Modelli e metodi per valutare il trasporto di Drug Delivery Systems attraverso le barriere cellulari

Riepilogo

Molte applicazioni terapeutiche richiedono un trasporto sicuro ed efficiente dei vettori della droga e dei loro carichi attraverso le barriere cellulari nel corpo. Questo articolo descrive un adattamento di metodi consolidati per valutare il tasso e il meccanismo di trasporto di nanocarriers droga (NCS) attraverso le barriere cellulari, come il tratto gastrointestinale (GI) epitelio.

Abstract

Vettori sub-micrometriche (nanovettori; NC) migliorare l'efficacia dei farmaci, migliorando la solubilità, stabilità, tempo di circolazione, il targeting e il rilascio. Inoltre, attraversando le barriere cellulari nel corpo è fondamentale sia per la somministrazione orale di NC terapeutici nella circolazione e il trasporto dal sangue nei tessuti, dove è necessario un intervento. NC trasporto attraverso le barriere cellulari si ottiene: (i) il percorso paracellulare, via transitoria interruzione delle giunzioni che si incastrano celle adiacenti, o (ii) il percorso transcellulare, in cui i materiali vengono internalizzati per endocitosi, trasportato attraverso il corpo cellulare, e secreta sulla superficie cellulare opposta (transyctosis). Consegna attraverso le barriere cellulari può essere facilitata con l'accoppiamento di terapie o loro vettori con agenti di targeting che si legano specificamente a marcatori di superficie cellulare coinvolti nel trasporto. Qui, forniamo i metodi per misurare l'entità e il meccanismo di trasporto NC attraverso una barriera cellulare modello, which è costituito da un monostrato di gastrointestinale (GI), le cellule epiteliali coltivate su una membrana porosa situato in un inserto transwell. Formazione di una barriera di permeabilità è confermata dalla misurazione resistenza elettrica transepiteliale (TEER), trasporto transepiteliale di una sostanza di riferimento, e immunocolorazione delle giunzioni strette. Come esempio, si usano ~ 200 nm NC polimeriche, che portano un carico terapeutica e rivestite con un anticorpo che si rivolge a un determinante superficie cellulare. L'anticorpo o un carico terapeutica è etichettato con ¹²⁵ I per radioisotopo rintracciamento e NC etichettati vengono aggiunti alla camera superiore sopra il monostrato cellulare per diversi periodi di tempo. NC associati alle cellule e / o trasportati alla camera sottostante può essere rilevato. Misurazione della libera ¹²⁵ I consente la sottrazione della frazione degradato. Il percorso paracellulare è valutata determinando potenziali variazioni causate dal trasporto NC barriera ai parametri sopra descritti. Transcellulare i trasportis determinata affrontando l'effetto di modulare endocitosi e transcitosi percorsi.

Introduzione

Barriere cellulari nell'atto corpo come gateway tra l'ambiente esterno e scomparti interni. Questo è il caso per il rivestimento epiteliale separa la superficie esterna esposta del tratto gastrointestinale (GI) e il flusso sanguigno ^1-3. Barriere cellulari rappresentano anche l'interfaccia tra il sangue e il parenchima e componenti cellulari di tessuti e organi. Questo è il caso per il rivestimento endoteliale interno in vasi sanguigni, come la barriera emato-polmonare, la barriera emato-encefalica, ecc ¹ La capacità di attraversare le barriere cellulari nel corpo è cruciale per la consegna efficiente di agenti terapeutici e diagnostici in circolo e tessuti / organi in cui è necessario l'intervento.

Per migliorare l'erogazione di agenti terapeutici o diagnostici, questi composti possono essere caricati in nanocarriers sub-micrometriche (NC). Questi veicoli di somministrazione di farmaci possono essere formulati con una varietà dichimiche e strutture per ottimizzare la solubilità della droga, la protezione, la farmacocinetica, il rilascio, e il metabolismo ^4,5. NC può essere funzionalizzato con affinità o rivolti frazioni (ad esempio anticorpi, peptidi, aptameri zuccheri, ecc) per facilitare l'adesione alle zone del corpo in cui è richiesta l'azione terapeutica ^2,6. Targeting di NC determinanti espresse sulla superficie delle barriere cellulari può facilitare il successivo trasporto in e / o di tutti questi rivestimenti ^2,6.

Il ruolo di trasportare selettivamente sostanze tra due ambienti richiede alcune caratteristiche uniche tra strati di cellule. Una tale funzionalità è polarità cellulare, per cui la membrana apicale rivolta verso il lume della cavità varia dalla membrana basolaterale orientata verso l'interstizio tessuto, rispetto alla membrana morfologia e composizione dei lipidi, trasportatori e recettori ^2. Un'altra caratteristica comporta junctio intercellularens collegamento celle adiacenti. Regolazione delle proteine ​​che formano giunzioni strette, molecole di adesione particolarmente giunzionali (inceppamento), occludins e claudine, modulare la funzione di barriera per permettere selettivamente o non trasporto di sostanze tra cellule, note come trasporto paracellular, permettendo il passaggio di materiali dal lume a lo spazio basolaterale ^3. Il legame di molti elementi naturali e sintetiche (leucociti, molecole, particelle e sistemi di drug delivery) alle barriere cellulari nel corpo può indurre apertura cella giunzione, che può essere transitoria e relativamente innocuo o più prolungato e, quindi, non sicuro con accesso di sostanze indesiderate attraverso la barriera ^2,5,7-9. Di conseguenza, questa via può essere valutata misurando la resistenza elettrica transepiteliale (TEER) e diffusione paracellular passiva di molecole (qui chiamato dispersione paracellular), per cui diminuita resistenza in corrente elettrica o maggiore dispersione paracellular di un inert composto nello spazio basolaterale indicare l'apertura di giunzioni cellulari, rispettivamente ^5,10,11. A complemento di questi metodi, una delle proteine ​​di giunzione stretti sopra elencati possono essere macchiati di valutare la loro integrità, dove la colorazione dovrebbe apparire concentrata ai confini cellula-cellula in tutto il periferia cellulare ^5,10,12.

In alternativa, sistemi di somministrazione di farmaci che hanno come target specifici determinanti della superficie cellulare, come quelli associati a fosse rivestite di clatrina o invaginazioni di membrana a fiasco chiamati caveole, possono innescare captazione vescicolare nelle cellule per endocitosi, fornendo una via per la somministrazione di farmaci a compartimenti intracellulari ^{5, 13.} Inoltre, endocitosi può portare al traffico di vescicole in tutto il corpo cellulare per il rilascio sul lato basolaterale, un fenomeno noto come transyctosis, o il trasporto transcellulare ^14. Pertanto, la conoscenza della cinetica e meccanismo di endocitosi può essere utilizzata per sfruttare intracellulare unand drug delivery transcellulare, che offre un modo relativamente sicuro e controllato di consegna rispetto alla via paracellular. (Endocitosi come nel caso della molecola di adesione cellulare (CAM)-mediata) Il meccanismo di endocitosi può essere valutata con modulatori dei percorsi classici (clatrina-e endocitosi caveolina-mediata, e macropinocitosi) o rotte non-classici ^5,13,15 .

Considerando traffico intracellulare è spesso studiato in pozzetti standard o coprioggetti, l'assenza di un compartimento basolaterale osta polarizzazione cellulare e la capacità di studiare il trasporto attraverso strati di cellule. Per superare questo ostacolo, il trasporto attraverso monostrati cellulari sono stati a lungo studiati utilizzando transwell inserti ^10,11,16,17, che consistono in un (apicale) camera superiore, una membrana permeabile poroso in cui le cellule si attaccano e formano un monostrato stretto, ed una inferiore (basolaterale) camera (Figura 1). In questa configurazione, il trasporto può essere misurata nelapicale a basolaterale direzione somministrando un trattamento nella camera superiore, segue un percorso attraverso il monostrato cellulare e la membrana porosa sottostante, e finalmente raccogliendo il mezzo nella camera inferiore per la quantificazione del materiale trasportato. Trasporto in direzione basolaterale-to-apicale può anche essere misurata mediante somministrazione iniziale alla camera inferiore e successiva raccolta dalla camera superiore ^5,10,12,16. Esistono varie tecniche per verificare la formazione di permeabilità barriera su transwells, compresi TEER e saggi trasporto paracellular, come descritto sopra. Inoltre, il filtro permeabile in cui le cellule sono coltivate può essere rimosso per l'analisi delle immagini (ad esempio mediante fluorescenza, confocale, microscopia elettronica), come ulteriormente validazione del modello monostrato cellulare così come il meccanismo di trasporto. Selezione del tipo a membrana, che è disponibile in diverse dimensioni dei pori, materiali e superfici, in funzione di varie factors come la dimensione di sostanze o oggetti da trasportare, tipo cellulare, e metodo di imaging ^16,18-20. Transwell inserti anche facilitare quantificazione controllato e preciso di trasporto rispetto ai sistemi complessi di mammifero, come volumi delle camere e della superficie cellulare sono costanti note. Mentre molti fattori coinvolti nella consegna in vivo sono eliminati, tra cui la presenza di muco intestinale, shear stress, enzimi digestivi, le cellule immunitarie, ecc, questa piccola scala modello in vitro fornisce informazioni preliminari utili in materia di trasporti.

Come esempio per illustrare l'adattamento di questi metodi per studiare il trasporto NC attraverso le barriere cellulari ^10,11,16,17, descriviamo qui un caso in cui il rischio di propagazione NC attraverso l'epitelio GI stato modellato valutando passaggio di un drug delivery modello sistema attraverso un monostrato di adenocarcinoma colorettale epiteliale umano (Caco-2) cellule. A tal fine, cells stati coltivati ​​in inserti transwell, su un 0,8 micron pori polietilene tereftalato (PET) filtro (diametro 6,4 mm), che è trasparente e può essere utilizzato per l'imaging microscopia. Lo stato della barriera di permeabilità è convalidata misurando TEER, trasporto apicale a basolaterale di una sostanza di riferimento, albumina, e visualizzazione microscopia a fluorescenza di un elemento delle giunzioni strette, proteine ​​occludina. Un modello di polimero mirata NC viene utilizzato, costituito da 100 nm, nanoparticelle polistirene non biodegradabile. NC sono rivestiti mediante adsorbimento superficie con un anticorpo rivolti solo o una combinazione di un anticorpo targeting e un carico terapeutico, in cui o componente può essere marcato con ¹²⁵ I per radioisotopo tracciamento. Nell'esempio selezionata, l'anticorpo riconosce molecola di adesione intercellulare-1 (ICAM-1), una proteina espressa sulla superficie di GI epiteliale (e altre cellule), che è stato dimostrato per facilitare il trasporto intracellulare e transcellulare o trasportatori di farmaci f e del loro carico ^21. Il carico è l'alfa-galattosidasi (α-Gal), un enzima terapeutico usato per il trattamento della malattia di Fabry, una malattia da accumulo lisosomiale genetica ^22.

NCS rivestiti, di circa 200 nm dimensioni, vengono aggiunti alla camera apicale sopra il monostrato cellulare e incubate a 37 ° C per vari periodi di tempo, dopo che ¹²⁵ I sulla NC può essere rilevato associata al monostrato di cellule e / o trasportato alla camera basolaterale sotto le celle. Ulteriori determinazione del libero ¹²⁵ mi permette di sottrazione della frazione degradato e la stima dei trasporti rivestito NC. Il meccanismo di trasporto è ulteriormente valutata esaminando cambiamenti nella permeabilità della barriera di pertinenza del percorso paracellulare, attraverso i parametri sopra descritti, mentre il trasporto transcellulare è determinata esaminando cambiamenti nel trasporto modulando vie di endocitosi e transcitosi.

ONTENUTO "> Questi metodi forniscono informazioni preziose riguardo modelli barriera cellulare, il grado e la velocità di trasporto di un sistema di somministrazione di farmaci, e il meccanismo di tale trasporto, consentendo complessivamente valutazione del potenziale per la somministrazione di farmaci attraverso le barriere cellulari.

Protocollo

1. Coltivazione di un monostrato di cellule in Transwell Inserti

1. In una sterile, livello di biosicurezza 2 cellule cappa cultura, pongono 0,8 millimetri poro PET Transwell inserisce in una piastra a 24 pozzetti (4 pozzi per condizione, per la significatività statistica) con una pinza. Tutti i materiali cofano, devono essere sterilizzati con etanolo.

Nota: La dimensione dei pori del filtro deve essere selezionato in accordo alla dimensione media della NC utilizzato, per consentire il trasporto attraverso la membrana. Inoltre, per ottenere risultati statisticamente significativi, ogni condizione sperimentale richiede un minimo di quattro ripetizioni (pozzi) all'interno dello stesso esperimento, e un minimo di tre esperimenti indipendenti.

2. Preparare terreno di coltura contenente DMEM supplementato con 4,5 g / L di glucosio, siero bovino fetale 15% e 1% Pen Strep, e calore a 37 ° C in un bagno d'acqua.
3. Diluire adenocarcinoma colorettale epiteliale umano (Caco-2), le cellule in terreno cellulare e luogo200-400 microlitri della soluzione nella cella superiore (apicale) camera dell'inserto transwell, ad una densità di 1,5 x 10 ⁵ cellule / cm ^2. Riempire il più basso (basolaterale) da camera con 700-900 ml di mezzo cellulare.
4. Cellule di coltura a 37 ° C, 5% CO _2, e 95% di umidità per 16-21 giorni, sostituendo il mezzo nella camera superiore e inferiore ogni 3-4 giorni, utilizzando i volumi indicati al punto 1.3. Sostituire medio nel seguente ordine di mantenere la pressione sopra (anziché sotto) il monostrato cellulare: aspirare il terreno dalla camera inferiore, aspirare il terreno dalla camera superiore, riempire la camera superiore con mezzo fresco, e riempire la camera inferiore con terreno fresco.

2. Validazione del GI epiteliale permeabilità della barriera Uso transepiteliale resistenza elettrica (TEER) e Immunostaining di giunzioni strette

1. Per la conservazione a breve termine (meno di 2 settimane), immergere gli elettrodi STX100 in una soluzione elettrolitazione (0,1-0,15 M KCl o NaCl). Collegare il cavo dell'elettrodo alla porta elettrodo sul misuratore Evom volt-ohm in modo che il sistema è internamente cortocircuitati e elettrodo simmetria è mantenuta. Per la conservazione a lungo termine, sciacquare con dH ₂ O e conservare in un luogo asciutto, condizione di buio.
2. Per sterilizzare gli elettrodi, immergere in etanolo per 15 minuti e lasciare asciugare all'aria per 15 sec. In alternativa, gli elettrodi possono essere memorizzati in una cappa UV. Risciacquare gli elettrodi in una soluzione sterile elettrolita (soluzione salina tampone fosfato, PBS) o 0,1-0,15 soluzione M KCl o NaCl, prima di ogni misurazione della resistenza.
3. Con il voltmetro ohm impostata alla resistenza, verticalmente posizionare gli elettrodi in un pozzetto contenente l'inserto transwell, con la breve elettrodo nella camera superiore e lungo elettrodo nella camera inferiore toccare il fondo del pozzo. Dopo la lettura Evom stabilizza, registrare il valore di resistenza (dato in ohm, Ω) per ogni bene.
4. Calcola resistività (resisce normalizzato a zona; Ω × cm ²⁾ di campioni sottraendo la resistenza di fondo (TEER di inserti transwell senza celle) e moltiplicando per la superficie della membrana. Valori di resistività sono più spesso riportati in letteratura. (Vedi la discussione)
5. Ripetere le misurazioni ogni 1-2 giorni fino TEER valori aumentano al massimo e plateau, indicando la formazione di una barriera di permeabilità, che richiede in genere 2-3 settimane dal momento del Platting cella. Valori e il tempo necessario a conseguire integrità della barriera Plateau TEER possono variare in base al numero di cellulare di passaggio.
6. Per verificare la presenza di giunzioni strette in monostrati di cellule con alta TEER (uguale o superiore al valore di soglia per la formazione di barriera), fissare le cellule mediante incubazione con freddo 2% paraformaldeide per 15 min. Poi, lavare le cellule con PBS e incubate per 30 minuti a temperatura ambiente con 1 mg / ml di anti-occludina. Lavare le cellule nuovamente con PBS e incubare per 30 min a temperatura ambiente con 7,5 ug / ml fanticorpi secondari luorescently-etichettati. Utilizzare pozzetti con basso TEER come controllo negativo per la formazione barriera.

Nota: Come sostituto per anti-occludina, possono essere utilizzati anticorpi contro proteine ​​alternative giunzione stretti.

7. Asportare con cura la membrana filtrante su cui è collegato il monostrato fisso, e montare su vetrini per l'imaging che utilizzano epifluorescenza o microscopia confocale.

3. Valutare transepiteliale trasporto di portatori di mirate

1. Etichetta la mira anticorpo (anticorpo monoclonale di topo contro ICAM-1, anti-ICAM, in questo esempio) con ¹²⁵ I, come descritto in precedenza ^7. Utilizzare saggio Bradford per stimare la concentrazione di proteine ​​e un contatore gamma per determinare ¹²⁵ I contenuti di anticorpi, quindi calcolare l'attività specifica in conteggi per minuto (CPM) / mg di anticorpo marcato.

Nota: Per controllare per la specificità, riRipetere la procedura con IgG etichettatura mouse, che verrà utilizzato per preparare NC rivestiti non mirati. Per studiare il trasporto di un carico terapeutica, ripetere la procedura di etichettatura del carico, per esempio, alfa-galattosidasi (α-Gal) in questo esempio. Alternative possono essere usate per l'agente targeting, il controllo non specifico, o merci terapeutico. Metodi alternativi possono essere utilizzati anche per etichettare i composti e stimare la concentrazione delle controparti etichettati.

2. Coppia il marcato di targeting anticorpi (anti-ICAM nel nostro esempio) alla superficie di NC. In questo esempio, incubare nanobeads polistirolo (diametro di 100 nm) per 1 ora a temperatura ambiente con ¹²⁵ I-anti-ICAM per consentire adsorbimento superficie, come descritto ^7.

Nota: Per il controllo non specifico uso ¹²⁵ I-IgG. Per tracciare il trasporto di un carico, utilizzare una combinazione di anticorpi rivolti e ¹²⁵ I-marcato carico (α-Gal nel nostro esempio).

3. Centrifugare a 13.000 xg per 3 min e rimuovere le controparti non-rivestiti nel surnatante tramite aspirazione. Risospendere il pellet contenente NC rivestiti con 1% di albumina sierica bovina (BSA) in PBS pipettando, e sonicare a bassa potenza per distruggere potenziali aggregati di particelle (20-30 brevi impulsi).
4. Per la caratterizzazione NC, misurare le dimensioni, polidispersità, e ζ-potenziale di particelle rivestite utilizzando light scattering dinamico (seguendo le istruzioni del fornitore), e quantificare il numero di ¹²⁵ I-marcato targeting molecole anticorpali (ad esempio anti-ICAM) sulla superficie delle particelle utilizzando un contatore gamma.

Nota: Questi metodi possono essere ripetute per controparti non specifici e terapeutiche. La dimensione delle particelle rivestite varia circa 200 nm.

5. Aggiungere ¹²⁵ NC I-anticorpo, (ad esempio ¹²⁵ I-anti-ICAM NCs; 56 nCi / ml) alla camera superiore sopra confluenti Caco-2 monostrati con TEER &# 8805; 350 Ω × cm ² (vedi discussione) su sfondo (16-21 giorni dopo la semina). Incubare a 37 ° C per una o più di tempo desiderato intervalli. Misurare TEER (Sezione 2.3) prima e dopo incubazione per valutare gli effetti della NC sulla barriera di permeabilità.

Nota: Questa procedura può essere ripetuta per controparti non specifici e terapeutiche.

6. Raccogliere medio dalle camere superiori e inferiori e lavare una volta con 0,5 ml di DMEM a 37 ° C (camera superiore) o 1 ml dH ₂ O (camera inferiore). Raccogliere i lavaggi per la misurazione del contenuto totale radioisotopo in un contatore gamma.
7. Per la misura della frazione di cellule, asportare il filtro permeabile, per esempio usando una lama di rasoio per tagliare lungo i bordi, e incubare in un tubo contatore gamma con 1% Triton X-100 per 10 minuti (per rilasciare il contenuto delle celle), prima cella di misura associata radioattività totale.
8. Per misurare ¹²⁵ ho riaffittati da NC durante il trasporto oa causa di potenziale degrado, primo mix 300 ml di campione (provenienti dalle frazioni superiori, inferiori o cellulari) con 700 ml di 3% BSA in PBS e 200 ml di acido tricloroacetico (TCA). Incubare a temperatura ambiente per 15 min. Nel frattempo questa volta, misurare la radioattività totale di questo campione in un contatore gamma.
9. Centrifugare i campioni TCA a 3.000 xg per 5 minuti per separare proteina intatta (pellet) dalla proteina degradata o ¹²⁵ I frazione (surnatante). Quantificare la radioattività della libera ¹²⁵ frazione I e sottrarre questo valore dal radioattività totale misurato prima della centrifugazione. Ciò fornirà la quantità della proteina marcata che non viene degradato.

4. Meccanismo di trasporto transepiteliale di nanovettori mirate

1. Etichetta albumina con ¹²⁵ I, come descritto nella Sezione 3.1 e riportato in precedenza ^7.

Nota: L'albumina è un 66.5kDa e, quindi, una relativamente grande sostanza. Anche se un controllo valido per il trasporto passivo di oggetti di grandi dimensioni (ad esempio, 200 CN nm utilizzati qui), dovrebbe essere sostituito con molecole traccianti inerti più piccoli quando si studia il trasporto di portatori di farmaci più piccoli (vedi discussione).

2. Per valutare trasporto paracellulare utilizzando albumina perdite paracellulare, cultura Caco-2 monolayers su transwell inserti come descritto sopra.
3. Per il mezzo camera superiore sopra il monostrato cellulare, aggiungere o ¹²⁵ solo I-albumina (controllo negativo che mostra il livello basale di perdite), o ¹²⁵ NC anticorpi mirati I-albumina e non radioattivi (come descritto nella Sezione 3.5). Incubare a 37 ° C per l'intervallo di tempo selezionato (s), che dovrebbe corrispondere a quelli esaminati durante le prove del trasporto NC. Misurare TEER (Sezione 2.3) prima, durante e dopo l'incubazione, quindi raccogliere tutte le frazioni per un totale ^{di 125} mi e libero ¹²⁵ I misure come indicato. nella sezione 3 Nota: concomitante aggiunta di ¹²⁵ controllo I-albumina e non radiomarcato NC IgG può essere utilizzato come controllo.
4. Come controllo positivo per l'apertura di giunzioni intercellulari, aggiungere media cella contenente 5 mM H ₂ O ₂ alle camere superiore ed inferiore dell'inserto transwell, e incubare a 37 ° C per 30 min. Quindi, misurare TEER (Sezione 2.3) e aggiungere ¹²⁵ I-albumina alla camera superiore per gli intervalli di tempo selezionati. Misurare TEER in vari momenti durante l'incubazione per identificare TEER decadimento valore causata da H ₂ O ₂ indotta apertura delle giunzioni cellulari.
5. In esperimenti paralleli, valutare i trasporti transcellulare, chiamato anche transcitosi, di ¹²⁵ NC I-mirati da parte di incubazione confluenti Caco-2 monostrati sia con 50 pm monodansylcadaverine (MDC; inibitore di endocitosi clatrina-mediata), 1 mg / ml filipin (inibitore della caveolari endocitosi mediata), 0,5 micron Wortmannin (inibitore della fosfatidilinositolo 3 chinasi [PI3K], coinvolto in macropinocitosi), o 20 micron [5 - (N-etil-N-isopropile) amiloride] (EIPA, inibitore della macropinocitosi e CAM-mediata endocitosi ^15).

Nota: ¹²⁵ I-IgG NC e ¹²⁵ I-albumina possono essere utilizzati come controlli negativi per l'effetto di questi inibitori, e altri metodi (ad esempio tecniche di siRNA) possono fornire inibizione più selettiva.

6. Misurare TEER (Sezione 2.3) prima, durante, e dopo incubazione delle cellule con inibitori e materiali radiomarcati, quale ulteriore controllo per l'effetto degli inibitori sulla permeabilità monostrato.

Risultati

Come validazione del nostro modello cellulare per lo studio trasporto transepiteliale di CN mirati, la figura 2 mostra che Caco-2 monostrati di cellule piastrate ad una densità di 1,5 x 10 ⁵ cellule / cm ² raggiunto confluenza ~ 12 ° giorno e mantenuti integrità monostrato fino al giorno 18, indicato con TEER (Figura 2A). Questo è stato convalidato dalla presenza di giunzioni strette occludina-positivi (Figura 2B) in monostrati con elevata TEER...

Discussione

Usando i metodi discussi sopra, un modello cellulare per studiare il trasporto di NC mirati attraverso le barriere cellulari può essere stabilita, come l'esempio fornito per Caco-2 cellule epiteliali, che è rilevante per valutare trasporto dal lume GI nel sangue nel caso dei sistemi di drug delivery per via orale. Coltura di monostrati di cellule epiteliali GI in inserti transwell ha permesso la misurazione di TEER e fluorescenza immunoistochimica di giunzioni strette per confermare la formazione di una barriera d...

Materiali

Name	Company	Catalog Number	Comments
Transwell inserts	BD Falcon	353095
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM), 1x	Cellgro	10-013-CM
Fetal Bovine Serum (FBS)	Cellgro	35-015-CV
Pen Strep	Gibco	15140
Human epithelial colorectal adenocarcinoma (Caco-2) cells	ATCC	HTB-37TM
125Iodine	Perkin Elmer	NEZ033H002MC	Radioactive hazard
Phosphate Buffer Saline (PBS)	Gibco	14190-235
Bovine Serum Albumin (BSA)	Equitech Bio	BAH-66
Paraformaldehyde (16%)	Fisher Scientific	15710
Mouse Immunoglobulin G (IgG)	Jackson ImmunoResearch	015-000-003
Mouse monoclonal antibodies to human ICAM-1 (anti-ICAM)	Marlin 1987
α-Galactosidase, from green coffee beans	Sigma	G8507-25UN
FITC latex beads, 100 nm	Polysciences, Inc.	17150
Triton X-100	Sigma	234729-500ML
Trichloroacetic acid (TCA)	Fisher Scientific	SA433-500
Occludin antibody (Y-12), goat polyclonal anti-human	Santa Cruz Biotechnology	Sc-27151
Monodansylcadaverine (MDC)	Sigma	D4008
Filipin	Sigma	F9765
5-(N-ethyl-N-isopropyl) amiloride (EIPA)	Sigma	A3085
Wortmannin	Sigma	W1628
Gamma counter	Perkin Elmer	Wizard2
Volt-ohm meter	World Precision Instruments	EVOM2
TEER electrodes	World Precision Instruments	STX100	Electrodes available for different well-plates
Dynamic Light Scattering (DLS)	Malvern	Nano-ZS90