JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Bu protokolün amacı, translasyonel araştırmalar için bir domuz kan kaybı kardiyak arrest modeli ve özel olarak oluşturulmuş bir seçici aortik ark perfüzyon devresini göstermektir.

Özet

Travmaya bağlı potansiyel olarak önlenebilir ölümlerin çoğunluğunu kanama oluşturur. Kardiyak arrest geçiren hastalar için selektif aortik ark perfüzyonu (SAAP) gibi endovasküler resüsitasyon tekniklerine artan bir ilgi vardır. Bu, torasik aort balon kateteri yoluyla koroner dolaşımın aktif perfüzyonunu içerir ve klinik uygulamaya yaklaşmaktadır. Bununla birlikte, teknik karmaşıktır ve insan kullanımı düşünülmeden önce hayvan modellerinde iyileştirme gerektirir. Bu makale, ısmarlama bir SAAP sistemi ile tedavi edilen kan kaybı kardiyak arrestinin büyük bir hayvan modelini açıklamaktadır.

Domuzlar uyuşturuldu, aletize edildi ve kontrollü, logaritmik bir kan kaybı başlatılmadan önce splenektomi yapıldı. Hayvanlar heparinize edildi ve dökülen kanlar bir rezervuarda toplandı. Kardiyak arrest gözlendikten sonra, kan ekstra korporeal bir devreden bir oksijenatöre pompalandı ve daha sonra torasik aorta yerleştirilen 10 Fr'lik bir balon kateter yoluyla verildi.

Bu, EKG ve aort kökü basınç dalga formu ile gösterildiği gibi spontan dolaşımın (ROSC) geri dönüşüyle sonuçlandı. Bu model ve beraberindeki SAAP sistemi, kan kaybı kardiyak arrestinden standartlaştırılmış ve tekrarlanabilir iyileşmeye izin verir.

Giriş

Kanama, potansiyel olarak önlenebilir travma ölümlerinin çoğunu oluşturur1. Kan kaybının terminal aşamalarında, koroner perfüzyon azalır, bu da kalp durmasına ve ölüme yol açar. Mevcut stratejiler - intravenöz transfüzyon ve kalp masajı - koroner perfüzyonun başarısızlığını ele almadıkları için etkisizdir.

SAAP, oksijenli resüsitasyon sıvısı ve ilaçların doğrudan proksimal aorta infüzyonu, koroner ve serebral dolaşımı perfüze ederek bu sorunu çözmeyi amaçlayan kateter bazlı bir resüsitasyon tekniğidir. Sınırlı domuz çalışmaları, ventriküler fibrilasyon ve hemorajik kardiyak arrest 2,3,4 sonrası kardiyak aktivitenin geri kazanılmasında umut verici sonuçlar göstermiştir. Bununla birlikte, SAAP araştırması devam etmektedir ve teknik klinik öncesi aşamalarda kalmaktadır.

SAAP ile ilgili çeşitli teknik zorluklar var. Belirli bir hacimde perfüzatın kateter yoluyla kesin bir infüzyon hızında verilmesi kritik öneme sahiptir ve şu anda SAAP'ta kullanılmak üzere ticari olarak temin edilebilir, FDA onaylı bir kateter bulunmamaktadır. Teknik, SAAP sırasında perfüzatı verimli bir şekilde depolayabilen, oksijenlendirebilen ve verebilen özel bir devre gerektirir. Bu çalışmanın amacı, travmatik nabızsız elektriksel aktivite (PEA) kardiyak arrest hayvan modeli ve bu aracın kan kaybı yapan hayvan araştırmalarında kullanılmasında kullanılmak üzere özel olarak oluşturulmuş, güvenilir bir SAAP sistemi sunmaktır.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protokol

Bu çalışma, Amerikan Laboratuvar Hayvanları Bilimi Derneği tarafından akredite edilmiş Tıp Fakültesi Öğretim Tesisi'nde (MSTF, Maryland Üniversitesi, Baltimore, MD, ABD) yürütülmüştür. Çalışma protokolü, yerel Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylandı.

1. Hayvan seçimi ve barınma

  1. 60-80 kg ağırlığında yetişkin erkek domuz (Sus Scrofa) kullanın.
  2. Hayvan tesisine vardıktan sonra, hayvanları kafes başına bir tane olsun, ancak komşu kafeslerdeki hayvanlarla etkileşime girme yeteneğine sahip olarak barındırın.
  3. İklimlendirmeyi sağlamak için hayvanları en az 48 saat barındırın. Hayvanların suya serbestçe erişmesine izin verin ve entübasyon sırasında aspirasyon riskini en aza indirmek için hayvanların oruç tutması gereken deneyden önceki geceye kadar onları standart bir diyetle besleyin.
  4. Sağlıklı olduklarını doğrulamak için hayvanları düzenli olarak izleyin.

2. Sedasyon ve genel anestezi indüksiyonu

  1. Telazol (4-5 mg / kg) / ksilazin (1.8-2.2 mg / kg) kaudalinin kulağa veya gluteus kasına intramüsküler enjeksiyonu ile hayvanı hala barınma alanındayken sakinleştirin.
  2. Hayvanı barınma alanından ameliyathaneye taşıyın ve ameliyat masasına sırt yaslanacak şekilde yerleştirin.
  3. Hayvanın kulağına bir nabız oksimetresi probu yerleştirin, hayvanın burnuna bir yüz maskesi yerleştirin ve anesteziyi indüklemek için mandibula gevşeyene kadar% 100O2'de İzofluran verin.
  4. Bir laringoskop kullanarak bir endotrakeal (ET) tüp yerleştirin. Bu, çeneleri açık tutarak, dili dışarı çekerek, epiglotu tanımlayarak, laringoskopun ucunu orofarinkse geçirerek ve epiglotu yumuşak damaktan uzaklaştırarak sağlanmalıdır. ET tüpünü ses kıvrımları boyunca 6-10 cm ilerletin ve ardından hayvanın başının üst kısmına göre aşağı doğru eğri bir konumda döndürün.
  5. ET manşetini 10 cm3 hava ile şişirin, ET tüpünü gazlı bez kullanarak hayvanın burnuna sabitleyin ve tüpün doğru yerleştirildiğini doğrulamak için hayvanın göğsünü oskültasyon yapın.
  6. ET tüpünü bir ısı ve nem eşanjörü aracılığıyla mekanik bir vantilatöre bağlayın.
  7. Vücut kütlesinin kg'ı başına 7-10 mL'lik bir tidal hacim, 10-15 nefes/dk'lık bir solunum hızı ile 38-42 mmHg'lik bir son tidal CO 2 gerginliğini hedefleyen, %30'luk inspirasyonlubir O 2 fraksiyonu sağlamak için uygun mekanik ventilatör ayarlarını onaylayın.
  8. Anesteziyi sürdürmek için% 1.5-3 izofluran kullanın. Hayvanın solunum parametrelerini düzenli olarak değerlendirir.

3. Cerrahi

  1. Cerrahi alan sterilizasyonu ve hazırlığı
    1. Laparotomi insizyonu ve perkütan erişim bölgeleri için bölgenin üzerindeki kılları elektrikli bir saç kesme makinesi kullanarak çıkarın.
    2. Tüm kesi bölgelerini ve perkütan delme bölgelerini betadin ile ovalayın ve kurumasını bekleyin.
    3. Steril cerrahi alanları korumak ve kontaminasyonu önlemek için ameliyat bölgelerinin etrafına steril örtüler yerleştirin. Bunları zımba ile yerine sabitleyin.
    4. Ön ve arka toynakları hafif bir fleksiyonla geri çekin ve ip veya bantla yerinde sabitleyin.
    5. EKG yapışkan elektrotlarını sağ ön ayak, sol ön ayak, sağ arka ayak ve sol arka ayak üzerine ve ksifoidin üzerine yerleştirin. Doğru EKG uçlarını yapışkan elektrotlara takın.
  2. Laparotomi
    1. 20 cm orta hatta karın kesisi yapmak için elektrokoter kullanın.
    2. Deri altı dokusunu ve linea alba'yı incelemek için elektrokoter kullanın. Makas kullanarak doğrudan görüş altında periton boşluğuna girin.
  3. Splenektomi (Diş Tedavisi)
    1. Kan kaybına yanıt olarak ototransfüzyonu önlemek için dalağı çıkarın.
    2. Dalağı orta hat yarasına verin, hilum damarlarını iki kanama durdurucu ile klempleyin ve kanama durdurucular arasında geçiş yapın. Kesilen uçların 0 ipek bağ ile bağlanması.
    3. Daha derinde yatan kısa mide damarlarını tanımlayın, iki kanama durdurucu yerleştirin, kanama durdurucular arasındaki damarları kesin ve uçları 0 ipek bağ ile bağlayın.
    4. Hemostazı sağlamak için bağlanmış damarları dikkatlice inceleyin. Kanayan damarları bağlayın.
    5. Dalağın diseke edilmediğinden emin olmak için yerinde inceleyin ve çıkarın.
  4. Sistostomi
    1. Mesaneyi laparotomi yarasından geçirin.
    2. Mesanenin ventral kısmını iki DeBakey kelepçesi arasında kavrayın ve makas kullanarak 1 cm'lik bir kesi yapın.
    3. Açıklığa bir aspirasyon kateteri geçirin ve idrarı mesaneden çıkarın.
    4. Mesaneye 14 Fr'lik bir idrar sondası yerleştirin. Kateter balonunu 10 mL salin ile şişirin.
    5. İdrar dökülmesini önlemek için kateteri mesaneye sabitlemek için 3.0 naylon sütür kullanarak bir çanta ipi sütürü yerleştirin.
    6. Kateteri bir toplama torbasına bağlayın.
    7. Laparotomi yarasını 3'0 naylon sütür kullanarak akan bir dikişle kapatın.

4. Enstrümantasyon

NOT: SAAP devresini bağlamayla ilgili temel adımlar için Tablo 1'e bakın.

  1. Perkütan vasküler erişim
    1. Sağ ve sol internal juguler ven kanülasyonu (Şekil 1)
      1. Ultrason (US) rehberliğinde iç juguler veni görselleştirin; Genellikle şah damarı karıklarında cildin yaklaşık 2-3 cm derinliğinde bulunur.
      2. Cilde 45° açıyla yerleştirilmiş 18 G'lik bir iğne ile cildi delin ve US görüşü altında venöz lümene sokun. İğneden 0.035" Seldinger kılavuz telini geçirin.
      3. Kılavuz teli venöz lümende bırakmaya dikkat ederek iğneyi çıkarın.
      4. Telin yanında 5 mm'lik bir cilt kesisi yapın ve kılavuz tel üzerindeki damara bir dilatör ile 7 Fr'lik bir kılıf geçirin.
      5. Kılıfı yerinde bırakarak kılavuz teli ve tanıtıcıyı çıkarın. Kılıfı 1.0 ipek dikişlerle cilde dikerek yerine sabitleyin.
      6. Kontralateral İç juguler veni kanüle etmek için yukarıdaki adımları tekrarlayın.
        NOT: Juguler ven kılıflarından biri sağ atriyal basınç monitörizasyonu için kullanılır, diğeri ise çalışma protokolüne bağlı olarak ilaç verilmesi için kullanılabilir. Alternatif olarak, kanülasyon için dış juguler damarlar kullanılabilir.
    2. Karotis Arter Kanülasyonu (Şekil 1)
      1. US rehberliğini kullanarak trakeanın hemen yanındaki karotis arteri bulun.
      2. Cilde 45° açıyla yerleştirilmiş 18 G'lik bir iğne ile cildi delin ve ABD görüşü altında arteriyel lümene sokun, iğneden 0.035" Seldinger kılavuz teli geçirin.
      3. Kılavuz teli arteriyel lümende bırakmaya dikkat ederek iğneyi çıkarın.
      4. Telin yanında 5 mm'lik bir cilt kesisi yapın ve kılavuz tel üzerindeki artere bir dilatör ile 7 Fr'lik bir kılıf geçirin.
      5. Kılıfı yerinde bırakarak kılavuz teli ve tanıtıcıyı çıkarın. Kılıfı 1.0 ipek dikişlerle cilde dikerek yerine sabitleyin.
    3. Sağ ve sol femoral arter kanülasyonu
      1. US rehberliğini kullanarak femoral kanalda sağ femoral arteri bulun.
      2. Cildi 18 G'lik bir iğne ile cilde 45° açıyla delin ve US görüşü altında arteriyel lümene sokun. İğneden 0.035" Seldinger kılavuz telini geçirin.
      3. Kılavuz teli arteriyel lümende bırakmaya dikkat ederek iğneyi çıkarın.
      4. Telin yanında 10 mm'lik bir cilt kesisi yapın.
      5. Bir dilatör ile 14 Fr'lik bir kılıfı kılavuz tel üzerindeki artere geçirin.
      6. Kılıfı yerinde bırakarak kılavuz teli ve tanıtıcıyı çıkarın. Kılıfı 1.0 ipek dikişlerle cilde dikerek yerine sabitleyin.
      7. Sol femoral arter erişimi için, US kullanarak femoral kanaldaki sol femoral arteri bulun.
      8. Cildi 18 G'lik bir iğne ile 45°'lik bir açıyla delin ve US görüşü altında arteriyel lümene sokun. İğneden 90 cm 0.035" Seldinger kılavuz teli geçirin.
      9. Kılavuz teli arteriyel lümende bırakmaya dikkat ederek iğneyi çıkarın.
      10. Telin yanında 10 mm'lik bir cilt kesisi yapın.
      11. 18 cm uzunluğunda, 15 Fr ECMO kanülünü kılavuz tel üzerinden artere geçirin.
      12. Kılavuz teli dilatör ile birlikte çıkarın ve sırt kanamasını önlemek için kanülün distal ucunu kelepçeleyin.
    4. Femoral ven kanülasyonu
      1. ABD rehberliğini kullanarak femoral kanaldaki femoral veni bulun.
      2. Cildi 18 G'lik bir iğne ile 45 ° açıyla delin ve ABD görüşü altında venöz lümene sokun, iğneden 0.035 "Seldinger kılavuz teli geçirin.
      3. Kılavuz teli venöz lümende bırakmaya dikkat ederek iğneyi çıkarın.
      4. Telin yanında 5 mm'lik bir cilt kesisi yapın ve kılavuz tel üzerinden damar içine bir introducer ile 9 Fr merkezi venöz kateter geçirin.
      5. Kateteri yerinde bırakarak kılavuz teli ve tanıtıcıyı çıkarın. Çizgiyi 1.0 ipek dikişlerle cilde dikerek yerine sabitleyin.
  2. Perkütan vasküler monitörizasyon (Şekil 1)
    1. Aort Kökü Basıncı
      1. Floroskopi kullanarak sağ karotis arterdeki 7 Fr kılıfına bir mikromanometre kateteri yerleştirin.
      2. Veri toplama ekranında sunulan aort basıncı dalga formunu görselleştirerek kateter ucunun aort arkında olduğunu onaylayın.
    2. Sağ atriyal basınç
      1. Floroskopi kullanarak, sağ internal juguler vendeki 7 Fr kılıfına önceden kalibre edilmiş bir mikromanometre kateteri yerleştirin.
      2. Veri toplama ekranında sunulan basınç dalga biçimini gözlemleyerek sağ atriyuma kateter ucu yerleşimini onaylayın.

5. Kan kaybı

  1. Kurulumun hazırlanması
    1. IJV kılıfının yan kolu yoluyla 15.000 IU fraksiyone edilmemiş heparin enjekte edin.
    2. Kan kaybı hortumunu, kan kaybı için kullanılan peristaltik pompanın silindirine yükleyin.
    3. Borunun bir ucunu standart IV boru kullanarak devre rezervuarına bağlayın.
    4. Kan kaybı pompası hortumunun diğer ucunu düz bir kuplör ve 2 inçlik bir 1/4" ID tüpü segmenti kullanarak femoral arterdeki 15 Fr ECMO kanülünün ucuna bağlayın.
    5. cl'yi çıkarınamp 15 Fr Kanülden çıkarın.
    6. Formül5'i kullanarak logaritmik ekskanguination oranı aralıklarını hesaplayın. Aralık uzunluğu ve kan kaybı oranı çalışma protokolüne bağlıdır.
      figure-protocol-10588
    7. Programlanabilir özel pompa bilgisayar yazılımı -PUMPTERM'i kullanarak protokole göre istenen pompa hızını ayarlayın.
    8. Bilgisayarı standart bir Ethernet bağlantı noktası kullanarak programlanabilir pompaya bağlayın. Kontrol edilen pompa, dijital ekranda görüntülenen güncellenmiş ilk akış hızı ile programlandıktan sonra, bilgisayarla bağlantısı kesilebilir.
  2. Pompa kontrollü kan kaybı
    1. Pompa üzerindeki BAŞLAT / DURDUR düğmesine basarak kan kaybına başlayın.
    2. Sinüs EKG ritmi eşliğinde aort kök basıncı dalga formunda pulsatilite kaybı ile birlikte aort basıncı kaybı (SBP <10 mmHg) ile PEA gösterilene kadar protokole göre kan kaybına devam edin.
    3. Pompa üzerindeki BAŞLAT / DURDUR düğmesine manuel olarak basarak kan kaybını durdurun.

6. SAAP

  1. SAAP devre hazırlığı
    1. Bir reperfüzyon uzuvu, ana perfüzyon uzuvu, SAAP perfüzyon uzuvu ve bir periferik perfüzyon uzuvunu dahil etmek için dikenli Y ve düz konektörler ve 3/8" ID borusu kullanarak devre borusunu oluşturun (Şekil 2). Bağlantıları kablo bağlarıyla sabitleyin.
    2. Proksimal tüpü kan haznesine bağlayın.
    3. Boruyu santrifüj pompaya bağlayın.
    4. Hortumu oksijenatöre bağlayın.
    5. Oksijenatörü, oksijenatör üzerindeki oksijen infüzyon portuna takarak standart bir oksijen tüpü kullanarak oksijen kaynağına bağlayın.
    6. Devrenin ana perfüzyon uzvunu peristaltik pompa kafasına yükleyin.
    7. Oksijen tüpü üzerindeki kadranı çevirerek oksijeni 6 L/dk'da verin.
    8. Devre rezervuarına 15.000 IU fraksiyone edilmemiş heparin ekleyin.
    9. Transplantasyon sırasında dökülen kan kan haznesine pompalanırken devrenin perfüzyon uzuvunun klemplendiğini ve reperfüzyon uzvunun açık olduğunu onaylayın. BAŞLAT / DURDUR düğmesine basarak SAAP devresindeki santrifüj pompayı etkinleştirin ve akışı herhangi bir oranda ayarlayın. Bu, kanın dolaşımına izin vererek pıhtılaşmayı önler.
    10. Balon yerleştirme uzunluğunu, anatomik işaretlere karşı harici olarak yerleştirerek işaretleyin. Balonun proksimal torasik aort içine oturmasını hedefleyin.
    11. SAAP kateterini yıkayın ve kateter göbeğine bağlı 3 bir musluk olduğunu onaylayın.
    12. Balonun tamamen söndüğünü onaylayın ve kateterin balon portunda 2 yönlü bir musluk olduğunu onaylayın.
    13. 60 mL'lik bir şırıngayı 0.1 mg epinefrin (1 mL'de), 10 mL kontrast ve 49 mL salin çözeltisi ile önceden doldurun. Bu solüsyon, sol ventrikülün retrograd dolmasını önlemek için SAAP perfüzyonundan hemen önce enjekte edilecek olan aort kapak (AV) kapatma bolusudur.
    14. Başka bir şırıngayı 15 mL salin / kontrast solüsyonu (1: 1) ile önceden doldurun. Bu, kateter balonunu şişirmek için kullanılacaktır.
    15. Pompa kadranındaki "yukarı" ve "aşağı" düğmelerini kullanarak pompayı manuel olarak programlayarak, perfüzatı (oksijenli kan) hayvanın vücut ağırlığının 10 mL/kg'ı oranında vermek için peristaltik pompayı SAAP devresine ayarlayın.
  2. SAAP teslimatı
    1. SAAP kateterini femoral arterdeki 14 Fr kılıfa önceden belirlenen bir uzunlukta yerleştirin, 15 mL salin kontrast solüsyonu ile önceden doldurulmuş şırıngayı balon portuna takın (Şekil 2) ve balonu şişirmek için şırınganın hacmini enjekte edin.
    2. Balonun yerleştirilmesini floroskopi ile onaylayın.
    3. SAAP perfüzyon uzvunu SAAP kateterine ve periferik perfüzyon uzvunu venöz katetere bağlayın (Şekil 3).
    4. SAAP devresinin reperfüzyon uzvunu üzerine kelepçe uygulayarak kapatın ve perfüzyon uzvunu klempi üzerinden çıkararak açın (Şekil 2).
    5. AV kapatma bolusu ile önceden doldurulmuş 60 mL şırıngayı, SAAP kateterinin arteriyel lümenindeki üç vananın yan portuna takın (Şekil 3) ve şırınganın tüm hacmini hızlı bir şekilde manuel olarak enjekte edin, ardından yan portu şırıngaya kapatın.
    6. Arteriyel port vanasının uç portunu hemen açın.
    7. RUN/STOP düğmesine basarak SAAP devresindeki Peristaltik pompayı çalıştırın.
    8. Altmış saniye sonra RUN/STOP düğmesine basarak peristaltik pompayı durdurun.
    9. SAAP balon bağlantı noktasından tüm hacmi aspire ederek SAAP balonunu söndürün.
    10. Kateterin arteriyel lümenindeki stop stopcock ile katetere giden akışı kapatın.
    11. SBP ve EKG ritmini değerlendirin.
      NOT: SAAP SBP'nin başlamasından 2 dakika sonra 90 mmHg< ise, SBP'yi >90 mmHg'yi korumak için SAAP yoluyla 7 bolusa kadar 200 mL heparinize dökülen kan veya önceden satın alınmış sitrat tam kan infüze edilebilir.
      1. SAAP için depolanmış kan kullanılıyorsa, miyokardda sitrat kalsiyum bağlanmasını önlemek için kalsiyum glukonat ile ko-infüzyon gereklidir. SAAP Kateterine bağlı 3 musluğun yan portuna bağlı bir şırınga kullanarak SAAP perfüzyonundan hemen önce kalsiyum glukonat enjekte edin. Paketlenmiş RBC ünitesi başına 1 gram ve tam kan ünitesi başına 3 gram kalsiyum glukonat kullanın5.
      2. Hayvanda ventriküler fibrilasyon veya ventriküler taşikardi gelişirse, sternum ve apeksin üzerine kürekler yerleştirerek ve hayvanla temas halinde personel temizliğini takiben defibrilasyon girişiminde bulunun.
        1. Havalandırmaya devam edin, şokları vermeden hemen önce basınç transdüserlerini sinyal koşullandırma ünitelerinden ayırın - şoku verdikten hemen sonra bunları yeniden bağlayın.
        2. 150 J'den başlayan bir bifazik defibrilatör kullanarak bir şok verin, bunu takiben ritmi bir dakikaya kadar yeniden değerlendirin. Ventriküler taşikardi veya fibrilasyon varsa, her şoktan sonra bir dakikalık ritim değerlendirmesinin ardından 200 J'de iki şok daha verin.
          NOT: Burada kullanılan defibrilasyon algoritması bifazik defibrilatör içindir, monofazik defibrilatörler genellikle daha az enerji gerektirir. Diğer kardiyak ritimler tanımlanırsa - Atriyal Fibrilasyon, PEA vb. defibrilasyon denenmemeli ve hayvan özel çalışma protokolüne göre tedavi edilmelidir.

7. Periferik perfüzyon

NOT: Çalışma protokolüne bağlı olarak başarılı SAAP resüsitasyonunun ardından, SAAP devresi kullanılarak periferik olarak daha fazla hacim değişimine devam edilebilir.

  1. Ana perfüzyon uzvunun SAAP perfüzyon uzvunu kelepçeleyin.
  2. SAAP devresinin periferik perfüzyon uzvunun femoral vendeki kateterin yan koluna bağlı olduğunu ve muslukların ve hortumların açık olduğunu onaylayın.
  3. Uygun resüsitasyon sıvısının ve hacminin SAAP rezervuarında olduğundan emin olun.
  4. SAAP devresinin devridaim uzvunun kenetlendiğinden emin olun.
  5. Peristaltik pompada uygun akış ayarlarını ayarlayarak sıvıyı protokol ihtiyaçlarına göre infüze edin.

8. Ötenazi

  1. Deneyin sonunda, merkezi bir damara >2 mmol/kg potasyum klorür enjekte ederek hayvana ötenazi yapın ve 1 dakika asistol bekleyin.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

Aort kök kan basıncı başlangıçta 83/58 mmHg idi ve kan kaybı sırasında kademeli olarak 0-10 mmHg'ye düştü. Nabızsız elektriksel aktivitenin (PEA) başlamasını takiben, SAAP yapıldı ve bu sırada sistolik kan basıncı SAAP süresi boyunca hızla 120 mmHg'ye yükseldi (Şekil 4). SAAP'ın kesilmesi ve aort balonu deflasyonunu takiben, BSP yaklaşık 60 mmHg'ye düştü, ancak SAAP sonrası dönemde IV sıvı bolusunu (oklar) temsil eden birk...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

Yeterli perfüzat oksijenasyonu, SAAP12'nin kritik bir yeteneğidir. Bir rezervuar ile entegre edilmiş bir filtre kullanıyoruz. Filtre, standart oksijen tüpü aracılığıyla bir oksijen tüpüne bağlanır. Oksijen akışı oksijenatöre 6 L/dk'da iletilir. Devreye dahil edilen santrifüj pompa, oksijenatörden süzülen kanı iter. Yeterli oksijenasyon, devrenin perfüzyon uzuvlarından bir numunenin kan gazı analizi yapılarak doğrulanabilir. Model kullan...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Açıklamalar

JJ Morrison, Prytime Medical Inc.'in klinik danışma kurulu üyesidir. Diğer tüm yazarların ifşa edecek hiçbir şeyi yoktur.

Teşekkürler

Bu makalede ifade edilen görüşler yazar(lar)a aittir ve Kara/Deniz Kuvvetleri/Hava Kuvvetleri Bakanlığı, Savunma Bakanlığı veya ABD Hükümeti'nin resmi politikasını yansıtmaz.

Bu çalışma için fon Maryland Üniversitesi Tıp Fakültesi tarafından alındı.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
3/8” ID tubingSaint-GobainE-3603This tubing is used throughout the circuit.
1/4" TubingTygonE-36032" segment for a connector between Exsanguination tubing and ECMO cannula
2-way stopcocksHarvard Apparatus72-2650standard stopcock
3-wayHarvard Apparatus72-2658Standard stopcock
Barbed ConnectorsHarvard Apparatus72-1587Y connectors
Barbed ConnectorsHarvard Apparatus72-1575Straight connectors
Blood ReservoirLivaNova50715This is sold together with the oxygenator
Cable tiesCommercial ElectricGT-200STStandard cable ties.
Centrifugal pump BVP-ZISMATECISM 446Centrifugal Pump used for recirculation of blood
Controlled Peristaltic Dispensing PumpNew Era Pump SystemsNE-9000BPeristaltic pump for Exsanguination
ECMO CannulaMedtronic96570-015Exsanguination cannula
Gas tubingAirLife1302Standard oxygen tubing
Oxygen sourceAirGasOX USP300Standard oxygen tank with flowmeter
OxygenatorLivaNova50715This is sold together with the reservoir
Peristaltic pump 1 MCPISMATECISM 405SAAP peristaltic pump
SAAP cathetern/an/aProprietary catheter designed by Dr. Manning
Venous catheterTeleflexCDC-29903-1A9 French single lumen catheter

