Schermi di monoibrido lievito avanzata per identificare il fattore di trascrizione associazione a sequenze di DNA umano

Riepilogo

Qui, presentiamo un lievito avanzato monoibrido protocollo per identificare i fattori di trascrizione (TFs) che possono essere associato ad una regione di DNA umana di interesse di screening. Questo metodo utilizza una pipeline di screening ad alta resa che può interrogare il legame di > 1.000 TFs in un singolo esperimento.

Abstract

Identificare i set di fattori di trascrizione (TFs) che regolano ogni gene umano è un compito arduo che richiede l'integrazione di numerosi approcci sperimentali e computazionali. Uno di questi metodi è il lievito monoibrido (Y1H) test, nelle quali interazioni tra DNA e TFs regioni vengono testate nell'ambito del nucleo di lievito utilizzando geni reporter. Y1H saggi riguardano due componenti: una 'DNA-bait' (ad es.., promotori, enhancers, silenziatori, ecc.) e una 'TF-preda,' che possa essere sottoposti a screening per l'attivazione del gene reporter. Più i protocolli pubblicati per l'esecuzione di Y1H schermi si basano sulla trasformazione TF-preda librerie o matrici in ceppi di lievito DNA-esca. Qui, descriviamo una pipeline, chiamato Y1H avanzata (eY1H) assays, dove interazioni TF-DNA sono interrogati dall'accoppiamento del DNA-esca ceppi con una collezione di serie di TF-preda ceppi utilizzando una matrice ad alta densità piattaforma robotica (HDA) che permette la proiezione in un 1.536 formato di Colonia. Questo permette un notevole aumento della velocità effettiva (60 sequenze di DNA-esca contro > 1.000 TFs richiede due settimane per ricercatore) e riproducibilità. Illustriamo i diversi tipi di risultati attesi dalla prova sequenze promotore umano contro una matrice di 1.086 umano TFs, nonché esempi di problemi che possono sorgere durante gli schermi e come risolverli.

Introduzione

Un problema centrale in campo biomedico consiste nel determinare i meccanismi con cui viene regolato ogni gene umano. Trascrizione è il primo passo nel controllo dei livelli di espressione genica, ed è regolato da un insieme di fattori di trascrizione (TFs) che sono unici per ogni gene. Dato che gli esseri umani codificano per > 1.500 TFs^1,2, identificando il set completo di TFs che controllano l'espressione di ogni gene rimane una sfida aperta.

Due tipi di metodi possono essere utilizzati per mappare le interazioni TF-DNA: Metodi TF-centrato e DNA-centrato³ (Figura 1A). Nei metodi TF-centrato, è sondato un TF di interesse per l'associazione a regioni del DNA genomiche o per determinare la specificità di legame del DNA. Questi metodi includono l'immunoprecipitazione della cromatina (ChIP) seguita da sequenziamento ad alta produttività, microarrays della proteina vincolante e SELEX^4,5,6. Nei metodi del DNA-centrato, una sequenza di DNA di interesse è sondata per determinare l'insieme di TFs che si legano alla sequenza di DNA. Il più ampiamente applicata di tali metodi è saggi di lievito monoibrido (Y1H), nelle quali interazioni tra DNA e TFs regioni vengono testate nell'ambito del nucleo di lievito utilizzando reporter geni^7,8,9.

Y1H saggi riguardano due componenti: una 'DNA-bait' (ad es., promotori, enhancers, silenziatori, ecc.) e una 'TF-preda,' che possa essere sottoposti a screening per reporter gene attivazione^9,10 (Figura 1B). Il DNA-esca è clonato a Monte di due reporter geni (LacZ e HIS3) e due costrutti di DNA-bait::reporter sono integrati nel genoma del lievito per generare cromatinici 'DNA-esca ceppi.' La TF-preda, codificata in un plasmide che esprime un TF fuso per il dominio di attivazione (AD) del lievito Gal4 TF, è stato introdotto nel ceppo di DNA-esca per i pesci per le interazioni di TF-DNA. Se la TF-preda si lega alla sequenza di DNA-esca, quindi l'annuncio presente nella TF-preda porterà all'attivazione di entrambi i geni reporter. Di conseguenza, cellule con un'interazione positiva possono essere selezionate per la crescita sulle piastre carente istidina, come pure di superare un inibitore competitivo, 3-ammino-1,2,4-triazolo (3-AT) e visualizzate come colonie blu in presenza di X-gal. Perché il potente lievito Gal4 è utilizzato AD, saggi di Y1H in grado di rilevare le interazioni che coinvolgono attivatori trascrizionali come repressori. Inoltre, dato che TF-prede sono espressi da un promotore forte lievito (ADH1), interazioni possono essere rilevati anche per TFs che hanno livelli di bassa espressione endogena, che sono difficili da rilevare da ChIP^11,12.

Più i protocolli pubblicati per eseguire dosaggi Y1H si basano sull'introduzione di TF-prede nei ceppi di lievito DNA-esca trasformando in pool librerie di TF-preda seguite da selezione, Colonia raccogliendo e sequenziamento per identificare il TF interagenti, o da trasformazione di singoli cloni^8,9. Si tratta di protocolli che richiede tempo, limitando il numero di sequenze di DNA che può essere testato per ricercatore. Un recente miglioramento delle analisi Y1H, chiamato enhanced Y1H (eY1H), ha aumentato drammaticamente il throughput screening utilizzando una piattaforma robotica di matrice (HDA) ad alta densità di accoppiarsi ceppi di lievito DNA-esca con una collezione di ceppi di lievito ognuno esprimendo un diverso TF-preda^10,13 (Figura 1). Questi schermi utilizzano un formato di 1.536 Colonia che permette di testare più umano TFs in quadruplice copia utilizzando solo tre piastre. Inoltre, dato che interazioni TF-DNA sono testati in maniera pairwise, questo approccio consente per confrontare le interazioni tra DNA-esche (ad esempio, due varianti non codificanti singolo nucleotide) e tra diversi TFs o TF varianti^{11,12 ,14}.

Facendo uso delle analisi di eY1H, abbiamo delineato l'umano più grande e Caenorhabditis elegans TF-DNA DNA-centrato interazioni reti a-data. In particolare, abbiamo identificato 2.230 interazioni tra 246 rinforzatori inerente allo sviluppo umani e 283 TFs¹². Ulteriormente, abbiamo impiegato le analisi eY1H per scoprire associazione TF alterata a 109 varianti non codificante di singolo nucleotide associate a malattie genetiche come la malformazione inerente allo sviluppo, il cancro e disturbi neurologici. Più recentemente, abbiamo usato eY1H per delineare una rete formata da 21.714 interazioni tra 2.576 promotori di geni di c. elegans e 366 TFs¹¹. Questa rete è stato determinante per scoprire il ruolo funzionale di decine di c. elegans TFs.

I protocolli per generare macchie di DNA-esca e valutare i livelli di attività del reporter di sfondo sono state segnalate altrove^15,16,17. Qui, descriviamo una pipeline di eY1H che può essere utilizzata per qualsiasi regione di DNA genomico umano contro una matrice di 1.086 TFs umano a schermo. Una volta che viene generato un DNA-esca ceppo di lievito e una matrice di TF-preda è macchiata sulle piastre corrispondente, l'intero protocollo può essere eseguita in due settimane (tabella 1). Ancora più importante, il protocollo può essere parallelizzato in modo che un singolo ricercatore può schermo 60 sequenze di DNA-esca simultaneamente. Per illustrare il protocollo, abbiamo proiettato i promotori di due geni di citochine CCL15 e IL17F. Inoltre, mostreremo risultati dalla fallita schermate per illustrare i tipi di problemi che possono sorgere durante l'esecuzione di analisi di eY1H e come risolverli.

Protocollo

1. preparati

1. Piastre di SC −U −H (150mm di Petri)
   Nota: Queste piastre verranno utilizzate per la coltivazione i ceppi di lievito DNA-esca.
   1. Sciogliere il drop-out mix, lievito azoto base (YNB), adenina hemisulfate e solfato di ammonio in 920 mL di acqua e pH 5.9 con 5 M NaOH (circa 1 mL per litro di media; si veda tabella 2 per la composizione). Versare in un pallone da 2 L e aggiungere una barra per l'agitazione.
   2. In un secondo pallone da 2 L, aggiungere l'agar a 950 mL di acqua (non aggiungere un ancoretta come causerà l'agar a traboccare in autoclave).
   3. Autoclave per 40 min a 15 psi su un ciclo di liquido.
   4. Versare immediatamente il contenuto del pallone primo, tra cui l'ancoretta, dentro l'agar contenente boccetta. Aggiungere il glucosio, mescolare bene su un piatto di mescolare e raffreddare a 55 ° C in un bagno d'acqua.
   5. Aggiungere la leucina ed il triptofano ai media. Mescolare bene su un piatto di mescolare e versare in Petri sterili 150 mm (~ 80 mL per ogni piatto). Secco per 3 – 5 giorni a temperatura ambiente, avvolgere in sacchetti di plastica e conservare a temperatura ambiente fino a 6 mesi.
2. Lastre rettangolari YAPD
   Nota: Queste piastre verranno utilizzate per la coltivazione di prato per il ceppo di DNA-esca e per l'accoppiamento con la raccolta di matrice TF.
   1. Dissolvere polveri (Vedi tabella 3 per composizione), ad eccezione di agar, in 950 mL di acqua in un pallone da 2 L e aggiungere una barra per l'agitazione.
   2. In un secondo pallone da 2 L, aggiungere l'agar a 950 mL di acqua (non aggiungere un ancoretta come causerà l'agar a traboccare in autoclave).
   3. Autoclave per 40 min a 15 psi su un ciclo di liquido.
   4. Versare immediatamente il contenuto del pallone primo, tra cui l'ancoretta, dentro l'agar contenente boccetta.
   5. Aggiungere il glucosio, mix bene su una piastra di mescolare e lasciare raffreddare a 55 ° C. Versare le piastre rettangolari di media (Vedi Tabella materiali; ~ 70 mL per piastra) utilizzando una pompa peristaltica (5 mL/sec) e un tubo di 6 mm. Secco per 1 giorno a temperatura ambiente, avvolgere in sacchetti di plastica e riporre in camera fredda per fino a 6 mesi.
      Nota: Anche se il volume dei supporti suggeriti è 70 mL per piastra, 50 – 80 mL per piastra può essere utilizzato. I tre punti critici da considerare quando versando le piastre sono 1) che sono livellate in modo che i media di agar ha lo stesso spessore in tutta la piastra (utilizzare livellato tavolo o una superficie per il versamento della piastra e non versare in pacchi da più di sette) 2) per garantire l'assenza di bolle nell'agar media (bolle dovrebbero essere spuntate con un ago sterile) e 3) le piastre di secchezza per un solo giorno e le piastre d'imballaggio in sacchetti di plastica per evitare rotture in aggiunta di lievito.
3. SC −Trp e Sc −U −Trp piastre rettangolari
   Nota: Queste piastre verranno utilizzate per la raccolta di matrice TF (Sc −Trp) in crescita e per selezionare diploide lievito dopo l'accoppiamento (Sc −U −Trp).
   1. Sciogliere il mix di abbandono, YNB, adenina hemisulfate e solfato di ammonio in 920 mL di acqua e pH 5.9 con NaOH 5M (circa 1 mL per litro di media) (Vedi tabella 4 per composizione). Versare in un pallone da 2 L e aggiungere una barra per l'agitazione.
   2. In un secondo pallone da 2 L, aggiungere l'agar a 950 mL di acqua (non aggiungere un ancoretta come causerà l'agar a traboccare in autoclave).
   3. Autoclave per 40 min a 15 psi su un ciclo di liquido.
   4. Versare immediatamente il contenuto del pallone primo, tra cui l'ancoretta, dentro l'agar contenente boccetta. Aggiungere il glucosio, mescolare bene su un piatto di mescolare e raffreddare fino a 55 ° C.
   5. Aggiungere la leucina, l'istidina e l'uracile (omettere l'uracile per le piastre di −Trp −U Sc).
   6. Mescolare bene su un piatto di mescolare e versare in lastre rettangolari (~ 70 mL per piastra) utilizzando una pompa peristaltica (5 mL/sec) e tubi di 6 mm. Asciugare per 1 giorno a temperatura ambiente, avvolgere le piastre in sacchetti di plastica e conservare in camera fredda fino a 3 mesi.
4. SC −U −H −Trp + 3AT + piastre rettangolari X-gal
   Nota: queste piastre verranno utilizzate come piastre di lettura per le analisi di eY1H.
   1. Sciogliere il mix di abbandono, YNB, adenina hemisulfate e solfato di ammonio in 850 mL di acqua (vedere tabella 5 per composizione). Fare non pH. Versare in un pallone da 2 L e aggiungere una barra per l'agitazione.
   2. In un secondo pallone da 2 L, aggiungere l'agar a 850 mL di acqua (non aggiungere un ancoretta come causerà l'agar a traboccare in autoclave).
   3. Autoclave per 40 min a 15 psi su un ciclo di liquido.
   4. Preparare 10 x BU sali (1L) combinando 900 mL di acqua, 70 g di Na₂HPO₄∙7H₂O e 34,5 g di NaH₂PO₄∙H₂O. Mix utilizzando un ancoretta dissolvere polveri e regolare il pH a 7.0 utilizzando 5 M NaOH. Aggiungere acqua per portare a 1 L e autoclave.
   5. Preparare la soluzione X-gal aggiungendo un tubo di plastica da 50 mL contenente 42,5 mL di dimetilformammide 3,5 g di polvere di X-gal. Aggiungere polvere di X-gal a dimetil formammide per sciogliere più facilmente (tempo di percorrenza 30 min). Mantenere la soluzione stock al buio (l'uso del tubo opaco 50 ml o copertina in carta stagnola). Conservare a-20 ° C.
   6. Versare immediatamente il contenuto del pallone primo, tra cui l'ancoretta, dentro l'agar contenente boccetta. Aggiungere il glucosio e le 10 x BU sali (vedere tabella 5 per composizione), mescolare bene su un piatto di mescolare e raffreddare fino a 55 ° C.
   7. Aggiungere la leucina, 3AT e il X-gal (vedere tabella 5 per composizione).
   8. Mescolare bene su un piatto di mescolare e versare nei piatti rettangolari (~ 70 mL per piastra) utilizzando una pompa peristaltica (5 mL/sec) e un tubo di 6 mm. Secco per 1 giorno a temperatura ambiente, avvolgere in sacchetti di plastica e riporre nella stanza fredda rivestita in lamina di alluminio (3AT e X-gal sono sensibili alla luce) per fino a 1 mese.

2. spotting una matrice TF

1. La matrice di TF-preda di scioglimento
   1. Scongelare le piastre stock di glicerolo di lievito con la matrice di TF-preda sul ghiaccio.
      Nota: TF-preda matrici possono essere generate come precedentemente pubblicati^10,12,13,18.
   2. Risospendere il lievito usando una pipetta di 12 canali entro 1 – 3 min prima del passaggio successivo.
2. Spotting il lievito in Sc −Trp lastre rettangolari
   1. Nel robot HDA (Vedi Tabella materiali), selezionare Multi-96 pozzetti come fonte, 96 piastre di agar come destinazione e lungo 96 pin pad.
      Nota: Rilievi di pin non sono riutilizzabili e dovrebbero essere scartati.
   2. Selezionare il programma Replicare molti di fare due copie a piastra a 96 pozzetti. Non utilizzare il riciclo o rivisitare opzioni per evitare la contaminazione posteriore delle scorte congelate.
   3. Selezionare l'opzione a girare su e giù nell'origine di mescolare il lievito.
   4. Borsa la matrice maculata e incubare agar lato fino a 30 ° C per 2 – 3 giorni.
3. Generazione di 384 matrici di Colonia in lastre rettangolari di Sc −Trp
   1. Nel robot, selezionare 96 piastre di agar come fonte, 384 piastra di agar come destinazione e 96 breve pin pad.
   2. Selezionare il programma matrice 1:4 . In questo modo, piastre quattro 96 Colonia (ognuno dei quali contiene un diverso TF) saranno consolidate nella piastra una 384 Colonia. Non utilizzare il riciclo o rivisitare opzioni per evitare la contaminazione tra diversi piatti.
   3. Le piastre del sacchetto e incubare lato agar maculato 384-Colonia matrice fino a 30 ° C per 2 giorni.
4. Generazione di 1.536 matrici di Colonia in lastre rettangolari di Sc −Trp
   Nota: Questo si tradurrà in matrici che contengono quattro colonie per ogni TF-preda.
   1. Nel robot, selezionare 384 piastre di agar come origine, le piastre di 1.536 agar come destinazione e 384 breve pin pad.
   2. Selezionare il programma di singola origine di analisi 1:4. L'obiettivo è quello di copiare ogni colonia in quattro colonie di ottenere quadruplicato. Utilizzare il riciclo e rivisitare opzioni come comporta la copia quattro volte ogni Colonia.
   3. Le piastre del sacchetto e incubare lato agar maculato 1536-Colonia matrice fino a 30 ° C per 3 giorni.
5. Amplificando la matrice di 1.536 Colonia in lastre rettangolari di Sc −Trp
   1. Nel robot, selezionare 1.536 piastre di agar come fonte, 1.536 piastre di agar come destinazione e 1.536 breve pin pad.
   2. Selezionare il programma Replicare molti per replicare copie di 3 – 4. Utilizzare il riciclo e rivisitare opzione, ma buttare fuori il pad quando si passa a un piatto diverso della matrice per evitare la contaminazione incrociata.
   3. Le piastre del sacchetto e incubare lato agar maculato 1536-Colonia matrice fino a 30 ° C per 3 giorni per utilizzare per gli accoppiamenti passaggi (Vedi sotto). Dopo di che, è necessario tenere le piastre a temperatura ambiente e copiare nuovamente dopo 7 giorni per un nuovo round di screening.

3. eY1H schermo

1. Preparazione del DNA-esca ceppo prati per accoppiamento
   1. Individuare il lievito DNA-esca ceppi su un piatto −H Sc −U e crescere per 3 giorni a 30 ° C.
   2. Striscia il lievito in un 15 cm Sc −U −H piastra utilizzando uno stuzzicadenti sterile, affinché ogni piatto si adatta 12 – 16 diversi ceppi. Incubare un giorno a 30 ° C.
   3. Striscia il lievito in un 15 cm Sc −U −H piastra utilizzando uno stuzzicadenti sterile, affinché ogni piatto si adatta 4 diversi ceppi. Incubare per un giorno a 30 ° C.
   4. Raschiare il lievito utilizzando uno stuzzicadenti sterile, facendo attenzione a non rimuovere qualsiasi agar e aggiungerla in una provetta da 1,5 con 500 µ l di acqua sterile.
   5. Aggiungere 10 – 15 perline di vetro sterile su una piastra rettangolare di YAPD. Aggiungere la sospensione di lievito sulla piastra ed agitare accuratamente in tutte le direzioni per 1 min affinché che il lievito si sviluppa attraverso tutto il piatto.
   6. Capovolgere la piastra immediatamente e toccare in modo che le perline andare al coperchio. Rimuovere e riciclare le perline.
   7. Le piastre del sacchetto e incubare agar-lato giù per 1 – 2 giorni a 30 ° C. Quindi procedere al passaggio degli amori.
2. Accoppiamento di lievito DNA-esca e TF matrice ceppi
   1. Trasferire la matrice TF in un piatto rettangolare YAPD con il robot. Selezionare la piastra di 1.536 agar come origine e destinazione e il breve 1.536 pin pad. Selezionare il programma di Replicare molti . Ogni piastra di matrice TF può essere utilizzato per trasferire a piastre YAPD 3 – 4 (a seconda del numero di piastre della matrice). Le piastre di matrice TF utilizzate per l'accoppiamento devono essere vecchio di 2 – 3 giorni, ma non più come accoppiamento potrebbe essere inefficiente.
   2. Trasferire il prato di un ceppo di DNA-esca per le piastre YAPD già contenente la matrice TF con il robot. Selezionare la piastra di 1.536 agar come origine e destinazione e il breve 1.536 pin pad. Selezionare il programma di Replicare molti . Utilizzare un offset casuale nell'origine con un raggio di ~0.6 mm per evitare l'assunzione di lievito dal punto stesso e mescolare il bersaglio per facilitare il contatto tra ceppi di lievito. Utilizzare il prato contenente i ceppi di DNA-esca (sezione 3.1) come fonte e le piastre YAPD che contiene la matrice TF ha notato al punto 3.2.1 come destinazione.
   3. Le piastre del sacchetto e incubare agar lato fino a 30 ° C per 1 giorno.
3. Selezione di lievito diploide
   1. Trasferire il lievito accoppiato dalle piastre YAPD per piastre di Sc −U −Trp con il robot. Selezionare la piastra di 1.536 agar come origine e destinazione e il breve 1.536 pin pad. Selezionare il programma di replicare . Mescolare sull'origine e sulla destinazione.
   2. Le piastre del sacchetto e incubare agar lato fino a 30 ° C per 2 – 3 giorni (incubazione più lungo porta ad attività del reporter di alta priorità bassa).
4. Trasferimento a piastre della lettura
   1. Trasferire il lievito diploide dalle piastre −Trp Sc −U a lettura lastre rettangolari Sc −U −H −Trp + 5mm 3AT + 0,4 mM X-gal utilizzando il robot. Selezionare le piastre di 1.536 agar come origine e destinazione e il breve 1.536 pin pad. Selezionare il programma di replicare .
   2. Le piastre del sacchetto e incubare agar lato fino a 30 ° C fino a 7 giorni.
5. Imaging delle piastre della lettura
   1. Per i ceppi di DNA-esca con attività del reporter di alta priorità bassa, è possibile scattare foto nei giorni 2, 3 e 4. In caso contrario, è possibile scattare foto ai giorni 4 e 7. Interazioni positive sono identificati dal colore blu e la crescita delle colonie di lievito e possono essere determinate manualmente, o può essere determinato utilizzando software di analisi di immagine.

Risultati

Tre fattori principali da considerare quando analizzando i risultati dalle analisi eY1H: l'attività del reporter sfondo del ceppo del DNA-esca, la forza dell'attività di giornalista corrispondente a interazioni TF-DNA e il numero di colonie positive. L'attività del reporter sfondo (cioè, autoactivity) del ceppo del DNA-esca si riferisce al colore delle colonie di lievito nella piastra di lettura, anche in assenza di un TF-preda e alla crescita complessiva. Idealmente, non autoactive ceppi mostrano un sfondo bianco o ...

Discussione

L'approccio di screening degli amori robotici eY1H descritto qui notevolmente aumenta il throughput per identificare l'insieme di TFs che si legano ad una regione di DNA di interesse, rispetto al precedente screening libreria o screening allinearono approcci basati sulla trasformazione. Inoltre, le interazioni di TF-DNA rilevate da eY1H le analisi sono altamente riproducibili come il 90% delle interazioni rilevate sono testati positivi per tutte le quattro colonie in TF e 90% delle interazioni verificare nuovamente in un...

Materiali

Name	Company	Catalog Number	Comments
3-Amino-1,2,4-triazole (3AT) ~95 % TLC	Sigma	A8056-100G	Competitive inhibitor for products of HIS3 gene
Adenine sulfate (hemisulfate), dihydrate	US Biologicals	A0865	Required for proper yeast growth
Agar High Gel Strength - Bacteriological grade	American International Chemical	AGHGUP	Nutritive media for yeast growth
Ammonium Sulfate	US Biologicals	A1450	Nitrogen source in synthetic yeast media
D+ Glucose Anhydrous	US Biologicals	G3050	Required for yeast growth
Drop-Out Mix minus His, Leu, Tryp and Uracil, adenine rich w/o yeast nitrogen base	US Biologicals	D9540-02	Synthetic complete media required for yeast growth
edge Multiparameter pH Meter	Hanna Instruments	HI2020-01	To measure pH of selective media
Flat Toothpicks 750 ct	Diamond		To streak yeasts on petridishes
Glass Beads	Walter Stern	100C	To spreak yeast when making lawns
Glycerol ≥99%	Millipore Sigma	G9012-1L	Required to make frozen yeast stocks
L-Histidine	US Biologicals	H5100	For yeast growth selection in selective media
L-Leucine	US Biologicals	L2020-05	For yeast growth selection in selective media
L-Tryptophan	Sigma	T-0254	For yeast growth selection in selective media
N,N-Dimethylformamide	Sigma	319937-1L	To make X-gal solution
Omnipense Elite	Wheaton	W375030-A	For dispensing accurate volumes of media into Singer plates
Peptone, Bacteriological	American International Chemical	PEBAUP	Protein source required for yeast growth
Petri Dish, 150 mm x15 mm	VWR	10753-950	For growing yeast baits for screening
PlusPlates	Singer Instruments	PLU-003	To make rectangular agar plates to use with Singer Robot
Precision Low Temperature BOD Refrigerated Incubator	ThermoFisher Scientific	PR205745R	To incubate yeast plates at constant temperature
RePads 1,536 short	Singer Instruments	REP-005	To transfer the TF-prey array, mate yeast, and transfer yeast to diploid selection and readout plates
RePads 384 short	Singer Instruments	REP-004	To transfer TF-prey array from 384 to 1,536 colony format
RePads 96 long	Singer Instruments	REP-001	To transfer TF-prey array from glycerol stock to agar plate
RePads 96 short	Singer Instruments	REP-002	To transfer TF-prey array from 96 to 384 colony format
Singer HDA RoToR robot	Singer Instruments		For transfering yeast in high-throughput manner
Sodium Hydroxide (Pellets/Certified ACS)	Fisher	S318-1	For adjusting pH of selective media
Sodium Phosphate dibasic heptahydrate	Santa Cruz Biotechnology	sc-203402C	Required for LacZ reporter activity on X-gal
Sodium Phosphate monobasic monohydrate	Santa Cruz Biotechnology	sc-202342B	Required for LacZ reporter activity on X-gal
Uracil	Sigma	U0750-100G	For yeast growth selection in selective media
X-gal (5-Bromo-4-chloro-3-indoxyl-beta-Dgalactopyranoside)	Gold Biotechnology	X4281C100	β-galactosidase turns colorless X-gal blue to detect protein-DNA interaction
Yeast Extract	US Biologicals	Y2010	Nutritious medium for growth and propagation of yeast
Yeast Nitrogen Base (powder) w/o AA, carbohydrate and w/o AS	US Biologicals	Y2030	Required for vigorous yeast growth