טיהור זיקה של חלבון 6X-His-Tagged באמצעות מערכת כרומטוגרפיה נוזלית של חלבון מהיר

Summary

מאמר זה מספק הליך לטיהור זיקה של חלבון רקומביננטי אנושי, דש אנדונוקלאז 1 (FEN1), אשר תויג בתג 6X-היסטידין. הפרוטוקול כולל שימוש בשני עמודי יונים מתכתיים משותקים נפרדים לטיהור החלבון המתויג.

Abstract

אפיון פונקציונלי של חלבונים מחייב ביטוי וטיהור שלהם בכמויות משמעותיות עם טוהר גבוה לביצוע בדיקות ביוכימיות. מערכת Fast Protein Liquid Chromatography (FPLC) מאפשרת הפרדה ברזולוציה גבוהה של תערובות חלבונים מורכבות. על ידי התאמת פרמטרים שונים ב-FPLC, כגון בחירת מטריצת הטיהור המתאימה, ויסות טמפרטורת דגימת החלבון, וניהול קצב זרימת הדגימה על גבי המטריצה וקצב האלוטיון, ניתן להבטיח את יציבות החלבון ותפקודו. בפרוטוקול זה, נדגים את הרבגוניות של מערכת FPLC לטיהור חלבון 6X-His-tagged flap endonuclease 1 (FEN1), המיוצר בתרביות חיידקים. כדי לשפר את יעילות טיהור החלבון, נתמקד במספר שיקולים, כולל אריזה והכנה נכונה של הטורים, הזרקת דגימה באמצעות לולאת דגימה, קצב זרימת יישום הדגימה לעמודה ופרמטרים של אלוציית דגימה. לבסוף, הכרומטוגרמה תנותח כדי לזהות שברים המכילים תפוקות גבוהות של חלבון ושיקולים לאחסון תקין של חלבון רקומביננטי לטווח ארוך. אופטימיזציה של שיטות טיהור חלבונים חיונית לשיפור הדיוק והאמינות של ניתוח חלבונים.

Introduction

קיימות אסטרטגיות רבות להבנת הביולוגיה התאית. גישה אחת כוללת אסטרטגיה מלמעלה למטה, שבה מוטציות גנטיות מוכנסות לתוך גן, ואחריו הערכה של שינויים פנוטיפיים כתוצאה מכך אורגניזם מודל. לעומת זאת, גישה רדוקציוניסטית כרוכה בהבהרה ראשונית של מנגנונים מולקולריים ופונקציות אנזימטיות של חלבון מסוים, המלווה באפיון יחסי הגומלין שלו עם רכיבים תאיים אחרים. לאחר מכן, ההשפעה של חלבון זה על מסלול ביולוגי מוערך. למרות שלכל גישה מחקרית יתרונות ומגבלות מובנים, השגת הבנה מקיפה של מסלול ביולוגי מחייבת חקירות בין-תחומיות.

מכיוון שהדנ"א הוא התוכנית הגנטית של החיים, הבנת מנגנוני שכפול הדנ"א ותחזוקת הגנום היא תחום עניין פעיל כבר למעלה משבעה עשורים. מחקרים בתחום שכפול הדנ"א הניבו נתונים רבים לגבי המבנים והתפקודים הבודדים של חלבוני שכפול רבים. בירורים אלה, הכוללים היבטים מכניסטיים ומבחני פעילות ביוכימית, נעשו אפשריים באמצעות טיהור חלבונים אלה, המאפשרים את בחינתם המדוקדקת בסביבה חוץ-גופית . כתוצאה מכך, טיהור חלבונים מתגלה כטכניקה הכרחית ונפוצה ברוב מאמצי המחקר המיועדים לפענוח תובנות מכניסטיות לגבי שכפול DNA.

מאמר זה מציג מתודולוגיה לבידוד חלבון שכפול DNA המתויג עם 6X-היסטידין, אשר בא לידי ביטוי יתר בתאי חיידקים. החלבון המעניין הוא אנדונוקלאז דש אנושי 1 (FEN1), נוקלאז ספציפי למבנה הממלא תפקיד מרכזי בשכפול גדילים מפגרים והוא גם משתתף קריטי במסלולי תיקון DNA כמו תיקון כריתת בסיס (BER)^1,2,3. תפקידו העיקרי של FEN1 הוא להיבקע בבסיס מבנה דש שנעקר מ-5 אינץ', חומר ביניים שנוצר במהלך שכפול DNA או BER. בתחילה, מחקרים ביוכימיים שהעריכו את הפעילות האנזימטית של FEN1 הציעו מנגנון "מעקב", שבו הנוקלאז יזהה את הקצה החופשי של 5'-פוספט של מבנה הדש ולאחר מכן יעקוב לאורך הדש לבסיסו לפני שיבקע אותו⁴. מחקר מאוחר יותר גילה כי FEN1 פועל באמצעות מנגנון "השחלה", שבו הוא נקשר תחילה לבסיס הדש ולאחר מכן משחיל את קצה 5' החופשי דרך האתר הפעיל שלו לפני המחשוף (איור 1)⁵. היכולת לבטא יתר על המידה ולבודד FEN1 רקומביננטי אפשרה פריצות דרך אלה, ואפשרה לחוקרים להשתמש בו בחקירות ביוכימיות ומבניות.

כרומטוגרפיית זיקה היא שיטת הפרדה נפוצה לטיהור DNA. טכניקה זו משתמשת בזיקה ההפיכה של חלבוני מטרה כלפי ליגנדות המשותקות על שרף כדי ללכוד באופן ספציפי את החלבון המעניין. אחת הזיקות הביולוגיות הנפוצות ביותר היא האינטראקציה החזקה בין חומצת האמינו, היסטידין ויוני מתכת כגון ניקל וקובלט ולכן ניתן ללכוד אותם על גבי שרף הטעון ב- Ni²⁺ או Co²⁺.

רצף הדנ"א המקודד מחרוזת של 6-9 שאריות היסטידין (His) משולב לעתים קרובות במבנה הפלסמיד המקודד את החלבון המעניין (ב-N-terminus או ב-C-terminus), ומתייג את החלבון בתג 6X-His-tag או בתג poly-His. לאחר מכן ניתן לטהר בקלות את החלבון המתויג שלו על ידי כרומטוגרפיית זיקה מתכתית משותקת (IMAC), תת-סוג של כרומטוגרפיית זיקה שבה יוני מתכת על השרף לוכדים חלבונים עם תג זיקה, אשר מאוחר יותר ניתן לדלל באמצעות סוכני אלוציה מתאימים. יוני מתכת מעבר כגון Ni²⁺ ו- Co²⁺ יכולים להיות משותקים על מטריצות אגרוז או סיליקה ג'ל שמקורן בקבוצות N,N,N'-tris-(carboxymethyl)-ethylenediamine או nitrilotriacetic acid (NTA)⁶.

ליגנדות מתכת ידועות כעמידות בפני התפרקות על ידי גורמים פיזיקליים, כימיים וביולוגיים ומחזיקות ביתרון זה על פני סוגים אחרים של ליגנדות ^6,7. בנוסף, התג His-tag הוא תג קטן יחסית ואינו משפיע באופן משמעותי על מבנה החלבון או תפקוד⁷. עם זאת, במערכת ביטוי חיידקית, חלבונים רבים המבוטאים כרומוזומלית הם בעלי זיקה כלפי יוני מתכת ועשויים לטהר יחד עם חלבון המטרה. ניקל וקובלט הם יוני המתכת האופייניים המשמשים במטריצות IMAC. שרף Ni-NTA ושרף קובלט TALON משמשים בדרך כלל לטיהור חלבונים המסומנים על ידי His.

ני-נת"ע מול טאלון
יוני המתכת בהתאמה של Ni-NTA ו- TALON משותקים על השרף באמצעות ליגנדות NTA. Ni-NTA נחשב כבעל יכולת קשירה גבוהה יותר, הקושרת עד 100 מ"ג/מ"ל חלבון. זה יכול לגרום לתפוקת חלבון גבוהה יותר, עם אזהרה כי חלבונים מזהמים עשויים להיות מטוהרים במשותף. לעומת זאת, לשרף יש סגוליות קשירה גבוהה יותר כלפי חלבונים מתויגים וייתכן שהוא מסוגל לייצר שברים של טוהר גבוה יותר. במחקר זה, אנו שואפים להשוות את יעילות הטיהור של שני השרפים באמצעות מערכת הכרומטוגרפיה הנוזלית האוטומטית של חלבון מהיר, מערכת NGC (ראה טבלת חומרים).

מאגרים ותאימות
חוצצים נדרשים במהלך טיהור חלבון עבור ליזה של תאים, הכנת דגימה, שיווי משקל שרף, ו eluti של החלבון שנלכד מן השרף. מאגרי Tris, MOPS ו-HEPES עד לריכוז של 100 מילימטר הם המאגרים התואמים הידועים לשרף Ni-NTA. מאגרים כוללים לעתים קרובות חומרים מחזרים כדי למנוע חמצון של חלבון וצבירת חלבונים. עם זאת, מעל גבול הסף, חומרים מחזרים יכולים להפשיט את השרף של יוני מתכת. הריכוז המומלץ של חומרים מחזרים כגון בטא-מרקפטואתנול (BME) או דיתיותרייטול (DTT) הוא מתחת ל-1 מילימול עבור השרפים מבוססי הניקל והקובלט שהוזכרו לעיל.

המאגרים לטיהור hFEN1 הם מאגרי Tris המכילים NaCl, BME, פנילמתיל-סולפוניל פלואוריד (PMSF), EDTA וגליצרול. NaCl שומר על החלבון בצורה מסיסה ומשבש אינטראקציות מולקולריות כגון קשירת DNA. BME מפחית חלבונים מחומצנים ובכך מונע צבירת חלבונים. PMSF) הוא מעכב פרוטאז המונע פירוק בתיווך פרוטאז של חלבון המטרה. EDTA מבטל קטיונים דו-ערכיים מהדגימה, ומונע את גישתם לנוקלאזות ולפרוטאזות. גליצרול משפר את יציבות החלבון בצורה מימית. בנוסף, מאגר הליזה מכיל טבליות מעכבות פרוטאז מלאות כדי להבטיח הגנה מרבית של חלבון המטרה מפני פירוק פרוטאזות במהלך ליזה של התא. מאגרי שיווי המשקל והאלוציה מכילים אימידזול, כאשר מאגר האלוטיון מכיל כמויות גבוהות יותר עבור האימידזול כדי להזיז את החלבון הקשור מהשרף במהלך ההדבקה.

מערכת כרומטוגרפיה מהדור הבא (NGC)
מערכת כרומטוגרפיה אוטומטית זו בלחץ בינוני המיועדת לכרומטוגרפיה נוזלית של חלבונים בזרימה מהירה (FPLC) משתמשת בשתי משאבות כדי לשאוב בו זמנית שני מאגרים שונים ומסוגלת להזריק מגוון רחב של נפחי דגימה מ-250 מיקרוליטר עד 100 מ"ל. לולאת הדגימה (המכונה Dynaloop במערכת זו), מאפשרת להזריק נפחי דגימה גדולים יותר. ניתן להפעיל את המערכת באמצעות תוכנת Chromlab, המאפשרת יצירת שיטות מותאמות אישית, מניפולציה של ריצות טיהור וניתוח פסגות UV ושברים חלבוניים.

Protocol

1. הכנת מדגם

1. כדי לטהר FEN1 רקומביננטי, בטא את המבנה (pET-FCH-FEN1) בתאי BL21(DE3) כפי שתואר קודם לכן על ידי Ononye et ^al.8.
   1. חסן את מדיית LB (טבלה 1) בתרבית לילה של 1% והגדל את התאים בטמפרטורה של 37°C עד שה-OD יגיע ל-0.6.
   2. יש להשרות עם איזופרופיל-בטא-D-תיוגלאקטוזיד (IPTG) במינון 0.4M ולגדל את התרבית למשך 3 שעות נוספות.
   3. קצרו את התאים על ידי צנטריפוגה של התרבית ב 5,000 × גרם במשך 15 דקות ב 4 °C (75 °F). אחסנו את הגלולה במקפיא בטמפרטורה של -80°C.
   4. ביום הטיהור, הסר את גלולת התא מהמקפיא של -80 מעלות צלזיוס, אפשר לה להפשיר על קרח, והשהה מחדש את הגלולה ב -100 מ"ל של חיץ ליזיס (טבלה 1).
      הערה: התא ליזט תמיד צריך להיות ממוקם על קרח במהלך הטיפול כדי למנוע proteolysis. לאחר ההפשרה, יש להשלים את כל תהליך הטיהור באותו היום. אין לאחסן את התא ליזט במקרר למשך הלילה.
2. העבירו את המתלים לכוס של 250 מ"ל וסוניקו על קרח עם 30 שניות ON ו-30 שניות כיבוי באמפליטודה של 35% למשך 15 דקות.
   הערה: עיין בהגדרות היצרן כדי לזהות את המשרעת.
3. מעבירים את הדגימה הסוניק לצינור צנטריפוגה ומסתובבים ב-27,000 × גרם למשך 30 דקות ב-4°C כדי לקבל ליזט שקוף. מניחים את התא ליזט על קרח במקרר 4°C עד הזרקת דגימה.

2. הכנת עמודות זיקה

1. התאימו את העמודים (אחד לשרף Ni-NTA ואחד לשרף מבוסס קובלט) למעמד מהדק כך שהעמודים מוחזקים ישרים ככל האפשר, תוך הימנעות מהטיית העמודים. ודא שתחתית העמודות מחוברת לפקק והוסף 1-2 מ"ל של מאגר התחלה לתחתית כל עמודה כדי למנוע בועות אוויר במהלך אריזת העמודות.
2. נערו את בקבוקי השרף בעדינות עד להשעיה מלאה של השרף. פתח את החלק העליון של העמודים ושפך פנימה 10 מ"ל של כל slurry באופן רציף כדי למנוע הכללת בועות אוויר. שפכו את השרף על מרית מתכת או מוט זכוכית המוחזקים בשולי העמוד כדי למנוע בועות אוויר בעמוד.

3. אריזת עמודות באמצעות מתאם זרימה

1. נתק את הפקק מהעמוד וחבר את החלק התחתון לקצה אחד של הצינור. חבר את הקצה השני של הצינור ליציאת UV של מערכת FPLC.
2. ודאו שבית תומך המיטה נמשך לתוך גוף מתאם הזרימה והחליקו את גוף מתאם הזרימה אל החלק העליון של העמוד (איור 2A). כאשר תפס המצלמה נמצא במצב 1, הנמיכו את מתאם הזרימה והקפידו לא להכניס אותו למאגר (איור 2B). החליפו את תפס המצלמה למצב 2 (איור 2B). חבר את הצינור למערכת והתחל את זרימת חיץ ההתנעה למשך 1-2 דקות כדי להיפטר מהצינור ולמנוע בועות אוויר במהלך האריזה.
3. החזירו את התפס למצב 1 והורידו את מתאם הזרימה למאגר בתנועה חלקה אחת, תוך הימנעות מהכללת בועות אוויר, והחזירו את התפס למצב 2. הדבר מאפשר למאגר מסוים להיכנס למתאם הזרימה ומסיר את כל הבועות שנותרו.
4. העבירו את התפס למצב 3 והדקו את בסיס המצלמה ואת טבעת הנעילה (איור 2B).
5. התחל את זרימת המאגר במהירות של 10 מ"ל/דקה כדי לארוז את העמודה. המשיכו בשלב זה במשך 3 דקות או עד שהשרף ארוז היטב.

4. הכנת לולאת הדגימה של מערכת FPLC

1. חברו את הצינורית מראש לולאת הדגימה ללולאה E במערכת FPLC (איור 3).
2. חבר את הצינור מתחתית לולאת הדגימה לפסולת 2 במערכת FPLC.
3. הכנס קצה אחד של הצינור ליציאת העמודים של מערכת FPLC והנח את הקצה השני בבקבוק הפסולת.
4. הכנס את הצינור ממשאבה A במים מזוקקים כפולים מסוננים (ddH₂O).
5. לחץ פעמיים על הגדרות המשאבה באמצעות התוכנה (איור 4A, מסומן 2) ובחר לולאת הזרקת משאבת מערכת (איור 4C).
6. לחץ על הגדרות קצב הזרימה (איור 4A, מסומן 1) ושנה את קצב הזרימה ל- 10 מ"ל/דקה. הזן 0% בתיבה %B (איור 4B).
7. התחל את הזרימה כדי לשטוף את לולאת הדגימה במים, אשר ידחפו את אטם ההזזה כלפי מטה.
8. ברגע שחותם ההזזה מגיע לתחתית לולאת הדגימה, עצרו את הזרימה. החלף משאבה A מ- ddH₂O למאגר ההתנעה. חברו את הצינור מהחלק העליון של לולאת הדגימה לפסולת 2 וזה מלמטה ללולאה E. השאירו את הצינור מפתח העמוד בפסולת.
9. התחל את הזרימה במהירות של 10 מ"ל/דקה. ברגע שחותם ההזזה שנדחף כלפי מעלה על ידי מאגר ההתנעה הנכנס מגיע לחלק העליון של לולאת הדגימה, עצור את הזרימה. לולאת הדגימה מוכנה כעת להזרקת דגימה.

5. הזרקת דגימה

1. לחץ פעמיים על הגדרות המשאבה ובחר לולאת עומס ידנית (איור 4C).
2. שחררו את הברגת הצינור מלולאה E והניחו אותו במיכל הפסולת.
3. חבר את הצינור מפתח העמוד לצינורות שעל גבי מתאם הזרימה.
4. צייר את המדגם באמצעות מזרק 30 מ"ל; לאחר מכן, חבר את המזרק למתאם יציאת ההזרקה.
5. הבריגו את המזרק לתוך פתח ההזרקה והזריקו את הדגימה, כדי לוודא שהיא מוזרקת באופן גלוי לתוך לולאת הדגימה. אחסן 100 μL של הדגימה (תווית קלט ליזט) בצינור מיקרוצנטריפוגה ב -20 °C לניתוח SDS-PAGE
   הערה: בהתאם לנפח הדגימה הכולל, ייתכן שיידרשו 2-3 זריקות.
6. חבר את יציאת ההזרקה עם מכסה העמודות.
7. חבר את הצינור מתחתית לולאת הדגימה בחזרה ליציאת Loop E.
8. הניחו את הצינור ממשאבה B במאגר האלוטיון.

6. יצירת שיטות וניתוח באמצעות תוכנת FPLC המקושרת למערכת FPLC

1. נווט אל הכרטיסיה בית ובחר שיטה חדשה.
2. בחר בכרטיסיה הגדרות שיטה בעמודה הימנית, נווט לתפריט הנפתח סוג עמודה ובחר מותאם אישית (איור 5).
3. הזן את נפח העמודה (5 מ"ל).
4. הזן את קצב הזרימה הנדרש לריצה (1 מ"ל/דקה).
5. נווט אל בחירת יחידה ובחר CV (אמצעי אחסון של עמודות) כיחידת הבסיס של השיטה.
6. ודא שכניסה A מוגדרת למאגר A וכניסה B מוגדרת למאגר B (הגדרת ברירת המחדל).
7. בחר בכרטיסייה Method Outline בתפריט בצד שמאל. הוסף את שלבי הטיהור בסדר הבא: שיווי משקל, יישום לדוגמה, שטיפת עמודות והדבקה.
   1. תחת שיווי משקל, הגדר את נפח שיווי המשקל ל- 10 CV. ודא שהגדרת המאגר נשמרת על 0% B.
   2. תחת כרטיסיית היישום לדוגמה , הגדר את אמצעי האחסון לדוגמה על-ידי צפייה בלולאה לדוגמה. מיקום חותם ההזזה מציין את נפח הדגימה.
   3. תחת שטיפת עמודות, הגדר את נפח הכביסה ל- 5 CV. השבת את אוסף השברים עבור שלב זה; אספו את הכביסה כולה בכוס במהלך הריצה, במקום לאסוף כשברים.
   4. לצורך הדבקה, הגדר את עוצמת הקול של מעבר הצבע ל- 14 CV החל מ - 0% Buffer B ל- 100% Buffer B.
8. שמור את השיטה והתחל את הריצה.
9. ודא שאספן השברים מתחיל במיקום של השבר הראשון.
10. הזן את שם ההפעלה ולחץ על התחל.
11. במהלך שלב שיווי המשקל, עקוב אחר עקומת UV בזמן אמת. ודא שכל החיבורים מאובטחים ללא דליפה; אשר מעגל שלם על ידי חיפוש החיץ הזורם לתוך מיכל הפסולת. אם עקומת ה-UV לא התייצבה בדקות האחרונות של שיווי המשקל, האריכו את שלב שיווי המשקל עד להשגת ייצוב (איור 6).
12. בזמן יישום הדגימה, החלף את הצינורות הנכנסים למיכל הפסולת לכד נקי. במהלך שלב זה, אספו את החלבונים הלא קשורים הזורמים החוצה מצינורות הפסולת כזרימה (תווית כ-FT).
13. חפשו עלייה חדה בעקומת ה-UV שככל הנראה מגיעה לקריאה המקסימלית האפשרית של 3,000 maU (איור 6).
    הערה: עקומה טיפוסית מגיעה לרמות של 3,000 maU לאורך רוב שלב היישום לדוגמה.
14. במהלך שטיפת עמודות, כאשר שאריות חלבונים לא קשורים נשטפים ורק חלבונים קשורים נשארים על השרף, חפשו ירידה חדה בעקומת העל-סגול (איור 6). אם עקומת ה- UV לא ירדה בסוף שלב השטיפה, האריכו את השלב על ידי לחיצה על החזק את השלב עד שה- UV ירד מספיק. בתחילת שלב זה, העבר את צינורות הפסולת מכוס FT לכוס נקייה אחרת שכותרתה Wash.
15. כאשר שלב האלוציה מתחיל, ודא שאוסף השברים נע למקומו והתחל לאסוף שברים. דמיינו את אלוציית החלבון על-ידי חיפוש פסגות בעקומת העל-סגול (איור 6).
16. לאחר השלמת ההפעלה, נווט אל הכרטיסיה בית ובחר פתח הפעלה. פתח את הריצה כדי להציג את הכרומטוגרמה ובחר שילוב שיא בתפריט העליון כדי לסמן את הפסגות שהתקבלו במהלך הריצה.
17. בחר בכרטיסיה שברים כדי להציג באופן חזותי את השברים המכילים חלבון מלוטש.

7. ניתוח דפי SDS

1. יש לערבב 15 μL מכל חלק המכיל חלבון עם 5 μL של מאגר העמסת דגימות SDS (טבלה 1). חממו את הדגימות בטמפרטורה של 95°C למשך 5 דקות.
2. טען דגימות לתוך ג'ל precast ולרוץ על 160 V במשך 45 דקות יחד עם סמן חלבון prestained.
3. הכתימו את הג'לים בתמיסת צביעה כחולה מבריקה של קומאסי למשך 30 דקות (טבלה 1).
4. לשטוף את הג'ל ב ddH₂O (לחזור על 3x).
5. יש להכתים את הג'ל בתמיסת עיכוב למשך שעה אחת (טבלה 1).
6. שימו לב להקות חלבון; לזהות FEN1 בסימן 42 kDa .
7. שברי בריכה המכילים FEN1 ומרכזים את הבריכה באמצעות מסנן צנטריפוגלי של 10 kDa . Aliquot ולאחסן במקפיא -80 ° C.

תוצאות

BL21 (DE3) תאי ליזטים המבטאים hFEN1 הועברו דרך שרפים שווי משקל של Ni-NTA ו-TALON. שרף Ni-NTA טעון ביוני Ni²⁺ ובעל יכולת קשירה גבוהה. התוצאות מראות כי שרף Ni-NTA מניב כמות גבוהה יותר של FEN1 בהשוואה לשרף TALON (איור 7). שרף Ni-NTA ידוע גם כלא נקשר באופן ספציפי לחלבונים אחרים המבוטא?...

Discussion

כרומטוגרפיית זיקה היא טכניקה נפוצה לטיהור חלבונים קושרי DNA. IMAC (ראשי תיבות של Immobilized Metal Affinity Chromatography) היא סוג מסוים של כרומטוגרפיית זיקה המשתמשת ביוני מתכת כדי ללכוד את שאריות ההיסטידין של רצף פפטידי. זו הסיבה שהתג "6X-His tag" או "poly-His tag" מוצמד ל-N-terminus או ל-C-terminus של חלבונים שיש ...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
4x Laemmli sample buffer	BioRad	1610747
Acetic acid	Merck	UN2789
Beta-mercaptoethanol (BME)	Sigma	M-6250
Chromlab software version 6.1.27.0	BioRad		operates the NGC system
Complete MINI protease inhibitor tablet	Roche	11836153001
Coomassie Brilliant Blue R	Sigma	B0149
Dithiothreitol (DTT)	Dot Scientific	DSD11000
Econo-Column glass	BioRad	7371512
Ethylene diamine tetraacetic acid (EDTA)	Dot Scientific	DSE57020
Flow adaptor	BioRad	7380014
Glycerol	Dot Scientific	DSG22020
Imidazole	Dot Scientific	DSI52000
Methanol	Fisher Scientific	A412
Mini PROTEAN TGX gels	BioRad	4561084
NGC Chromatography System	BioRad		automated liquid chromatography system
Ni-NTA Agarose	Qiagen	1018244
Phenyl-methyl-sulfonyl fluoride	Dot Scientific	DSP20270
PreScission Plus Protein Dual Color Standards	BioRad	1610374
Sodium chloride	Dot Scientific	DSS23020
TALON metal affinity resin	Takara	635502
Tris Base		DST60040