Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

המאמר מציג שיטות לתרבית זחלים של הגסטרופוד Crepidula fornicata במערכת בקנה מידה מעבדתי קטן ובמערכת מזוקוסמוס של מי ים שניתן לפרוס בשטח.

Abstract

רכיכת הגסטרופוד הקליפטראידית, Crepidula fornicata, נמצאת בשימוש נרחב במחקרים של ביולוגיה התפתחותית של הזחל, פיזיולוגיה ואקולוגיה. זחלי ויליגר ממין זה נאספו על ידי סיפון על מסננת לאחר שחרור טבעי על ידי בוגרים, הופצו לתרבית בצפיפות של 200/L, והוזנו באיזוכריזיס גלבנה (זן T-ISO) ב 1 x 105 תאים / מ"ל. גדילת קונכיות ורכישת כשירות למטמורפוזה תועדו עבור זחלים אחים שגודלו בתרביות מאווררות של 800 מ"ל שתוכננו לשיווי משקל לאוויר הסביבה או לתערובות גזים אטמוספריות מוגדרות. בניגוד לתנאי תרבית מעבדה אלה; נתוני גדילה וכשירות נאספו גם עבור זחלים שגודלו במזוקוסמה של מי ים בזרימה של 15 ליטר הממוקמת באוכלוסיית שדה של בוגרים רבייתיים. שיעורי הצמיחה והתזמון של יכולת מטמורפית בתרביות מעבדה היו דומים לאלה שדווחו במחקרים שפורסמו בעבר. הזחלים שגודלו בשדה מזוקוסמוס גדלו הרבה יותר מהר ועברו מטמורפוזה מוקדם יותר ממה שדווח בכל מחקרי המעבדה. יחד, שיטות אלה מתאימות לחקר התפתחות הזחלים בתנאים מבוקרים שנקבעו מראש במעבדה וכן בתנאים טבעיים בשטח.

Introduction

הצלע המחליקה, Crepidula fornicata (Gastropoda: Calyptraeidae), מיוצגת היטב בספרות המחקר העכשווית וההיסטורית בשל יעילותה כמודל התפתחותי ובשל השפעותיה הנרחבות כמין פולש. הוא שימש דוגמה יסודית להתפתחות ספירלית בעידן הקלאסי של אמבריולוגיה ניסיונית1 וחווה לידה מחודשת של עניין עם יישום של הדמיה מודרנית וכלים גנומיים לנתח מנגנונים של התפתחות מוקדמת lophotrochozoan 2,3. בקצה השני של תולדות חייו, חקירות אחרות התמקדו בהשפעות של אוכלוסיות בוגרות של מהנדס מערכות אקולוגיות זה בסביבות ימיות חופיות ממוזגות, רחוקות מאוד מתפוצתו המקורית במזרח צפון אמריקה 4,5. בין עובר לבוגר, זחלי הווליג'ר של מין זה היו מושא למחקרים רבים על התפתחות הזחל והאקולוגיה, במיוחד על גורמים המשפיעים על גדילה ורכישת כשירות למטמורפוזה, הרמזים הפנימיים והחיצוניים המתווכים את התיישבות הזחל, והשפעות חוויית הזחל על ביצועי הצעירים 6,7,8,9,10,11 . מחקרים אחרונים חשפו את עמידותם של זחלים וצעירים של C. fornicata להחמצת האוקיינוס, אפיק נוסף לשימוש מחקרי פרודוקטיבי בבעל חיים זה 12,13,14,15,16.

יתרון של C. fornicata למחקרים של ביולוגיה של זחלים ימיים הוא שקל יחסית לגדל במעבדה במי ים טבעיים או מלאכותיים על תזונה חד אצתית של השוטון Isochrysis galbana. שיטות התרבות פורטו על ידי המחבר בפרסום מודפס מוקדם יותר המתמקד בשיטות17. הסיבות לתרומה הנוכחית הן כפולות. ראשית, התמרונים הפיזיים השגרתיים הכרוכים בביסוס תרבויות ובטיפול בהן הם פשוטים מאוד מבחינה רעיונית אך קשים לביצוע נכון ללא התנסות מעשית או הדגמת וידאו. שנית, מתוארות שתי וריאציות על שיטות תרבית שתוארו קודם לכן, המתאימות במיוחד למחקרי מעבדה ושדה של תגובות לגורמי עקה סביבתיים כגון החמצת אוקיינוסים, אטרופיקציה ודלדול חמצן. הראשונה שבהן היא מערכת תרבית בנפח נמוך (800 מ"ל) המתאימה למניפולציה של pH וחמצן מומס במי ים באמצעות נפחים קטנים של גזים מבעבעים, והשנייה היא מערכת מזוקוסמוס בעלת נפח גדול יותר (15 ליטר) שניתן למקם בשדה ומאפשרת החלפה חופשית של מי ים סביבתיים.

Protocol

1. תמרונים שגרתיים להקמה ותחזוקה של תרביות זחלים של C. fornicata

הערה: שיטה זו מתחילה עם צנצנת גלון (3.8 ליטר) של מי ים המכילה C. fornicata בוגרים שזה עתה שחררו זחלי וליגר מגודלים. ניתן לאסוף מבוגרים בשטח או להשיגם מספק המופיע בטבלת החומרים. הבוגרים הם הרמפרודיטים פרוטנדרוסים החיים בערימות הזדווגות עם נקבות ססיליות בתחתית הערימה. אין לפרק ערימות למבוגרים. עונתיות הרבייה ושיטות להתניה של בוגרים להשרצה מחוץ לעונה תוארו בעבר17. הזחלים נאספים בצורה הטובה ביותר תוך 2-3 שעות לאחר שחרורם, כאשר הם גיאושליליים מאוד ויתרכזו ליד פני השטח של הצנצנת.

  1. צור מסננת על ידי חיתוך החלק התחתון של פלסטיק חד פעמית תלת פינתית בנפח 400 מ"ל והדבקה על לוח של רשת ניילון בגודל 236 מיקרומטר. למטרה זו ובמיוחד לבניית מזוקוסמוס (להלן), השתמשו בדבק מומס חם המיוצר להדבקה טובה לפוליאתילן.
  2. הסר אוורור מהצנצנת הבוגרת ותן לה לעמוד במשך 15-20 דקות, כך שהפסולת תשקע והזחלים יוכלו לשחות בקלות אל פני השטח.
  3. סיפון הזחלים באורך קצר (15-20 ס"מ) של צינורות זכוכית בקוטר 5 מ"מ המודבקים לקצה צינור אקווריום פלסטיק רך באורך 60-80 ס"מ לתוך המסננת שהוכנה כנ"ל, תלויים בתוך זכוכית בנפח 600 מ"ל כך שעודפי מי ים עולים על גדותיהם של הזכוכית בעוד הזחלים נשמרים על המסננת. שמרו על תחתית המסננת מתחת למים והימנעו מזחלים תקועים.
  4. הרימו לרגע את המסננת מהכוס והשתמשו בבקבוק התזת מי ים מסוננים (FSW) כדי לשטוף את הזחלים לתוך קערת זכוכית של FSW בגודל נוח למניפולציה תחת מיקרוסקופ ניתוח בהספק נמוך.
    הערה: זחלים של C. fornicata משגשגים במי ים טבעיים מסוננים ליד מליחות 30 ppt או במי ים מלאכותיים Instant Ocean העשויים עד 32 ppt. מליחות, ב 20-25 ° C17,18. סינון ב < 1 מיקרומטר מספיק כדי לחסל פרוטיסטים אפיזוטיים עכורים שיכולים לגרום לבעיות בתרביות מעבדה.
  5. מעבירים ידנית וסופרים את מספר הזחלים הרצוי לצנצנת תרבית באמצעות פיפט פסטר. לקבלת התוצאות הטובות ביותר, יש להשתמש בנפח תרבית של זחל אחד/5 מ"ל עבור C. fornicata. ספרו את הזחלים והימנעו מהפיתוי להעריך מספרים.
  6. האכילו את הזחלים במנה הרצויה של מיקרו-אצות כאשר התרבית מתחילה ופעם ביומיים החליפו את המיקרו-אצות כאשר מוחלפים מי תרבית.
    הערה: דיאטה של 1 x 105 תאים / מ"ל איזוכריזיס גלבנה (זן T-ISO) היא תזונה סטנדרטית טובה המניבה שיעורי צמיחה כמעט מקסימליים במעבדה. הקצבת מזון ושיטות לתרבות של T-ISO מסופקים בפרסום מוקדם יותר17.
  7. החליפו את מי התרבית אחת ליומיים על ידי מזיגת תכולת התרבית לתוך מסננת בתוך כוסית, כמו בשלב 1.3 לעיל. הרימו את המסננת והשתמשו בבקבוק שפריץ של FSW כדי לשטוף זחלים לתוך צנצנת תרבית של FSW טרי עם מזון חדש.
    הערה: השיטה הטובה ביותר היא להפריד כל כלי זכוכית המשמשים לתרבית זחלים ולהימנע מכל מגע של כלי זכוכית אלה עם קיבוע, מלחי מתכת כבדים מסיסים או דטרגנטים. ניקוי שגרתי נעשה בצורה הטובה ביותר עם משחה של סודה לשתייה (NaHCO3) וכרית קרצוף ניילון, בעוד מרבצי מינרלים ניתן להסיר עם שטיפת חומצה עדינה בחומץ לבן או לדלל HCl.

2. בניית תרביות מאווררות לזחלים של C. fornicata

הערה: לצנצנת הזכוכית המומלצת (טבלת חומרים) יש מכסה פוליפרופילן, שהוא אינרטי למי ים ובעל העובי הנכון להידוק פתחי צינורות לזרם גז מאוורר.

  1. קודחים שני חורים בקוטר 5 מ"מ במכסה של כל צנצנת תרבית (כולל התוחם הפנימי של המכסה), כל אחד מהם במרחק של כ-1.5 ס"מ מהקצה וממול לשני. (מקדח קיסרי בגודל 13/64 אינץ 'או #7 ASME סטנדרטי של מכונאי יעשה גם חור אישור מתאים).
  2. התקן מתאם צינורות ניילון מושחל בגודל 1/8 אינץ 'x 10-32 בכל חור, באמצעות אום ניילון 10-32, עם מוט הצינור על פני השטח החיצוניים של המכסה.
  3. מרחו חומר איטום של אקווריום גומי סיליקון על הצמצם של החלק הפנימי המושחל של אחד ממתאמי הצינור ודחפו צינור פוליאתילן באורך 20 ס"מ של 2 מ"מ (קוטר חיצוני) דרך הצמצם מבפנים כך שהוא יבלוט כמה מ"מ מעבר לצמצם החיצוני של מוט הצינור.
  4. לצינורות יהיה כעת תקע קטן של חומר איטום אקווריום בקצה הבולט דרך מוט הצינורות, אך צינורות שקופים ייראו ממש מעבר לקצה הברב. תן את חומר האיטום לרפא, ולאחר מכן לקצץ את הקצה הבולט של צינור פוליאתילן כך שהוא סומק עם קצה צינור.
  5. מלאו את צנצנת התרבית ב-FSW עד למרחק של 1 ס"מ מהכתף בחלק העליון של הצנצנת, הבריגו את המכסה וחברו את האוויר המאוורר או את תערובת הגז הניסיונית לצינור המחזיק את צינור אוורור הפוליאתילן. חתכו את אורך צינור האוורור כך שקצהו מונח בצורה מסודרת בתחתית הצנצנת.
  6. התאימו את זרימת האוויר המאוורר או תערובת הגז כדי ליצור זרם איטי של בועות (איור 1). השתמש במשאבת אוויר לאקווריום עם שסתומי כנופיות אקווריום משותפים כדי לספק אוורור עם אוויר הסביבה או השתמש בבקרי זרימה המונית עבור תערובות גז אטמוספרי ניסיוניות אחרות14.

3. בניית תרבית מזוקוסמוס הניתנת לפריסה בשדה עבור זחלים של C. fornicata

  1. חותכים 4 פתחים מלבניים במרווחים שווים, כל אחד בגודל 25 ס"מ x 14.5 ס"מ, בצידי דלי פוליאתילן סטנדרטי של 7 גלון. מקמו את החלק התחתון של כל פתח במרחק של כ-3.5 ס"מ מהתחתית הפנימית של הדלי (איור 2A). מסור חרב חשמלי ידני עם להב בעל שיניים עדינות אידיאלי למטרה זו. שומרים את חתיכות הפסולת החתוכות ופורסים אותן לאורכן לרצועות ברוחב 2 ס"מ בעזרת מסור שולחן.
  2. גזרו 4 לוחות של רשת ניילון בגודל 236 מיקרומטר, כל אחד בגודל 30X20 ס"מ לפחות, כדי לחפוף בנוחות (ב-2 ס"מ לפחות) את פתחי החיתוך בדלי. אבטחו באופן זמני קצה אחד של לוח רשת שינוי על קצה ארוך של המגרעת בעזרת מהדקים קפיציים קטנים או סיכות כביסה.
  3. הדביקו את קצה לוח הרשת לפתח הדלי בדבק מומס חם המיוצר עבור פוליאתילן. לאחר הידוק הקצה הראשון, הדביקו את הקצוות האחרים תוך שמירה על מתח לקבלת משטח מתוח בלוח הרשת.
  4. חתוך את אורכן של רצועות פסולת הדלי משלב 3.1, כדי ליצור רצועות חיזוק שיכסו בצורה מסודרת את האזור המודבק שבו לוחות הרשת חופפים את פתחי הדלי. לחץ על כל רצועת כיסוי במקומה עם כמות נדיבה של דבק נמס חם, ועבוד במהירות כדי לקבל כל רצועה במקומה לפני שהדבק מתקשה.
  5. אבטחו את הקצה של כל רצועה באמצעות מסמר תריס ניילון המותקן מבחוץ של הדלי. חותכים עודפי דבק ורשת מהקצוות החיצוניים של רצועות החיזוק בעזרת סכין גילוח שימושית.
    הערה: כל מסמר דורש חור טייס בגודל 15/64 אינץ'. החלקים הפנימיים (העיוורים) של המסמרות נראים בחלק הפנימי של המזוקוסמוס המוגמר באיור 2B.
  6. פרסו את המזוקוסמוס במדף צף שמחזיק את החלק העליון של הדלי הרבה מעל המים (איור 2C). המדף הצף המוצג עשוי מקטעים של 30 ס"מ של צינור PVC 2 אינץ 'Schedule 40, צמנטי יחד עם מפרקי מרפקים וטי ליצירת מבנה אטום שיכול להחזיק שורה של 4 מזוקוסמות משוכפלות.
  7. בהתאם לתנאים המקומיים, לוחות הרשת עלולים להתקלקל תוך 1-2 ימים, באופן המעכב את חילופי מי הים דרך המזוקוסמוס. במידה שזה קורה, מעבירים את הזחלים למזוקוסמוס טרי ונקי על ידי משיכת המזוקוסמוס העכור 2/3rd מהמים וחילוץ חוזר ונשנה מקרקעיתו לתוך המזוקוסמוס הטרי עם קנקן 2 ליטר.
  8. בצע 20-25 חזרות כדי להעביר את רוב הזחלים, או עד שהזחלים כבר לא נצפים במזוקוסמוס העכור. נקו את המזוקוסמוס על ידי קרצוף עדין של לוחות הרשת בספוג רך עמוס במשחה של סודה לשתייה (NaHCO3) ושטפו במי ברז.

תוצאות

גדילת הזחלים ורכישת כשירות למטמורפוזה נמדדו ב-4 העתקים סימולטניים של תרביות מאווררות בנפח 800 מ"ל, שכל אחת מהן הכילה 160 זחלים, שמקורם בקבוצת אחים של זחלים שבקעו ממסת ביצה אחת והוזנו באיזוכריזיס גלבנה בצפיפות של 1X105 תאים/מ"ל. ה- pH היה 7.9-8.0, הטמפרטורה הייתה 20-21 מעלות צלזיוס, והמליחות הי?...

Discussion

למרות שזחלים של C. fornicata קלים יחסית לתרבית בהשוואה לזחלים ימיים פלנקטוטרופיים אחרים, תשומת לב ליסודות של פרקטיקת תרבות טובה עדיין חיונית17,19. זחלים בריאים צריכים להתחיל להאכיל מיד לאחר הבקיעה. ניתן לאמת זאת בקלות ביום שלאחר הבקיעה על ידי התבוננות במעיים ...

Disclosures

אין ניגודי עניינים לדווח עליהם.

Acknowledgements

הפיתוח הראשוני של מערכת התרבות המאווררת בנפח נמוך נתמך בחלקו על ידי הקרן הלאומית למדע (CRI-OA-1416690 למכללת דיקינסון). ד"ר לורן מולינו סיפקה באדיבות מתקני מעבדה במכון האוקיינוגרפי וודס הול, שם נאספו הנתונים שהוצגו עבור מערכת זו (איור 4).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Bucket, Polyethylene, 7 gallonUS Plastic16916for mesocosm
Crepidula fornicataMarine Biological Laboratory, Marine Resources Center760adult broodstock
Hotmelt glue, Infinity Supertac 500Hotmelt.comINFINITY IM-SUPERTAC-500-12-1LBgood for bonding polyethylene
Jar, glass, 32 oz, with polypropylene lidUlineS-19316P-Wfor 800 mL ventilated cultures
Nitex mesh, 236 µmDynamic Aqua Supply Ltd.NTX236-136for mesocosm
Nut, hex, nylon, 10-32 threadHome Depot1004554441for fastening tubing barbs
Rivets, nylon, blind, 15/64" diameter, 5/32"-5/16" grip range, pack of 8NAPA auto partsBK 66528444 packs needed per mesocosm
Tubing barb 1/8" x 10-32 threadUS Plastic655932 needed per culture jar
Tubing, polyethylene, 2.08 mm ODFisher Scientific14-170-11Gfor ventilating gas stream inside culture jar
Tubing, Tygon, 1/8"x3/16"x1/32"US Plastic57810fits barbs for ventilating cultures

