Microdissezione del cervello di topo in regioni funzionalmente e anatomicamente diverse

Riepilogo

Presentiamo un protocollo pratico, passo-passo, rapido per la rimozione del cervello del topo e la dissezione di regioni discrete dal tessuto cerebrale fresco. Ottenere regioni cerebrali per l'analisi molecolare è diventato routine in molti laboratori di neuroscienze. Queste regioni cerebrali vengono immediatamente congelate per ottenere dati trascrittomici di alta qualità per l'analisi a livello di sistema.

Abstract

Il cervello è il centro di comando per il sistema nervoso dei mammiferi e un organo con un'enorme complessità strutturale. Protetto all'interno del cranio, il cervello è costituito da un rivestimento esterno di materia grigia sopra gli emisferi noto come corteccia cerebrale. Sotto questo strato risiedono molte altre strutture specializzate che sono essenziali per molteplici fenomeni importanti per l'esistenza. L'acquisizione di campioni di specifiche regioni cerebrali lorde richiede passaggi di dissezione rapidi e precisi. Resta inteso che a livello microscopico, esistono molte sottoregioni e probabilmente attraversano i confini regionali arbitrari che imponiamo ai fini di questa dissezione.

I modelli murini sono abitualmente utilizzati per studiare le funzioni e le malattie del cervello umano. I cambiamenti nei modelli di espressione genica possono essere limitati a specifiche aree cerebrali mirate a un particolare fenotipo a seconda dello stato patologico. Pertanto, è di grande importanza studiare la regolazione della trascrizione rispetto alla sua organizzazione strutturale ben definita. Una comprensione completa del cervello richiede lo studio di regioni cerebrali distinte, la definizione di connessioni e l'identificazione delle differenze chiave nelle attività di ciascuna di queste regioni cerebrali. Una comprensione più completa di ciascuna di queste regioni distinte può aprire la strada a trattamenti nuovi e migliori nel campo delle neuroscienze. Qui, discutiamo una metodologia passo-passo per sezionare il cervello del topo in sedici regioni distinte. In questa procedura, ci siamo concentrati sulla rimozione cerebrale del topo maschio C57Bl / 6J (6-8 settimane) e sulla dissezione in più regioni utilizzando punti di riferimento neuroanatomici per identificare e campionare regioni cerebrali discrete funzionalmente rilevanti e comportamentali. Questo lavoro contribuirà a gettare solide basi nel campo delle neuroscienze, portando ad approcci più mirati nella comprensione più profonda della funzione cerebrale.

Introduzione

Il cervello, insieme al midollo spinale e alla retina, comprende il sistema nervoso centrale che esegue comportamenti complessi, controllati da tipi di cellule specializzate, posizionate con precisione e interagenti in tutto il corpo¹. Il cervello è un organo complesso con miliardi di neuroni interconnessi e glia con circuiti precisi che svolgono numerose funzioni. È una struttura bilaterale con due lobi distinti e diversi componenti cellulari². Il midollo spinale collega il cervello al mondo esterno ed è protetto da ossa, meningi e liquido cerebrospinale e indirizza i messaggi da e verso il cervello ^2,3,4. La superficie del cervello, la corteccia cerebrale, è irregolare e presenta pieghe distinte, chiamate gyri, e solchi, chiamati solchi, che separano il cervello in centri funzionali⁵. La corteccia è liscia nei mammiferi con un piccolo cervello ^6,7. È importante caratterizzare e studiare l'architettura del cervello umano al fine di comprendere i disturbi legati alle diverse regioni del cervello, nonché i suoi circuiti funzionali. La ricerca neuroscientifica si è espansa negli ultimi anni e una varietà di metodi sperimentali vengono utilizzati per studiare la struttura e la funzione del cervello. Gli sviluppi nel campo della biologia molecolare e a livello di sistema hanno inaugurato una nuova era di esplorazione della complessa relazione tra le strutture cerebrali e il funzionamento delle molecole. Inoltre, la biologia molecolare, la genetica e l'epigenetica si stanno rapidamente espandendo, permettendoci di far progredire la nostra conoscenza dei meccanismi sottostanti coinvolti nel funzionamento dei sistemi. Queste analisi possono essere effettuate su una base molto più localizzata, per aiutare a indirizzare la ricerca e lo sviluppo di terapie più efficaci.

Il cervello dei mammiferi è strutturalmente definito in regioni discrete chiaramente identificabili; Tuttavia, le complessità funzionali e molecolari di queste strutture discrete non sono ancora chiaramente comprese. La natura multidimensionale e multistrato del tessuto cerebrale rende questo paesaggio difficile da studiare a livello funzionale. Inoltre, il fatto che più funzioni siano eseguite dalla stessa struttura e viceversa complica ulteriormente la comprensione del cervello⁸. È fondamentale che l'approccio sperimentale eseguito per la caratterizzazione strutturale e funzionale delle regioni cerebrali utilizzi precise metodologie di ricerca per ottenere coerenza nel campionamento per correlare l'architettura neuroanatomica con la funzione. La complessità del cervello è stata recentemente spiegata utilizzando il sequenziamento a singola cellula ^9,10 come il giro temporale del cervello umano che è composto da 75 tipi di cellule distinte ¹¹. Confrontando questi dati con quelli provenienti da una regione analoga del cervello del topo, lo studio non solo rivela somiglianze nella loro architettura e nei tipi di cellule, ma presenta anche le differenze. Per svelare i complessi meccanismi, è quindi importante studiare diverse regioni del cervello con la massima precisione. Le strutture e le funzioni conservate tra un cervello umano e quello di topo consentono l'uso di un topo come surrogato preliminare per chiarire la funzione cerebrale umana e i risultati comportamentali.

Con il progresso degli approcci di biologia dei sistemi, ottenere informazioni da regioni cerebrali discrete nei roditori è diventata una procedura chiave nella ricerca neuroscientifica. Mentre alcuni protocolli come la microdissezione a cattura laser¹² possono essere costosi, i protocolli meccanici sono economici ed eseguiti utilizzando strumenti comunemente disponibili^13,14. Abbiamo utilizzato più regioni cerebrali per i saggi trascrittomici¹⁵ e abbiamo sviluppato una procedura pratica e rapida per sezionare le regioni cerebrali di topo di interesse in modo passo-passo in breve tempo. Una volta sezionati, questi campioni possono essere conservati immediatamente in condizioni fredde per preservare gli acidi nucleici e le proteine di questi tessuti. Il nostro approccio può essere eseguito più velocemente portando ad un'elevata efficienza e consentendo meno possibilità di deterioramento dei tessuti. Questo in definitiva, aumenta le possibilità di generare esperimenti di alta qualità e riproducibili utilizzando tessuti cerebrali.

Protocollo

La manipolazione degli animali e le procedure sperimentali sono state condotte in conformità con le linee guida europee, nazionali e istituzionali per la cura degli animali. Tutti gli esperimenti sugli animali sono stati approvati dall'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) presso il Centro dell'esercito americano per la ricerca sulla salute ambientale ora Walter Reed Army Institute of Research (WRAIR) ed eseguiti in una struttura accreditata dall'Associazione per la valutazione e l'accreditamento di Laboratory Animal Care International (AAALAC).
NOTA: La procedura verrà eseguita su topi maschi di età compresa tra sei e otto settimane del ceppo C57BL / 6j eutanasia per lussazione cervicale¹⁶. Non vengono eseguite perfusioni nel nostro laboratorio, ma questo protocollo potrebbe essere modificato in modo da poter eseguire perfusioni per eliminare il sangue dal sistema vascolare. Tutte le forniture necessarie per la dissezione sono elencate nella tabella dei materiali. La dissezione è suddivisa in tre componenti, tra cui la rimozione del cervello, la rimozione della ghiandola pituitaria e la dissezione del cervello. L'intento della raccolta del tessuto cerebrale è quello di elaborarli per saggi trascrittomici dopo estrazioni di RNA. Non appena la regione del cervello viene sezionata, trasferiamo immediatamente ciascuna delle regioni cerebrali in una fiala di congelatore già etichettata e quindi conserviamo la fiala in azoto liquido o -80 ° C.
NOTA: Una conoscenza approfondita della neuroanatomia è essenziale per eseguire questa procedura. Le sezioni orizzontali e longitudinali, così come le solite sezioni trasversali, dovrebbero essere studiate e apprese. Poiché il tessuto cerebrale si degrada molto rapidamente, non c'è tempo per consultare un atlante durante l'esecuzione di questa procedura.

1. Rimozione del cervello del topo

1. Bloccare la mascella della testa decapitata con un emostato (Figura 2i) e utilizzare una garza per riflettere il cuoio capelluto rostralmente creando ulteriormente un campo asciutto sul dorso del cranio (Figura 2ii).
2. Inserire le sottili forbici curve nel forame magno per separare le meningi aderenti. Qui, inserire le forbici all'apertura sulla base del cranio è il forame magno, dove il midollo spinale passa con la lama rivolta verticalmente (posizione a ore 12), ma parallela e premendo contro la superficie interna dell'osso della piastra basale (cioè squama occipitale) e ruotando la lama di quarantacinque ° verso il lato sinistro e poi verso il lato destro.
3. Continuare a ruotare il polso per sollevare l'osso della piastra basale che taglierà il centro dell'osso rimanente continuando nell'osso occipitale e nelle ossa intraparietali facendo leva sulle ossa a sinistra ea destra fino a quando non vengono rimosse. In modo simile, rimuovere l'osso occipitale e l'osso intraparietale per esporre il cervelletto.
   NOTA: A questo punto, la struttura ossea cava chiamata bolle timpaniche, sulla porzione posteriore ventrale del cranio che racchiude parti dell'orecchio medio e interno, può essere rimossa a meno che non si sezionino i lobi posteriori e anteriori delle ipofisi (Figura 2iii).
4. Rimuovere gli attacchi muscolari alla cresta temporale usando una lama a forbice affilata curva. Posizionare un arto delle forbici affilate curve sotto la sutura lambdoide che penetra nella giunzione dei seni trasversali e sagittali (Figura 2iv).
5. Avanzare le forbici rostralmente lungo la sutura mediosagittale fino al bregma e tagliarlo molto delicatamente sollevandolo con cura verso l'alto per evitare la lacerazione delle cortecce cerebrali. Si tratta di una fase critica della procedura (Figura 2v).
6. In questa fase, le ossa parietali vengono sollevate e ruotate raschiando così la superficie interna dell'osso per identificare e tagliare gli attaccamenti meningei rimanenti. Afferrare l'osso temporale facendo leva verso l'esterno, lontano dal cervello. Rimuovere l'osso frontale da ciascun lato usando forbici curve o un rongeur nell'orbita e tagliare coronalmente ad angolo retto rispetto alla cresta orbitale, ma non oltre la linea mediana (Figura 2vii).
7. Effettuare due tagli paralleli e distanti circa 4 mm nel piano sagittale (Figura 2viii).
   NOTA: non tagliare entrambi i lati con un solo tratto.
8. Rimuovere i frammenti dell'osso frontale evitando di lacerare la superficie cerebrale (Figura 2ix). A questo punto, utilizzate una forbice fine per tagliare la dura madre, che dovrebbe essere accessibile tra i bulbi olfattivi.
9. Capovolgere delicatamente il cranio per consentire alla gravità di aiutare nella rimozione del cervello, continuando a identificare e tagliare i restanti attaccamenti meningei e nervi cranici. Il cervello verrà rilasciato tagliando il più grande nervo trigemino attaccato al cervello ed è chiaramente visibile che si estende dalla base del calvario (Figura 2x).
   NOTA: Trasferire il cervello in una soluzione salina fredda (citrato di sodio privo di RNasi ghiacciata (0,9%) o soluzione fisiologica (0,9%) per un'ulteriore dissezione.

2. Dissezione delle pituitarie anteriori e posteriori

NOTA: Le ghiandole pituitarie sono ricoperte da una membrana simile a una tenda molto dura, con una cresta che corre lateralmente tra i nervi trigemino sinistro e destro. Queste strutture sono estremamente morbide e delicate e, come tali, si raccomanda che i lobi posteriori e anteriori delle ghiandole pituitarie siano sezionati separatamente in fasi, in situ, direttamente dal cranio. Immediatamente dopo la dissezione, trasferire la rispettiva ghiandola pituitaria in un flaconcino premarcato e conservare il flaconcino in azoto liquido, preferibilmente altrimenti -80 °C. La ghiandola pituitaria poggia esattamente sopra la giunzione delle ossa occipitale e basisfenoide; Se si flettono, l'architettura pituitaria viene interrotta.

1. Mantenere intatte le bolle uditive per assicurarsi che l'anatomia ipofisaria sia intatta e facilmente identificabile (Figura 2ix).
2. Sezionare il lobo posteriore dell'ipofisi seguito dal lobo anteriore dell'ipofisi, dal resto del cranio.
3. Fare un taglio parasagittale estremamente piccolo su entrambi i lati nella cresta della tenda membranosa e sollevare il lobo posteriore dell'ipofisi con una pinza ultrafine, facendo attenzione a non interrompere il tessuto ipofisario anteriore (Figura 2x).
4. Fare un taglio sagittale tra i margini laterali del lobo anteriore dell'ipofisi e il nervo trigemino più vicino e sollevare successivamente il lobo anteriore dell'ipofisi (Figura 2x).

3. Dissezione del cervello del topo

NOTA: Immediatamente dopo la rimozione del cervello e dell'ipofisi, viene eseguita un'ulteriore dissezione su un blocco di acciaio inossidabile pre-raffreddato (Figura 3). Dopo la dissezione, trasferire le regioni cerebrali in flaconcini premarcati e trasferire i flaconcini preferibilmente in azoto liquido altrimenti -80 °C. Le strutture prodotte con il metodo top-down (in ordine cronologico) includono potenzialmente quanto segue: cervelletto (CB), tronco encefalico/cervello posteriore (ponte e midollo allungato) (HB), bulbi olfattivi (OB) come bulbi olfattivi accessori, corteccia prefrontale mediale (MPFC), corteccia prefrontale laterale (FCX), corpo striato anteriore e posteriore (ST), striato ventrale (VS) costituito dal nucleo accumbens (NAC) e tubercolo olfattivo (OT), setto (SE), area preottica, corteccia piriforme (PFM), ipotalamo (HY), amigdala (AY), ippocampo (HC), corteccia cingolata posteriore (CNG), corteccia entorinale (ERC), mesencefalo (MB) con talamo e resto della corteccia cerebrale (ROC) (Tabella 1). Regioni specifiche saranno discusse in ordine di isolamento, lavorando con un singolo emisfero.

1. Fai molta attenzione nel rimuovere il cervello dal calvario poiché i punti di riferimento possono essere distrutti in caso di lacerazioni. In questa fase, eseguire tutte le dissezioni utilizzando la protezione del viso, in particolare, una visiera da gioielliere 7x e l'illuminazione sarà fornita da lampade chirurgiche posizionate su ciascuna delle spalle del dissettore. Gran parte della dissezione sarà eseguita utilizzando piccole pinze curve in modalità smussata (cioè pinze di Graefe).
2. Posizionare il cervello su un blocco di acciaio inossidabile (Figura 4i e Figura 4ii). Mantenere il blocco freddo circondandolo con ghiaccio e una soluzione salina ghiacciata. Inumidire periodicamente il tessuto con soluzione salina ghiacciata per preservare le strutture.
3. Posiziona il cervello in modo tale che le cortecce cerebrali siano rivolte verso l'alto. Utilizzando piccole pinze curve, riflettere delicatamente il CB esponendo i peduncoli cerebellari superiori, medi e inferiori e rimuovere il CB (Figura 4iii e Figura 4iv).
4. Fai un taglio mediosagittale partendo dal dorso e tra l'OB e gli emisferi cerebrali (Figura 4v) e assicurati di non estenderti oltre la commissura anteriore. A questo punto, il verme può essere facilmente separato dalle porzioni laterali e l'HB sarà ottenuto da un taglio coronale al margine anteriore del ponte.
5. Separare il midollo da un taglio coronale sul margine posteriore del ponte.
   NOTA: A questo punto, il diencefalo, la parte posteriore del proencefalo contenente l'epitalamo, il talamo, l'ipotalamo e il talamo ventrale e il terzo ventricolo, sarà girato con il lato ventrale verso l'alto e un taglio mediosagittale sarà fatto dal chiasma ottico rostralmente. La dissezione degli emisferi cerebrali seguita dalla rimozione di OB da uno degli emisferi sarà in questa fase (Figura 4v e Figura 4vi).
6. Separare gli emisferi cerebrali (Figura 4v) prima di sezionare ulteriormente il diencefalo (Figura 4v). L'approccio dorsale sarà impiegato da un'attenta dissezione smussata per preservare i punti di riferimento della linea mediana criticamente salienti. Visualizza ogni connessione interemisferica prima di reciderle in quanto ciò ridurrà al minimo la possibilità di deviare dalla linea mediana.
   NOTA: In questa fase uno degli emisferi cerebrali (Hemibrain) può essere conservato e il secondo emisfero può essere utilizzato per un'ulteriore dissezione.
7. Far scivolare le lame chiuse di una piccola pinza curva, sotto il corpo calloso e allargare delicatamente per ritrarre la neocorteccia bilateralmente. Il corpo calloso è un'ampia fascia di fibre nervose che unisce i due emisferi che saranno sezionati senza mezzi termini pizzicando con la pinza, senza disturbare le strutture della linea mediana che si trovano sotto.
   NOTA: Le facce mesiali degli emisferi avranno più punti di riferimento visibili come strutture mieliniche come il genu del corpo calloso, i fornici e la commissura anteriore. Inoltre, sebbene alcuni millimetri laterali alla linea mediana, possono essere visibili anche il tratto mammillotalamico e il fascicolo retroflexus.
8. Taglia in due le molteplici strutture che attraversano la linea mediana. Ciò includerà il corpo calloso, la commissura anteriore, la commissura del fornice ventrale, la commissura posteriore, la commissura del fornice dorsale, la decussazione supra mammillare, la commissura del collicolo superiore, la commissura del fornice ventrale e le fibre talamiche periventricolari.
9. Prestare particolare attenzione in questa fase all'interno o vicino alla linea mediana che potrebbe essere parzialmente compromessa dal metodo di avvicinamento dorsale. Tutte le strutture di follow-up sono a rischio se non eseguite con attenzione.
10. Rimuovere l'OB (a forma di cuneo e di colore più chiaro) e i bulbi olfattivi accessori seguiti dalla raccolta dell'MPFC (area 1 della corteccia cingolata, prelimbica, infralimbica, orbitale mediale e secondaria [M2]) e FCX da un taglio coronale che viene effettuato 1 mm anteriormente al genu del corpo calloso (Figura 4vii). Dividere la sezione risultante per un taglio parasagittale di 1/3 della distanza dalla superficie mediale a quella laterale, ottenendo MPFC medialmente e il resto di FCX lateralmente. La corteccia cingolata è l'analogo del topo di MPFC.
    NOTA: Questa fetta di tessuto conterrà anche una piccola quantità di M2 (corteccia motoria secondaria) ¹⁷ ed è inevitabile.
11. Effettuare un taglio coronale a livello della commissura anteriore che porti alla visibilità dell'arto anteriore della commissura anteriore nella sezione trasversale sulla faccia rostrale della sezione coronale risultante, mentre la porzione trasversale sarà rivelata nella faccia caudale della sezione. Questo è un punto di riferimento di conferma per NAC¹⁸. Il VS è composto da NAC e OT.
    NOTA: C'è un arto anteriore oltre al segmento trasversale nella commissura anteriore ed è chiamato commissura anteriore, pars anteriore.
12. Parzialmente tagliato orizzontalmente attraverso la porzione trasversale della commissura anteriore dalla linea mediana sotto il corno anteriore del ventricolo laterale, per liberare il nucleo del setto dorsalmente e il VS ventralmente. Rimuovere la piccola quantità di corteccia dalla superficie laterale dove verranno rimossi NAC e OT .
13. Separare la porzione rostrale della ST dalla corteccia sovrastante tramite bisturi curvo tagliato appena fuori dalla capsula esterna facendo attenzione a non includere tessuto striatale nel campione corticale. A questo punto, i nuclei del setto /SE saranno visibili e potranno essere facilmente prelevati da questa fetta (Figura 4viii).
    NOTA: I limiti anteriore e posteriore della PFM sono definiti da piani coronali immaginari che sono in linea rispettivamente con la commissura anteriore e i corpi mammillari. Il limite mediale è definito dalla capsula esterna¹⁸.
14. Sulla superficie laterale dell'emisezione rimanente del diencefalo, effettuare un taglio orizzontale parziale lungo il solco rinale che si estende caudalmente, ma solo fino al livello immaginario del piano coronale con i corpi mammillari. Fare un taglio coronale parziale, estendendosi medialmente 1 mm dalla superficie corticale laterale nel piano dei corpi mammillari dell'HY. Qui, l'incisione para-sagittale nel piano del claustrum libererà la PFM (Figura 4ix e Figura 4x).
    NOTA: Sulla superficie mediale della restante emisezione del diencefalo, saranno visibili numerose caratteristiche anatomiche tra cui i corpi mammillari, il fascicolo retroflesso e la stria midollare. Sarà visibile un motivo semicircolare (lato concavo dorsale), che indica il margine tra il talamo e l'HY. L'HY sarà facilmente identificabile sulla vista della sezione mediosagittale per il chiasma ottico anteroventralmente e la commissura anteriore anterodoralmente e i corpi mammillari insieme al fascicolo retroflesso posteriormente. Questi ultimi punti di riferimento sono stati ben visualizzati nell'atlante¹⁷ e nel contesto del proencefalo del topo albino¹⁹.
15. Fare un taglio coronale parziale posteriore ai corpi mammillari, estendendosi solo lateralmente fino al solco ipotalamico. A questo punto un taglio parasagittale lungo la lunghezza del solco ipotalamico ora libera l'HY .
16. Comportare l'eversione del ventricolo laterale per rivelare ulteriori connessioni intralimbiche e i restanti componenti del sistema limbico. Osservando la faccia mediale della rimanente emi-sezione del diencefalo, la pinza curva sarà l'opzione migliore in quanto consente al tecnico di manipolare attorno ad altre sezioni delicate dell'area circostante utilizzate per recidere il fornice e viene inserito nel ventricolo laterale e delicatamente espanso, usando la dissezione smussata per aprire il ventricolo e ruotare l'HC . 90° dal piano verticale a quello orizzontale. Potrebbe essere necessario utilizzare la lama # 11 per sezionare l'arteria coroideale / plesso coroideo poiché la punta appuntita può aiutare con tagli precisi.
17. Ruotare il CNG di 90° (ma nella direzione opposta rispetto all'HC) per essere sul piano orizzontale. Utilizzando una pinza, ruotare delicatamente l'HC di 180° verso l'esterno e lateralmente, in modo da rendere la superficie interna dell'ERC visibile e rivolta verso l'alto.
18. Una radiazione simile a un ventaglio di fibre mieliniche derivanti dall'ERC sarà vista convergere per formare il fascio angolare, compreso il percorso perforante e il suo attaccamento all'HC. Ruotare il talamo e MB di 180° dorsalmente per rivelare ventralmente l'AY.
19. Se necessario, sollevare il tratto ottico per rivelare l'attacco della stria terminale in quanto conterrà bande di fibre che corrono lungo il margine laterale della superficie ventricolare del talamo all'AY e renderà chiari i contorni dell'AY .
    NOTA: L'HC e il fornice saranno chiaramente visibili nella loro interezza, annidati nel ventricolo laterale e possono essere facilmente sollevati. Il ventricolo laterale sarà rivestito con pia madre e le origini a ventaglio del percorso perforante attraverso l'aspetto subpiale molto trasparente dell'ERC saranno visibili²⁰.
20. La superficie esterna della ERC mediale avrà uno strato prominente visibile di grandi cellule piramidali. Inoltre, una densa convergenza di fibre coloranti del Golgi sarà una caratteristica saliente nell'ERC mediale. In questa procedura di dissezione, dopo aver eliminato il ventricolo laterale, queste fibre saranno facilmente visibili sulla superficie mediale attraverso la pia madre, che riveste le superfici interne dei ventricoli, formando una struttura a ventaglio molto prominente.
21. Si noti che le fibre si stanno raccogliendo sottopialmente, discendendo e lasciando l'ERC ventrale, estendendosi posteriormente e poi ascendendo verticalmente per perforare l'HC. Questa struttura a ventaglio nel CER sarà utilizzata per definire i margini ai fini della dissezione. Identificare e rimuovere nell'ordine delle strutture AY, ERC, CNG e HC .
    NOTA: La definizione di un buon punto di riferimento per la dissezione AY sarà una chiave per il passo successivo e la giunzione sul margine posteriore in cui la stria terminalis incontra l'AY sarà un buon punto.
22. A questo punto, le strutture rimanenti includono il talamo e il MB. Confermare l'identificazione del talamo mediante la visualizzazione della stria midollare sulla sua superficie dorsale che si estende nel piano rostrocaudale della linea mediana. Separare completamente il talamo dal mesencefalo con un taglio coronale caudale all'habenula e rostrale ai collicoli superiori. Il ROC viene salvato in questo passaggio.
23. A questo punto completa la raccolta di tutte le regioni del cervello e, immediatamente (man mano che ciascuna viene ottenuta) conserva i campioni congelati fino a ulteriori elaborazioni.

Risultati

La nostra comprensione della complessa struttura e funzione del cervello si sta rapidamente evolvendo e migliorando. Il cervello contiene più regioni distinte e la costruzione di una mappa molecolare può aiutarci a capire meglio come funziona il cervello. In questo documento metodologico, abbiamo discusso la dissezione del cervello del topo in più regioni distinte (Tabella 1). In questo protocollo, le strutture sono identificate in base ai punti di riferimento critici e si ottiene mantenendo il tessut...

Discussione

Il cervello dei mammiferi è un organo complesso composto da una serie di cellule morfologicamente distinte e funzionalmente uniche con diverse firme molecolari e regioni multiple che svolgono funzioni specializzate e discrete. La procedura di dissezione qui riportata può avere più obiettivi a seconda delle esigenze del laboratorio. Nel nostro laboratorio abbiamo valutato la trascrizione in più regioni del cervello raccolte da topi esposti a PTSD come lo stress¹⁶ . Vorremmo studiare ulteriormen...

Materiali

Name	Company	Catalog Number	Comments
Brain Removal
Deaver scissors	Roboz Surgical Store	RS-6762	5.5" straight sharp/sharp
Deaver scissors	Roboz Surgical Store	RS-6763	5.5" curved sharp/sharp
Delicate operating scissors	Roboz Surgical Store	RS-6703	4.75" curved sharp/sharp
Delicate operating scissors	Roboz Surgical Store	RS-6702	4.75" straight sharp/sharp
Light operating scissors	Roboz Surgical Store	RS-6753	5" curved Sharp/Sharp
Micro spatula, radius and tapered flat ends			stainless steel mirror finish
Operating scissors 6.5"	Roboz Surgical Store	RS-6846	curved sharp/sharp
Tissue forceps	Roboz Surgical Store	RS-8160	4.5” 1X2 teeth 2mm tip width
Rongeur (optional)	Roboz Surgical Store	RS-8321 many styles to choose	Lempert Rongeur 6.5" 2X8mm
Pituitary Dissection
Scalpel handle	Roboz Surgical Store	RS-9843	Scalpel Handle #3 Solid 4"
and blades	Roboz Surgical Store	RS-9801-11	Sterile Scalpel Blades:#11 Box 100 40mm
Super fine forceps Inox	Roboz Surgical Store	RS-4955	tip size 0.025 X 0.005 mm
Brain Dissection
A magnification visor	Penn Tool Col	40-178-6	2.2x Outer and 3.3x Inner Lens Magnification, Rectangular Magnifier
Dissection cold plate	Cellpath.com	JRI-0100-00A	Iceberg cold plate & base
Graefe forceps, full curve extra delicate	Roboz Surgical Store	RS-5138	0.5 mm Tip 4” (10 cm) long
Light operating scissors	Roboz Surgical Store	RS-6753	5" curved sharp/sharp
Scalpel handle	Roboz Surgical Store	RS-9843 (repeated above)	Scalpel Handle #3 Solid 4"
and blades (especially #11)	Roboz Surgical Store	RS-9801-11 (repeated above)	Sterile Scalpel Blades:#11 Box 100 40mm
Spatula	Amazon	MS-SQRD9-4	Double Ended Spatula Square AND Round End
Tissue forceps	Roboz Surgical Store	RS-8160 (repeated above)	4.5” 1X2 teeth