1 L'agone americano è una specie ittica endogena2 originaria degli Stati Uniti orientali e del Canada, 3 dove il numero sta diminuendo a causa di diversi fattori. 4 Questi pesci sono noti per essere 5 una specie sensibile alla manipolazione, 6 e pochissimi studi di marcatura hanno avuto successo 7 nello studio del loro comportamento e della loro sopravvivenza 8 senza osservare alti tassi di mortalità. 9 Per aiutare nello studio dei movimenti a breve termine 10 di piccole e piccole e 11 ricercatori del Pacific Northwest National Laboratory 12 hanno sviluppato un nuovo trasmettitore acustico in miniatura, 13 e valutato molte fasi del processo di etichettatura, 14 tra cui la raccolta del pesce, il trasporto, 15 la detenzione, l'etichettatura e il recupero post-etichettatura.
16 L'obiettivo generale di questo studio era quello di sviluppare un protocollo 17 per la marcatura dei giovani di alosa americana, 18 con un trasmettitore acustico 19 che riducesse al minimo gli effetti dannosi della manipolazione 20 e massimizzasse la sopravvivenza post-marcatura. Sebbene non siano originari del Pacifico nord-occidentale, 22 gli shad americani sono diventati molto abbondanti nella regione. 23 giovani shad utilizzati in questo studio sono stati raccolti, 24 da un impianto di bypass per pesci, 25 in una diga idroelettrica sul fiume Columbia inferiore, 26 e trasportati al nostro laboratorio di ricerca acquatica.
27 La tecnica raccomandata 28 per marcare il giovane shad americano è un'incisione pettorale 29 con impianto di trasmettitore acustico interno, 30 senza l'uso di suture per chiudere la ferita. 31 Questa tecnica di impianto può essere eseguita 32 in meno di 30 secondi, ha un alto tasso di ritenzione del tag, 33 e consente una rapida guarigione della ferita. 34 Altre tecniche che hanno contribuito a ridurre al minimo lo stress 35 e a gestire la mortalità includevano 36 l'utilizzo di trasferimenti acqua-acqua 37 e la detenzione dei pesci in acqua salata salmastra, 38 sia prima che dopo la marcatura.
39 Quando l'acqua salata salmastra40 non è prontamente disponibile, 41 utilizzare un sistema statico per trattenere l'agone 42 con un'adeguata aerazione e circolazione, 43 per uno o due giorni prima del rilascio. 44 In un serbatoio circolare statico, 45 installare un sistema di trasporto aereo per fornire l'aerazione. 46 Collegare un tubo in PVC in modo che una T si trovi nella parte superiore, 47 un'altra T è al centro, 48 e un raccordo schermato è filettato 49 sul fondo del tubo.
50 Quindi, collegare una pietra porosa a una linea aerea compressa, 51 e posizionare la pietra porosa sul fondo del tubo 52 vicino allo schermo. 53 Lo schermo impedisce ai pesci di nuotare 54 nel sistema di trasporto aereo. 55 Riempire il serbatoio con acqua dolce 56 fino a quando la porta di uscita del ponte aereo 57 è approssimativamente sommersa a metà.
58 Quindi, chiudere l'acqua. 59 Quindi, attivare l'alimentazione dell'aria 60 fino a quando l'acqua aerata che esce dalla porta crea un flusso 61 direzionale per l'orientamento dei pesci. 62 Aggiungere sale marino commerciale per ottenere 63 una soluzione di acqua salata salmastra da 7,5 parti per mille, 64 e mescolare fino a quando non si sarà sciolta.
65 Prima di raccogliere il pesce da una vasca di contenimento, 66 preparare un secchio di acqua salata. 67 Misurare 7,5 grammi di sale marino 68 ogni 0,5 litri di acqua. 69 Utilizzare una mano guantata per sciogliere il sale nel secchio.
70 Si noti che nel passaggio tre, 71 viene aggiunto un volume uguale di lattina di acqua dolce contenente l'agone 72 per creare una concentrazione finale di 7,5 PPT. 73 In un altro secchio, 74 misurare e sciogliere 7,5 grammi di sale marino 75 per ogni litro d'acqua, 76 quindi aggiungere 120 grammi di tricaina-metansolfonato 77 tamponato con 120 milligrammi di bicarbonato di sodio 78 per litro di acqua salata. 79 Aggiungere aria supplementare ai secchi dell'anestetico.
80 Quindi, riempire parzialmente un altro secchio con acqua fresca 81 e posizionarlo lateralmente nel serbatoio di origine di pre-etichettatura, 82 e utilizzare una rete o una mano per guidare delicatamente l'agone 83 a nuotare nel secchio. 84 Una volta che un numero adeguato di pesci è nel secchio, 85 capovolgere il secchio in posizione verticale e fissarlo con un coperchio forato. 86 Versare l'acqua in eccesso attraverso il coperchio, 87 mantenendo il pesce contenuto 88 nella quantità target di acqua dolce.
89 Versare delicatamente l'alosa e l'acqua fresca 90 nel secchio della fonte di acqua salata preparato al secondo passaggio. 91 Si noti che la salinità finale sarà di 7,5 PPT. 92 Fornire aria supplementare 93 al secchio di origine del pesce 94 pre-etichettato utilizzando una pompa dell'aria dell'acquario e una pietra porosa 95 per mantenere l'ossigeno disciolto a un livello accettabile.
96 Disinfettare i trasmettitori in etanolo al 70% per 20 minuti, 97 e risciacquare con acqua sterile prima dell'uso. 98 Quindi, utilizzando una rete da immersione a maglie lisce extra fini, 99 rete un pesce dal secchio di origine 100 e nel secchio anestetico. 101 Shad dovrebbe perdere l'equilibrio e i riflessi spinali 102 in circa due o tre minuti.
103 Una volta completamente anestetizzato, utilizzare una mano guantata 104 per posizionare delicatamente il pesce su una tavola di misurazione bagnata 105 per ottenerne la lunghezza. 106 Spostare il pesce in una barca di peso piena d'acqua 107 su una bilancia strappata per ottenere il suo peso. 108 Registrare la lunghezza e il peso, il codice dell'etichetta acustica, 109 e qualsiasi commento sulle condizioni del pesce prima dell'etichettatura, 110 come la perdita di squame o l'emorragia.
111 Quindi, mettere il pesce in un contenitore di trasferimento 112 riempito con acqua salata anestetica, 113 e consegnarlo insieme al trasmettitore acustico 114 al chirurgo dei pesci. 115 Posizionare il pesce con il lato sinistro rivolto verso il basso 116 su un cuscinetto di schiuma resistente all'acqua bagnato 117 preparato con una scanalatura a V. 118 Fornire acqua dolce alla bocca del pesce 119 tramite un tubo collegato a un serbatoio d'acqua alimentato a gravità.
120 Utilizzando una lama chirurgica disinfettata 121 o una lama chirurgica in acciaio inossidabile numero 11 nuova di zecca, 122 praticare un'incisione lunga tre millimetri, 123 verticalmente, tra i miomeri 124 vicino all'estremità distale della pinna pettorale. 125 Inserire con cautela il trasmettitore nell'incisione, 126 e spingerlo posteriormente 127 fino a quando l'intera targhetta non si trova all'interno della cavità corporea. 128 Se necessario, utilizzare l'estremità smussata del bisturi, 129 o una pinza a punta fine, per inserire con cura la targhetta completamente.
130 Quindi, metti il pesce etichettato in un piccolo contenitore 131 da 7,5 PPT di acqua salata con aerazione, 132 per consentire al pesce di riprendersi dall'anestesia. 133 Una volta che il pesce ha riacquistato l'equilibrio, 134 effettua un trasferimento acqua-acqua dal contenitore di recupero 135 al serbatoio di contenimento contenente acqua salata. 136 Lasciare che i pesci marcati si riprendano in acqua salata 137 per uno o due giorni prima del rilascio.
Le valutazioni di laboratorio hanno dimostrato 139 che la sopravvivenza dell'agone giovanile e la ritenzione dell'etichetta erano più alte 140 quando i pesci sono stati impiantati 141 con la posizione dell'incisione pettorale, 142 rispetto ad altre tecniche di marcatura 143 che includevano l'inserimento gastrico, 144 l'incisione pelvica e l'attacco dorsale. 145 La sopravvivenza per i pesci marcati in questa valutazione è stata definita 146 sia come sopravvivenza che come ritenzione del marcatore, 147 perché l'espulsione del marchio non può essere differenziata 148 da un evento di mortalità in uno studio di telemetria. 149 La figura mostra il trasmettitore fittizio P 5 utilizzato 150 nelle valutazioni di laboratorio, 151 e il prototipo di trasmettitore acustico 152 con componenti funzionali.
153 Il prototipo finale del trasmettitore è 154 lungo circa 7,6 millimetri, 155 2,0 millimetri di diametro, 156 e ha un peso e un'aria di circa 50 milligrammi. 157 Questa figura illustra la sopravvivenza di 60 giorni 158 per una vasca di giovani shad 159 marcati con il trasmettitore P5, 160 rispetto al gruppo di controllo non marcato. La sopravvivenza a 60 giorni è stata dell'81,5% per il gruppo marcato, del 162 e del 70% per i controlli non marcati.
163 Non c'era alcuna differenza statistica nella sopravvivenza 164 tra i due gruppi, 165 tuttavia, la potenza di rilevare una differenza era del 38,4%166 Abbiamo sviluppato un protocollo dettagliato di manipolazione e marcatura167 che sarà utile nello studio di specie ittiche piccole e 168 sensibili e minacciate come l'alosa americana. 169 Abbiamo scoperto che ridurre al minimo la manipolazione fuori dall'acqua 170 e l'uso di acqua salata salmastra prima e dopo la marcatura 171 ha migliorato la sopravvivenza di questi pesci. 172 Il I risultati di queste valutazioni dimostrano 173 che la sopravvivenza dell'alosa marcata era paragonabile 174 alla sopravvivenza dell'agone non marcato, oltre la durata 175 della durata della batteria del trasmettitore acustico, 176 che si prevede sia di circa 30 giorni 177 con un intervallo di velocità di ping di cinque secondi.
178 Questa tecnologia consentiràai ricercatori 179 di ottenere informazioni preziose sul comportamento del novellame di alosa 180 vicino agli impianti idroelettrici, 181 e di determinare i tassi di sopravvivenza specifici per il percorso. 182 I risultati ottenuti dagli studi di inRiver possono informare meglio 183 le decisioni di gestione in questi impianti, 184 per migliorare i tassi di passaggio e di sopravvivenza dei pesci giovani. 185 Inoltre, queste tecniche sono facilmente trasferibili 186 all'impianto di shad con tag transponder integrati passivi, 187 che possono fornire un monitoraggio a lungo termine 188 durante tutta la loro vita.