References

  1. Conklin, E. G. The embryology of Crepidula: a contribution to the cell lineage and early development of some marine gastropods. Gasteropods. , (1897).
  2. Henry, J. J., Collin, R., Perry, K. J. The slipper snail, Crepidula: an emerging lophotrochozoan model system. Biol Bull. 218 (3), 211-229 (2010).
  3. Lyons, D. C., Henry, J. Q. Slipper snail tales: how Crepidula fornicata and Crepidula atrasolea became model molluscs. Curr Top Dev Biol. 147, 375-399 (2022).
  4. Blanchard, M. Spread of the slipper limpet Crepidula fornicata (L. 1758) in Europe. Current state and consequences. ScientiaMarina. 61 (Suppl 2), 109-118 (1997).
  5. Beninger, P., Valdizan, A., Decottigies, P., Cognie, B. Field reproductive dynamics of the invasive slipper limpet, Crepidula fornicata. J Exp Mar Biol Ecol. 390 (2), 179-187 (2010).
  6. Pechenik, J. A. The relationship between temperature, growth rate, and duration of planktonic life for larvae of the gastropod Crepidula fornicata (L.). J Exp Mar Biol Ecol. 74 (3), 241-257 (1984).
  7. Pechenik, J. A. Latent effects: surprising consequences of embryonic and larval experience on life after metamorphosis. Evol Ecol Marine Invertebrate Larvae. , 208-225 (2018).
  8. Pechenik, J. A., Gee, C. C. Onset of metamorphic competence in larvae of the gastropod Crepidula fornicata (L.), judged by a natural and an artificial cue. J Exp Mar Biol Ecol. 167 (1), 59-72 (1993).
  9. Taris, M., Comtet, T., Viard, F. Inhibitory function of nitric oxide on the onset of metamorphosis in competent larvae of Crepidula fornicata: A transcriptional perspective. Mar Genomics. 2 (3-4), 161-167 (2009).
  10. Penniman, J. R., Doll, M. K., Pires, A. Neural correlates of settlement in veliger larvae of the gastropod, Crepidula fornicata. Invertebrate Biol. 132 (1), 14-26 (2013).
  11. Meyer-Kaiser, K. S. Carryover effects of brooding conditions on larvae in the slipper limpet Crepidula fornicata. Mar Ecol Prog Ser. 643, 87-97 (2020).
  12. Noisette, F., et al. Does encapsulation protect embryos from the effects of ocean acidification? The example of Crepidula fornicata. PLoS One. 9 (3), e93021 (2014).
  13. Kriefall, N. G., Pechenik, J. A., Pires, A., Davies, S. W. Resilience of Atlantic slippersnail Crepidula fornicata larvae in the face of severe coastal acidification. Front in Mar Sci. 5, 312 (2018).
  14. Bogan, S. N., McMahon, J. B., Pechenik, J. A., Pires, A. Legacy of multiple stressors: Responses of gastropod larvae and juveniles to ocean acidification and nutrition. Biol Bull. 236 (3), 159-173 (2019).
  15. Pechenik, J. A., et al. Impact of ocean acidification on growth, onset of competence, and perception of cues for metamorphosis in larvae of the slippershell snail, Crepidula fornicata. Mar Biol. 166, 128 (2019).
  16. Reyes, C. L., et al. The marine gastropod Crepidula fornicata remains resilient to ocean acidification across two life history stages. Front Physiol. 12, 702864 (2021).
  17. Pires, A. Artificial seawater culture of the gastropod Crepidula fornicata for studies of larval settlement and metamorphosis. In: Carroll, D., Stricker, S. (eds) Developmental biology of the sea urchin and other marine invertebrates. Methods Mol Biol. 1128, 35-44 (2014).
  18. Bashevkin, S. M., Pechenik, J. A. The interactive influence of temperature and salinity on larval and juvenile growth in the gastropod Crepidula fornicata (L.). J Exp Mar Biol Ecol. 470, 78-91 (2015).
  19. Strathmann, M. F. . Reproduction and Development of Marine Invertebrates of the Northern Pacific Coast: Data and Methods for the Study of Eggs, Embryos, and Larvae. , (1987).
  20. Clark, H. R., Gobler, C. J. Diurnal fluctuations in CO2 and dissolved oxygen concentrations do not provide a refuge from hypoxia and acidification for early-life-stage bivalves. Mar Ecol Prog Ser. 558, 43114 (2016).
  21. Gobler, C. J., Baumann, H. Hypoxia and acidification in ocean ecosystems: coupled dynamics and effects on marine life. Biol Lett. 12 (5), 20150976 (2016).
  22. Pechenik, J. A., Hilbish, T. J., Eyster, L. S., Marshall, D. Relationship between larval and juvenile growth rates in two marine gastropods, Crepidula plana and C. fornicata. Mar Biol. 125, 119-127 (1996).
  23. Padilla, D. K., McCann, M. J., McCarty Glenn, M., Hooks, A. P., Shumway, S. E. Effect of food on metamorphic competence in the model system Crepidula fornicata. Biol Bull. 227 (3), 242-251 (2014).
  24. Wallace, R. B., Baumann, H., Grear, J. S., Aller, R. C., Gobler, C. J. Coastal ocean acidification: the other eutrophication problem. Estuarine, Coast Shelf Sci. 148, 1-13 (2014).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

Crepidula Fornicata

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved