Questo lavoro è stato finanziato dal Dipartimento della Difesa (W81XWH-13-01-0243) e il National Institutes of Health (R37 AG008796). Ringraziamo Alan Baker nel negozio di macchina della Northwestern University per costruire l&#39;apparato cilindro di testa fissa. Ringraziamo il Dott Shoai Hattori per la sua guida in MATLAB e Solidworks. Ringraziamo il Dr. John Power per il software LabView che controllava l&#39;esperimento.

Tutte le procedure che coinvolgono i topi sono stati eseguiti in conformità con i protocolli approvati dalla Institutional Animal Care della Northwestern University e del Comitato Usa sulla base di linee guida emanate dal National Institute of Health. 1. Il cilindro (Figura 2A) <ol><li> Costruire il cilindro come descritto da Chettih et al. E Heiney et al. Da un cilindro lungo di schiuma 14-15. Tagliare una lunghezza di 10 cm di cilindro e praticare un foro attraverso il centro per adattare l&#39;assale, un metallo asta di 12,7 mm (0,5 in.) Di diametro. Montare il cilindro con il suo asse su una basetta ottico metallo come descritto da Heiney et al., O un altro supporto (ad esempio, plexiglas) 15. </li><li> Eretti due aste metalliche verticali di 12,7 mm di diametro su entrambi i lati del cilindro. </li><li> Fissare due supporti ad angolo retto sulle aste di metallo. </li><li> Fissare altre due aste (lunghi 5 cm, 12,7 mm di diametro) attraverso i supporti ad angolo retto. Bevel °e termina di queste canne e il livello delle loro estremità sopra il centro del cilindro (figura 2G). </li><li> Forare e toccare un foro attraverso le estremità rivolte delle aste per adattarsi due 4-40 viti di macchina che conterrà le ali del connettore in posizione (Figura 2G). </li></ol> 2. Assemblaggio del sistema di stimolazione Baffo (Figura 2B) <ol><li> Tagliare un segmento di 10 denti di pettine da un normale pettine. </li><li> Tagliare una fessura circa 2-3 mm di larghezza e circa 5 mm di profondità nella parte superiore del pettine per accettare un attuatore flessione rettangolare 2 strati. </li><li> Saldare un filo ad ogni superficie dell&#39;attuatore piegatura. Utilizzare la saldatura e flusso fornito dal produttore. Coprire l&#39;attuatore e saldatura con nastro isolante per proteggere il mouse e utente dalla corrente elettrica. </li><li> Infilare la striscia attuatore nella fessura tagliata a pettine in modo che la striscia attuatore piegatura siede perpendicolare al piano del pettine. Angle il pettine in modo che sia inclinato di 45 ° e più naturale segue la curva del viso del mouse. </li><li> Fissare l&#39;estremità della striscia attuatore all&#39;inizio del pettine con rapida impostazione epossidica. Nota: I fili saldati alla striscia attuatore flessione devono essere collegati a un reostato che fornisce 40 volt a dell&#39;attuatore. Precedenti esperimenti hanno dimostrato che 40 volt è efficace per il condizionamento, ma non evoca tutte le risposte spavento. </li><li> Posizionare l&#39;attuatore piegatura e il pettine su un monte mobile. Un supporto pipetta attaccato ad una base magnetica come normalmente utilizzati per impianti di perforazione in vitro elettrofisiologia funziona bene. </li></ol> 3. Montaggio del connettore che monta a Canne al di sopra del cilindro (Figura 2C, 2E) Nota: Il connettore è un 3-D stampato striscia 7 buche modellata dalla striscia di nylon serie 221 Amphenol utilizzato per la cavezza da Weiss e Disterhoft e Galvez et al 10,17. <ol><li> Toccare il primo foro nella striscia di 0-80 x-1&quot;Vite di macchina. Questo servirà come una vite di bloccaggio per fissare il casco al connettore. Applicare un 0-80 dado alla testa della vite di bloccaggio con colla cianoacrilato per facilitare ruotando la vite a mano. </li><li> Lascia un buco vuoto dopo il foro filettato (per lasciare spazio per il dado 0-80 della macchina) e spingere cinque basi relia-tac placcati in oro attraverso i restanti cinque fori. </li><li> Striscia il rivestimento off cinque fili lunghi (fili ottenuti da un cavo Ethernet) e saldare le estremità delle prese. Nota: le prime due fili saranno utilizzati per registrare i segnali elettromiografici (EMG) che rileverà una risposta eyeblink seguente filtraggio del segnale e l&#39;amplificazione da un amplificatore. La seconda di due consegnerà il segnale scossa da un isolatore stimolo. L&#39;ultimo cavo servirà come collegamento a terra. Questi fili saranno collegati ai sistemi utilizzati per la consegna temporizzato CS-US. </li><li> Garantire la connettività elettrica tra i cavi e le prese con una multImeter. Mettere il multimetro l&#39;impostazione continuità e tenere una delle sonde per il perno e l&#39;altra sonda alle estremità spellata del filo. I perni ed i fili sono collegati elettricamente quando la resistenza è bassa e il multimetro emette un tono. <ol><li> In alternativa, se il multimetro non ha un&#39;impostazione di continuità, misurare la resistenza tra i pin e cavi. C&#39;è continuità elettrica se c&#39;è poca resistenza misurata. </li></ol></li><li> Preparare le ali del connettore dal transistor stile due TO-220. Tagliare i cavi di emettitore, di base e di collettore del transistore e livellare la superficie in modo che possa essere fissata al connettore. </li><li> Tagliare il bordo della linguetta di montaggio a violare il foro per la scheda può scivolare sotto la testa della vite. </li><li> Epossidico transistori al connettore. Il foro nella linguetta di montaggio verrà utilizzato per fissare il connettore alle aste sopra il cilindro. </li><li> Applicare epossidica alla base dei fili protruding dalle prese e consentire la resina epossidica ad asciugare. La resina epossidica isolerà e proteggere le connessioni. </li></ol> 4. Preparare il copricapo (Figura 2D, 2E) Nota: La striscia testata è un 3-D stampato striscia 7 buche modellata dalla striscia di nylon serie Amphenol 221 utilizzato per la testata da Weiss e Disterhoft e Galvez et al 10,17.. Questo pezzo non viene più prodotta commercialmente. Il file stampante può essere scaricato dal sito web di questo giornale. <ol><li> Toccare il primo foro nella striscia per una vite 0-80 x 1 &quot;e lasciare un buco vuoto dopo il primo buco. </li><li> Premere cinque perni dorati attraverso il fondo dei restanti cinque fori (attraverso le estremità più strette). Utilizzare una morsa per facilitare spingere i perni nella striscia in modo uniforme. </li><li> Utilizzando un estrattore termico, rimuovere circa 0,5 cm di rivestimento in poliimmide l&#39;estremità di un filo di acciaio inossidabile (0,005 in. Diametro), saldare l&#39;estremità nuda del wire all&#39;apertura di uno dei perni e tagliare il filo di 0,6-0,7 cm. </li><li> Striscia circa 0,2 cm dall&#39;estremità del filo per permettere il passaggio di corrente per l&#39;animale. </li><li> Ripetere i passaggi 4,3-4,4 per i restanti tre fili. Nota: le prime due fili registra le risposte EMG mentre il secondo di due servirà ad erogare uno shock per l&#39;animale. </li><li> Come l&#39;ultimo (quinta) filo servirà come un filo di terra, taglio di circa 5 cm di filo non rivestito di acciaio inossidabile (0.005 in. Di diametro), e saldare al pin rimanenti. </li><li> Garantire la continuità tra i fili e per i perni con un multimetro. (Nel caso del filo di terra, che è rivestito, la sonda multimetro può essere posizionato in qualsiasi punto lungo il filo.) </li></ol> 5. Preparazione chirurgica (Figura 2F) <ol><li> Sterilizzare tutti gli strumenti chirurgici, compresa la testata. Sterilizzare il casco immergendola in alcool e poi risciacquo con soluzione salina sterile. </li><li> Anestetizzare il mouse in una camera di induzione con 3-4% vaporized isoflurano mescolato con una portata di 1-2 L di ossigeno al minuto. </li><li> Accertare che l&#39;animale è completamente anestetizzato con un pizzico punta. Il mouse è completamente anestetizzato quando non risponde di riflesso per il pizzico punta. </li><li> Una volta che l&#39;animale è stato completamente anestetizzato, iniettare una dose di buprenorfina cloridrato come analgesico (0,05-2 mg / kg, sc), radere parte superiore della testa dell&#39;animale, posizionarlo su una piastra elettrica coperta sulla base del telaio stereotassico , accertare che l&#39;animale è completamente anestetizzato, e fissare la testa al telaio. Mantenere flusso di isoflurano vaporizzato all&#39;animale, commutazione al 2% ad una portata di 1-2 L di ossigeno al minuto. Applicare una piccola quantità di pomata oftalmica alle cornee. </li><li> Disinfettare il cuoio capelluto con povidone-iodio e alcol tre volte ciascuna, alternando tra i due. </li><li> Con una lama numero 10 o 15 bisturi, fare un&#39;incisione lungo la linea mediana del cuoio capelluto, esponendo il cranio dalla parte anteriore della tha gli occhi di oltre l&#39;osso interparietale (~ 1,5-2 cm). </li><li> Trattenere i lembi della pelle con micro clip. Inserire una clip sopra l&#39;occhio, uno lungo il centro dell&#39;asse rostrale-caudale, ed una sul retro del cranio bilateralmente (cioè, utilizzare sei clip in tutto). Per evitare casco avulsione, esporre tanto del cranio possibile, compresi i lati e sul retro. Ciò aumenterà la superficie di applicazione del cemento cementazione adesiva. </li><li> Usando il bisturi, raschiare lungo la parte superiore del cranio per rimuovere il periostio e garantire una superficie di lavoro pulita e asciutta. Pulire la parte superiore del cranio con perossido di idrogeno al 3% per tre volte. </li><li> Praticare due fori nel cranio con una dimensione di 34 invertito Burr cono o una fresa 1,6 millimetri incisione punta da trapano di accettare 00-90 viti (0,0625 in. Lunga). Le viti forniranno il collegamento elettrico a terra. Inserire un foro davanti Bregma, e l&#39;altra di fronte Lambda, a sinistra della linea mediana quando condizionamento del right occhio. Mettere una vite in ogni buco. Abbassare la vite 0,28 millimetri nel cranio per ogni giro completo; due giri completi è sufficiente. </li><li> Creare diverse piccole zolle di circa 0,75 mm di diametro sul cranio al fine di aumentare la superficie e la forza di presa per il cemento. </li><li> Prendere la testata completato e avvolgere il cavo di terra in una configurazione a forma di otto intorno alle due viti. Consentire un certo allentamento (~ 1,5 cm tra la testata e la vite) nel cavo di terra in modo che il casco può essere posizionato correttamente in seguito. Nota: La figura otto norma assicura un buon collegamento elettrico tra il filo e le viti di terra. Il filo può essere saldato alla vite per assicurare un collegamento elettrico. </li><li> Applicare il cemento cementazione adesiva. Seguire le istruzioni del produttore per la miscelazione del cemento cementazione adesiva o miscelare 4 cucchiai di mix L-polvere, 8 gocce di base, e 2 gocce di catalizzatore in un piatto di miscelazione in ceramica a freddo (garantire la striscia di temperatura on il piatto di miscelazione è completamente nero.) La temperatura fredda estende il tempo di lavoro del cemento. <ol><li> Rivestire il cranio e le viti liberalmente con il cemento composito e consentire il cemento si asciughi. Questo dovrebbe prendere solo pochi minuti. </li></ol></li><li> Dopo il cemento è asciugata, posizionare la testata verticale, con i perni in piedi, sopra il cranio. Tenere il casco in posizione con un supporto simile al connettore Nota: vedere &quot;3. Montaggio del connettore&quot; -Il titolare deve essere solo una striscia di cinque fori con prese placcati in oro al fine di ricevere i perni della testata. Il supporto è attaccato ad un braccio sul telaio stereotassico. L&#39;utilizzo del supporto e del braccio facilita il posizionamento della testata ei fili. </li><li> Dopo la testata è stata posizionata, sbucciare indietro la pelle intorno alla zona periorbitale e posizionare i due fili d&#39;urto per permettere ai 0,2 cm fine spogliato di riposare sotto la pelle e di circa 2-4 mm direttamente caudale al eye. Evitare che le estremità dei due cavi si tocchino. Posizionare i due fili EMG sulla muscolare orbicolare al di sopra della cavità oculare. <ol><li> Se necessario, tagliare le estremità dei fili se sono troppo lunghi e sembrano come se possono direttamente graffiare l&#39;orbita e causare infezioni. Se tagliare le estremità del filo, assicurarsi che ci sia abbastanza filo nudo esposto. In alternativa, se i fili sembrano troppo lungo, piegare il filo indietro alla base, dove si estendono fuori dal casco. </li><li> Cemento base dei fili (cioè, l&#39;estremità vicino alla testata) in posizione sul cranio con una piccola diffusione del cemento composito adesivo e lasciare asciugare (uso la metà della porzione descritta in precedenza). </li></ol></li><li> Rimuovere le micro clip e piegare delicatamente i lembi di pelle indietro sopra il cemento. Lasciare la pelle di stabilirsi naturalmente a prevenire tensioni su qualsiasi parte della pelle per evitare distorsioni della palpebra, la prevenzione della risposta eyeblink,e disagi all&#39;animale. </li><li> Sigillare la zona esposta con cemento dentale, che copre tutto dalla pelle incisa al bordo della parte superiore della testata con cemento. Prestare particolare attenzione per evitare di gocciolare cemento sugli occhi o dei perni della testata. Parzialmente cemento indurito può essere lisciata e manipolato con un batuffolo di cotone che viene inumidito con solvente cemento dentale. Lasciare che il cemento si asciughi completamente prima di rimuovere il supporto testata. </li><li> Lasciare che l&#39;animale per recuperare da anestesia su una superficie riscaldata prima di sostituire l&#39;animale torna nella sua gabbia. Somministrare Metacam (1 mg / kg, SQ) e poi posto l&#39;animale torna nella sua gabbia. </li><li> Permettere all&#39;animale 5-7 giorni di recupero prima del test o di formazione. Mantenere cure post-operatorie standard per l&#39;animale secondo le direttive del vostro istituto. L&#39;animale deve essere controllato almeno una volta al giorno dopo che ha recuperato da un intervento chirurgico. Attenzione ai segni di scarsa mangiare e / o bere e il comportamento svogliato. Se il doloresi sospetta, fornire Metacam ogni 24 ore (stessa dose alla fine del post-chirurgico) fino alleviato. La lidocaina può essere applicato localmente sulla ferita se l&#39;animale si gratta o mostra segni di disagio. </li></ol> 6. posizionando il mouse sul cilindro e la formazione (Figura 2G) <ol><li> Per posizionare il mouse sul cilindro, frenare il mouse con una mano brevemente tenendola per la coda con una mano e poi afferrare il mouse dietro le spalle con indice e pollice con l&#39;altra. Avvolgere le altre dita intorno addome e il tronco del mouse. </li><li> Con la mano non frenare il mouse, collegare il connettore al casco sulla testa del mouse e ruotare la vite di bloccaggio. </li><li> Posizionare il mouse delicatamente sul cilindro e tenerlo in posizione mentre si collega il connettore al telaio. Utilizzare le due viti per fissare il connettore al bar sopra il cilindro. </li><li> Una volta che il connettore è stato fissato al telaio del cilindro, release la presa sul mouse. Dare il mouse un giorno due sessioni di assuefazione al cilindro. Consentire ogni sessione assuefazione la stessa durata di ogni sessione di condizionamento. <ol><li> Record velocità di intermittenza spontanea durante assuefazione e pre-esporre i topi alla vibrazione baffo CS per minimizzare il verificarsi di risposte trasalimento. Applicare il CS come durante una sessione attuale di, ma senza la scossa elettrica degli Stati Uniti. </li><li> Applicare la stimolazione baffo CS posizionando sistema Piezo stretta (circa 0,5 cm) al lato condizionata (lato destro) del mouse, mentre scivolare i denti del pettine sopra individuali baffi. Assicurarsi che le stesse basette vengono stimolati giorno per giorno posizionando il sistema Piezo nella stessa posizione da un giorno all&#39;altro. </li></ol></li><li> Iniziare la formazione con il mouse sul condizionamento classico. Consegnare due sessioni di allenamento al giorno per cinque giorni. Lasciare circa due ore tra una sessione di allenamento. <ol><li> Per il gruppo condizionata, deliver trenta prove per sessione di un lungo 250 msec vibrazioni whisker CS (60 Hz) accoppiato con una lunghezza di 100 msec impulso elettrico US (0,3 mA - 3 mA, forniti da un WPI A385R stimolo sezionatore). Separare il CS e gli Stati Uniti con un msec lungo intervallo di traccia 250 priva di stimoli per rendere il compito dipende l&#39;ippocampo (Figura 1) 23. </li><li> Regolare l&#39;intensità dello shock elettrico per ogni animale in modo che un battito viene evocata. prove separate con un intervallo tra le prove casuale di 30-60 secondi (media di 45 secondi, la durata complessiva di 30 minuti per sessione.) </li><li> Invia trenta spaiato CS solo e noi soli sperimentazioni ciascuno (per un totale di sessanta studi) al gruppo pseudoconditioned, utilizzando gli stessi parametri di stimolo come indicato per il gruppo condizionata. Assicurarsi che il CS da solo e degli Stati Uniti prove da soli sono pseudorandomized in modo tale che nessuno stimolo è presentato più di due volte di fila. Separare ogni prova con un intervallo medio tra le prove di 22,5 sec. </li></ol></li><li> defegato rumore di fondo a 65 dB in tutto assuefazione e di formazione, al fine di mascherare qualsiasi rumore della vibrazione generata dal stimolatore soffio. </li></ol>

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F., Weiss, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Trace+eyeblink+conditioning+is+hippocampally+dependent+in+mice.">Trace eyeblink conditioning is hippocampally dependent in mice.</a> Hippocampus. 14 (1), 58-65 (2004).</li><li>Joachimsthaler, B., Brugger, D., Skodras, A., Schwarz, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spine+loss+in+primary+somatosensory+cortex+during+trace+eyeblink+conditioning.">Spine loss in primary somatosensory cortex during trace eyeblink conditioning.</a> J Neurosci. 35 (9), 3772-3781 (2015).</li><li>Boele, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cerebellar+and+extracerebellar+involvement+in+mouse+eyeblink+conditioning:+the+ACDC+model.">Cerebellar and extracerebellar involvement in mouse eyeblink conditioning: the ACDC model.</a> Front in Cell Neurosci. 3 (19), (2010).</li><li>Koekkoek, S. K. E., Den Ouden, W. L., Perry, G., Highstein, S. M., De Zeeuw, C. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monitoring+kinetic+and+frequency-domain+properties+of+eyelid+responses+in+mice+with+magnetic+distance+measurement+technique.">Monitoring kinetic and frequency-domain properties of eyelid responses in mice with magnetic distance measurement technique.</a> J Neurophysiol. 88 (4), 2124-2133 (2002).</li><li>Ward, R. L., Flores, L. C., Disterhoft, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Infragranular+barrel+cortex+activity+is+enhanced+with+learning.">Infragranular barrel cortex activity is enhanced with learning.</a> J Neurophysiol. 108 (5), 1278-1287 (2012).</li></ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari concorrenti.

Classical eyeblink condizionata è una forma di apprendimento associativo che è uno strumento utile per comprendere i substrati neurali alla base dell&#39;apprendimento e della memoria. I metodi precedenti utilizzati per il condizionamento eyeblink in roditori come topi coinvolti una camera che ha permesso per l&#39;animale di muoversi liberamente. Una preparazione testa fissa per il condizionamento eyeblink nei topi, con l&#39;apparecchiatura descritta da Chettih et al. E Heiney et al. E più recente...

condizionata Eyeblink è una forma di condizionamento pavloviano e un sistema modello per studiare i meccanismi neurali di apprendimento associativo e della memoria. E &#39;stata studiata in varie specie, compreso l&#39;uomo, conigli, gatti, ratti e topi. Il paradigma prevede la presentazione di due stimoli appaiati: un neutrale stimolo condizionato (CS, ad esempio, un tono, un lampo di luce, o la stimolazione baffo), e uno stimolo incondizionato saliente (USA, ad esempio, un soffio d&#39;aria per l&#39;occhio, o scossa periorbitale). Gli Stati Uniti suscita un incondizionato, riflessiva risposta eyeblink (vale a dire, UR). Alla fine, dopo varie presentazioni del abbinato CS-USA, il soggetto impara ad associare il CS con gli Stati Uniti. Questo apprendimento si manifesta sotto forma di una risposta condizionata (CR), un eyeblink suscitato dalla sola CS che precede la presentazione degli USA. condizionata Eyeblink sotto forma di traccia include un intervallo libero da stimoli di pochi hmillisecondi undred che separa il CS e gli Stati Uniti (Figura 1). Trace condizionata è una forma di apprendimento dichiarativa in quanto richiede la consapevolezza delle contingenze stimolo 1. Il divario temporale richiede l&#39;animale a mantenere un neurale &#39;traccia&#39; del CS in regioni del cervello anteriore, come l&#39;ippocampo in modo che gli Stati Uniti ed il CS di diventare associato 1-6. Insieme con le regioni prosencefalo, tracce di condizionamento dipende anche il cervelletto 7. condizionata Eyeblink è, quindi, un paradigma utile per la ricerca dei molteplici aspetti di memoria, compresi l&#39;acquisizione, il consolidamento e recupero. Durante condizionata eyeblink, un gruppo di controllo di animali è presentato con stimoli spaiati in ordine casuale per verificare pseudoconditioning o sensibilizzati risposte al CS che possono essere causati dalla presentazione Stati Uniti da soli, piuttosto che una associazione CS-US imparato. Un appara comunemente usatoTus per l&#39;indagine di condizionamento eyeblink nei roditori è una camera in cui i roditori sono autorizzati a muoversi liberamente durante il processo di formazione 8-10. Con questo tipo di apparecchiatura, un tether è normalmente collegato a un casco che è apposto cranio del roditore. Il tether consente l&#39;erogazione degli Stati Uniti (e talvolta CS) e per trasmettere la risposta dell&#39;animale a tali stimoli (cioè, la risposta eyeblink) 10. Il tether stesso può essere modificato in base al tipo di stimoli consegnato e come viene registrata la risposta eyeblink. La ragione per usare &quot;liberamente in movimento&quot; topi legati per un condizionamento eyeblink è che i topi lotta contro la moderazione. Anche se altre specie possono essere più suscettibili di moderazione, il principale vantaggio di utilizzare topi negli esperimenti di condizionamento eyeblink è che la maggior parte dei disponibili ceppi mutanti geneticamente modificati sono ceppi di topi. Oltre alla lotta, res completiTraint di topi si traduce in difficoltà acuta. Una preparazione topo testa fissa che minimizza lo stress aumenterebbe le informazioni fisiologiche che possono essere ottenute durante il condizionamento eyeblink. Ad esempio, questo sistema permetterebbe di imaging di neuroni corticali con 2-photon microscopia a 11. Preparati Testa-fisso sono stati utilizzati in precedenti esperimenti di imaging ottico della corteccia attraverso protesi craniche rimovibili, in vivo registrazioni elettrofisiologiche del cervello dei roditori con array tetrodo, Calcio Imaging a due fotoni, e anche come piattaforma per il condizionamento eyeblink nei topi 11 -16. Nel sistema testa fissa, stimolazione affidabile e registrazioni sono assicurati senza completa ritegno del mouse (Figura 2). Un casco come quello utilizzato nel sistema liberamente mobile viene apposto cranio del mouse. Durante l&#39;allenamento, la testata viene apposto un connettore che è collegato a barre suun tapis roulant cilindrica per stabilizzare la testa del roditore (Figura 2A). Il tapis roulant cilindrica permette il mouse per riposare comodamente, ma se il mouse lo desidera, permette anche l&#39;esecuzione o camminare. Con l&#39;uso di questo sistema, i topi possono essere formati con una vibrazione baffo come CS ed una scossa elettrica periorbitale mite come gli Stati Uniti (Figura 1). Gli Stati Uniti è espresso attraverso i fili chirurgicamente posizionati sotto la pelle laterali per l&#39;occhio. Il CS è espresso tramite un pettine che è collegato a un 2-layer rettangolare flessione attuatore (Figura 2B). Il pettine e attuatore piegatura vengono poi attaccati ad una base magnetica che viene spostato nella posizione corretta durante la formazione ed è regolata per la consegna ottimale per ogni singolo animale. Il pettine è posizionato a cavalcare i baffi selezionati. Durante l&#39;erogazione del CS, un segnale viene inviato all&#39;attuatore flessione che sposta il pettine e porta alla vibrazione delle basette 17. 16,18,19. La stimolazione baffo motivo è stato scelto per il CS in questo paradigma sperimentale è la dipendenza degli animali murini sul loro vibrisse per l&#39;input informazioni somatosensoriali durante l&#39;esplorazione. Stimolazione baffo ha dimostrato di essere un affidabile ed efficace CS 20. Inoltre, dato il substrato ben consolidata e organizzato corticale del sistema vibrisse (vale a dire, la corteccia barile), la stimolazione baffo come il CS fornisce uno strumento elegante per mappare i cambiamenti corticali e la plasticità connessi con l&#39;apprendimento eyeblink condizionata 20,21. Un sistema di testa fissa consente la precisa stimolazione di baffi selezionati per confrontare le risposte tra i neuroni e neuroni ricevono input da baffi non-stimolata stimolati. Infine, molti ceppi di topi mostrano perdita dell&#39;udito legata all&#39;età come relativamente giovani adulti <sup&gt; 22, e la chiusura delle palpebre durante un batter condizionata altera un CS visivo (anche se un CS visiva fa migliorare i problemi con startle risposte 16). stimolazione baffo non è influenzata da una di queste complicazioni. Presentato qui sono modifiche uniche e importanti su altri preparati testa-fisso per eyeblink condizionata, compresi i metodi di CS e US consegna, e l&#39;acquisizione della risposta eyeblink. L&#39;affidabilità di questo apparecchio e il paradigma di formazione nel condizionamento eyeblink è dimostrato imparando curve da topi condizionata e una curva di apprendimento relativamente piatta da animali di controllo pseudoconditioned (Figura 7a).

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1351">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:436px;">Exervo TeraNova Foam Roller 36&#34; x 6&#34;&#160;</td>
			<td style="width:357px;">Amazon</td>
			<td style="width:181px;">B002ONUM0E</td>
			<td style="width:377px;">For cylinder</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:436px;">Plexiglas</td>
			<td style="width:357px;"></td>
			<td></td>
			<td>Custom-made; 1 cm thick</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:436px;">Metal Rods (12.7mm diameter)</td>
			<td style="width:357px;"></td>
			<td></td>
			<td>Custom-made</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:436px;">4-40 machine screw (.25 in long)</td>
			<td style="width:357px;">Amazon Supply</td>
			<td>&#160;B00F33Q8QO</td>
			<td>For cylinder</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:436px;">Classic Design Hair Comb</td>
			<td style="width:357px;">Conair</td>
			<td style="width:181px;">93505WG-320</td>
			<td>For whisker stimulation</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">2-Layer Rectangular Bending Actuator</td>
			<td style="width:357px;">Piezo Systems</td>
			<td>T220-A4-303X&#160;</td>
			<td>For whisker stimulation</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Solder and Flux Kit</td>
			<td style="width:357px;">Piezo Systems</td>
			<td>MSF-003-NI</td>
			<td>For whisker stimulation</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Magnetic Base</td>
			<td style="width:357px;">Thor Labs</td>
			<td style="width:181px;">MB175</td>
			<td>For whisker stimulation</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Threaded rod for magnetic base</td>
			<td style="width:357px;"></td>
			<td style="width:181px;"></td>
			<td>Custom-made</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:436px;">Strips based on 221 series nylon strip connectors from Electronic Connector Corp.</td>
			<td style="width:357px;"></td>
			<td style="width:181px;"></td>
			<td>Custom-made, based on Weiss and Disterhoft, 2008</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">TO-220 Style Transistor</td>
			<td style="width:357px;">Amazon Supply</td>
			<td>B0002ZPZYO&#160;</td>
			<td>For connector; for the wings</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Relia-Tac Sockets</td>
			<td style="width:357px;">Electronic Connector Corp.</td>
			<td style="width:181px;">220-S02</td>
			<td>For connector</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Relia-Tac Pins</td>
			<td style="width:357px;">Electronic Connector Corp.</td>
			<td style="width:181px;">220-P02</td>
			<td>For headpiece</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">0-80 stainless steel machine screw (1 in. long)</td>
			<td>Amazon Supply</td>
			<td>B000FN68EE</td>
			<td>Locking Screw</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">0-80 stainless steel machine screw hex nut (5/32 in. thick)</td>
			<td>Amazon Supply</td>
			<td>B000N2TK7Y</td>
			<td>Locking Screw Head</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Loctite Super Glue-Liquid</td>
			<td>Loctite</td>
			<td>1365896</td>
			<td>Cyanoacrylic glue; for the locking screw</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Quick Setting Epoxy</td>
			<td style="width:357px;">Ace Hardware</td>
			<td>18613</td>
			<td>For connector and whisker stimulation system</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Ethernet Cable Wires</td>
			<td style="width:357px;"></td>
			<td></td>
			<td>Ethernet cable can be taken apart to use the individual wires for the connector</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:436px;">Polyimide coated stainless steel wires (2 in. long, .005 in. diameter)</td>
			<td style="width:357px;">PlasticsOne</td>
			<td>005sw/2.0 37365 S-S&#160;</td>
			<td>For headpiece, EMG and shock wires</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Stainless steel uncoated wire (.005 in. diameter)</td>
			<td style="width:357px;">AM Systems</td>
			<td>792800</td>
			<td>For headpiece, ground wires</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Tenma Variable Autotransformer</td>
			<td style="width:357px;">Tenma</td>
			<td>72-110</td>
			<td>For the whisker stimulation; rheostat to adjust current to the bending actuator</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Amplifier</td>
			<td style="width:357px;">A-M Systems</td>
			<td>1700</td>
			<td>Amplifier for filtering and amplifying EMG signals</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">WPI A385R stimulus isolator</td>
			<td style="width:357px;">World Precision Instruments</td>
			<td>31405</td>
			<td>For the electrical shock</td>
		</tr>
		<tr height="18">
			<td height="18" style="height:18px;width:436px;">Isothesia (Isoflurane)</td>
			<td style="width:357px;">Henry Schein: Animal Health</td>
			<td style="width:181px;">50031</td>
			<td>For surgery; anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="18">
			<td height="18" style="height:18px;width:436px;">Buprenex Injectable CIII</td>
			<td style="width:357px;">Reckett Benckiser Pharmaceuticals Inc</td>
			<td style="width:181px;">NDC 12496-0757-1</td>
			<td>For surgery; analgesic</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Akwa Tears: Lubricant Ophthalmic Ointment&#160;</td>
			<td style="width:357px;">Akorn</td>
			<td style="width:181px;">NDC 17478-062-35</td>
			<td>Artificial tear ointment to prevent dry eyes while under anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Povidine-Iodine Prep Pads</td>
			<td style="width:357px;">PDI</td>
			<td>NDC 10819-3883-1</td>
			<td>For surgery; antiseptic</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Alcohol Prep Pads</td>
			<td style="width:357px;"></td>
			<td style="width:181px;"></td>
			<td>May be purchased from any standard pharmacy</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Stainless steel surgical scalpel handles (no.3)</td>
			<td style="width:357px;">Integra Miltex&#160;</td>
			<td>4-7.</td>
			<td>For surgery</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Stainless steel surgical scalpel blades</td>
			<td style="width:357px;">Integra Miltex</td>
			<td style="width:181px;">4-310 or 4-315</td>
			<td>For surgery; number 10 or 15 scalpel blade</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">3% Hydrogen Peroxide</td>
			<td style="width:357px;"></td>
			<td style="width:181px;"></td>
			<td>May be purchased from any standard pharmacy</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Micro Clip</td>
			<td style="width:357px;">Roboz</td>
			<td style="width:181px;">RS-5459</td>
			<td>For surgery, to hold back skin</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">00-90 stainless steel machine screw (0.0625 in. long)&#160;</td>
			<td style="width:357px;">Amazon Supply</td>
			<td>B002SG89X4&#160;</td>
			<td>For surgery, to wrap ground wire around</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Professional Rotary Tool</td>
			<td style="width:357px;">Walnut Hollow</td>
			<td>29637</td>
			<td>Hand drill for surgery, to drill holes in skull</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Inverted Cone Burr</td>
			<td style="width:357px;">Roboz</td>
			<td>RS-6282C-34</td>
			<td>Inverted cone burr size 34; for surgery, to drill holes in skull</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Engraving Cutter Drill Bit</td>
			<td style="width:357px;">Dremel</td>
			<td>106</td>
			<td>Engraving cutter; 1.6 mm bit; for surgery, to drill holes in skull</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">C&#38;B Metabond-Quick! Cement System &#34;B&#34; Quick Base</td>
			<td style="width:357px;">Parkell</td>
			<td style="width:181px;">S398</td>
			<td>For surgery; adhesive luting cement system; important to prevent headpiece avulsion</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">C&#38;B Metabond-Quick! Cement System Clear L-Powder</td>
			<td style="width:357px;">Parkell</td>
			<td style="width:181px;">S399</td>
			<td>For surgery; adhesive luting cement system; important to prevent headpiece avulsion</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:436px;">C&#38;B Metabond-Quick! Cement System &#34;C&#34; Universal TBB Catalyst 0.7 ml</td>
			<td style="width:357px;">Parkell</td>
			<td style="width:181px;">S371</td>
			<td>For surgery; adhesive luting cement system; important to prevent headpiece avulsion</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:436px;">C&#38;B Metabond-Quick! Cement System Ceramic Mixing Dish with temperature strip</td>
			<td style="width:357px;">Parkell</td>
			<td style="width:181px;">S387</td>
			<td>For surgery; adhesive luting cement system; important to prevent headpiece avulsion</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;width:436px;">Swiss Tweezers, style #5</td>
			<td style="width:357px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:181px;">504506</td>
			<td>For surgery</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Puritan Cotton-Tipped Applicators</td>
			<td style="width:357px;">VWR International</td>
			<td>10806-005&#160;</td>
			<td>For surgery</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:436px;">Dental Caulk Grip Cement Kit</td>
			<td style="width:357px;">Dentsply</td>
			<td>675570</td>
			<td>For surgery; dental cement</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

whisker-signaled eyeblink classical conditioning in head-fixed mice

Eyeblink conditioning is a common paradigm for investigating the neural mechanisms underlying learning and memory. To better utilize the extensive repertoire of scientific techniques available to study learning and memory at the cellular level, it is ideal to have a stable cranial platform. Because mice do not readily tolerate restraint, they are usually trained while moving about freely in a chamber. Conditioned stimulus (CS) and unconditioned stimulus (US) information are delivered and eyeblink responses recorded via a tether connected to the mouse's head. In the head-fixed apparatus presented here, mice are allowed to run as they desire while their heads are secured to facilitate experimentation. Reliable conditioning of the eyeblink response is obtained with this training apparatus, which allows for the delivery of whisker stimulation as the CS, a periorbital electrical shock as the US, and analysis of electromyographic (EMG) activity from the eyelid to detect blink responses.

8-10 settimane di età topi maschi C57Bl6 / J sono stati formati sulla traccia eyeblink condizionata sull&#39;apparato tapis roulant cilindrica testa fissa. 8 topi sono stati addestrati con le presentazioni appaiate CS-Stati Uniti (gruppo condizionata) e 9 topi sono stati addestrati con le presentazioni spaiati CS e statunitensi (gruppo pseudoconditioned). Esempio EMG registrazioni di una risposta condizionata da un mouse cond...

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Whisker-signaled Eyeblink Classical Conditioning in Head-fixed Mice

The preparation presented here for whisker-signaled eyeblink conditioning in head-fixed mice precisely stimulates specific whiskers while allowing mice to ambulate on a cylindrical treadmill. A whisker stimulation conditioned stimulus (CS) paired with a periorbital shock unconditioned stimulus (US) results in reliable associative learning on this apparatus.

Baffo-segnalato Eyeblink condizionamento classico nei topi Head-fisso

Eyeblink conditioning is a common paradigm for investigating the neural mechanisms underlying learning and memory. To better utilize the extensive ...

whisker-signaled-eyeblink-classical-conditioning-in-head-fixed-mice

Research

JoVE Journal

Behavior

12.9K Views.  Northwestern University. The preparation presented here for whisker-signaled eyeblink conditioning in head-fixed mice precisely stimulates specific whiskers while allowing mice to ambulate on a cylindrical treadmill. A whisker stimulation conditioned stimulus (CS) paired with a periorbital shock unconditioned stimulus (US) results in reliable associative learning on this apparatus.

Video: Whisker-signaled Eyeblink Classical Conditioning in Head-fixed Mice

Contextual and Cued Fear Conditioning Test Using a Video Analyzing System in Mice

The contextual and cued fear conditioning test is one of the behavioral tests that assesses the ability of mice to learn and remember an association between environmental cues and aversive experiences. In this test, mice are placed into a conditioning chamber and are given parings of a conditioned stimulus (an auditory cue) and an aversive unconditioned stimulus (an electric footshock). After a delay time, the mice are exposed to the same conditioning chamber and a differently shaped chamber with presentation of the auditory cue. Freezing behavior during the test is measured as an index of fear memory. To analyze the behavior automatically, we have developed a video analyzing system using the ImageFZ application software program, which is available as a free download at http://www.mouse-phenotype.org/. Here, to show the details of our protocol, we demonstrate our procedure for the contextual and cued fear conditioning test in C57BL/6J mice using the ImageFZ system. In addition, we validated our protocol and the video analyzing system performance by comparing freezing time measured by the ImageFZ system or a photobeam-based computer measurement system with that scored by a human observer. As shown in our representative results, the data obtained by ImageFZ were similar to those analyzed by a human observer, indicating that the behavioral analysis using the ImageFZ system is highly reliable. The present movie article provides detailed information regarding the test procedures and will promote understanding of the experimental situation.

This article presents a protocol for a contextual and cued fear conditioning test using a video analyzing system to assess fear learning and memory in mice.

Contestuali e Cued paura condizionata test utilizzando un sistema di video Analizzare in topi

The contextual and cued fear conditioning test is one of the behavioral tests that assesses the ability of mice to learn and remember an association ...

Ricerca

Comportamento

A Fully Automated Rodent Conditioning Protocol for Sensorimotor Integration and Cognitive Control Experiments

Rodents have been traditionally used as a standard animal model in laboratory experiments involving a myriad of sensory, cognitive, and motor tasks. Higher cognitive functions that require precise control over sensorimotor responses such as decision-making and attentional modulation, however, are typically assessed in nonhuman primates. Despite the richness of primate behavior that allows multiple variants of these functions to be studied, the rodent model remains an attractive, cost-effective alternative to primate models. Furthermore, the ability to fully automate operant conditioning in rodents adds unique advantages over the labor intensive training of nonhuman primates while studying a broad range of these complex functions.
Here, we introduce a protocol for operantly conditioning rats on performing working memory tasks. During critical epochs of the task, the protocol ensures that the animal's overt movement is minimized by requiring the animal to 'fixate' until a Go cue is delivered, akin to nonhuman primate experimental design. A simple two alternative forced choice task is implemented to demonstrate the performance. We discuss the application of this paradigm to other tasks.

A fully automated protocol for rodent operant conditioning is proposed. The protocol relies on precise temporal control of behavioral events to investigate the extent to which this control influences neural activity underlying sensorimotor integration and cognitive control experiments.

Un completamente automatizzata Roditore condizionata Protocollo per Sensomotoria Integrazione e esperimenti di controllo cognitive

Rodents have been traditionally used as a standard animal model in laboratory experiments involving a myriad of sensory, cognitive, and motor tasks. ...

Trace Fear Conditioning in Mice

In this experiment we present a technique to measure learning and memory. In the trace fear conditioning protocol presented here there are five pairings between a neutral stimulus and an unconditioned stimulus. There is a 20 sec trace period that separates each conditioning trial. On the following day freezing is measured during presentation of the conditioned stimulus (CS) and trace period. On the third day there is an 8 min test to measure contextual memory. The representative results are from mice that were presented with the aversive unconditioned stimulus (shock) compared to mice that received the tone presentations without the unconditioned stimulus. Trace fear conditioning has been successfully used to detect subtle learning and memory deficits and enhancements in mice that are not found with other fear conditioning methods. This type of fear conditioning is believed to be dependent upon connections between the medial prefrontal cortex and the hippocampus. One current controversy is whether this method is believed to be amygdala-independent. Therefore, other fear conditioning testing is needed to examine amygdala-dependent learning and memory effects, such as through the delay fear conditioning.

In the following experiment we describe a protocol for trace fear conditioning in mice. This type of associative memory includes a trace period that separates the neutral stimulus and the unconditioned stimulus.

Trace paura condizionata in topi

In this experiment we present a technique to measure learning and memory. In the trace fear conditioning protocol presented here there are five pairings ...

The Modified Hole Board - Measuring Behavior, Cognition and Social Interaction in Mice and Rats

This protocol describes the modified hole board (mHB), which combines features from a traditional hole board and open field and is designed to measure multiple dimensions of unconditioned behavior in small laboratory mammals (e.g., mice, rats, tree shrews and small primates). This paradigm is a valuable alternative for the use of a behavioral test battery, since a broad behavioral spectrum of an animal&#8217;s behavioral profile can be investigated in one single test.
The apparatus consists of a box, representing the &#8216;protected&#8217; area, separated from a group compartment. A board, on which small cylinders are staggered in three lines, is placed in the center of the box, representing the &#8216;unprotected&#8217; area of the set-up. The cognitive abilities of the animals can be measured by baiting some cylinders on the board and measuring the working and reference memory. Other unconditioned behavior, such as activity-related-, anxiety-related- and social behavior, can be observed using this paradigm. Behavioral flexibility and the ability to habituate to a novel environment can additionally be observed by subjecting the animals to multiple trials in the mHB, revealing insight into the animals&#8217; adaptive capacities.
Due to testing order effects in a behavioral test battery, na&#239;ve animals should be used for each individual experiment. By testing multiple behavioral dimensions in a single paradigm and thereby circumventing this issue, the number of experimental animals used is reduced. Furthermore, by avoiding social isolation during testing and without the need to food deprive the animals, the mHB represents a behavioral test system, inducing if any, very low amount of stress.

This protocol describes the modified hole board, which is a behavioral test set-up that comprises the characteristics of an open field and a traditional hole board. This set-up enables the differential analysis of unconditioned behavior of small laboratory mammals as well as the analysis of cognitive abilities.

The Hole Consiglio Modified - Behavior, Cognition e l&#39;interazione sociale in topi e ratti di misura

This protocol describes the modified hole board (mHB), which combines features from a traditional hole board and open field and is designed to measure ...

Quantifying Social Motivation in Mice Using Operant Conditioning

In this protocol, social motivation is measured in mice through a pair of operant conditioning paradigms. To conduct the experiments, two-chambered shuttle boxes were equipped with two operant levers (left and right) and a food receptacle in one chamber, which was then divided from the second chamber by an automated guillotine door covered by a wire grid. Different stimulus mice, rotated across testing days, served as a social stimulus behind the wire grid, and were only visible following the opening of the guillotine door. Test mice were trained to lever press in order to open the door and gain access to the stimulus partner for 15 sec. The number of lever presses required to obtain the social reward progressively increased on a fixed schedule of 3. Testing sessions ended after test mice stopped lever pressing for 5 consecutive minutes. The last reinforced ratio or breakpoint can be used as a quantitative measure of social motivation. For the second paradigm, test mice were trained to discriminate between left and right lever presses in order to obtain either a food reward or the social reward. Mice were rewarded for every 3 presses of each respective lever. The number of food and social rewards can be compared as a measurement of the value placed upon each reward. The ratio of each reward type can also be compared between mouse strains and the change in this ratio can be monitored within testing sessions to measure satiation with a given reward type. Both of these operant conditioning paradigms are highly useful for the quantification of social motivation in mouse models of autism and other disorders of social behavior.

This article describes a new protocol for the quantitative measurement of social motivation in mice using operant conditioning for a social reward. The protocol is useful for the measurement of social motivation in mouse models of autism and other disorders of social behavior.

Quantificare motivazione sociale nei topi mediante condizionamento operante

In this protocol, social motivation is measured in mice through a pair of operant conditioning paradigms. To conduct the experiments, two-chambered ...

Assessing Activity-based Anorexia in Mice

Rodents develop activity-based anorexia (ABA) when exposed to a restricted feeding schedule and allowed free access to a running wheel. These conditions lead to a life-threatening reduction in body weight. However, rodents exposed to only one of these conditions ultimately adapt to re-establish normal body weight. Although increased running coupled with reduction in voluntary food intake appear paradoxical under ABA conditions, ABA behavior is observed across numerous mammalian species. 
The ABA paradigm provides an animal model for anorexia nervosa (AN), an eating disorder with severe dysregulation of appetite-behavior. Subjects are singly housed with free access to a running wheel. Each day, the subject is offered food for a limited amount of time. During the course of the experiment, a subject's body weight decreases from high activity and low caloric intake. The duration of the study varies based on how long food is offered daily, the type of food offered, the strain of mouse, if drugs are being tested, and environmental factors.
A lack of effective pharmacological treatments for AN patients, their low quality of life, high cost of treatment, and their high mortality rate indicate the urgency to further research AN. We provide a basic outline for performing ABA experiments with mice, offering a method to investigate AN-like behavior in order to develop novel therapies. This protocol is optimized for use in Balb/cJ mice, but can easily be manipulated for other strains, providing great flexibility in working with different questions, especially related to genetic factors of ABA.

Mice individually housed with a running wheel while given limited access to food develop reductions in food consumption and increase activity on the running wheel. This experimental phenomenon is called activity-based anorexia. This paradigm provides an experimental tool for studying the neurobiology and behaviors underlying aspects of anorexia nervosa.

Valutazione basata sulle attività di anoressia in topi

Rodents develop activity-based anorexia (ABA) when exposed to a restricted feeding schedule and allowed free access to a running wheel. These conditions ...

Classical Short-Delay Eyeblink Conditioning in One-Year-Old Children

Classical eyeblink conditioning (EBC) refers to the learned association between a conditioned stimulus (an auditory tone) and an unconditioned stimulus (a puff of air to the cornea). Eyeblink conditioning is often used experimentally to detect abnormalities in cerebellar-dependent learning and memory that underlies this type of associative learning. While experiments in adults and older children are relatively simple to administer using commercial equipment, eyeblink conditioning in infants is more challenging due to their poor compliance, which makes correct positioning of the equipment difficult. To achieve conditioning in one-year-old infants, a custom-made or an adapted commercial system can be used to deliver the air puff to the infant's cornea. The main challenge lies in successfully detecting and classifying the behavioral responses. We report that automated blink detection methods are unreliable in this population, and that conditioning experiments should be analyzed using frame-by-frame analysis of supplementary video camera recordings. This method can be applied to study developmental changes in eyeblink conditioning and to examine whether this paradigm can detect children with neurological disorders.

This protocol describes an eyeblink conditioning paradigm appropriate for experiments with one-year-old infants. Commercial or custom-made equipment can be used to deliver the stimuli, and data collection and analysis should be performed on the video recordings.

Classica-ritardo Eyeblink condizionata a One-Year-Old Children

Classical eyeblink conditioning (EBC) refers to the learned association between a conditioned stimulus (an auditory tone) and an unconditioned stimulus (a ...

Visual Classical Conditioning in Wood Ants

Several species of insects have become model systems for studying learning and memory formation. Although many studies focus on freely moving animals, studies implementing classical conditioning paradigms with harnessed insects have been important for investigating the exact cues that individuals learn and the neural mechanisms underlying learning and memory formation. Here we present a protocol for evoking visual associative learning in wood ants through classical conditioning. In this paradigm, ants are harnessed and presented with a visual cue (a blue cardboard), the conditional stimulus (CS), paired with an appetitive sugar reward, the unconditional stimulus (US). Ants perform a Maxilla-Labium Extension Reflex (MaLER), the unconditional response (UR), which can be used as a readout for learning. Training consists of 10 trials, separated by a 5-minute intertrial interval (ITI). Ants are also tested for memory retention 10 minutes or 1 hour after training. This protocol has the potential to allow researchers to analyze, in a precise and controlled manner, the details of visual memory formation and the neural basis of learning and memory formation in wood ants.

We present a protocol for the classical conditioning of harnessed ants that permits researchers to study visual learning and memory formation at a level of analysis not possible with freely moving individuals.

Visual condizionamento classico in legna formiche

Several species of insects have become model systems for studying learning and memory formation. Although many studies focus on freely moving animals, ...

Fear Incubation Using an Extended Fear-Conditioning Protocol for Rats

Emotional memory has been primarily studied with fear-conditioning paradigms. Fear conditioning is a form of learning through which individuals learn the relationships between aversive events and otherwise neutral stimuli. The most-widely utilized procedures for studying emotional memories entail fear conditioning in rats. In these tasks, the unconditioned stimulus (US) is a footshock presented once or several times across single or several sessions, and the conditioned response (CR) is freezing. In a version of these procedures, called cued fear conditioning, a tone (conditioned stimulus, CS) is paired with footshocks (US) during the training phase. During the first test, animals are exposed to the same context in which training took place, and freezing responses are tested in the absence of footshocks and tones (i.e., a context test). During the second test, freezing is measured when the context is changed (e.g., by manipulating the smell and walls of the experimental chamber) and the tone is presented in the absence of footshocks (i.e., a cue test). Most cued fear conditioning procedures entail few tone-shock pairings (e.g., 1-3 trials in a single session). There is a growing interest in less common versions involving an extensive number of pairings (i.e., overtraining) related to the long-lasting effect called fear incubation (i.e., fear responses increase over time without further exposure to aversive events or conditioned stimuli). Extended fear-conditioning tasks have been key to the understanding of fear incubation&#8217;s behavioral and neurobiological aspects, including its relationship with other psychological phenomena (e.g., post-traumatic stress disorder). Here, we describe an extended fear-conditioning protocol that produces overtraining and fear incubation in rats. This protocol entails a single training session with 25 tone-shock pairings (i.e., overtraining) and a comparison of conditioned freezing responses during context and cue tests 48 h (short-term) and 6 weeks (long-term) after training.

We describe an extended fear-conditioning protocol that produces overtraining and fear incubation in rats. This protocol entails a single training session with 25 tone-shock pairings (i.e., overtraining) and a comparison of conditioned freezing responses during context and cue tests 48 h (short-term) and 6 weeks (long-term) after training.

L'incubazione della paura utilizzando un protocollo esteso di condizionamento della paura per i ratti

Emotional memory has been primarily studied with fear-conditioning paradigms. Fear conditioning is a form of learning through which individuals learn the ...

Operant Conditioning Task to Measure Song Preference in Zebra Finches

An operant conditioning paradigm is used to test the song preference of female zebra finches. Finches are placed in a two-chambered cage with a connecting opening and indicate their preference for a song by landing on a perch within each chamber. By interrupting the infrared beam from a photoelectric sensor above each perch, the bird activates the playback of a song through a speaker located on each side of the cage. Freely available software is used to trigger the song playback from each perch. To determine the song preference of each animal, her chamber preference is first identified by triggering no song playback when she lands on each perch. This chamber preference is then compared to her song preference. A minimum activity threshold is set to ensure the preference is real. Using this method, we show that paired females prefer the song of their partner. This method was used to understand the contribution of dopamine to the formation and maintenance of song preference.

We describe a technique to evaluate song preference in zebra finches. Females are placed in a two-chambered cage and song preference is measured by the number of times she triggers the playback of one song by landing on a perch within one chamber, compared with triggering a different song in the second chamber. Perch landings are counted using infrared sensors.

Attività di condizionamento operante per misurare la preferenza canzone in finches zebra

An operant conditioning paradigm is used to test the song preference of female zebra finches. Finches are placed in a two-chambered cage with a connecting ...