסנגווינציה. לאחר תחילת הפעילות החשמלית ללא דופק (PEA), בוצע SAAP, שבמהלכו, לחץ הדם הסיסטולי עלה במהירות ל-120 מ"מ כספית למשך SAAP (איור 4). לאחר הפסקת SAAP ודפלציה של בלון אבי ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

חמצון פרפוזה נאות הוא יכולת קריטית של SAAP12. אנו משתמשים בפילטר המשולב במאגר. המסנן מחובר לבלון חמצן באמצעות צינורות חמצן רגילים. זרימת החמצן מועברת לחמצן במהירות של 6 ליטר לדקה. המשאבה הצנטריפוגלית המשולבת במעגל מניעה את הדם, המסונן דרך המחמצן. ניתן לאשר חמצו?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

ג'יי ג'יי מוריסון הוא חבר במועצה המייעצת הקלינית של Prytime Medical Inc. לכל הסופרים האחרים אין מה לחשוף.

Acknowledgements

הדעות המובעות במאמר זה הן של המחבר(ים) ואינן משקפות את המדיניות הרשמית של מחלקת הצבא/חיל הים/חיל האוויר, משרד ההגנה או ממשלת ארה"ב.

מימון למחקר זה התקבל על ידי אוניברסיטת מרילנד, בית הספר לרפואה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
3/8” ID tubingSaint-GobainE-3603This tubing is used throughout the circuit.
1/4" TubingTygonE-36032" segment for a connector between Exsanguination tubing and ECMO cannula
2-way stopcocksHarvard Apparatus72-2650standard stopcock
3-wayHarvard Apparatus72-2658Standard stopcock
Barbed ConnectorsHarvard Apparatus72-1587Y connectors
Barbed ConnectorsHarvard Apparatus72-1575Straight connectors
Blood ReservoirLivaNova50715This is sold together with the oxygenator
Cable tiesCommercial ElectricGT-200STStandard cable ties.
Centrifugal pump BVP-ZISMATECISM 446Centrifugal Pump used for recirculation of blood
Controlled Peristaltic Dispensing PumpNew Era Pump SystemsNE-9000BPeristaltic pump for Exsanguination
ECMO CannulaMedtronic96570-015Exsanguination cannula
Gas tubingAirLife1302Standard oxygen tubing
Oxygen sourceAirGasOX USP300Standard oxygen tank with flowmeter
OxygenatorLivaNova50715This is sold together with the reservoir
Peristaltic pump 1 MCPISMATECISM 405SAAP peristaltic pump
SAAP cathetern/an/aProprietary catheter designed by Dr. Manning
Venous catheterTeleflexCDC-29903-1A9 French single lumen catheter

References

  1. Kauvar, D. S., Lefering, R., Wade, C. E. Impact of Hemorrhage on Trauma Outcome: An Overview of Epidemiology, Clinical Presentations, and Therapeutic Considerations. Journal of Trauma-Injury Infection. 60 (6), 3-11 (2006).
  2. Manning, J. E., et al. Selective aortic arch perfusion using serial infusions of perflubron emulsion. Academic Emergency Medicine. 4 (9), 883-890 (1997).
  3. Manning, J. E., et al. Selective aortic arch perfusion during cardiac arrest: a new resuscitation technique. Annals of Emergency Medicine. 21 (9), 1058-1065 (1992).
  4. Manning, J. E., et al. Selective aortic arch perfusion during cardiac arrest: enhanced resuscitation using oxygenated perflubron emulsion, with and without aortic arch epinephrine. Annals of Emergency Medicine. 29 (5), 580-587 (1997).
  5. Madurska, M. J., et al. The Cardiac Physiology Underpinning Exsanguination Cardiac Arrest. Shock. , (2020).
  6. Manning, J. E., et al. Selective aortic arch perfusion with hemoglobin-based oxygen carrier-201 for resuscitation from exsanguinating cardiac arrest in swine. Critical Care Medicine. 29 (11), 2067-2074 (2001).
  7. Madurska, M. J., Sachse, K. A., Jansen, J. O., Rasmussen, T. E., Morrison, J. J. Fibrinolysis in trauma: a review. European Journal of Trauma & Emergency Surgery. 44 (1), 35-44 (2018).
  8. Ontaneda, A., Annich, G. M. Novel Surfaces in Extracorporeal Membrane Oxygenation Circuits. Frontiers of Medicine (Lausanne). 5, 321(2018).
  9. Barnard, E. B. G., et al. A comparison of Selective Aortic Arch Perfusion and Resuscitative Endovascular Balloon Occlusion of the Aorta for the management of hemorrhage-induced traumatic cardiac arrest: A translational model in large swine. PLoS Medicine. 14 (7), 1002349(2017).
  10. Hoops, H. E., et al. Selective aortic arch perfusion with fresh whole blood or HBOC-201 reverses hemorrhage-induced traumatic cardiac arrest in a lethal model of noncompressible torso hemorrhage. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 87 (2), 263-273 (2019).
  11. Manning, J. E., Ross, J. D., McCurdy, S. L., True, N. A. Aortic Hemostasis and Resuscitation: Preliminary Experiments Using Selective Aortic Arch Perfusion With Oxygenated Blood and Intra-aortic Calcium Coadministration in a Model of Hemorrhage-induced Traumatic Cardiac Arrest. Academic Emergency Medicine. 23 (2), 208-212 (2016).
  12. Frankel, D. A. Z., et al. Physiologic response to hemorrhagic shock depends on rate and means of hemorrhage. Journal of Surgical Research. 143 (2), 276-280 (2007).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

SAAPROSC

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved