Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

מאמר זה מספק תיאור מפורט של מבחן המזון הקבור וניסוי אפליית ריח חברתי כדי להעריך את ההשפעות של חשיפה למזהמים סביבתיים בשאיפה על תפקוד חוש הריח בעכברים.

Abstract

פגיעה בחוש הריח היא בעיה משמעותית בבריאות הציבור ומנבאת באופן עצמאי את הסיכון למחלות נוירודגנרטיביות. חשיפה למזהמים סביבתיים בשאיפה עלולה לפגוע בחוש הריח; לפיכך, יש צורך דחוף בשיטות להערכת ההשפעות של חשיפה למזהמים סביבתיים בשאיפה על חוש הריח. עכברים הם מודלים אידיאליים לניסויי ריח בגלל מערכת חוש הריח המפותחת שלהם והמאפיינים ההתנהגותיים שלהם. כדי להעריך את ההשפעות של חשיפה למזהמים סביבתיים בשאיפה על תפקוד חוש הריח בעכברים, מסופק מבחן מזון קבור מפורט וניסוי אפליית ריח חברתי, כולל הכנת הניסוי, הבחירה וההקמה של מתקני ניסוי, תהליך הבדיקה ומדדי הזמן. בינתיים, ציוד למדידת זמן, פרטים מבצעיים וסביבת הניסוי נדונים כדי להבטיח את הצלחת הניסוי. אבץ גופרתי משמש כטיפול כדי להדגים את ההיתכנות של הגישה הניסויית. הפרוטוקול מספק תהליך תפעולי פשוט וברור להערכת ההשפעות של מזהמים סביבתיים בשאיפה על תפקוד חוש הריח בעכברים.

Introduction

פגיעה בחוש הריח התגלתה כדאגה ראויה לציון לבריאות הציבור, והיא קשורה באופן עצמאי לסיכון מוגבר למחלות נוירודגנרטיביות. מצב זה יכול להשפיע לרעה על הרווחה הכללית, לתרום להתפתחות תסמיני דיכאון, ולגרום לירידה באיכות החיים. השפעתה נצפית באופן בולט בשינוי תפיסת מזון, הפרעה בתקשורת חברתית ורגשות שליליים מוגברים1. גורמים שונים, כולל מחלת סינונסל, זיהום בדרכי הנשימה העליונות ופגיעה מוחית טראומטית, נחשבו כתורמים לפגיעה בחוש הריח בבני אדם2. יש לציין כי מזהמים סביבתיים נשאפים כגון PM2.5, המוערכים בטווח שבין 2% ל -16%, נכנסים לגוף דרך אוויר השראה, חוצים את חלל האף, ומגיעים לאזורים ספציפיים ייעודיים לחוש הריח שם הם שוקעים 3,4,5,6,7. ממצאים אחרונים מצביעים על כך שמזהמים סביבתיים הניתנים לשאיפה, כולל PM2.5 ואמוניה, אכן יכולים לפגוע בנוירונים חושי הריח 8,9,10. עם זאת, נדרש אימות נוסף כדי לוודא אם נזק כזה מוביל ישירות לתפקוד לקוי של חוש הריח. לפיכך, יש חשיבות מיוחדת להערכה מדוקדקת של ההשפעות של מזהמים סביבתיים הניתנים לשאיפה על תפקוד חוש הריח.

כיום, מעבדות מחקר רבות משתמשות בעכברים כמודל חלופי לבעלי חוליות לניסויים התנהגותיים שמטרתם להבין שינויים בתפקוד חוש הריח 11,12,13,14. עכברים נבחרו כמערכת המודל המועדפת לחקר תקשורת כימית של בעלי חוליות, והיא מפגינה רגישות יוצאת דופן לחוש הריח החיונית לליקוט מזון ולתקשורת חברתית15. יתר על כן, מערך הכלים המתפתח ללא הרף לתצפית והשפעה על התנהגות עכברים הפך מין זה למושך במיוחד למחקר על תפקוד חוש הריח16.

במחקר זה השתמשנו במבחן המזון הקבור ובניסוי אפליית הריח החברתי כדי להעריך פגיעה בחוש הריח במודל עכברי שנחשף למזהמים סביבתיים הניתנים לשאיפה. כדי לשפר את דיוק ההערכה, בחרנו בשיטה המייצגת ביותר להערכת תפקוד חוש הריח. שיפרנו שיטה זו באופן שיטתי כדי להבטיח פשטות ובהירות, מה שמאפשר לנו לאמוד ביעילות את מידת תפקוד לקוי של חוש הריח הנגרם על ידי מזהמים סביבתיים הניתנים לשאיפה.

Protocol

השתמשנו בעכברי C57BL/6J זכרים (גיל: 6-8 שבועות; משקל: 20-22 גרם) לכל מבחני ההתנהגות. העכברים היו נתונים לתנאים יציבים (כלומר, טמפרטורה, 23 ± 1 מעלות צלזיוס; לחות, 55% ± 5%, ומחזור אור-חושך של 12/12 שעות עם אורות דולקים בשעה 7:00). כל מבחני ההתנהגות בוצעו בין השעות 10:00-17:00. כל הניסויים בבעלי חיים אושרו על ידי ועדת האתיקה של הוועדה המקצועית לניסויים בבעלי חיים של אוניברסיטת צ'ינגדאו. לאחר תקופת הסתגלות של שבוע, כל העכברים נחשפו למזהמים סביבתיים הניתנים לשאיפה.

1. חשיפה למזהמים

  1. מתן תוך אפי על ידי החדרה
    1. המסת מזהמים סביבתיים בשאיפה בתמיסת מלח 0.9%. יש להשתמש פעם אחת בתמיסת אבץ גופרתי 5%, אשר הוכחה כגורמת לתפקוד לקוי של חוש הריח17. עבור עכברי ביקורת, יש לתת 0.9% תמיסת מלח רגילה.
    2. להרדים את העכבר על ידי הזרקה intraperitoneal של 1% נתרן pentobarbital18 ולהעריך את עומק ההרדמה באמצעות רפלקס צביטת הבוהן. יש למרוח משחה וטרינרית על עיני העכבר כדי למנוע יובש. מקם את העכבר על גבו על משטח נוטה, כשהראש פונה כלפי מטה.
    3. באמצעות אקדח pipetting, לנהל 10 μL של הפתרון בנחיר אחד של העכבר, המאפשר באופן טבעי לשאוף את הפתרון לתוך חלל האף.
    4. כדי להבטיח את רווחתו של העכבר ולמנוע אי נוחות פוטנציאלית, חזור על השאיפה עבור הנחיר השני לאחר מרווח של 10 דקות.
    5. ב 3 ימים לאחר מתן intranasal על ידי החדרה בעכברים, לבצע את בדיקת המזון הקבור.

2. בדיקת מזון קבור

  1. בצע מניעת מזון ב 18-24 שעות לפני הבדיקה על ידי הסרת כל כדורי צ'או מן הופר המזון של הכלוב הביתי. החליפו את חומרי המיטה לעכברים. אין להוציא את בקבוק המים.
  2. סדר את שולחן הניתוחים כמתואר להלן.
    1. שעה לפני תחילת הבדיקה יש לקחת את הכלוב המכיל את העכברים לחדר ניתוח למנוחה.
    2. סדרו את חדר הניתוח בתקופה זו. השתמשו וסמנו כלובי עכברים שקופים בתקן PVC כ-A מכיוון שהם יוצרים סביבה מוכרת. השתמש וסמן את כלוב הבדיקה כ- B, שהוא כלוב סנאי שקוף בתקן PVC. סמן את הכלוב הנפוץ ששימש להצבת העכברים לאחר הניסוי ככלוב C.
    3. כסו את הכלובים A ו-B ב-3 ס"מ של חומר מצע ומדדו אותם בעזרת סרגל. סדרו את הכלובים זה לצד זה, במרחק של 0.5 מ' בין כל כלוב (איור 1).
    4. הגדירו את אזור הניסוי כאזור ברדיוס של 2 מ', כאשר המרכז הוא מרכז הכלובים. הגדירו את השטח שמחוץ לטווח של 2 מ' כאזור התצפית.
    5. יש להרחיק כלוב C וכלובים המכילים עכברים שלא נבדקו מאזור הניסוי ככל האפשר.
  3. רשום את הזמן למציאת מזון כמתואר להלן.
    1. בחרו מיקום אקראי בכלוב B, קברו את המזון 1 ס"מ מתחת לפני השטח של המצעים והחליקו את פני המצעים.
    2. הכניסו את העכבר לכלוב A למשך 4 דקות. מעבירים את העכברים לכלוב B בסוף התזמון, מפעילים את מכשיר הווידאו וחוזרים לאזור התצפית.
    3. כאשר העכבר מרים את גוש המזון עם כפו הקדמית, עצור את הקלטת הווידאו. במקרים מסוימים, ניתן לראות עכברים אוכלים כשראשם כפוף מעל האוכל. התנהגות זו מעידה גם על הצלחת הניסוי, גם אם העכבר אינו מחזיק את המזון בכפו הקדמית.
    4. רשום נתונים. רשמו את הזמן מרגע המגע עם המחצלת בתחתית כלוב B ועד למציאת מזון לכל עכבר. אם העכברים לא מוצאים מזון לאחר 4 דקות, רשום את זמן החיפוש כזמן עיכוב של 240 שניות.
    5. שים את העכבר בכלוב C לאחר הבדיקה.
    6. מוציאים את המזון מכלוב B ומכניסים אותו לשקית אטומה. יש להחליף את המזון בכלוב B ולבדוק את העכבר הבא לאחר החלפת חומר המצעים, כמתואר להלן.
      1. עבור עכברים השוכנים באותו כלוב, בדקו עם אותו סט של חומרי מיטה בכלוב B. עבור עכברים בכלובים שונים, נקו את הכלוב באלכוהול והחליפו את חומרי המיטה.
    7. הוסיפו מזון ומים לעכברים לאחר הניסוי. בצע את ניסוי אפליית הריח החברתי יום אחד לאחר מכן.
      הערה: יש לעטות מסכות לאורך כל התהליך, ויש להחליף כפפות שקופות לאחר שכל עכבר מסיים את הניסוי כדי למנוע הצלבת ריח ככל האפשר. שמור על המשרעת של התנועות קטנה ככל האפשר כדי למנוע לחץ עכבר.

3. ניסוי אפליית ריח חברתי

  1. איסוף שתן
    1. בנפרד לאסוף את השתן של עכברים זכרים בוגרים מינית ועכברים נקבות aliquot לתוך צינורות בכמויות שוות19. ארוז 2 מ"ל צינורות microcentrifuge עם 300 μL של שתן בכל צינור.
    2. אחסן את הדגימות ב -80 ° C עד לשימוש. נערו את הצינורות כדי לפזר את הדגימה באופן שווה לאחר ההפשרה. אין להפשיר ולהקפיא את הדגימה שוב ושוב.
  2. סדר את שולחן הניתוחים כמתואר להלן.
    1. שעה לפני תחילת הבדיקה יש לקחת את הכלוב המכיל את העכברים לחדר ניתוח למנוחה.
    2. סידור חדר הניתוח בתקופה זו כמתואר בשלבים 2.2.2-2.2.5.
  3. רשום את הזמן למציאת שתן כמתואר להלן.
    1. צור חריץ עם סרט סביב כל אחד משני הצדדים הרחבים של כלוב B גדול מספיק כדי להחזיק את צינור מיקרוצנטריפוגה המכיל 300 μL של שתן זכר ונקבה. הניחו את הצינורות והשאירו את שני כיסויי הצינור סגורים לעת עתה.
    2. הכניסו את העכבר לכלוב A וקבעו ספירה לאחור למשך 4 דקות. פתח את שני הצינורות של כלוב B בסוף התזמון.
    3. מעבירים את העכבר למיקום האמצעי של כלוב B, באותו מרחק משני הצינורות, ואז מפעילים את ציוד הקלטת הווידאו ונסוגו בעדינות ובאיטיות לאזור התצפית.
    4. כאשר העכבר מרחרח את דופן הצינור / הפה או אפילו בתוך הצינור, הצינור מריח בהצלחה. בשלב זה, לחץ על שעון העצר ורשום את השעה כזמן הריח של הצינור (M s), ולאחר מכן המשך להקליט את זמן המגורים (X s) עד שהעכבר יתרחק מהשפופרת.
    5. המשיכו לתזמן את הזמן ולרחרח את הצינור השני. כאשר העכבר מרחרח את דופן הצינור / הפה או אפילו בתוך הצינור, הצינור מריח בהצלחה. לחץ על הסטופר ורשום את הזמן שלקח להריח את הצינור השני (N s), ולאחר מכן המשך לתעד את זמן השהייה (Y s) עד שהעכבר מתרחק מהשפופרת.
    6. העבירו את העכבר לכלוב C בסוף הניסוי.
    7. החליפו את צינורות השתן ואת חומר המצע של כלוב B לאחר כל בדיקת עכבר. שים את שתן החולדה המשומש בשקית נקייה בהתאם למין.
    8. החליפו כפפות ובדקו את העכבר הבא כמתואר לעיל.
  4. בצע את הניסוי במעבדה ללא ריח ברור. הימנעו ממוצרים אישיים הפולטים ריחות חזקים. יש ללבוש כפפות ומסכות לאורך כל ההליך כדי למנוע חציית ריח ככל האפשר. שמור על המשרעת של התנועות קטנה ככל האפשר כדי למנוע לחץ עכבר.

תוצאות

מזהמים סביבתיים הניתנים לשאיפה פוגעים בתפקוד חוש הריח בעכברים. אבץ אטמוספרי הנפלט ממשרפות וכלי רכב מנועי הוכח כמזהם בשאיפה שיכול לגרום לדלקת ריאות אלרגית20. אבץ גופרתי נחשב לאחת התרכובות האופייניות הגורמות לתפקוד לקוי של חוש הריח21. לכן, אנו משתמשים באבץ גופרתי כ?...

Discussion

מאמר זה מציג שני פרוטוקולים בסיסיים שנועדו להערכה מהירה של ליקוי חוש הריח בעכברים. מזהמים סביבתיים מגוונים הניתנים לשאיפה גורמים לרמות ברורות של תפקוד לקוי של חוש הריח בעכברים. מבחן המזון הקבור משמש להערכת היכולת לזהות ריחות נדיפים, ואילו ניסוי אפליית ריחות חברתיים מעריך את יכולתו של בעל...

Disclosures

המחברים מצהירים כי אין ניגודי עניינים.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה כספית על ידי הקרן הלאומית למדעי הטבע של סין (82204088, 82273669) והקרן למדעי הטבע של מחוז שאנדונג, סין (ZR2021QH209).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
0.5-10 μL  adjustable micropipetteEppendorf, Germany3123000225Intranasal instillation
0.9% saline solutionSolarbio7647-14-5Dissolve pollutants
Anhydrous zinc sulfateMacklin7733-02-0Expose mice
Centrifuge tube (2 mL)Biosharp IncorporatedBS-20-MPlace urine
Electronic balanceChangzhou Ohaus Co.EX125DZHWeight anesthetics and pollutants
GraphPad PrismGraphPad Software8.0.1statistic analysis
Handheld Dust detectorTSI IncorporatedDuatTrak figure-materials-9888532Inhalation-exposed mice
Video recording equipmentApple Inc.iPhone 6s PlusThe activity time of mice was recorded
Vortex mixerHaimen Kylin-Bell Lab Instruments Co.Vortex-5 Mix solution

References

  1. Schäfer, L., Schriever, V. A., Croy, I. Human olfactory dysfunction: causes and consequences. Cell Tissue Res. 383 (1), 569-579 (2021).
  2. Keller, A., Malaspina, D. Hidden consequences of olfactory dysfunction: a patient report series. BMC Ear Nose Throat Disord. 13 (1), 8 (2013).
  3. Schroeter, J. D., et al. Application of physiological computational fluid dynamics models to predict interspecies nasal dosimetry of inhaled acrolein. Inhal Toxicol. 20 (3), 227-243 (2008).
  4. Schroeter, J. D., Garcia, G. J., Kimbell, J. S. A computational fluid dynamics approach to assess interhuman variability in hydrogen sulfide nasal dosimetry. Inhal Toxicol. 22 (4), 277-286 (2010).
  5. Keyhani, K., Scherer, P. W., Mozell, M. M. Numerical simulation of airflow in the human nasal cavity. J Biomech Eng. 117 (4), 429-441 (1995).
  6. Hahn, I., Scherer, P. W., Mozell, M. M. Velocity profiles measured for airflow through a large-scale model of the human nasal cavity. J Appl Physiol. 75 (5), 2273-2287 (1993).
  7. Zhang, Z., et al. Exposure to particulate matter air pollution and Anosmia. JAMA Netw Open. 4 (5), e2111606 (2021).
  8. Ekström, I. A., et al. Environmental air pollution and olfactory decline in aging. Environ Health Perspect. 130 (2), 27005 (2022).
  9. Adams, D. R., et al. Nitrogen dioxide pollution exposure is associated with olfactory dysfunction in older U.S. adults. Int Forum Allergy Rhinol. 6 (12), 1245-1252 (2016).
  10. Prah, J. D., Benignus, V. A. Decrements in olfactory sensitivity due to ozone exposure. Percept Mot Skills. 48 (1), 317-318 (1979).
  11. Shi, Z., et al. Chronic exposure to environmental pollutant ammonia causes damage to the olfactory system and behavioral abnormalities in mice. Environ Sci Technol. 57 (41), 15412-15421 (2023).
  12. Hernández-Soto, R., et al. Chronic intermittent hypoxia alters main olfactory bulb activity and olfaction. Exp Neurol. 340, 113653 (2021).
  13. Islam, S., et al. Odor preference and olfactory memory are impaired in Olfaxin-deficient mice. Brain Res. 1688, 81-90 (2018).
  14. Wang, H., et al. Inducible and conditional activation of ERK5 MAP kinase rescues mice from cadmium-induced olfactory memory deficits. Neurotoxicology. 81, 127-136 (2020).
  15. Chamero, P., Leinders-Zufall, T., Zufall, F. From genes to social communication: molecular sensing by the vomeronasal organ. Trends Neurosci. 35 (10), 597-606 (2012).
  16. Mohrhardt, J., et al. Signal detection and coding in the accessory olfactory system. Chem Senses. 43 (9), 667-695 (2018).
  17. Liu, X., et al. Type 3 adenylyl cyclase in the MOE is involved in learning and memory in mice. Behav Brain Res. 383, 112533 (2020).
  18. Li, X., et al. Polyhexamethylene guanidine aerosol triggers pulmonary fibrosis concomitant with elevated surface tension via inhibiting pulmonary surfactant. J Hazard Mater. 420, 126642 (2021).
  19. Yang, M., Crawley, J. N. Simple behavioral assessment of mouse olfaction. Curr Protoc Neurosci. , (2009).
  20. Huang, K. L., et al. Zinc oxide nanoparticles induce eosinophilic airway inflammation in mice. J Hazard Mater. 297, 304-312 (2015).
  21. Burd, G. D. Morphological study of the effects of intranasal zinc sulfate irrigation on the mouse olfactory epithelium and olfactory bulb. Microsc Res Tech. 24 (3), 195-213 (1993).
  22. Zou, J., et al. Methods to measure olfactory behavior in mice. Curr Protoc Toxicol. 63, 1-21 (2015).
  23. Ryalls, J. M. W., et al. Anthropogenic air pollutants reduce insect-mediated pollination services. Environ Pollut. 297, 118847 (2022).
  24. Schiffman, S. S. Livestock odors: implications for human health and well-being. J Anim Sci. 76 (5), 1343-1355 (1998).
  25. Albrechet-Souza, L., Gilpin, N. W. The predator odor avoidance model of post-traumatic stress disorder in rats. Behav Pharmacol. 30, 105-114 (2019).
  26. Davies, D. A., et al. Inactivation of medial prefrontal cortex or acute stress impairs odor span in rats. Learn Mem. 20 (12), 665-669 (2013).
  27. Landers, M. S., Sullivan, R. M. The development and neurobiology of infant attachment and fear. Dev Neurosci. 34 (2-3), 101-114 (2012).
  28. Drobyshevsky, A., et al. Antenatal insults modify newborn olfactory function by nitric oxide produced from neuronal nitric oxide synthase. Exp Neurol. 237 (2), 427-434 (2012).
  29. Arbuckle, E. P., et al. Testing for odor discrimination and habituation in mice. J Vis Exp. (99), e52615 (2015).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

JoVE211

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved