JoVE Logo

Accedi

È necessario avere un abbonamento a JoVE per visualizzare questo. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Il presente protocollo descrive la fabbricazione di prototipi di biorilevamento a basso costo basati su nanosistemi utili per rilevare con precisione le proteine virali (a livello di Fg). Una piattaforma di sensori così piccola consente applicazioni point-of-care che possono essere integrate con l'Internet of Medical Things (IoMT) per soddisfare gli obiettivi di telemedicina.

Abstract

Questo prototipo di modello di rilevamento prevede lo sviluppo di un chip di rilevamento riutilizzabile, a doppio rivestimento in ossido di grafene (GrO), doppio capacitivo interdigitato (DIDC) per rilevare in modo specifico e rapido il virus del coronavirus 2 della sindrome respiratoria acuta grave (SARS-CoV-2). Il DIDC fabbricato comprende un substrato di vetro contenente Ti/Pt smaltato con ossido di grafene (GrO), che viene ulteriormente modificato chimicamente con EDC-NHS per immobilizzare gli anticorpi (Abs) ostili al SARS-CoV-2 sulla base della proteina spike (S1) del virus. I risultati di indagini approfondite hanno dimostrato che il GrO ha fornito una superficie ingegnerizzata ideale per l'immobilizzazione Ab e ha migliorato la capacità per consentire una maggiore sensibilità e bassi limiti di rilevamento. Questi elementi sintonizzabili hanno contribuito a realizzare un ampio intervallo di rilevamento (da 1,0 mg/mL a 1,0 fg/mL), un limite di rilevamento minimo di 1 fg/mL, un'elevata reattività e una buona linearità di 18,56 nF/g e un tempo di reazione rapido di 3 s. Inoltre, in termini di sviluppo di framework di test point-of-care (POC) finanziariamente sostenibili, la riutilizzabilità del biochip GrO-DIDC in questo studio è buona. Significativamente, il biochip è specifico contro gli antigeni trasmissibili per via ematica ed è stabile fino a 10 giorni a 5 °C. Grazie alla sua compattezza, questo biosensore in scala ridotta ha il potenziale per la diagnostica POC dell'infezione da COVID-19. Questo sistema è in grado di rilevare anche altre gravi malattie virali, sebbene sia in fase di sviluppo una fase di approvazione che utilizza altri esempi di virus.

Introduzione

Alla fine del 2019, alla fine del 2019, nella città di Wuhan, in Cina, è emersa una pandemia virale causata da un nuovo coronavirusbeta 1 (ossia 2019-nCoV), che è stata successivamente denominata sindrome respiratoria acuta grave coronavirus 2 (SARS-CoV-2)2 (di seguito prevalentemente indicato come virus), che coinvolge un cluster polmonare e un grave distress respiratorio acuto.. A causa della sua rapida trasmissione da uomo a uomo in tutto il mondo, dell'alto tasso di infezione, dell'alto tasso di mortalità e dei gravi effetti avversi potenzialmente letali4, durante la pandemia, la ricerca virologica5 si è evoluta rapidamente per identificare l'organizzazione e la struttura genomica del virus 5,6. I sintomi di COVID-19 7,8 includono febbre alta, tosse secca e dolore generalizzato9. È importante sottolineare che diversi sierotipi del virus portano a diverse gravità della malattia10. Inoltre, i portatori asintomatici possono potenzialmente diffondere il virus. Di solito, al microscopio, le particelle del virus COVID-19 mostrano proiezioni simili a clava formate da proteine spike11. Pertanto, per controllare la diffusione di questo nuovo agente patogeno, l'individuazione dei casi deve essere tempestiva ed efficiente. Pertanto, il rilevamento ultrasensibile, rapido e selettivo del virus nelle prime fasi dell'infezione virale è diventato cruciale 2,11. Il distanziamento sociale/fisico è necessario per evitare la trasmissione12 del virus. Le agenzie sanitarie stanno ponendo l'accento sullo sviluppo di strumenti diagnostici intelligenti e di nanosistemi13. Infatti, come suggerito dalle agenzie sanitarie, i test mirati e di massa14,15 sono richiesti e sono ancora richiesti.

In linea di principio, i metodi di diagnosi biologica in corso come la reazione a catena della polimerasi a trascrizione inversa (RT-PCR) sono i mezzi migliori per l'identificazione di massa di SARS-CoV-2, come nel caso del coronavirus correlato alla sindrome respiratoria mediorientale (MERS-CoV)16 e SARS-CoV-117. In questo contesto, l'attuale identificazione standard della contaminazione da SARS-CoV-2 dipende dal miglioramento delle caratteristiche specifiche dell'infezione18,19. Inoltre, dovrebbe essere presa in considerazione la variazione dell'infezione da SARS-CoV-2 in base all'area, all'età, alla razza e al sesso. Con l'obiettivo finale di salvare vite umane, è fondamentale creare strumenti di diagnosi rapida per l'uso presso il punto di cura (POC)20,21.

In questo contesto, strategie regolari come l'ibridazione in situ a fluorescenza (FISH), l'esame con immunoassorbimento proteico (ELISA), i metodi basati su microsfere, i test elettrochimici e la risonanza magnetica, la PET e il NIRFOI22 hanno una bassa sensibilità ai bassi livelli di virus, bassa selettività e bassa capacità di riutilizzo; Inoltre, tali procedure presentano degli svantaggi, tra cui costosi sistemi diagnostici di biorilevamento, reagenti non riutilizzabili e la necessità di una forza lavoro altamente qualificata23. Pertanto, queste tecniche approfondite non possono essere viste come metodi POC veloci, ragionevoli, eccezionalmente specifici o sensibili24,25. Da notare che esistono diversi tipi di biosensori basati su DNA e immunizzatori che utilizzano tecniche composte, capacitive ed elettriche 18,26,27,28. Ad esempio, i biosensori elettrici del DNA, che hanno un'elevata reattività, possono essere ridimensionati semplicemente e sono sintonizzabili29,30, sono stati prodotti per il rilevamento di Ebola31, Zika, MERS-CoV e SARS-CoV 32,33,34. Allo stesso modo, è stato creato un biosensore a semiconduttore a impatto di campo (FET) per rilevare la proteina spike del virus utilizzando determinati anticorpi (monoclonali) immobilizzati su dispositivi rivestiti di grafene35,36. Tuttavia, questa nuova strategia è meno sensibile della RT-PCR. Inoltre, più recentemente, è stato sviluppato un framework di rilevamento 3D basato su terminali ricoperti di ossido di grafene diminuito (GrO) con nanoparticelle di aerosol per il virus, che ha un basso limite di identificazione (2,8 × 10-15 M); in ogni caso, la complessa struttura del biosensore proposta35 è stata testata per quanto riguarda l'uso del POC e confrontata con altre strategie di biosensori esistenti utilizzate per il rilevamento del virus 35,37,38.

In questo studio, abbiamo progettato e fabbricato un biosensore DIDC basato su GrO in scala ridotta e riutilizzabile per identificare la proteina spike del virus senza le limitazioni descritte sopra per altri biosensori. Questo biosensore consente il rilevamento a livello del femtogramma (fg) entro 3 s 18,27 dal tempo di risposta. Per realizzare questa ricerca, sono stati scelti nanofiocchi di GrO per una migliore reattività e selettività, il che significa che è possibile rilevare basse concentrazioni della proteina dell'antigene virale da tamponi orofaringei o nasofaringei. Il GrO è un materiale appropriato, sinteticamente affidabile, coerente e conduttivo che può essere utilizzato in modo vantaggioso per applicazioni di biorilevamento 2,39,40,41. Inoltre, è stato utilizzato un approccio di ibridazione label-free con anticorpi IgG monoclonali, concentrandosi sulla proteina spike S1 del virus. Il biosensore SARS-CoV-2-GrO-DIDC fabbricato è riutilizzabile dopo un trattamento avanzato e la pulizia con una soluzione piranha. Questo biosensore ultraveloce, sensibile, selettivo, senza etichetta e riutilizzabile può essere utilizzato per il biorilevamento di campioni clinici e per applicazioni sanitarie personalizzate 26,42,43,44.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocollo

1. Pulizia del chip di rilevamento DIDC

  1. All'inizio dell'esperimento, pulire la superficie del chip DIDC26 con una soluzione piranha (H2SO4:H2O2in rapporto 3:1) e posizionarla sulla piastra calda a 80 °C per 15 minuti. Quindi, sciacquare la superficie del sensore con acqua distillata goccia a goccia utilizzando una pipetta per rimuovere completamente i reagenti di pulizia. Per garantire la completa rimozione del reagente, sciacquare la superficie con quattro o cinque gocce di alcol etilico.
    NOTA: Il chip DIDC è stato fabbricato a seguito di un rapporto precedentemente pubblicato26.
  2. Quindi, asciugare la superficie del sensore a temperatura ambiente per la completa rimozione dei reagenti per ottenere una superficie del sensore idrofila. Questo chip può essere utilizzato per l'ulteriore fabbricazione dello strato di ossido di grafene sul chip (passaggio 2).
  3. Coprire i cuscinetti degli elettrodi del chip del sensore puliti con nastro di poliimmide.

2. Fabbricazione del sottile strato di ossido di grafene sul chip di rilevamento DIDC

  1. Posizionare il chip al centro della macchina di rivestimento rotante in posizione orizzontale e aggiungere 4 μl di una soluzione acquosa di ossido di grafene monostrato (GO) disponibile in commercio (vedi Tabella dei materiali) sulla superficie del chip. Quindi, chiudere la camera di centrifuga e far funzionare per 2 minuti a 1.300 giri/min.
  2. Per la ricottura del truciolo di GO fabbricato, tenere il truciolo sulla piastra calda orizzontalmente per 40 minuti a 80 °C.

3. Reticolazione e funzionalizzazione del chip di rilevamento DIDC GO-glazed

  1. Eseguire la reticolazione del cloridrato di N-(3-dimetilamminopropil)-N'-etilcarbodiimmide (EDC) e della NHidrossisuccinimide (NHS) con il chip GO a film sottile.
    1. Aggiungere 4 μL (0,4 M e 0,1 M, rispettivamente) di EDC-NHS (vedi Tabella dei materiali) al chip GO a film sottile per generare la coniugazione covalente di ammina e gruppi carbossilici tramite la formazione di legami ammidici26.

4. Preparazione e immobilizzazione dell'anticorpo sul chip per il rilevamento delle proteine

  1. Per legare il chip GO-DIDC funzionalizzato con l'anticorpo, sciogliere gli anticorpi anti-SARS-CoV-2 disponibili in commercio (riprodotti dalla proteina anti-S1 mAb di coniglio, vedere la Tabella dei materiali) utilizzando il tampone di diluizione (0,01 M PBS contenente lo 0,1% di BSA [albumina sierica bovina] e lo 0,86% di NaCl).
    1. A 1 μg di anticorpo purificato, aggiungere 1 mL di PBS diluito. Quindi, far cadere 4 μL della soluzione anticorpale sul chip GO-DIDC attivato reticolato. Lasciare il chip nella camera chiusa per 2 ore per legare l'Abs sulla superficie del chip funzionalizzata a temperatura ambiente.
      NOTA: La regione Fab degli Abs è solitamente costituita da abbondanti ammine reattive e gruppi carbossilici a causa della sua natura polare26; pertanto, la successiva immobilizzazione specifica porta a un robusto orientamento covalente "tail-on" specifico per gli Ab.
  2. Una volta terminata l'immobilizzazione degli anticorpi sulla superficie del sensore, versare 4 μL di albumina sierica bovina (BSA) sul chip per bloccare i siti non specifici del chip di rilevamento immunocapacitivo. Posizionare il truciolo orizzontalmente nella camera chiusa per 20 minuti a temperatura ambiente.
  3. Lavare il chip di rilevamento immunocapacitivo con acqua deionizzata, quindi continuare l'asciugatura a temperatura ambiente.
    NOTA: Dopo l'essiccazione, l'immunosensore capacitivo basato su DIDC (SARS-CoV-2-Ab-EDC-NHS-GrO-Ti/Pt-SiO2-DIDCs) è pronto per eseguire il rilevamento seriale dell'antigene spike del virus.
  4. Per un ulteriore rilevamento della proteina spike del virus, preparare diverse concentrazioni da 1,0 mg a 1,0 fg per ottenere un ampio limite di rilevamento.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Risultati

Qui, viene presentato un protocollo per il rilevamento della proteina S1 del virus SARS-CoV-2 utilizzando un chip di rilevamento capacitivo a doppia interdigitazione (DIDC) smaltato di ossido di grafene. La Figura 1 mostra una rappresentazione schematica (fabbricazione con il layout del circuito) del chip di rilevamento capacitivo a doppia intercifra (DIDC) modificato con ossido di grafene, estremamente sensibile e riciclabile. Il processo di fabbricazione g...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussione

Per la realizzazione di un biosensore produttivo basato su chip DIDC, la distribuzione della carica, la conduttività e la costante dielettrica del DIDC sono estremamente importanti. Significativamente, i miglioramenti in questi limiti di rilevamento si riferiscono alla reattanza capacitiva del DIDC 18,26,27. In questo studio, è stato fabbricato un immunosensore capacitivo ostile al virus Abs e...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Divulgazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Riconoscimenti

Questo lavoro è stato sostenuto in una certa misura dal Programma di ricerca scientifica di base attraverso la National Research Foundation of Korea (NRF) sponsorizzato dal Ministero dell'Istruzione nell'ambito della sovvenzione 2018R1D1A1A09083353 e della sovvenzione 2018R1A6A1A03025242, in parte dalla GCS Group Association Ltd. e dalla Korea Ministry of Environment (MOE) Graduate School ha investito enormi energie nel progetto integrato di prevenzione e controllo dell'inquinamento e in una sovvenzione di ricerca dell'Università di Kwangwoon nel 2022.

E.M. ringrazia il supporto dell'Istituto Nazionale di Imaging Biomedico e Bioingegneria (5T32EB009035).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
Amyloid β1-42 ProteinMerck (Sigma-Aldrich)107761-42-2
anti-SARS-CoV-2 Spike (S1) monoclonal IgG antibody SinoBiological40150-R007
EDC [N-(3-dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimide hydrochloride]Thermo Fisher ScientificA35391
Ethyl alcohol (C2H5OH)Sigma-Aldrich
Hydrogen peroxide (H2O2)
Kapton tapepolyimide tape
NHS (NHydroxysuccinimide, 98+%; C4H5NO3)Thermo Fisher ScientificA39269
PBS
Prostate-specific antigen Sigma-AldrichP3338-25UG
SARS-CoV-2 Spike S1-His recombinant proteinSinoBiological40591-V08H
Single layer Graphene OxideGraphene Supermarket
Spin CoaterHigh Precision Spin Coater (Spin Coating System)ACE-200 
Sulfuric acid (H2SO4)

Riferimenti

  1. Boldog, P. Risk assessment of novel coronavirus COVID-19 outbreaks outside China. Journal of Clinical Medicine. 9 (2), 571-583 (2020).
  2. Seo, G., et al. Rapid detection of COVID-19 causative virus (SARS-CoV-2) in human nasopharyngeal swab specimens using field-effect transistor-based biosensor. ACS Nano. 14 (4), 5135-5142 (2020).
  3. Panda, P. K. Structure-based drug designing and immunoinformatics approach for SARS-CoV-2. Science Advances. 6, 5135-5142 (2020).
  4. Li, R., et al. Substantial undocumented infection facilitates the rapid dissemination of novel coronavirus (SARS-CoV-2). Science Advances. 368, 489-493 (2020).
  5. Lu, R., et al. Genomic characterisation and epidemiology of 2019 novel coronavirus: implications for virus origins and receptor binding. Lancet. 395 (10224), 565-574 (2020).
  6. Hui, D. S. The continuing 2019-nCoV epidemic threat of novel coronaviruses to global health - The latest 2019 novel coronavirus outbreak in Wuhan, China. Journal of Infectious Diseases. 91, 264-266 (2020).
  7. Chen, I. Y., et al. Upregulation of the chemokine (C-C motif) ligand 2 via a severe acute respiratory syndrome coronavirus spike-ACE2 signaling pathway. Journal of Virology. 84 (15), 7703-7712 (2010).
  8. Fung, T. S., Huang, M., Liu, D. X. Coronavirus-induced ER stress response and its involvement in regulation of coronavirus-host interactions. Virus Research. 194, 110-123 (2014).
  9. Park, S. E. Epidemiology, virology, and clinical features of severe acute respiratory syndrome -coronavirus-2 (SARS-CoV-2: Coronavirus Disease-19). Korean Journal of Pediatrics. 63 (4), 119-124 (2020).
  10. Fajnzylber, J., et al. SARS-CoV-2 viral load is associated with increased disease severity and mortality. Nature Communications. 11 (1), 5493(2020).
  11. Rao, K., et al. Review on newly identified coronavirus and its genomic organization. SSR Institute of International Journal of Life Sciences. 6 (2), 2509(2020).
  12. Mujawar, M. A., et al. Nano-enabled biosensing systems for intelligent healthcare: Towards COVID-19 management. Materials Today Chemistry. 17, 100306(2020).
  13. Manickam, P., et al. Artificial intelligence (AI) and internet of medical things (IoMT) assisted biomedical systems for intelligent healthcare. Biosensors. 12 (8), 562-591 (2022).
  14. Kaushik, A. K., et al. Electrochemical SARS-CoV-2 sensing at point-of-care and artificial intelligence for intelligent COVID-19 management. ACS Applied Bio Materials. 3 (11), 7306-7325 (2020).
  15. Lee, D., Lee, J. Testing on the move: South Korea's rapid response to the COVID-19 pandemic. Transportation Research Interdisciplinary Perspectives. 5, 100111(2020).
  16. Emery, S. L., et al. Real-time reverse transcription-polymerase chain reaction assay for SARS-associated coronavirus. Emerging Infectious Diseases. 10 (2), 311-316 (2004).
  17. Lu, X., et al. Real-time reverse transcription-PCR assay panel for Middle East respiratory syndrome coronavirus. Journal of Clinical Microbiology. 52 (1), 67-75 (2014).
  18. Mishra, S., et al. Tailored biofunctionalized biosensor for the label-free sensing of prostate-specific antigen. ACS Applied Bio Materials. 3 (11), 7821-7830 (2020).
  19. Wang, Y. L., et al. Detection of severe acute respiratory syndrome (SARS) coronavirus nucleocapsid protein using AlGaN/GaN high electron mobility transistors. ECS Transactions. 50 (6), 239-243 (2013).
  20. Ravi, N., Cortade, D. L., Ng, E., Wang, S. X. Diagnostics for SARS-CoV-2 detection: A comprehensive review of the FDA-EUA COVID-19 testing landscape. Biosensors and Bioelectronics. 165, 112454(2020).
  21. Sethuraman, N., Jeremiah, S. S., Ryo, A. Interpreting diagnostic tests for SARS-CoV-2. JAMA. 323, 2249-2251 (2020).
  22. Timmer, W. C., Villalobos, J. M. Chemistry Education. 70 (4), 273-280 (1993).
  23. Whitesides, G. M. The origins and the future of microfluidics. Nature. 442 (5), 368-373 (2006).
  24. Drummond, T. G., Hill, M. G., Barton, J. K. Electrochemical DNA sensors. Nature Biotechnology. 21, 1192-1199 (2003).
  25. Singhal, C., Khanuja, M., Chaudhary, N., Pundir, C. S., Narang, J. Detection of chikungunya virus DNA using two-dimensional MoS2 nanosheets based disposable biosensor. Scientific Reports. 8, 7734(2018).
  26. Sharma, P. K., et al. Ultrasensitive and reusable graphene oxide-modified double-interdigitated capacitive (DIDC) sensing chip for detecting SARS-CoV-2. ACS Sensors. 6 (9), 3468-3476 (2021).
  27. Sharma, P. K., et al. Ultrasensitive probeless capacitive biosensor for amyloid beta (Ab) detection in human plasma using interdigitated electrodes. Biosensors and Bioelectronics. 212, 114365(2022).
  28. Wang, L., et al. A sensitive DNA capacitive biosensor using interdigitated electrodes. Biosensors and Bioelectronics. 87, 646-653 (2017).
  29. Brasil, P., et al. Zika virus infection in pregnant women in Rio de Janeiro. The New England Journal of Medicine. 375 (24), 2321-2334 (2016).
  30. Kong, J., et al. Molecular wires as chemical sensors. Science. 287 (5453), 622-625 (2000).
  31. Wang, J. Carbon-nanotube based electrochemical biosensors: A review. Electroanalysis. 17 (1), 7-14 (2005).
  32. Layqah, L. A., Eissa, S. An electrochemical immunosensor for the coronavirus associated with the Middle East respiratory syndrome using an array of gold nanoparticle-modified carbon electrodes. Microchimica Acta. 186 (4), 224-234 (2019).
  33. Vermisoglou, E., et al. Human virus detection with graphene-based materials. Biosensors and Bioelectronics. 166, 112436(2020).
  34. Mostafavi, E., Dubey, A. K., Teodori, L., Ramakrishna, S., Kaushik, A. SARS-CoV-2 Oomicron variant: A next phase of the COVID-19 pandemic and a call to arms for system sciences and precision medicine. MedComm. 3 (1), 119(2022).
  35. Ali, M. A., et al. Sensing of COVID-19 antibodies in seconds via aerosol jet printed three dimensional electrodes. Advanced Materials. 33 (7), 2006647(2020).
  36. Ganbold, E., Sharma, P. K., Kim, E. -S., Lee, D. -N., Kim, N. -Y. Capacitive humidity sensor with a rapid response time on a GO-doped P(VDF-TrFE)/LiCl composite for noncontact sensing applications. Chemosensors. 11 (2), 122(2023).
  37. Shivani, T., et al. Antibacterial and antiviral high-performance nanosystems to mitigate new SARS-CoV-2 variants of concern. Current Opinion in Biomedical Engineering. 21, 100363(2022).
  38. Kujawska, M., Mostafavi, E., Kaushik, A. SARS-CoV-2 getting into the brain; Neurological phenotype of COVID-19, and management by nano-biotechnology. Neural Regeneration Research. 18 (3), 519-520 (2022).
  39. Kang, P., Wang, M. C., Nam, S. Bioelectronics with two-dimensional materials. Microelectronic Engineering. 161, 18-35 (2016).
  40. Syama, S., Mohanan, P. V. Comprehensive application of graphene: Emphasis on biomedical concerns. Nano-Micro Letters. 11, 6(2019).
  41. Chaudhary, V., Kaushik, A., Furukawa, H., Khosla, A. Review-Towards 5th generation AI and IoT driven sustainable intelligent sensors based on 2D MXenes and borophene. ECS Sensors Plus. 1, 013601(2022).
  42. Sharma, P. K., et al. Perspectives on 2D-borophene flatland for smart bio-sensing. Materials Letters. 308, https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/B978012818154600010X 131089(2022).
  43. Sharma, P. K., et al. Nanotechnology and its application: A review. Nanotechnology in Cancer Management. Precise Diagnostics Toward Personalized Health Care. Khondakar, K. R., Kaushik, A. K. 1 (1), Elsevier Science. 1-33 (2021).
  44. Rawat, P., et al. Emergence of high-performing and ultra-fast 2D-graphene nano-biosensing system. Materials Letters. 308, 131241(2022).
  45. Ganbold, E., et al. Highly sensitive interdigitated capacitive humidity sensors based on sponge-like nanoporous PVDF/LiCl composite for real-time monitoring. ACS Applied Materials & Interfaces. 15 (3), 4559-4568 (2023).
  46. Feng, J., Guo, Z. Wettability of graphene: From influencing factors and reversible conversions to potential applications. Nanoscale Horizons. 4, 339-364 (2019).
  47. Flynn, S. P., et al. qua-Art: A demonstration of hydrophilic and hydrophobic surfaces fabricated by plasma enhanced chemical vapor deposition. Chemical Education. 94 (2), 221-225 (2017).
  48. Bhardwaj, S. K., Yadav, P., Ghosh, S., Basu, T., Mahapatro, A. K. Biosensing test-bed using electrochemically deposited reduced graphene oxide. ACS Applied Materials & Interfaces. 8 (37), 24350-24360 (2016).
  49. Reddicherla, U., Seyed, M. G., Sonwal, S., Gokana, M. R., Yun, S. H. Portable electrochemical sensing methodologies for on-site detection of pesticide residues in fruits and vegetables. Coordination Chemistry Reviews. 453, 214305(2022).
  50. Reddicherla, U., et al. Colorimetric based on-site sensing strategies for the rapid detection of pesticides in agricultural foods: New horizons, perspectives, and challenges. Coordination Chemistry Reviews. 446, 214061(2021).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Ristampe e Autorizzazioni

Richiedi autorizzazione per utilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE

Richiedi Autorizzazione

Esplora altri articoli

Chip di rilevamento modificato con grafenerilevamento SARS CoV 2chip capacitivo a doppia interdigitazioneossido di grafeneimmobilizzazione degli anticorpisensibilit capacitivatest point of careriutilizzabilit del biochipdiagnostica dei virustempo di reazione rapido

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Riservatezza

Condizioni di utilizzo

Politiche

Ricerca

Didattica

CHI SIAMO

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Tutti i diritti riservati