Name: dissection and culture of mouse embryonic kidney
Uploaded: 2017-05-17T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 30 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Dissection and Culture of Mouse Embryonic Kidney at JoVE.com

המחברים מודים לייף Oxburgh ו דרק אדמס על שיתוף נדיב את הידע שלהם, לייף Oxburgh עבור הערות מועילות על כתב היד, ו סטפן וולפל ו Ulrike Müller על התמיכה הטכנית שלהם Saskia Schmitteckert, יוליה Gobbert, סאשה Weyer ויולה מאייר לעזרה מַעבָּדָה. עבודה זו נתמכה על ידי פיתוח, החברה של ביולוגים (כדי CP).

עכברים נשמרו על פי תקנות שוודית החקיקה של האיחוד האירופי (2010/63 / האיחוד האירופי). כל ההליכים בוצעו בהתאם להנחיות ועדת האתיקה השבדית (מתירים C79 / 9, C248 / 11 ו- C135 / 14). ההליכים באוניברסיטת היידלברג בהשתתפות נושאי בעלי חיים אושרו על ידי קארלסרוהה Regierungspräsidium וקציני רווחת בעלי חיים באוניברסיטת היידלברג. 1. הכנת חומרים כימיים וחומרים לתרבות הערה: השתמש ברדס זרימה למינרית כדי למזער זיהום. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביום של דיסקציה, מראש אשכול האדם Fc לבד או רקומביננטי chimeric חלבון אפרין התמזגו כדי Fc האדם על ידי ערבוב זה עם נוגדנים Fc אנטי אנושי נגד יחס טוחנת של 1: 5 ב פוספט סטרילי שנאגרו מלוחים (PBS). לדגור על 1 שעה ב 37 ° C 5 . </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכינו את המדיום התרבות על ידי השלמת Dulbecco השתנה של הנשר בינוני: מזיןתערובת F-12 (DMEM / F12) עם 1% פניצילין / סטרפטומיצין (v / v), 1% גלוטמין (v / v), 1% אינסולין טרנספרין סלניום (v / v), 50 מיקרוגרם / Transrin, ו 1.5 מיקרוגרם / mL amphotericin. הערה: 10 מ&quot;ל של המדיום מספיק עבור 16 עוברי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף אשכולות רקומביננטי פתרון אפרין בריכוז סופי של 20 מיקרוגרם / מ&quot;ל ​​למדיום התרבות. השתמש Fc אנושי אשכולות כמו שליטה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכינו צלחות תרבות על ידי הוספת 500 μL של המדיום תרבות היטב כל של צלחת סטרילי, ללא ציפוי, צלחת שטוחה 4-היטב קלקר סטרילי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעזרת מלקחיים סטרילית, בזהירות במקום אחד מסנן קרום פוליקרבונט עם גודל הנקבוביות של 5 מיקרומטר לכל היטב על גבי המדיום. מעבירים את הצלחת מוכנה האינקובטור (37 ° C / 5% CO 2 ). ודא כי המסנן נשאר יבש על פני השטח העליון צף. הערה: מסנן אחד מספיק עבור שתי anlagen כליות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות סכין גילוח, לחתוך כ -30 טיפים פיפטה (נפח: 100 μL) approximatelY 1 מ&quot;מ מהקצה כדי לגרום לפתיחה רחבה יותר. מניחים את הטיפים בחזרה לתוך מתלה פיפטה קצה. </li></ol> 2. ניסוי של יסודות Metanephric ב E11.5 <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להקריב עכבר מתוזמן בהריון E11.5 על ידי נקע צוואר הרחם (או באמצעות שיטה שאושרה על ידי ועדת האתיקה המקומית). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הרחם ואת העוברים, כפי שתואר על ידי Brown et al 6 . מנקודה זו קדימה, לעבוד תחת מיקרוסקופ לנתיחה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות מס &#39;5 מלקחיים שען, לחתוך את העובר ישירות מתחת הקדמי. השתמש בצלחת פטרי טרי כל העובר. הסר את הרגליים ואת זנב העובר. כדי לעשות זאת, לתפוס את הרקמה כדי להסיר עם זוג אחד של מלקחיים מס &#39;5 שען להשתמש בעצות של זוג השני לחתוך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להסיר את מסת האיבר הגחון, השתמש בעצות של מלקחיים כדי לפתוח את דופן הגוף של העובר בכיוון מקורי אל הזנב. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> גזור באופן שטחי, במקביל tהוא אבי העורקים הגבי. השתמש אבי העורקים הגבי, ולכן גלוי לעין עבור כיוון. בזהירות להפריד את החלק הגחון של קיר הגוף מהחלק הגבי באמצעות קצות מלקחיים סגורים להעיף את העובר מעל. חותכים את דופן הגוף לרוחב בכיוון מקורי אל הזנב באמצעות אבי העורקים הגבי עבור אוריינטציה, כמו בצד הקודם. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר קיר הגוף הגחון הופרד מהגוף הגבי, לתפוס אותו עם זוג אחד של מלקחיים בזהירות למשוך כדי להסיר אותו, יחד עם מסת האיבר. הערה: metanphric anlagen בדרך כלל להישאר מחובר לקיר הגוף הגבי. הם אליפסה, ~ 200 מיקרומטר מבנים ארוכים הממוקמים ברמה של הגפיים האחוריות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החזק את דופן הגוף הגב עם זוג אחד של מלקחיים, עם הצד הגחון פונה כלפי מעלה. באמצעות זוג אחר של מלקחיים, לתפוס את אבי העורקים הגבי על קצה מקורי שלה בזהירות לקלף את אבי העורקים הגבי מן הקיר הגוף הגבי. הערה: שתי הכליות metanphric בדרך כלל להישאר מצורףאד לאבי העורקים הגבי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות זוג אחד של מלקחיים, לחתוך rostrally כדי anlagen הכליות כדי להסיר את אבי העורקים. לאחר מכן, בזהירות להפריד את שתי הכליות anlagen באמצעות קצות המלקחיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בזהירות לקלף את רקמות לא רצויות מן anlagen הכליות באמצעות קצות המלקחיים. הקפד לא לפגוע מזנכימה, כמו נזק יכול לגרום לצמיחה גרועה והדרה של explant מניתוח נוסף. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את הכליה anlagen בנפרד באמצעות פיפטה microliter ואת קצה פתוח פיפטה פתוח μL 10 של PBS כדי מסנן קרום פוליקרבונט בצלחת 4-היטב. הערה: בשל מתח הפנים, האקספלנט יכוסה בשכבה דקה של מדיום. מסנן אחד מספיק עבור שתי anlagen כליות. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים כל אחד משני anlagen הכליות במרכז של כל מחצית בהתאמה של המסנן. מעבירים את הצלחת בחזרה לחממה ב 37 ° C / 5% CO 2 . להשאיר את הצלחת בחממה עד רוד metanphricIments מן העובר הבא מוכנים להיות ממוקם על המסנן. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלבים 2.3-2.9.1 עבור כל עוברי. הערה: עם קצת תרגול, הליך לנתיחה ייקח בערך 5 דקות לכל עובר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה anlagen הכליות במשך 3 ימים ב 37 ° C / 5% CO 2 . </li></ol> 3. הכנה של ריאגנטים עבור קיבוע מכתים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להכין paraformaldehyde 4% (PFA) ב PBS ללא סידן ומגנזיום (w / V), להמיס את PFA ב 60 מעלות צלזיוס ב PBS, ערבוב מתמיד. מגניב לטמפרטורת החדר ולהשתמש במסנן נייר כדי להסיר את החלקיקים הנותרים. Aliquot ולשמור על 4 מעלות צלזיוס לשימוש מיידי או להקפיא אחסון לטווח ארוך. זהירות: PFA הוא רעיל. ללבוש את הציוד מגן אישי המפורטים בתקני הבטיחות המקומי ולעבוד במנדף קטר. בטל פסולת בעקבות הנחיות מוסדיות ושימוש במיכלי פסולת ייעודיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להכין פתרון permeabilization, לדלל טריטון X-100ב- PBS ללא סידן ומגנזיום ל- 0.3% (v / v). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להכין פתרון חסימה, הוסף 5% (v / v) בסרום עז ו 0.1% Triton X-100 ל- PBS ללא סידן ומגנזיום. הוסף אזיד נתרן לריכוז סופי של 0.02% (w / v). חנות ב 4 ° C. זהירות: סודיום אזיד הוא רעיל. טיפול בנזיד נתרן בהתאם לתקנות הבטיחות המקומיות והגנת הסביבה. הערה: בעת שימוש נוגדנים עבור מכתים, להשתמש בסרום 5% מן המין מי נוגדנים משני נגזר כדי להפוך פתרון חסימה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לדלל biichinylated Dolichorus biflorus agglutinin 1: 200 ב חסימת פתרון. מדולל Alexa488-streptavidin מצומדות 1: 200 פתרון חסימה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מוסיפים 0.1 גרם של פוליפוניל מסיסים במים, המבוססים על אלכוהול, על בסיס Mucoadhesive / mL ל- 25% (w / v) גליצרול ב 0.1 M Tris-HCl (pH 8.5) . מחממים ל 50 מעלות צלזיוס תחת תסיסה רציפה במשך שעה 1, להתקרר, ולהתאים את ה- pH 8.0-8.5 באמצעות 1M NaOH. הימנע ריכוז גבוה NaOH. הוסף 100 מיקרוגרם / מ&quot;ל ​​N- propylgallate ו thimerosal לריכוז סופי של 0.02% (w / v). מערבבים במשך 30 דקות בטמפרטורת החדר. זהירות: Thimerosal הוא רעיל. טפל בה בהתאם לתקנות הבטיחות המקומיות והגנת הסביבה. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממלאים את המדידה הטבעה צינורות 50 מ&quot;ל, לאזן את הרוטור, צנטריפוגה ב 3,200 xg וטמפרטורת החדר למשך 10 דקות. מוציאים את הפתרון הברור לתוך צינורות 15 מ&quot;ל וזורקים את גלולה. Aliquot ולאחסן ב -20 מעלות צלזיוס למשך מספר שבועות. פעם מופשר, לשמור על הפתרון ב 4 ° C. חם עד 30 ° C מיד לפני השימוש. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכינו כמו שקופיות זכוכית רבים כמו מסננים עם explants הם להיות מותקן. בשביל זה, דבק שני coverslips קטן, 18 x 18 מ&quot;מ, משני צדי השקופית זכוכית באמצעות דבק מיידיות, השאירו שטח ~ 15 מ&quot;מ עבור המסנן בין. </li></ol> 4. קיבוע ו מכתים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר תקופת תרבויות של 3ימים במבחנה (div), להסיר את הצלחות מן האינקובטור בזהירות לשאוב את המדיום תרבות מכל היטב באמצעות micropipette. הקפד לא לגעת במסנן ולשמור את קצה הפתיחה לעבר הקיר של הבאר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 500 μL של PFA 4% / PBS לכל טוב. מסננים יהיה לצוף על מקבע. באמצעות micropipette, בזהירות להוסיף את dropwise מקבע PFA להטביע את המסננים. לדגור בטמפרטורת החדר למשך 30 דקות. הערה: עבור כל השלבים הבאים, יש להקפיד לא לשטוף את explants מהמסנן. שמור על פתיחת קצה פיפטה לכיוון הקיר של הבאר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את PFA ולשטוף פעמיים עם 500 μL של PBS, שקוע המסנן. הוסף 500 μL של פתרון permeabilization היטב כל דגירה בטמפרטורת החדר למשך 1 שעות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף פעמיים עם 500 μL של PBS ולהוסיף 500 μL של פתרון חסימה היטב כל אחד. דגירה בטמפרטורת החדר למשך 1 שעות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החלף את פתרון החסימה באמצעות250 μL של biichinated Dolichorus ביפלורוס agglutinin מדולל 1: 200 ב חסימה פתרון ו דגירה על 4 מעלות צלזיוס למשך 24 שעות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הפתרון dichichorus biflorus agglutinin ולשטוף פעמיים עם 500 μL של PBS לכל טוב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 250 μL של streptavidin Alexa488 מצומדות בדילול 1: 200 ב חסימה פתרון ו דגירה על 4 מעלות צלזיוס למשך 24 שעות. לחלופין, דגירה בטמפרטורת החדר למשך 2 שעות. הערה: יחס אות טוב יותר לרעש מושגת כאשר מודגרת ב 4 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף פעמיים עם 500 μL של PBS לכל טוב. באמצעות מלקחיים, להעביר את המסננים על שקופיות זכוכית מוכן, עם explants פונה כלפי מעלה. הר עם ~ 50-100 μL של המדידה הטבעה. מכסים עם 60 מ&quot;מ אורך מס &#39;1.5 coverslips. אפשר פתרון בינוני הטבעה כדי לחזק במשך 2 שעות בטמפרטורת החדר בחושך. המשך לדמיה או לאחסן את השקופיות, עטוף בנייר כסף, ב 4 ° C עד מוכן התמונה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תמונה עם מיקרוסקופ epifluorescence widefield 7 &lt;/ Sup&gt; מצמידים למנורת Hg ולהשתמש ביחידת מראה עבור עירור כחול (bandpass עירור, 460 - 495 ננומטר, מראה dichromatic, 505 ננומטר, ו bandpass פליטה, 510 - 550 ננומטר) ו 20x עדשות תוכנית אפוכרומט, 0.75 נומרית צוֹהַר. </li></ol>

<ol>
	<li>Sax&#233;n, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Organogenesis of the kidney. Developmental and Cell Biology Series. 19, (1987).</li><li>Lindstr&#246;m, N. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrated+&#946;-catenin,+BMP,+PTEN,+and+Notch+signalling+patterns+the+nephron.">Integrated &#946;-catenin, BMP, PTEN, and Notch signalling patterns the nephron.</a> eLife. 4, e04000 (2015).</li><li>Peuckert, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multimodal+Eph/Ephrin+signaling+controls+several+phases+of+urogenital+development.">Multimodal Eph/Ephrin signaling controls several phases of urogenital development.</a> Kidney Int. 90 (2), 373-388 (2016).</li><li>Pasquale, E. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eph+receptor+signalling+casts+a+wide+net+on+cell+behaviour.">Eph receptor signalling casts a wide net on cell behaviour.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 6 (6), 462-475 (2005).</li><li>Bonanomi, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ret+Is+a+Multifunctional+Coreceptor+that+Integrates+Diffusible-+and+Contact-Axon+Guidance+Signals.">Ret Is a Multifunctional Coreceptor that Integrates Diffusible- and Contact-Axon Guidance Signals.</a> Cell. 148 (2), 568-582 (2012).</li><li>Brown, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+Culture+of+Cells+from+the+Nephrogenic+Zone+of+the+Embryonic+Mouse+Kidney.">Isolation and Culture of Cells from the Nephrogenic Zone of the Embryonic Mouse Kidney.</a> J Vis Exp. (50), e2555 (2011).</li><li>Grobstein, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inductive+interaction+in+the+development+of+the+mouse+metanephros.">Inductive interaction in the development of the mouse metanephros.</a> J Exp Zool. 130, 319-340 (1955).</li><li>Sax&#233;n, L., Toivonen, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Primary Embryonic Induction. , (1962).</li><li>Sax&#233;n, L., Koskimies, O., Lahti, A., Miettinen, H., Rapola, J., Wartiovaara, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differentiation+of+kidney+mesenchyme+in+an+experimental+model+system.">Differentiation of kidney mesenchyme in an experimental model system.</a> Adv Morphog. 7, 251-293 (1968).</li><li>Dudley, A. T., Godin, R. E., Robertson, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interaction+between+FGF+and+BMP+signaling+pathways+regulates+development+of+metanephric+mesenchyme.">Interaction between FGF and BMP signaling pathways regulates development of metanephric mesenchyme.</a> Genes Dev. 13, 1601-1613 (1999).</li><li>Per&#228;l&#228;, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sema4C-Plexin+B2+signalling+modulates+ureteric+branching+in+developing+kidney.">Sema4C-Plexin B2 signalling modulates ureteric branching in developing kidney.</a> Differentiation. 81 (2), 81-91 (2011).</li><li>Thesleff, I., Ekblom, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+transferrin+in+branching+morphogenesis,+growth+and+differentiation+of+the+embryonic+kidney.">Role of transferrin in branching morphogenesis, growth and differentiation of the embryonic kidney.</a> J Embryol exp Morph. 82, 147-161 (1984).</li><li>Watanabe, T., Costantini, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Real-time+analysis+of+ureteric+bud+branching+morphogenesis.">Real-time analysis of ureteric bud branching morphogenesis.</a> Dev Biol. 271, 98-108 (2004).</li><li>Sebinger, D. D. R., Unbekandt, M., Ganeva, V. V., Ofenbauer, A., Werner, C., Davies, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Novel,+Low-Volume+Method+for+Organ+Culture+of+Embryonic+Kidneys+That+Allows+Development+of+Cortico-Medullary+Anatomical+Organization.">A Novel, Low-Volume Method for Organ Culture of Embryonic Kidneys That Allows Development of Cortico-Medullary Anatomical Organization.</a> PLoS One. 5 (5), e10550 (2010).</li><li>Ekblom, P., Miettinen, A., Virtanen, I., Wahlstr&#246;m, T., Dawnay, A., Sax&#233;n, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+segregation+of+the+metanephric+nephron.">In vitro segregation of the metanephric nephron.</a> Dev Biol. 84 (1), 88-95 (1981).</li><li>Davies, J. A., Unbekandt, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=siRNA-mediated+RNA+interference+in+embryonic+kidney+organ+culture.">siRNA-mediated RNA interference in embryonic kidney organ culture.</a> Methods Mol Biol. 886, 295-303 (2012).</li><li>Sax&#233;n, L., Lehtonen, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Embryonic+kidney+in+organ+culture.">Embryonic kidney in organ culture.</a> Differentiation. 36 (1), 2-11 (1987).</li><li>Bard, J. B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+development+of+the+mouse+kidney+embryogenesis+writ+small.">The development of the mouse kidney embryogenesis writ small.</a> Curr Opin Genet Dev. 2, 589-595 (1992).</li><li>Davies, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+for+cold+storage+and+transport+of+viable+embryonic+kidney+rudiments.">A method for cold storage and transport of viable embryonic kidney rudiments.</a> Kidney Int. 70 (11), 2031-2034 (2006).</li><li>Batourina, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distal+ureter+morphogenesis+depends+on+epithelial+cell+remodeling+mediated+by+vitamin+A+and+Ret.">Distal ureter morphogenesis depends on epithelial cell remodeling mediated by vitamin A and Ret.</a> Nat Genet. 32 (1), 109-115 (2002).</li></ol>

למחברים אין מה לחשוף.

כתב יד זה מתאר שיטה לבודד את metanphric anlagen המתפתח מעובר העכבר ולתרבות את יסודות האורגן. שיטה זו היא טכניקה סטנדרטית, כפי שפותחה על ידי Grobstein 8 ו Saxén 9 , 10 , ו הותאם ו שונה על ידי רבים אחרים 11 , 12 . ההצל...

The mammalian kidney is derived from two primordial structures with mesodermal origin: the tubular epithelial ureteric bud and the metanephric mesenchyme. During nephrogenesis, the ureteric bud invades the metanephric mesenchyme and branches to form the collecting system. The metanephric mesenchyme gives rise to the epithelial elements of the nephrons. These processes occur in a precisely timed and spatially coordinated manner and are initiated by reciprocal inductive mechanisms. Both tissue components communicate and affect the other's cell morphogenesis. 
In the 1920s, it was Boyden who performed the in vivo obstruction of the mesonephric duct in chicken, providing the first indication of inductive interactions as separated nephric blastema fail to differentiate1. At about the same time, the first successful attempts to culture chicken nephric rudiments in a hanging drop were published. Subsequently, the organ culture was developed to study tissue interactions in mammalian organogenesis. In the 1950s, Grobstein developed a technique in which metanephric rudiments could be cultured on a filter. This technique was modified by Sax&#233;n, who placed the filter on a Trowell-type screen in a culture dish1. Over the years, many modifications and applications for organ culture have emerged. The method described here is based on Sax&#233;n's technique but is simplified, as the filters float free on the medium and the diameter of the culture well only slightly exceeds the diameter of the filter, limiting unwanted movement of the filter.
Whole-organ culture is a classical, cheap, and simple but powerful tool to investigate cellular processes and intercellular communication during organogenesis. Organ culture allows for treatment with biological agents, such as growth factors, antibodies, antisense oligonucleotides, viruses, and peptides, as well as with pharmaceutical compounds and other chemicals. Also, gene function may be studied using explants derived from genetically modified mice or using inducible gene inactivation technology, such as the Cre-loxP system. This allows for the study of genetic mutations that cause embryonic lethality prior to the development of the kidney. Organ culture can also be combined with fluorescent tagging for gene function or lineage tracing and modern imaging techniques, which enable real-time monitoring of cell behavior2.
In the specific example provided here, the effect of EphrinB2-activated Eph-receptor signaling on the branching morphology of the ureteric bud was investigated. The morphology of the EphA4/EphB2 double-knockout mice suggested several severe defects in kidney development, which were detectable as early as embryonic day 11 (E11) and involved the ureteric bud, the ureter, and the common nephric duct3. Signaling via Eph receptors requires the clustering of the ligand-receptor dimer4. To over-activate Eph signaling, the kidney rudiments from E11.5 mouse embryos were cultured in the presence of clustered recombinant EphrinB2-Fc. EphrinB2 is a known ligand for the EphA4 receptor, which is expressed in the ureteric bud tips3.

<table><tbody><tr><td>DMEM/F-12</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>21331020</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>15140148</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX Supplement</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>35050061</td><td></td></tr><tr><td>DPBS, calcium, magnesium</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>14040117</td><td>use for dissection</td></tr><tr><td>holo-Transferrin human</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T0665</td><td></td></tr><tr><td>Insulin-Transferrin-Selenium (ITS -G) (100x)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>41400045</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyde</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>158127</td><td></td></tr><tr><td>Amphotericin B solution</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2942</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>X100</td><td></td></tr><tr><td>Sodium azide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8032</td><td></td></tr><tr><td>Thimerosal</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T5125</td><td></td></tr><tr><td>Propyl gallate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>2370</td><td></td></tr><tr><td>Mowiol 4-88</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>81381</td><td></td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G5516</td><td></td></tr><tr><td>Biotinylated Dolichorus Biflorus Agglutinin</td><td>Vector Laboratories</td><td>B-1035</td><td></td></tr><tr><td>Alexa488 conjugated Streptavidin</td><td>Jackson Immuno Research</td><td>016-540-084</td><td></td></tr><tr><td>Recombinant Mouse Ephrin-B2 Fc Chimera Protein, CF</td><td>R&amp;amp;D Systems</td><td>496-EB</td><td></td></tr><tr><td>Recombinant Human IgG1 Fc, CF</td><td>R&amp;amp;D Systems</td><td>110-HG-100</td><td></td></tr><tr><td>Goat Anti-Human IgG Fc Antibody</td><td>R&amp;amp;D Systems</td><td>G-102-C</td><td></td></tr><tr><td>Phosphate buffered saline tablets</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4417</td><td>use for fixation and immunostaining</td></tr><tr><td>Dumont #5, biologie&lt;br/&gt; tips, INOX, 11 cm</td><td>agnthos.se</td><td>0208-5-PS</td><td>2 pairs of forceps are needed</td></tr><tr><td>Iris scissors, straight, 12 cm</td><td>agnthos.se</td><td>03-320-120</td><td></td></tr><tr><td>Dressing Forceps,&lt;br/&gt; straight, delicate, 13 cm</td><td>agnthos.se</td><td>08-032-130</td><td></td></tr><tr><td>Petri dishes Nunclo Delta treated</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>150679</td><td></td></tr><tr><td>TMTP01300 Isopore Membrane Filter, polycarbonate, Hydrophilic, 5.0 &amp;micro;m, 13 mm, white, plain</td><td>MerckMillipore</td><td>TMTP01300</td><td></td></tr><tr><td>Nunclon Multidishes&lt;br/&gt; 4 wells, flat bottom</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D6789-1CS</td><td></td></tr><tr><td>Microscope cover glass 24 x 50 mm thickn. No.1.5H 0.17+/-0.005 mm</td><td>nordicbiolabs</td><td>107222</td><td></td></tr><tr><td>Cover glasses No.1.5, 18 mm x 18 mm</td><td>nordicbiolabs</td><td>102032</td><td></td></tr><tr><td>Slides ~76 x 26 x 1, 1/2-w. ground plain</td><td>nordicbiolabs</td><td>1030418</td><td></td></tr><tr><td>VWR Razor Blades</td><td>VWR</td><td>55411-055</td><td></td></tr><tr><td>50 mL centrifuge tubes</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CLS430828</td><td></td></tr><tr><td>15 mL centrifuge tubes</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CLS430055</td><td></td></tr><tr><td>Whatman prepleated qualitative filter paper, Grade 113V, creped</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>WHA1213125</td><td></td></tr><tr><td>Fixed stage research mircoscope</td><td>Olympus</td><td>BX61WI</td><td></td></tr><tr><td>Black 6 inbred mice, male, C57BL/6NTac</td><td>Taconic</td><td>B6-M</td><td></td></tr><tr><td>Black 6 inbred mice,female, C57BL/6NTac</td><td>Taconic</td><td>B6-F</td><td></td></tr><tr><td>Greenough Stereo Microscope</td><td>Leica</td><td>Leica S6 E</td><td></td></tr></tbody></table>

dissection and culture of mouse embryonic kidney

המטרה של פרוטוקול זה הוא לתאר שיטה לנתיחה, בידוד, ותרבות של עכברים metanephric עכבר. במהלך התפתחות הכליות של היונקים, שני רקמות האב, הניצן השופכן והמטנפיך המזנכי, מתקשרים ומפעילים מנגנונים סלולריים כדי ליצור בסופו של דבר את מערכת האיסוף ואת הנפרונים של הכליה. כמו עוברי יונקים לגדול תוך הרחם ולכן הם בלתי נגישים הצופה, תרבות איבר פותחה. בשיטה זו, ניתן ללמוד אינטראקציות אפיתל- mesenchymal והתנהגות הסלולר במהלך כליה אורגנוזה. יתר על כן, מקורם של כליות מולדות ומומים פגומים בדרכי השתן. לאחר דיסקציה זהיר, את metanphric rudiments מועברים על מסנן כי צף על המדיום תרבות והוא יכול להישמר בתרבות החממה לתא במשך מספר ימים. עם זאת, צריך להיות מודע לכך התנאיםמלאכותי יכול להשפיע על חילוף החומרים ברקמות. כמו כן, החדירה של חומרי הבדיקה יכול להיות מוגבל בשל המטריצה ​​תאיים וממברנה קרום הנוכחי אקספלנט. אחד היתרונות העיקריים של תרבות האיברים הוא שהניסויים יכולים לקבל גישה ישירה לאורגן. טכנולוגיה זו היא זולה, פשוטה, ומאפשרת מספר רב של שינויים, כגון הוספת חומרים פעילים ביולוגית, מחקר של גרסאות גנטיות, ויישום טכניקות הדמיה מתקדמות.

כליות metanphric כליות נגזרו עכברים בהריון שחור -6 inbred ב E11.5 ו היו מתורבתים. לאחר 3 ימים, הניצן השופכן הסתעף עד 5 פעמים, וכתוצאה מכך ההשלכה של ניצן טנטורי בצורת T בתחילה. כל אקספלנט צולם, ומספרי המקטעים ונקודות הקצה נמדדו כדי לקבוע את הדורות המסתעפים ולחשב את ...

Watch this Scientific Journal Video about Dissection and Culture of Mouse Embryonic Kidney at JoVE.com

Dissection and Culture of Mouse Embryonic Kidney

פרוטוקול זה מתאר שיטה לבידוד ו culturing raniments metanephric מעוברים העכבר.

דיספציה ותרבות של כליה עובריים עכבר

The goal of this protocol is to describe a method for the dissection, isolation, and culture of mouse metanephric rudiments. 
During mammalian kidney ...

dissection-and-culture-of-mouse-embryonic-kidney

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

11.9K Views.  Uppsala University.  פרוטוקול זה מתאר שיטה לבידוד ו culturing raniments metanephric מעוברים העכבר. 

Video: Dissection and Culture of Mouse Embryonic Kidney

Neural Tube Closure in Mouse Whole Embryo Culture

Genetic mouse models are an important tool in the study of mammalian neural tube closure (Gray &amp; Ross, 2009; Ross, 2010). However, the study of mouse embryos in utero is limited by our inability to directly pharmacologically manipulate the embryos in isolation from the effects of maternal metabolism on the reagent of interest. Whether using a small molecule, recombinant protein, or siRNA, delivery of these substances to the mother, through the diet or by injection will subject these unstable compounds to a variety of bodily defenses that could prevent them from reaching the embryo. Investigations in cultures of whole embryos can be used to separate maternal from intrinsic fetal effects on development.
Here, we present a method for culturing mouse embryos using highly enriched media in a roller incubator apparatus that allows for normal neural tube closure after dissection (Crockett, 1990). Once in culture, embryos can be manipulated using conventional in vitro techniques that would not otherwise be possible if the embryos were still in utero. Embryo siblings can be collected at various time points to study different aspects of neurulation, occurring from E7-7.5 (neural plate formation, just prior to the initiation of neurulation) to E9.5-10 (at the conclusion of cranial fold and caudal neuropore closure, Kaufman, 1992). In this protocol, we demonstrate our method for dissecting embryos at timepoints that are optimal for the study of cranial neurulation. Embryos will be dissected at E8.5 (approx. 10-12 somities), after the initiation of neural tube closure but prior to embryo turning and cranial neural fold closure, and maintained in culture till E10 (26-28 somities), when cranial neurulation should be complete.

A method allowing for direct pharmacological manipulation of mouse embryos during neurulation that bypasses maternal metabolism is described. The technique can be adapted to study different aspects of neurulation by varying the time point and pharmacological agent.

Tube סגירת עצבית בתרבות העובר שלם עכבר

Genetic mouse models are an important tool in the study of mammalian neural tube closure (Gray &amp; Ross, 2009; Ross, 2010).  However, the study of mouse ...

Neuroscience

Organ Culture and Whole Mount Immunofluorescence Staining of Mouse Wolffian Ducts

Tubal morphogenesis is a fundamental requirement for the development of most mammalian organs, including the male reproductive system. The epididymis, an integral part of the male reproductive tract, is responsible for sperm storage, maturation, and transport. The adult epididymis is a highly coiled tube that develops from a simple and straight embryonic precursor known as Wolffian duct (WD). Proper coiling of the epididymis is essential for male fertility, as sperm in the testis are unable to fertilize an oocyte. However, the mechanism responsible for epididymal development and coiling remains unclear, partially due to the lack of whole organ culture and imaging methods. In this study, we describe an in vitro culture system and whole mount immunofluorescence protocol to better visualize the process of WD coiling and development, which may also be applied to study other tubular organs.

We present a method for isolation and culture of the mouse Wolffian duct (WD). We also demonstrate a detailed procedure for whole mount immunostaining of cultured/freshly isolated WDs with fluorescently tagged antibodies. Together, these techniques enable the study of WD development, coiling, and differentiation.

תרבות איברים שלמים הר Immunofluorescence מכתים של עכבר Wolffian צינוריות

Tubal morphogenesis is a fundamental requirement for the development of most mammalian organs, including the male reproductive system. The epididymis, an ...

Optimization of Renal Organoid and Organotypic Culture for Vascularization, Extended Development, and Improved Microscopy Imaging

Embryonic kidney organotypic cultures, and especially pluripotent stem cell-derived kidney organoids, are excellent tools for following developmental processes and modelling kidney disease. However, the models are limited by a lack of vascularization and functionality. To address this, an improved protocol for the method of xenografting cells and tissues to the chorioallantoic membrane (CAM) of an avian embryo to gain vascularization and restoration of blood flow was developed. The grafts are overlaid with custom-made minireservoirs that fix the samples to the CAM and supply them with culture medium that protects the grafts from drying. The improved culture method allows xenografts to grow for up to 9 days. The manuscript also describes how to provide optimal conditions for long-term confocal imaging of renal organoids and organotypic cultures using the previously published Fixed Z-Direction (FiZD) method. This method gently compresses an embryonic organ or organoid between a glass coverslip and membrane in a large amount of medium and provides excellent conditions for imaging for up to 12 days. Together, these methods allow vascularization and blood flow to renal organoids and organotypic kidney cultures with improved confocal imaging. The methods described here are highly beneficial for studying fundamental and applied functions of kidneys ex vivo. Both methods are applicable to various types of tissues and organoids.

This work describes two methods for studying organ development, an improved xenotransplantation setup on chorioallantoic membrane (CAM) from avian embryos that allows for vascularization of cultured embryonic organs and organoids and a novel fixed z-direction organ culture method with modified experimental conditions that allows for high-resolution time-lapse confocal imaging.

אופטימיזציה של כליות אורגאיד ותרבות אורגנותית לvascularization, פיתוח מורחב והדמיה מיקרוסקופית משופרת

Embryonic kidney organotypic cultures, and especially pluripotent stem cell-derived kidney organoids, are excellent tools for following developmental ...

Mouse Embryonic Lung Culture, A System to Evaluate the Molecular Mechanisms of Branching

Lung primordial specification as well as branching morphogenesis, and the formation of various pulmonary cell lineages requires a specific interaction of the lung endoderm with its surrounding mesenchyme and mesothelium. Lung mesenchyme has been shown to be the source of inductive signals for lung branching morphogenesis. Epithelial-mesenchymal-mesothelial interactions are also critical to embryonic lung morphogenesis. Early embryonic lung organ culture is a very useful system to study epithelial-mesenchymal interactions. Both epithelial and mesenchymal morphogenesis proceeds under specific conditions that can be readily manipulated in this system (in the absence of maternal influence and blood flow). More importantly this technique can be readily done in a serumless, chemically defined culture media. Gain and loss of function can be achieved using expressed proteins, recombinant viral vectors and/or analysis of transgenic mouse strains, antisense RNA, as well as RNA interference gene knockdown.

Early embryonic lung organ culture is a very useful system to study epithelial-mesenchymal interactions. Both epithelial and mesenchymal morphogenesis proceeds under specific conditions that can be readily manipulated in this system.

עכבר עובריים תרבות ריאות, מערכת הערכת המנגנונים המולקולריים של מסעף

Lung primordial specification as well as branching morphogenesis, and the formation of various pulmonary cell lineages requires a specific interaction of ...

Biology

Microdissection of Primary Renal Tissue Segments and Incorporation with Novel Scaffold-free Construct Technology

Kidney transplantation is now a mainstream therapy for end-stage renal disease. However, with approximately 96,000 people on the waiting list and only one-fourth of these patients achieving transplantation, there is a dire need for alternatives for those with failing organs. In order to decrease the harmful consequences of dialysis along with the overall healthcare costs it incurs, active investigation is ongoing in search of alternative solutions to organ transplantation. Implantable tissue-engineered renal cellular constructs are one such feasible approach to replacing lost renal functionality. Here, described for the first time, is the microdissection of murine kidneys for isolation of living corticomedullary renal segments. These segments are capable of rapid incorporation within scaffold-free endothelial-fibroblast constructs which may enable rapid connection with host vasculature once implanted. Adult mouse kidneys were procured from living donors, followed by stereoscope microdissection to obtain renal segments 200 - 300 &#181;m in diameter. Multiple renal constructs were fabricated using primary renal segments harvested from only one kidney. This method demonstrates a procedure which could salvage functional renal tissue from organs that would otherwise be discarded.

Tissue-engineered renal constructs provide a solution for the organ shortage and deleterious effects of dialysis. Here, we describe a protocol to micro dissect murine kidneys for isolation of cortico-medullary segments. These segments are implanted into scaffold-free cellular constructs, forming renal organoids.

Microdissection של מקטעי רקמת הכליה העיקרי, התאגדות עם טכנולוגיית הרומן לבנות בפיגומים-חופשית

Kidney transplantation is now a mainstream therapy for end-stage renal disease. However, with approximately 96,000 people on the waiting list and only ...

Bioengineering

Isolation and Culture of Cells from the Nephrogenic Zone of the Embryonic Mouse Kidney

Embryonic development of the kidney has been extensively studied both as a model for epithelial-mesenchymal interaction in organogenesis and to gain understanding of the origins of congenital kidney disease. More recently, the possibility of steering na&iuml;ve embryonic stem cells toward nephrogenic fates has been explored in the emerging field of regenerative medicine. Genetic studies in the mouse have identified several pathways required for kidney development, and a global catalog of gene transcription in the organ has recently been generated <a href="http://www.gudmap.org/">http://www.gudmap.org/</a>, providing numerous candidate regulators of essential developmental functions. Organogenesis of the rodent kidney can be studied in organ culture, and many reports have used this approach to analyze outcomes of either applying candidate proteins or knocking down the expression of candidate genes using siRNA or morpholinos. However, the applicability of organ culture to the study of signaling that regulates stem/progenitor cell differentiation versus renewal in the developing kidney is limited as cultured organs contain a compact extracellular matrix limiting diffusion of macromolecules and virus particles. To study the cell signaling events that influence the stem/progenitor cell niche in the kidney we have developed a primary cell system that establishes the nephrogenic zone or progenitor cell niche of the developing kidney ex vivo in isolation from the epithelial inducer of differentiation. Using limited enzymatic digestion, nephrogenic zone cells can be selectively liberated from developing kidneys at E17.5. Following filtration, these cells can be cultured as an irregular monolayer using optimized conditions. Marker gene analysis demonstrates that these cultures contain a distribution of cell types characteristic of the nephrogenic zone in vivo, and that they maintain appropriate marker gene expression during the culture period. These cells are highly accessible to small molecule and recombinant protein treatment, and importantly also to viral transduction, which greatly facilitates the study of candidate stem/progenitor cell regulator effects. Basic cell biological parameters such as proliferation and cell death as well as changes in expression of molecular markers characteristic of nephron stem/progenitor cells in vivo can be successfully used as experimental outcomes. Ongoing work in our laboratory using this novel primary cell technique aims to uncover basic mechanisms governing the regulation of self-renewal versus differentiation in nephron stem/progenitor cells.

In this report we describe a method for the isolation and culture of the progenitor cell niche from the embryonic mouse kidney that can be used to study signaling pathways regulating stem/progenitor cells of the developing kidney. These cultured cells are highly accessible to small molecule and recombinant protein treatment, and importantly also to viral transduction, which allows efficient manipulation of candidate pathways.

בידוד והתרבות של תאים מאזור nephrogenic של הכליה עכבר עובריים

Embryonic development of the kidney has been extensively studied both as a model for epithelial-mesenchymal interaction in organogenesis and  to gain ...

Isolation and Culture of Embryonic Mouse Neural Stem Cells

Neural stem cells (NSCs) are multipotent and can give rise to the three major cell types of the central nervous system (CNS). In vitro culture and expansion of NSCs provide a suitable source of cells for neuroscientists to study the function of neurons and glial cells along with their interactions. There are several reported techniques for the isolation of neural stem cells from adult or embryo mammalian brains. During the microsurgical operation to isolate NSCs from different regions of the embryonic CNS, it is very important to reduce the damage to the brain cells to obtain the highest ratio of live and expandable stem cells. A possible technique for stress reduction during isolation of these cells from the mouse embryo brain is the reduction of surgical time. Here, we demonstrate a developed technique for rapid isolation of these cells from the E13 mouse embryo ganglionic eminence. Surgical procedures include harvesting E13 mouse embryos from the uterus, cutting the frontal fontanelle of the embryo with a bent needle tip, extracting the brain from the skull, microdissection of the isolated brain to harvest the ganglionic eminence, dissociation of the harvested tissue in NSC medium to gain a single cell suspension, and finally plating cells in suspension culture to generate neurospheres.

Here, we introduce a novel microsurgical technique for the isolation of neural stem cells from the E13 mouse embryo ganglionic eminence.

בידוד והתרבות של תאי גזע עצביים עובריים בעכבר

Neural stem cells (NSCs) are multipotent and can give rise to the three major cell types of the central nervous system (CNS). In vitro culture and ...

Mouse Embryonic Development in a Serum-free Whole Embryo Culture System

Mid-gestation stage mouse embryos were cultured utilizing a serum-free culture medium prepared from commercially available stem cell media supplements in an oxygenated rolling bottle culture system. Mouse embryos at E10.5 were carefully isolated from the uterus with intact yolk sac and in a process involving precise surgical maneuver the embryos were gently exteriorized from the yolk sac while maintaining the vascular continuity of the embryo with the yolk sac. Compared to embryos prepared with intact yolk sac or with the yolk sac removed, these embryos exhibited superior survival rate and developmental progression when cultured under similar conditions. We show that these mouse embryos, when cultured in a defined medium in an atmosphere of 95% O2 / 5% CO2 in a rolling bottle culture apparatus at 37 &#176;&#8203;C for 16-40 hr, exhibit morphological growth and development comparable to the embryos developing in utero. We believe this method will be useful for investigators needing to utilize whole embryo culture to study signaling interactions important in embryonic organogenesis.

Serum utilized in embryo cultures contains unknown components that can affect the outcome of experiments especially in studies involving signaling interactions. Here we utilized a serum-free oxygenated culture system and show that mid-gestation mouse embryos cultured for 16-40 hr&#160;exhibit morphological development comparable to embryos developing in utero.

עכבר עוברי פיתוח במערכת סרום ללא תרבות שלמה עובר

Mid-gestation stage mouse embryos were cultured utilizing a serum-free culture medium prepared from commercially available stem cell media supplements in ...

Glomerular Outgrowth as an Ex Vivo Assay to Analyze Pathways Involved in Parietal Epithelial Cell Activation

Parietal epithelial cell (PEC) activation is one of the key factors involved in the development and progression of glomerulosclerosis. Inhibition of pathways involved in parietal epithelial cell activation could therefore be a tool to attenuate the progression of glomerular diseases. This article describes a method to culture and analyze parietal epithelial cell outgrowth of encapsulated glomeruli isolated from mouse kidney. After dissecting isolated mouse kidneys, the tissue is minced, and glomeruli are isolated by sieving. Encapsulated glomeruli are collected, and single glomeruli are cultured for 6 days to obtain glomerular outgrowth of parietal epithelial cells. During this period, parietal epithelial cell proliferation and migration can be analyzed by determining the cell number or the surface area of outgrowing cells. This assay can therefore be used as a tool to study the effects of an altered gene expression in transgenic- or knockout-mice or the effects of culture conditions on parietal epithelial cell growth characteristics and signaling. Using this method, important pathways involved in the process of parietal epithelial cell activation and consequently in glomerulosclerosis can be studied.

This article describes a method for culturing and analyzing glomerular parietal epithelial cell outgrowths of encapsulated glomeruli isolated from mouse kidney. This method can be used to study pathways involved in parietal epithelial cell proliferation and migration.

בלתי מימדית כמו לשעבר שיטת Vivo לנתח מסלולים מעורב הקודקוד הקודקודית התא ההפעלה

Parietal epithelial cell (PEC) activation is one of the key factors involved in the development and progression of glomerulosclerosis. Inhibition of ...

Efficient Dissection and Culture of Primary Mouse Retinal Pigment Epithelial Cells

Eye disorders affect millions of people worldwide, but the limited availability of human tissues hinders their study. Mouse models are powerful tools to understand the pathophysiology of ocular diseases because of their similarities with human anatomy and physiology. Alterations in the retinal pigment epithelium (RPE), including changes in morphology and function, are common features shared by many ocular disorders. However, successful isolation and culture of primary mouse RPE cells is very challenging. This paper is an updated audiovisual version of the protocol previously published by Fernandez-Godino et al. in 2016 to efficiently isolate and culture primary mouse RPE cells. This method is highly reproducible and results in robust cultures of highly polarized and pigmented RPE monolayers that can be maintained for several weeks on Transwells. This model opens new avenues for the study of the molecular and cellular mechanisms underlying eye diseases. Moreover, it provides a platform to test therapeutic approaches that can be used to treat important eye diseases with unmet medical needs, including inherited retinal disorders and macular degenerations.

This protocol, which was originally reported by Fernandez-Godino et al. in 20161, describes a method to efficiently isolate and culture mouse RPE cells, which form a functional and polarized RPE monolayer within one week on Transwell plates. The procedure takes approximately 3 hours.

ניתוח יעיל ותרבות של תאי אפיתל פיגמנט רשתית העכבר הראשי

Eye disorders affect millions of people worldwide, but the limited availability of human tissues hinders their study. Mouse models are powerful tools to ...