Questo lavoro è stato supportato in parte dal progetto per lo sviluppo di ricerche Innovative sulle terapeutica del cancro (P-DIRECT) (15cm0106102h0002, K.M.) e il progetto per la ricerca sul cancro e l'evoluzione terapeutica (P-creare) (16cm 01061150001, K.M.) dal Giappone Agenzia per la ricerca medica e sviluppo, AMED; la Fondazione di scienza di Takeda (Y.M.); Concessione della principessa Takamatsu Cancer Research Fund (13-24520, Y.M.); e pagine JSP KAKENHI Grant numero JP16K07133 (Y.M.).

1. reagente Setup
<ol><li>
Reagenti utilizzati per la sincronizzazione delle cellule
	<ol>
<li>Per generare medio dell'Aquila di Dulbecco modificato (DMEM) contenente timidina 2,5 mM, sciogliere 30,28 mg di timidina per 1 mL di acqua di grado di coltura del tessuto per preparare timidina 125 mM. Filtrare la soluzione con un'unità di filtro di 0,22 μm siringa. Aggiungere 1 mL di timidina preparata 125 mM per 50 mL di DMEM completati con 10% (vol/vol) siero bovino fetale (FBS).</li>
		<li>Per generare DMEM contenente 0,1 μg/mL di nocodazole, sciogliere nocodazole in dimetilsolfossido (DMSO) per preparare 5 μg/μL nocodazole. Aggiungere 1 µ l di 5 µ g / µ l nocodazole per 50 mL di DMEM supplementato con 10% FBS (vol/vol).</li>
		<li>Per generare DMEM contenente 0,002% (vol/vol) di DMSO, aggiungere 1 µ l di DMSO per 50 mL di DMEM supplementato con 10% FBS (vol/vol).</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Reagenti utilizzati per l'analisi di IP-RdRP
	<ol>
<li>Preparare il lysis buffer a: 150 mM NaCl, 20 mM Tris-HCl (pH 7.4) e 0,5% (vol/vol) Nonidet P-40 (NP-40). Conservare il reagente a 4 ° C.</li>
		<li>Preparare 5 x tampone acetato: 50 mM 2-[4-(2-Hydroxyethyl)-1-piperazinyl]ethanesulfonic acido (HEPES)-KOH (pH 7,8), acetato di potassio di 500 mM e 20 mM MgCl2. Conservare il reagente a temperatura ambiente.</li>
		<li>Preparare il tampone di lavaggio tampone 1: 1 x acetato, glicerolo al 10% (vol/vol), 0.1% (vol/vol) Triton x X-100 e 0.06 inibitore della proteasi cocktail, acido ethylenediamenetetraacetic (EDTA)-gratuito. Preparare il tampone di lavaggio 1 giorno di utilizzo o il giorno prima dell'uso. Conservare il reagente a 4 ° C.</li>
		<li>Preparare la soluzione AGC: 1x tampone acetato, 10% (vol/vol) glicerolo e 0,02% (wt/vol) 3-[(3-Cholamidopropyl) dimethylammonio] -1-propanesulfonat (CHAPS). Conservare il reagente a 4 ° C.</li>
		<li>Per generare la soluzione AGC contenente 2 mM CaCl2, aggiungere 100 µ l di 1 M CaCl2 per 50 mL di soluzione AGC. Conservare il reagente a 4 ° C.</li>
		<li>Per generare la soluzione AGC contenente 3 mM etilene glicole a (b-aminoethylether)-N, N, N', N'-acido etilendiamminotetraacetico (EGTA), µ l 375 di 0,4 M EGTA (pH 7,5) per 50 mL di soluzione AGC. Conservare il reagente a 4 ° C.</li>
		<li>Preparare il tampone di lavaggio tampone 2: 1 x acetato e CHAPS 0,02% (wt/vol). Conservare il reagente a 4 ° C.</li>
		<li>Preparare soluzione HMD: 0,2 M HEPES-KOH (pH 7,8), 40 mM MgCl2 e 2 mM dithiothreitol (DTT). Conservare il reagente a-20 ° C. Nota: La soluzione HMD dovrebbe essere rinnovato almeno in tre mesi.</li>
		<li>Preparare 2 x buffer di proteinasi K: 20 mM Tris-HCl (pH 7.6), 20 mM EDTA e 1% (wt/vol) sodio dodecil solfato (SDS). Conservare il reagente a-20 ° C.</li>
		<li>Preparare 2 x buffer di caricamento: formammide 95% (vol/vol), 20 mM EDTA e 1% (wt/vol) arancio G. conservare il reagente a-20 ° C.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. preparazione delle cellule HeLa
Nota: Preparare cellule HeLa sincronizzate in fase mitotica (manipolato) o dividendo in modo asincrono (unmanipulated). Cultura delle cellule in presenza di 5% CO2 a 37 ° C.
<ol><li>
Sincronizzazione delle cellule HeLa in mitosi
	<ol>
<li>Piastra di 1 x 106 delle cellule HeLa con 10 mL di DMEM supplementato con 10% FBS in una piastra di coltura di 10cm (vol/vol).</li>
		<li>Due giorni dopo il placcaggio, sostituire il mezzo con 10 mL di DMEM contenente timidina 2,5 mM e 10% FBS (vol/vol). Coltura delle cellule per 24 h.</li>
		<li>Lavare le cellule tre volte con 10 mL di tampone fosfato salino (PBS) (-) e la cultura delle cellule con 10 mL di DMEM contenente 10% (vol/vol) FBS per 6 h.</li>
		<li>Sostituire il mezzo con 10 mL di DMEM contenente 0,1 µ g/mL di nocodazole e 10% (vol/vol) FBS e cultura le cellule per 14 h.</li>
		<li>Agitare delicatamente la piastra di coltura e recuperare il surnatante contenente le cellule mitotiche indipendente. Contare il numero di cellulare per il dosaggio di IP-RdRP.</li>
		<li>Centrifugare il campione a 490 x g per 5 min a 4 ° C e scartare il surnatante. Nota: Il pellet cellulare possa essere conservato a-80 ° C.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Preparazione delle cellule HeLa unmanipulated
	<ol>
<li>Piastra di 1 x 106 delle cellule HeLa con 10 mL di DMEM supplementato con 10% FBS in una piastra di coltura di 10cm (vol/vol).</li>
		<li>Due giorni dopo il placcaggio, sostituire il mezzo con 10 mL di DMEM contenente 10% FBS (vol/vol). Coltura delle cellule per 30 h.</li>
		<li>Sostituire il mezzo con 10 mL di DMEM contenente 0,002% (vol/vol) DMSO e 10% (vol/vol) FBS e cultura le cellule per 14 h.</li>
		<li>Raccogliere le cellule di trypsinization utilizzando 0,7 mL di tripsina (2,5 g/L) contenente EDTA da 1 millimetro. Contare il numero di cellulare per il dosaggio di IP-RdRP.</li>
		<li>Centrifugare il campione a 490 x g per 5 min a 4 ° C e scartare il surnatante. Nota: Il pellet cellulare possa essere conservato a-80 ° C.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. IP-RdRP Assay
<ol><li>Preparazione della proteina A-agarosio perlina
	<ol>
<li>Trasferire 1 mL (letto volume 500 µ l) di resina di affinità in una microcentrifuga da 1,5 mL. Centrifugare a 800 x g per 5 min a 4 ° C e scartare il surnatante.</li>
		<li>Aggiungere 800 µ l di tampone di lisi ai talloni e mescolare bene capovolgendo la provetta diverse volte. Centrifugare a 800 x g per 3 min a 4 ° C e scartare il surnatante. Ripetere questo passaggio due volte (totale tre lavaggi).</li>
		<li>Aggiungere 800 µ l di tampone di lisi ai talloni, mescolare bene capovolgendo la provetta diverse volte. Ruotare il tubo durante la notte (o per almeno 4 ore) a 4 ° C in un agitatore rotativo.</li>
		<li>Centrifugare la provetta a 800 x g per 3 min a 4 ° C e scartare il surnatante.</li>
		<li>Aggiungere 500 µ l di tampone di lisi ai talloni e mescolare bene capovolgendo la provetta diverse volte. Memorizzare le perline a 4 ° C.</li>
	</ol></li>
	<li>Preparazione del lysate delle cellule
	<ol>
<li>(Opzionale) Se le celle sono bloccate nel passaggio 2, posizionare e scongelare le cellule congelate su ghiaccio fino a quando le cellule si allentano.</li>
		<li>Lavare le cellule una volta con 10 mL di PBS (-). Centrifugare il campione a 1.450 x g per 5 min a 4 ° C e scartare il surnatante.</li>
		<li>Lisare le cellule con buffer di lisi ghiacciata (un 1 mL di tampone di lisi A 1 x 107 delle cellule) pipettando delicato.</li>
		<li>Sottoporre ad ultrasuoni il campione in una provetta da 1,5 mL con seguenti condizioni; impostare l'amplificazione del sonicatore al 25% e trattare con ultrasuoni per 10 s.</li>
		<li>Centrifugare il campione a 20.400 x g per 15 min a 4 ° C.</li>
		<li>Raccogliere il surnatante. Trasferire 1 mL ciascuno del surnatante in provette per microcentrifuga da 1,5 mL. Attenzione: Eseguire tutte le procedure in condizioni di RNAsi-libera.</li>
	</ol></li>
	<li>Immunoprecipitazione
	<ol>
<li>Pre-deselezionare il lisato dal punto 3.2.6 aggiungendo 40 µ l (tallone volume 20 µ l) di perline A-agarosio proteina lavata per 1 mL di lisato. Mescolare bene capovolgendo la provetta diverse volte e ruotare il campione per 30 min a 4 ° C.</li>
		<li>Centrifugare il campione a 13.000 x g per 1 min a 4 ° C e recuperare il surnatante.</li>
		<li>Aggiungere 40 µ l (letto 20 µ l) di proteina lavata A-agarosio perline e 10 µ g di anticorpo anti-umano TERT (clone: 10E9-2)8 in pre-sgomberati lisato. Mescolare bene capovolgendo la provetta diverse volte e ruotare il campione a 4 ° C durante la notte.</li>
		<li>Centrifugare il campione a 3.300 x g per 0,5 min a 4 ° C e rimuovere il surnatante.</li>
		<li>Lavare le perle con tampone di lavaggio 1: aggiungere 1 mL di tampone di lavaggio 1 ai talloni, mescolare bene capovolgendo la provetta e ruotare il campione per 5 min a 4 ° C. Centrifugare il campione a 3.300 x g per 0,5 min a 4 ° C e rimuovere il surnatante. Ripetere questo passaggio altre tre volte.</li>
		<li>Lavare le perle di una volta con soluzione AGC contenente 2 mM CaCl2: aggiungere 1 mL di soluzione AGC contenente 2 mM CaCl2 ai talloni, mescolare bene capovolgendo la provetta e ruotare il campione per 5 min a 4 ° C. Centrifugare il campione a 3.300 x g per 0,5 min a 4 ° C e rimuovere il surnatante.</li>
		<li>Trattare le perline con nucleasi di Micrococcal (MNase): preparare la miscela di reazione MNase descritta nella tabella 1. Risospendere le sfere in 60 µ l della miscela di reazione MNase pipettando delicato. Agitare il campione delicatamente (20-25 giri/min) su una piattaforma girevole di un agitatore per impostare in un'incubatrice di Peltier-tipo per 15 min a 25 ° C. Nota: È molto importante utilizzare un agitatore ondulato e seguire rigorosamente il limite di velocità in questo passaggio. Altro tipo di Scuotipaglia, quali mixer rotante, non sono raccomandati.</li>
		<li>Centrifugare il campione a 3.300 x g per 0,5 min a 4 ° C e rimuovere il surnatante.</li>
		<li>Lavare le perle due volte con soluzione AGC contenente 3 mM EGTA: aggiungere 1 mL di soluzione AGC contenente 3 mM EGTA ai talloni, mescolare bene capovolgendo la provetta e ruotare il campione per 5 min a 4 ° C. Centrifugare il campione a 3.300 x g per 0,5 min a 4 ° C e rimuovere il surnatante. Ripetere questo passaggio una volta.</li>
		<li>Lavare le perle una volta con tampone di lavaggio 2: aggiungere 1 mL di tampone di lavaggio 2ai talloni, mescolare bene capovolgendo la provetta e ruotare il campione per 5 min a 4 ° C. Centrifugare il campione a 3.300 x g per 0,5 min a 4 ° C e rimuovere il surnatante. Mantenere le perline sul ghiaccio durante l'impostazione RdRP reazione. Attenzione: Eseguire tutte le procedure in condizioni di RNAsi-libera.</li>
	</ol></li>
	<li>RdRP reazione
	<ol>
<li>Preparare una miscela di reazione RdRP in un nuovo tubo come descritto nella tabella 2.</li>
		<li>6 µ l di [α -32P] UTP (3.000 IC/mmol) per la miscela e mescolare bene di pipettaggio. Nota: ATP [α -32P], [α -32P] CTP o GTP [α -32P] può essere utilizzato per la reazione anziché [α -32P] UTP.</li>
		<li>Aggiungere 1 µ l di modello RNA (1 µ g / µ l) per la miscela e mescolare bene di pipettaggio. Nota: Per stabilire il dosaggio RdRP, è consigliato il seguente modello di RNA: 5'-GGGAUCAUGUGGGUCCUAUUACAUUUUAAACCCA-3' 9.</li>
		<li>Risospendere le perline con 20 µ l di miscela di reazione RdRP dal punto 3.4.3 pipettando.</li>
		<li>Agitare il campione delicatamente (20-25 giri/min) su una piattaforma girevole di un agitatore per impostare in un'incubatrice di peltier-tipo per 2 h a 32 ° C.</li>
		<li>Aggiungere la miscela di reazione 5,4 µ l di proteinasi K (20 mg/mL) e 45,4 µ l di tampone di proteinasi K x 2. Mescolare pipettando e agitare (20-25 giri) il campione su un giradischi impostato in un'incubatrice di Peltier-tipo per 30 min a 37 ° C.</li>
		<li>Aggiungere 109,2 µ l di acqua RNAsi-libera al campione.</li>
		<li>Aggiungere 200 µ l di acido fenolo-cloroformio nell'esempio. Mescolare bene dal vortice e poi Centrifugare il campione a 21.100 x g per 5 min a temperatura ambiente. Trasferire la fase acquosa ad un nuovo tubo. Ripetere questo passaggio una volta.</li>
		<li>Aggiungere 20 µ l di acetato di sodio 3 M (pH = 5.2), 4 µ l di vettore di precipitazione e 250 µ l di etanolo alla fase acquosa. Agitare il tubo bene per miscelazione, poi Centrifugare il campione a 21.100 x g per 20 min a 4 ° C. Scartare il surnatante.</li>
		<li>Lavare la pallina con 300 µ l di etanolo freddo (vol/vol) di 70% conservato a-20 ° C. Centrifugare il campione a 21.100 x g per 15 min a 4 ° C.</li>
		<li>Scartare il surnatante e asciugare il pellet. Attenzione: Eseguire tutte le procedure in condizioni di RNAsi-libera. Nota: Il pellet dal passaggio 3.4.11 può essere memorizzato a-20 ° C per almeno 2 giorni.</li>
	</ol></li>
	<li>Trattamento di RNAsi
	<ol>
<li>Risospendere il pellet da passo 3.4.11 in 20 µ l di acqua RNAsi-libera.</li>
		<li>Preparare una miscela di reazione di RNAsi in un nuovo tubo come descritto nella tabella 3.</li>
		<li>Aggiungere 180 µ l della miscela di reazione RNasi al campione e incubare la provetta per 2 ore a 37 ° C.</li>
		<li>Aggiungere 2,3 µ l di 10% (vol/vol) SDS al campione e incubare per 15 min a 37 ° C.</li>
		<li>Aggiungere 2 µ l di proteinasi K (20 mg/mL) al campione e incubare per 15 min a 37 ° C.</li>
		<li>Aggiungere 205 µ l di acido fenolo-cloroformio nell'esempio. Mix ben Vortex, poi Centrifugare il campione a 21.100 x g per 5 min a temperatura ambiente. Trasferire la fase acquosa ad un nuovo tubo.</li>
		<li>Aggiungere 20 µ l di acetato di sodio 3 M (pH 5.2), 4 µ l di vettore di precipitazione e 250 µ l di etanolo alla fase acquosa. Agitare il tubo bene per miscelazione, poi Centrifugare il campione a 21.100 x g per 20 min a 4 ° C. Scartare il surnatante.</li>
		<li>Lavare la pallina con 300 µ l di etanolo freddo (vol/vol) di 70% conservato a-20 ° C. Centrifugare il campione a 21.100 x g per 15 min a 4 ° C.</li>
		<li>Scartare il surnatante e asciugare il pellet. Nota: Il pellet dal punto 3.5.9 può essere memorizzato a-20 ° C per almeno 2 giorni.</li>
	</ol></li>
	<li>Autoradiografia e l'elettroforesi del gel
	<ol>
<li>Risospendere il campione con 20 µ l di acqua RNAsi-libera.</li>
		<li>Aggiungere 20 µ l di 2x buffer di caricamento.</li>
		<li>Bollire il campione per 10 min a 95 ° C. Schiacciare il campione sul ghiaccio.</li>
		<li>Esegua il gel. Nel caso in cui la dimensione del modello è 34 nts (Vedi anche punto 3.4.3), gel di poliacrilammide 7 M Urea - 10% viene utilizzato per denaturare elettroforesi del gel.</li>
		<li>Asciugare il gel con un gel asciuga.</li>
		<li>Esporre la pellicola direttamente sul gel di secchi all'interno di una cassetta radiografica con uno schermo d'intensificazione a-80 ° C.</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol>
	<li>Martinez, P., Blasco, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Telomeric+and+extra-telomeric+roles+for+telomerase+and+the+telomere-binding+proteins.">Telomeric and extra-telomeric roles for telomerase and the telomere-binding proteins.</a> Nat Rev Cancer. 11 (3), 161-176 (2011).</li><li>Nakamura, T. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Telomerase+catalytic+subunit+homologs+from+fission+yeast+and+human.">Telomerase catalytic subunit homologs from fission yeast and human.</a> Science. 277 (5328), 955-959 (1997).</li><li>Gillis, A. J., Schuller, A. P., Skordalakes, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structure+of+the+Tribolium+castaneum+telomerase+catalytic+subunit+TERT.">Structure of the Tribolium castaneum telomerase catalytic subunit TERT.</a> Nature. 455 (7213), 633-637 (2008).</li><li>Salgado, P. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+structure+of+an+RNAi+polymerase+links+RNA+silencing+and+transcription.">The structure of an RNAi polymerase links RNA silencing and transcription.</a> PLoS Biol. 4 (12), e434 (2006).</li><li>Castel, S. E., Martienssen, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNA+interference+in+the+nucleus:+roles+for+small+RNAs+in+transcription,+epigenetics+and+beyond.">RNA interference in the nucleus: roles for small RNAs in transcription, epigenetics and beyond.</a> Nat Rev Genet. 14 (2), 100-112 (2013).</li><li>Sugiyama, T., Cam, H., Verdel, A., Moazed, D., Grewal, S. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNA-dependent+RNA+polymerase+is+an+essential+component+of+a+self-enforcing+loop+coupling+heterochromatin+assembly+to+siRNA+production.">RNA-dependent RNA polymerase is an essential component of a self-enforcing loop coupling heterochromatin assembly to siRNA production.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 102 (1), 152-157 (2005).</li><li>Maida, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+RNA-dependent+RNA+polymerase+formed+by+TERT+and+the+RMRP+RNA.">An RNA-dependent RNA polymerase formed by TERT and the RMRP RNA.</a> Nature. 461 (7261), 230-235 (2009).</li><li>Maida, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Involvement+of+telomerase+reverse+transcriptase+in+heterochromatin+maintenance.">Involvement of telomerase reverse transcriptase in heterochromatin maintenance.</a> Mol Cell Biol. 34 (9), 1576-1593 (2014).</li><li>Maida, Y., Yasukawa, M., Masutomi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=De+Novo+RNA+Synthesis+by+RNA-Dependent+RNA+Polymerase+Activity+of+Telomerase+Reverse+Transcriptase.">De Novo RNA Synthesis by RNA-Dependent RNA Polymerase Activity of Telomerase Reverse Transcriptase.</a> Mol Cell Biol. 36 (8), 1248-1259 (2016).</li><li>Okamoto, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Maintenance+of+tumor+initiating+cells+of+defined+genetic+composition+by+nucleostemin.">Maintenance of tumor initiating cells of defined genetic composition by nucleostemin.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (51), 20388-20393 (2011).</li><li>van Dijk, A. A., Makeyev, E. V., Bamford, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Initiation+of+viral+RNA-dependent+RNA+polymerization.">Initiation of viral RNA-dependent RNA polymerization.</a> J Gen Virol. 85 (Pt 5), 1077-1093 (2004).</li></ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Il dosaggio di IP-RdRP è un metodo sensibile per rilevare attività RdRP di TERT umano. Proteina TERT è altamente espressa in cellule HeLa mitotiche, in cui TERT forma il RdRP complesso8,9,10. Ciò suggerisce che mitotiche cellule HeLa sono un materiale ottimo per rilevare attività RdRP. Nel protocollo descritto in precedenza, mitotiche e non sincronizzate le cellule HeLa sono incluse come un positivo e un esempio negativo, rispettivamente. Come mostrato in Figura 1A, RdRP dosaggio prodotti dal modello consigliato RNA in cellule HeLa mitotic Visualizza ampi segnali radioattivi tra 20 a 30 nt. Oltre alle cellule HeLa, abbiamo effettuato il test con diversi tipi di linee cellulari e trovato che il pattern di segnale può essere cambiato in cellulari diversi tipi9: alcuni mostrano un forte segnale solo circa 30 nt, alcuni mostrano un modello simile con cellule HeLa. Abbiamo anche avere eseguito l'analisi con modelli di RNA diversi da 34 nt modello8, breve e lungo (~ 300 nt) RNA con varie sequenze e con successo RdRP prodotti ottenuti da tali modelli anche se ci può essere qualche preferenza. Per la prima prova, tuttavia, si consiglia di utilizzare cellule HeLa in fase mitotica e il modello nt RNA 34. RdRPs può generare RNA double-stranded in un primer-dipendente e in un modo primer-independent11. Abbiamo segnalato che TERT conserva questa proprietà come umano RdRP7,9; TERT sintetizza dsRNA da un modello di RNA con 3'-foldback struttura attraverso un meccanismo di back-adescamento7. Per il modello nt RNA 34, TERT sintetizza fili complementari senza l'utilizzo di primer9. Per rilevare in modo specifico RdRP prodotti sintetizzati in modo indipendente dal primer, cioè de novo sintetizzato RNA prodotti, [α -32P] NTP può essere sostituito con [γ -32P] NTP nel RdRP reazione9.
MNase trattamento di immunocomplessi TERT su perline è un passaggio fondamentale per ottenere i risultati desiderati. Se il trattamento di MNase viene eseguito troppo a lungo o con intensa agitazione, si ridurrebbero notevolmente i prodotti RdRP. Per evitare tali problemi, si consiglia di seguire rigorosamente il protocollo attentamente. Soluzione HMD è un altro fattore critico per il successo. Se trovate che i segnali sono molto deboli, sostituire la soluzione HMD a uno appena preparato.
In tutto il protocollo, uno dovrebbe prendere molta cura per evitare la contaminazione RNasi. Ribonucleasi trattamento dovrebbero essere realizzate con apparecchiature dedicate. Dopo la manipolazione la ribonucleasi, uno dovrebbe eliminare i puntali e tubi con RNAsi immediatamente, eliminano RNasi con soluzioni specializzate (ad es. RNasi tranquilla) e cambiare groves.
TERT interagisce con non solo TERC ma anche molti tipi di RNA endogeni, e abbiamo segnalato parte di loro7. Modifica nell'analisi della IP-RdRP, ad esempio, il saggio di IP-RdRP senza trattamento MNase, fornirà la lista completa di modelli di RNA endogeni per RdRP TERT-collegata attività e bioinformatica guida sulle loro caratteristiche di sequenza. Abbiamo applicato con successo questo protocollo al tessuto lisato. Perché TERT è espresso in una varietà di tessuti normali e tumorali, questo test potrebbe essere utile per studiare la funzione enzimatica non canonico di TERT in essere umano.

Trascrittasi inversa umana del telomerase (TERT) è ben nota come la subunità catalitica della telomerasi e allunga del telomero utilizzando il componente di RNA telomerasi (TERC), il RNA specifico modello1. Anche se TERT polimerizza DNA telomerico come componente della telomerasi, le analisi strutturali e filogenetiche indicano che TERT è strettamente correlata con virale polimerasi RNA-dipendente del RNA (RdRPs), nonché della trascrittasi inversa virale e condivide i domini con queste polimerasi2,3,4. RdRP è l'enzima che genera il filamento di RNA complementare a un modello di RNA. L'enzima è codificato non solo virus, ma anche in organismi di modello, come pianta, lievito e vite senza fine, e la sintesi del RNA double-stranded da RdRP contribuisce al silenziamento genico post-trascrizionale e post-trascrizionali in questi organismi5,6 . Anche se RdRP umano era scomparso da molto tempo, abbiamo trovato RdRP attività in TERT umano nel 20097.
Abbiamo in primo luogo confermato RdRP attività di TERT con proteina ricombinante7, poi stabilito un dosaggio sensibile in vitro per rilevare attività RdRP di endogeno TERT8. Qui, dimostriamo in vitro RdRP test (IP-RdRP assay) per TERT endogeno. Questo metodo inizia con immunoprecipitazione (IP) di TERT endogeno e viene seguito da in vitro RdRP reazione, in cui ribonucleotidi radioattivi sono incorporati nei filamenti di RNA nascente.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco&amp;rsquo;s modified Eagle&amp;rsquo;s medium (DMEM)</td><td>Wako</td><td>044-29765</td><td></td></tr><tr><td>Fetal bovine serum (FBS)</td><td>CORNING</td><td>35-010-CV</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin mixed solution</td><td>nacalai tesque</td><td>26253-84</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-Ethylenediamenetetraacetic acid (EDTA) solution</td><td>nacalai tesque</td><td>32777-44</td><td></td></tr><tr><td>Phosphate buffered saline (PBS(-))</td><td>Wako</td><td>166-23555</td><td></td></tr><tr><td>Thymidine</td><td>nacalai tesque</td><td>07147-61</td><td></td></tr><tr><td>Nocodazole</td><td>Sigma</td><td>M1404</td><td></td></tr><tr><td>Dimethyl sulfoxide (DMSO)</td><td>nacalai tesque</td><td>08904-85</td><td></td></tr><tr><td>Sodium chloride</td><td>nacalai tesque</td><td>31333-45</td><td></td></tr><tr><td>Tris(hydroxymethyl)aminomethane</td><td>nacalai tesque</td><td>35434-21</td><td></td></tr><tr><td>Hydrochloric acid</td><td>nacalai tesque</td><td>18321-05</td><td></td></tr><tr><td>Nonidet P-40 (NP-40)</td><td>nacalai tesque</td><td>25223-04</td><td></td></tr><tr><td>Pierce Protein A Plus Agarose</td><td>Thermo scientific</td><td>22812</td><td></td></tr><tr><td>2-[4-(2-Hydroxyethyl)-1-piperazinyl]ethanesulfonic acid (HEPES)</td><td>nacalai tesque</td><td>17514-15</td><td></td></tr><tr><td>Potassium hydroxide</td><td>Wako</td><td>168-21815</td><td></td></tr><tr><td>Potassium acetate</td><td>nacalai tesque</td><td>28405-05</td><td></td></tr><tr><td>Magnesium chloride hexahydrate (MgCl2&amp;bull;6H2O)</td><td>Wako</td><td>135-00165</td><td></td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>nacalai tesque</td><td>17045-65</td><td></td></tr><tr><td>Polyoxyethylene(10) octylphenyl ether (Triton X-100)</td><td>Wako</td><td>169-21105</td><td></td></tr><tr><td>cOmplete, EDTA-free</td><td>Roche Applied Science</td><td>11 873 580 001</td><td></td></tr><tr><td>Calcium chloride dihydrate (CaCl2&amp;bull;2H2O)</td><td>nacalai tesque</td><td>06731-05</td><td></td></tr><tr><td>Micrococcal nuclease (MNase)</td><td>Takara Bio</td><td>2910A</td><td></td></tr><tr><td>Ethylene glycol bis (b-aminoethylether)-N,N,N&#039;,N&#039;-tetraacetic acid (EGTA)</td><td>nacalai tesque</td><td>15214-92</td><td></td></tr><tr><td>3-[(3-Cholamidopropyl)dimethylammonio]-1-propanesulfonat (CHAPS)</td><td>nacalai tesque</td><td>07957-64</td><td></td></tr><tr><td>Dithiothreitol (DTT)</td><td>nacalai tesque</td><td>14128-91</td><td></td></tr><tr><td>rCTP, rATP, rUTP, rGTP, 100mM each</td><td>Promega</td><td>E6000</td><td></td></tr><tr><td>[a-&lt;sup&gt;32&lt;/sup&gt;P]UTP (3,000 Ci/mmol)</td><td>PerkinElmer</td><td>NEG507H</td><td>Use fresh RI for the assay</td></tr><tr><td>RNase inhibitor</td><td>TOYOBO</td><td>SIN-201</td><td></td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>Takara</td><td>9033</td><td></td></tr><tr><td>Acid-Phenol:Chloroform, pH 4.5 (with IAA, 125:24:1)</td><td>Life Technologies</td><td>AM9720</td><td></td></tr><tr><td>3 M Sodium acetate</td><td>NIPPON GENE</td><td>316-90081</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol (99.5)</td><td>nacalai tesque</td><td>14713-95</td><td></td></tr><tr><td>Dr. GenTLE Precipitation Carrier</td><td>Takara Bio</td><td>9094</td><td></td></tr><tr><td>RNase One Ribonuclease</td><td>Promega</td><td>M4265</td><td></td></tr><tr><td>Sodium dodecyl sulfate (SDS)</td><td>nacalai tesque</td><td>02873-75</td><td></td></tr><tr><td>Formamide, deionized</td><td>nacalai tesque</td><td>16345-65</td><td></td></tr><tr><td>Ethylenediaminetetraacetic Acid Disodium Salt Dihydrate (EDTA)</td><td>nacalai tesque</td><td>15130-95</td><td></td></tr><tr><td>Orange G</td><td>nacalai tesque</td><td>25401-22</td><td></td></tr><tr><td>CO2 incubator</td><td>e.g., ASTEC</td><td>SCA-325DRS</td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>e.g., TOMY</td><td>EX-135</td><td>For step B)</td></tr><tr><td>Micro refrigerated centrifuge</td><td>e.g., KUBOTA</td><td>3740</td><td>For step 6.2</td></tr><tr><td>Sonicator</td><td>Qsonica</td><td>Q125</td><td>Set a microtip (#4422) on the sonicator, for step 6.4</td></tr><tr><td>Micro refrigerated centrifuge</td><td>e.g., TOMY</td><td>MX-305</td><td>For step 6.5</td></tr><tr><td>Cooled incubator</td><td>e.g., Panasonic</td><td>MIR-154-PJ</td><td>Set a rotary shaker inside</td></tr><tr><td>Rotary shaker</td><td>e.g., TAITEC</td><td>RT-5</td><td></td></tr><tr><td>Cooled incubator&amp;nbsp;</td><td>e.g., TAITEC</td><td>BR-43FL</td><td>Set a shaker &amp;ldquo;MINI WAVE&amp;rdquo; inside, for step 7.7</td></tr><tr><td>MINI WAVE</td><td>AS ONE</td><td>WEV-03</td><td>A shaker for steps 7.7, 8.5 and 8.6</td></tr><tr><td>Incubator</td><td>e.g., TAITEC</td><td>HB-80</td><td>Set a shaker &amp;ldquo;MINI WAVE&amp;rdquo; inside, for step 8.5 and 8.6</td></tr><tr><td>Block incubator</td><td>e.g., ASTEC</td><td>BI-516S</td><td></td></tr></tbody></table>

semi-quantitative detection of rna-dependent rna polymerase activity of human telomerase reverse transcriptase protein

Trascrittasi inversa umana del telomerase (TERT) è la subunità catalitica della telomerasi e allunga telomeri attraverso attività DNA polimerasi RNA-dipendente. Anche se TERT viene definita come una trascrittasi inversa, analisi strutturale e filogenetiche del TERT dimostrano che TERT è un membro della polimerasi di mano destra e riguarda virale polimerasi RNA-dipendente del RNA (RdRPs) come pure della trascrittasi inversa virale. In primo luogo abbiamo identificato RdRP attività di TERT umana che genera RNA complementare stand a un modello di RNA non codificanti e contribuisce al RNA silencing in cellule tumorali. Per analizzare questa attività enzimatica non canonico, abbiamo sviluppato RdRP test con TERT ricombinante nel 2009, da allora in poi stabilito in vitro RdRP dosaggio per TERT endogeno. In questo manoscritto, descriviamo il metodo quest'ultimo. Brevemente, TERT complessi immuni sono isolati dalle cellule e incubati con modello RNA e rNTPs compresi rNTP radioattivo per RdRP reazione. Per eliminare singoli filamenti di RNA, prodotti di reazione sono trattati con RNAsi ho e i prodotti finali sono analizzati con elettroforesi su gel di poliacrilammide. Radiomarcato RdRP prodotti possono essere rilevati mediante autoradiografia dopo l'esposizione durante la notte.

Con il modello consigliato di RNA radioattivo RdRP prodotti sono osservati tra 20-30 nucleotidi (nt) specificamente in cellule HeLa in fase mitotica dopo l'esposizione durante la notte (Figura 1A). In genere, l'intensità del segnale dei prodotti RdRP dimostra due picchi che sono posizionati circa 25 nt e 30 nt in consonanza con la distribuzione delle dimensioni dei prodotti confermata dalla prossima generazione sequenziamento9. Contrariamente alle cellule mitotiche, cellule HeLa senza sincronizzazione dimostrano quasi assenza dei prodotti radioattivi 20 – 30 nt. Segnali ovali, che vengono posizionati sotto 20 nt in tutti i campioni, sono derive non specifici.
Nel caso che c'è solo un prodotto di nt ~ 30 con segnale debole in cellule HeLa mitotiche, indica che la reazione di RdRP non è andata bene. Ad esempio, se MNase trattamento avviene all'incirca e a sproposito, l'intensità del segnale in HeLa mitotica celle diminuisce significativamente (Figura 1B). RdRP reazione con vecchio HMD soluzione riduce inoltre i prodotti (Figura 1).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57021/57021fig1.jpg"> Figura 1 : Rappresentante RdRP prodotti di TERT endogeno in cellule HeLa mitotic. (A) tre risultati rappresentativi del dosaggio IP-RdRP in cellule HeLa trattati con nocodazole (manipolato) o DMSO (unmanipulated). Il 34 chimicamente sintetizzato nt RNA è stato utilizzato come modello. (B) analisi IP-RdRP in cellule HeLa mitotiche eseguita con il trattamento inadeguato di MNase. (C) test IP-RdRP in cellule HeLa mitotiche eseguita con soluzione HMD fresca o vecchia. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/57021/57021fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Reagenti</td>
			<td>Volume</td>
		</tr>
<tr>
<td>Nucleasi di micrococcal, 20 U / µ l</td>
			<td>1 Μ l</td>
		</tr>
<tr>
<td>Nucleasi di micrococcal Buffer, 10x</td>
			<td>8 Μ l</td>
		</tr>
<tr>
<td>Acqua RNAsi-libera</td>
			<td>Μ L 51</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabella 1: Componente MNase reazione mix.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Reagenti</td>
			<td>Volume</td>
		</tr>
<tr>
<td>SCREPOLATURE, 0,07% (wt/vol)</td>
			<td>6 Μ l</td>
		</tr>
<tr>
<td>Soluzione HMD</td>
			<td>2 Μ l</td>
		</tr>
<tr>
<td>rATP, 80 mM</td>
			<td>0,5 Μ l</td>
		</tr>
<tr>
<td>rGTP, 8 mM</td>
			<td>1 Μ l</td>
		</tr>
<tr>
<td>rUTP, 0,4 mM</td>
			<td>1 Μ l</td>
		</tr>
<tr>
<td>rCTP, 8 mM</td>
			<td>1 Μ l</td>
		</tr>
<tr>
<td>Inibitore di RNasi, 40 U / µ l</td>
			<td>0,5 Μ l</td>
		</tr>
<tr>
<td>Acqua RNAsi-libera</td>
			<td>1 Μ l</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabella 2: Componente RdRP reazione mix.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Reagenti</td>
			<td>Volume</td>
		</tr>
<tr>
<td>RNasi una ribonucleasi, 10 U / µ l</td>
			<td>0.2 Μ l</td>
		</tr>
<tr>
<td>Tampone di reazione, 10x</td>
			<td>20 Μ l</td>
		</tr>
<tr>
<td>Acqua RNAsi-libera</td>
			<td>159,8 Μ l</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabella 3: Componente ribonucleasi reazione mix.

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Semi-quantitative Detection of RNA-dependent RNA Polymerase Activity of Human Telomerase Reverse Transcriptase Protein

Rilevamento semi-quantitativa dell'attività della RNA polimerasi RNA-dipendente della proteina di Human Telomerase Reverse Transcriptase

Trascrittasi inversa umana del telomerase (TERT) sintetizza non solo DNA telomerico, ma anche RNA double-stranded attraverso attività RNA polimerasi RNA-dipendente. Qui, descriviamo un neocostituita dosaggio per rilevare attività RNA polimerasi RNA-dipendente di TERT endogeno.

Human telomerase reverse transcriptase (TERT) is the catalytic subunit of telomerase, and it elongates telomere through RNA-dependent DNA polymerase ...

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Research

JoVE Journal

Genetics

9.8K Views.  National Cancer Center Research Institute. Trascrittasi inversa umana del telomerase (TERT) sintetizza non solo DNA telomerico, ma anche RNA double-stranded attraverso attività RNA polimerasi RNA-dipendente. Qui, descriviamo un neocostituita dosaggio per rilevare attività RNA polimerasi RNA-dipendente di TERT endogeno.

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An In Vitro Assay to Detect tRNA-Isopentenyl Transferase Activity

N6-isopentenyladenosine RNA modifications are functionally diverse and highly conserved among prokaryotes and eukaryotes. One of the most highly conserved N6-isopentenyladenosine modifications occurs at the A37 position in a subset of tRNAs. This modification improves translation efficiency and fidelity by increasing the affinity of the tRNA for the ribosome. Mutation of enzymes responsible for this modification in eukaryotes are associated with several disease states, including mitochondrial dysfunction and cancer. Therefore, understanding the substrate specificity and biochemical activities of these enzymes is important for understanding of normal and pathologic eukaryotic biology. A diverse array of methods has been employed to characterize i6A modifications. Herein is described a direct approach for the detection of isopentenylation by Mod5. This method utilizes incubation of RNAs with a recombinant isopentenyl transferase, followed by RNase T1 digestion, and 1-dimensional gel electrophoresis analysis to detect i6A modifications. In addition, the potential adaptability of this protocol to characterize other RNA-modifying enzymes is discussed.

An In Vitro Assay to Detect tRNA-Isopentenyl Transferase Activity

Here, we describe a protocol for the biochemical characterization of the yeast RNA-modifying enzyme, Mod5, and discuss how this protocol could be applied to other RNA-modifying enzymes.

Un test In Vitro per rilevare attività di tRNA-Isopentenyl Transferase

N6-isopentenyladenosine RNA modifications are functionally diverse and highly conserved among prokaryotes and eukaryotes. One of the most highly conserved ...

Ricerca

Biochimica

Droplet Digital TRAP (ddTRAP): Adaptation of the Telomere Repeat Amplification Protocol to Droplet Digital Polymerase Chain Reaction

The telomere repeat amplification protocol (TRAP) is the most widely used assay to detect telomerase activity within a given a sample. The polymerase chain reaction (PCR)-based method allows for robust measurements of enzyme activity from most cell lysates. The gel-based TRAP with fluorescently labeled primers limits sample throughput, and the ability to detect differences in samples is restricted to two fold or greater changes in enzyme activity. The droplet digital TRAP, ddTRAP, is a highly sensitive approach that has been modified from the traditional TRAP assay, enabling the user to perform a robust analysis on 96 samples per run and obtain absolute quantification of the DNA (telomerase extension products) input within each PCR. Therefore, the newly developed ddTRAP assay overcomes the limitations of the traditional gel-based TRAP assay and provides a more efficient, accurate, and quantitative approach to measuring telomerase activity within laboratory and clinical settings.

Droplet Digital TRAP ddTRAP: Adaptation of the Telomere Repeat Amplification Protocol to Droplet Digital Polymerase Chain Reaction

We successfully converted the standard telomere repeat amplification protocol (TRAP) assay to be employed in droplet digital polymerase chain reactions. This new assay, called ddTRAP, is more sensitive and quantitative, allowing for better detection and statistical analysis of telomerase activity within various human cells.

Droplet Digital TRAP (ddTRAP): adattamento del protocollo di amplificazione di ripetizione telomere a droplet reazione a catena della polimerasi digitale

The telomere repeat amplification protocol (TRAP) is the most widely used assay to detect telomerase activity within a given a sample. The polymerase ...

Ricerca sul cancro

Detection of Tilapia Lake Virus Using Conventional RT-PCR and SYBR Green RT-qPCR

The aim of this method is to facilitate the fast, sensitive and specific detection of Tilapia Lake Virus (TiLV) in tilapia tissues. This protocol can be used as part of surveillance programs, biosecurity measures and in TiLV basic research laboratories. The gold standard of virus diagnostics typically involves virus isolation followed by complementary techniques such as reverse-transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) for further verification. This can be cumbersome, time-consuming and typically requires tissue samples heavily infected with virus. The use of RT-quantitative (q)PCR in the detection of viruses is advantageous because of its quantitative nature, high sensitivity, specificity, scalability and its rapid time to result. Here, the entire method of PCR based approaches for TiLV detection is described, from tilapia organ sectioning, total ribonucleic acid (RNA) extraction using a guanidium thiocyanate-phenol-chloroform solution, RNA quantification, followed by a two-step PCR protocol entailing, complementary deoxyribonucleic acid (cDNA) synthesis and detection of TiLV by either conventional PCR or quantitative identification via qPCR using SYBR green I dye. Conventional PCR requires post-PCR steps and will simply inform about the presence of the virus. The latter approach will allow for absolute quantification of TiLV down to as little as 2 copies and thus is exceptionally useful for TiLV diagnosis in sub-clinical cases. A detailed description of the two PCR approaches, representative results from two laboratories and a thorough discussion of the critical parameters of both have been included to ensure that researchers and diagnosticians find their most suitable and applicable method of TiLV detection.

This protocol diagnoses Tilapia Lake Virus (TiLV) in tilapia tissues using RT-PCR methodologies. The entire method is described from tissue dissection to total RNA extraction, followed by cDNA synthesis and detection of TiLV by either conventional PCR or quantitative PCR using dsDNA binding a fluorescent binding dye.

Rilevamento di Tilapia Lago Virus mediante RT-PCR convenzionale e SYBR Green RT-qPCR

The aim of this method is to facilitate the fast, sensitive and specific detection of Tilapia Lake Virus (TiLV) in tilapia tissues. This protocol can be ...

Ambiente

Antibody-Free Assay for RNA Methyltransferase Activity Analysis

There are more than 100 chemically distinct modifications of RNA, two thirds of which consist of methylations. Interest in RNA modifications, and especially methylations, has re-emerged due to the important roles played by the enzymes that write and erase them in biological processes relevant to disease and cancer. Here, a sensitive in vitro assay for accurate analysis of RNA methylation writer activity on synthetic or in vitro transcribed RNAs is provided. This assay uses a tritiated form of S-adenosyl-methionine, resulting in direct labeling of methylated RNA with tritium. The low energy of tritium radiation makes the method safe, and pre-existing methods of tritium signal amplification, make it possible to quantify and to visualize the methylated RNA without the use of antibodies, which are commonly prone to artifacts. While this method is written for RNA methylation, few tweaks make it applicable to the study of other RNA modifications that can be radioactively labeled, such as RNA acetylation with 14C acetyl coenzyme A. Overall, this assay allows to quickly assess RNA methylation conditions, inhibition with small molecule inhibitors, or the effect of RNA or enzyme mutants, and provides a powerful tool to validate and expand results obtained in cells.

Here, an antibody-free in vitro assay for direct analysis of methyltransferase activity on synthetic or in vitro transcribed RNA is described.

Analisi anticorp-free per l'analisi dell'attività di RNA methyltransferase

There are more than 100 chemically distinct modifications of RNA, two thirds of which consist of methylations. Interest in RNA modifications, and ...

Genetica

<meta charset="utf8"></head><body>Valutazione accurata della lunghezza dei telomeri negli studi sulla popolazione umana

Monochrome Multiplex Quantitative PCR Telomere Length Measurement

Telomeres are ribonucleoprotein structures at the end of all eukaryotic chromosomes that protect DNA from damage and preserve chromosome stability. Telomere length (TL) has been associated with various exposures, biological processes, and health outcomes. This article describes the monochrome multiplex quantitative polymerase chain reaction (MMqPCR) assay protocol routinely conducted in our laboratory for measuring relative mean TL from human DNA. There are several different PCR-based TL measurement methods, but the specific protocol for the MMqPCR method presented in this publication is repeatable, efficient, cost-effective, and suitable&#160;for population-based studies. This detailed protocol outlines all information necessary for investigators to establish this assay in their laboratory. In addition, this protocol provides specific steps to increase the reproducibility of TL measurement by this assay, defined by the intraclass correlation coefficient (ICC) across repeated measurements of the same sample. The ICC is a critical factor in evaluating expected power for a specific study population; as such, reporting cohort-specific ICCs for any TL assay is a necessary step to enhance the overall rigor of population-based studies of TL. Example results utilizing DNA samples extracted from peripheral blood mononuclear cells demonstrate the feasibility of generating highly repeatable TL data using this MMqPCR protocol.

<meta charset="utf8"></head><body>Autore in primo piano: Esplorare l'impatto del trauma sull'invecchiamento cellulare

Here we present a protocol for the measurement of relative telomere length (TL) using the monochrome multiplex quantitative polymerase chain reaction (MMqPCR) assay. The MMqPCR assay is a repeatable, efficient, and cost-effective method for measuring TL from human DNA in population-based studies.

Misurazione quantitativa della lunghezza dei telomeri PCR multiplex monocromatica 

Telomeres are ribonucleoprotein structures at the end of all eukaryotic chromosomes that protect DNA from damage and preserve chromosome stability. ...

Quantificazione della lunghezza dei telomeri mediante rilevamento a chemiluminescenza non radioattiva

Optimization of Performance Parameters of the TAGGG Telomere Length Assay

Telomeres are repetitive sequences which are present at chromosomal ends; their shortening is a characteristic feature of human somatic cells. Shortening occurs due to a problem with end replication and the absence of the telomerase enzyme, which is responsible for maintaining telomere length. Interestingly, telomeres also shorten in response to various internal physiological processes, like oxidative stress and inflammation, which may be impacted due to extracellular agents like pollutants, infectious agents, nutrients, or radiation. Thus, telomere length serves as an excellent biomarker of aging and various physiological health parameters. The TAGGG telomere length assay kit is used to quantify average telomere lengths using the telomere restriction fragment (TRF) assay and is highly reproducible. However, it is an expensive method, and because of this, it is not employed routinely for large sample numbers. Here, we describe a detailed protocol for an optimized and cost-effective measurement of telomere length using Southern blots or TRF analysis and non-radioactive chemiluminescence-based detection.

Autore in primo piano: Ottimizzazione dei parametri prestazionali del saggio della lunghezza dei telomeri TAGGG  

Here, we describe in detail the protocol for quantifying telomere length using non-radioactive chemiluminescent detection, with a focus on the optimization of various performance parameters of the TAGGG telomere length assay kit, such as buffer quantities and probe concentrations.

Ottimizzazione dei parametri prestazionali del saggio di lunghezza dei telomeri TAGGG

Telomeres are repetitive sequences which are present at chromosomal ends; their shortening is a characteristic feature of human somatic cells. Shortening ...

Rilevamento semi-quantitativa dell'attività della RNA polimerasi RNA-dipendente della proteina di Human Telomerase Reverse Transcriptase

Riepilogo

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Capitoli in questo video

Un test In Vitro per rilevare attività di tRNA-Isopentenyl Transferase

Droplet Digital TRAP (ddTRAP): adattamento del protocollo di amplificazione di ripetizione telomere a droplet reazione a catena della polimerasi digitale

Rilevamento di Tilapia Lago Virus mediante RT-PCR convenzionale e SYBR Green RT-qPCR

Analisi anticorp-free per l'analisi dell'attività di RNA methyltransferase

Misurazione quantitativa della lunghezza dei telomeri PCR multiplex monocromatica

Misurazione quantitativa della lunghezza dei telomeri PCR multiplex monocromatica

Misurazione quantitativa della lunghezza dei telomeri PCR multiplex monocromatica

Ottimizzazione dei parametri prestazionali del saggio di lunghezza dei telomeri TAGGG

Ottimizzazione dei parametri prestazionali del saggio di lunghezza dei telomeri TAGGG

Ottimizzazione dei parametri prestazionali del saggio di lunghezza dei telomeri TAGGG