Referanslar

  1. Kauvar, D. S., Lefering, R., Wade, C. E. Impact of Hemorrhage on Trauma Outcome: An Overview of Epidemiology, Clinical Presentations, and Therapeutic Considerations. Journal of Trauma-Injury Infection. 60 (6), 3-11 (2006).
  2. Manning, J. E., et al. Selective aortic arch perfusion using serial infusions of perflubron emulsion. Academic Emergency Medicine. 4 (9), 883-890 (1997).
  3. Manning, J. E., et al. Selective aortic arch perfusion during cardiac arrest: a new resuscitation technique. Annals of Emergency Medicine. 21 (9), 1058-1065 (1992).
  4. Manning, J. E., et al. Selective aortic arch perfusion during cardiac arrest: enhanced resuscitation using oxygenated perflubron emulsion, with and without aortic arch epinephrine. Annals of Emergency Medicine. 29 (5), 580-587 (1997).
  5. Madurska, M. J., et al. The Cardiac Physiology Underpinning Exsanguination Cardiac Arrest. Shock. , (2020).
  6. Manning, J. E., et al. Selective aortic arch perfusion with hemoglobin-based oxygen carrier-201 for resuscitation from exsanguinating cardiac arrest in swine. Critical Care Medicine. 29 (11), 2067-2074 (2001).
  7. Madurska, M. J., Sachse, K. A., Jansen, J. O., Rasmussen, T. E., Morrison, J. J. Fibrinolysis in trauma: a review. European Journal of Trauma & Emergency Surgery. 44 (1), 35-44 (2018).
  8. Ontaneda, A., Annich, G. M. Novel Surfaces in Extracorporeal Membrane Oxygenation Circuits. Frontiers of Medicine (Lausanne). 5, 321(2018).
  9. Barnard, E. B. G., et al. A comparison of Selective Aortic Arch Perfusion and Resuscitative Endovascular Balloon Occlusion of the Aorta for the management of hemorrhage-induced traumatic cardiac arrest: A translational model in large swine. PLoS Medicine. 14 (7), 1002349(2017).
  10. Hoops, H. E., et al. Selective aortic arch perfusion with fresh whole blood or HBOC-201 reverses hemorrhage-induced traumatic cardiac arrest in a lethal model of noncompressible torso hemorrhage. Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 87 (2), 263-273 (2019).
  11. Manning, J. E., Ross, J. D., McCurdy, S. L., True, N. A. Aortic Hemostasis and Resuscitation: Preliminary Experiments Using Selective Aortic Arch Perfusion With Oxygenated Blood and Intra-aortic Calcium Coadministration in a Model of Hemorrhage-induced Traumatic Cardiac Arrest. Academic Emergency Medicine. 23 (2), 208-212 (2016).
  12. Frankel, D. A. Z., et al. Physiologic response to hemorrhagic shock depends on rate and means of hemorrhage. Journal of Surgical Research. 143 (2), 276-280 (2007).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Selektif Aort Ark Perf zyonuSAAPEkskanguination Kardiyak ArrestEndovask ler Res sitasyonTorasik Aort Balon KateterB y k Hayvan ModeliDomuz AnestezisiSplenektomiHeparinizasyonEkstrakorporeal DevreSpontan Dola m ROSCAort K k Bas nc

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır