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Method Article
私たちは、異種腫瘍微小環境を再現し、マイクロ流体デバイスの作製及び操作のための手順を紹介 in vitroで。腫瘍組織内アポトーシスの変動を評価した蛍光染色し、腫瘍組織への化学療法薬ドキソルビシンの有効拡散係数を用いて定量した。
我々は、in vitroでの異種3次元腫瘍組織への薬物の送達及び全身クリアランスを模倣したマイクロ流体デバイスを開発しました。血管系で配信栄養素は、実行可能な静止および壊死細胞の種類により構成される異種微小環境を生み出して、腫瘍のすべての部分に到達しない。多くの抗がん剤は効果的に細胞のため、この異質のすべてのタイプを貫通し、治療に失敗する。がん細胞の単層は、それが困難なin vitroモデルを適当に抗がん剤をテストすること、この異質性を模倣することはできません。当社のマイクロ流体デバイスは、ソフトリソグラフィーを用いたPDMSから製造された。ハンギングドロップ法により形成された多細胞腫瘍スフェロイドは、挿入され、拘束装置の長方形のチャンバーに、片面に連続媒体の血流を維持した。デバイス上室の矩形形状は、組織内で線形グラデーションを作成しました。蛍光汚れは目を定量化するために使用された組織内のアポトーシスにおけるe変動。デバイス上の腫瘍が蛍光化学療法薬ドキソルビシンで処理した、タイムラプス顕微鏡組織への拡散を監視するために使用され、有効拡散係数を推定した。ハンギングドロップ法は、いくつかの癌細胞株からの均一なスフェロイドの迅速な形成を可能にした。デバイスは、最大3日間までスフェロイドの成長を可能にしました。媒体を流すの近傍の細胞がアポトーシスを起こしていた最低限、それらの遠い路からそれによって正確に血管に隣接する腫瘍内の領域を模倣し、より多くのアポトーシスであった。ドキソルビシンの拡散係数の推定値は、ヒト乳癌における以前に報告された値と一致していた。固形腫瘍における薬剤の浸透および保持は、その有効性に影響を与えるため、我々は、このデバイスは薬剤の挙動を理解し、新たながん治療薬を開発する上で重要なツールであると信じています。
1。デバイス製造
エラストマー材料のマイクロ流体の特徴のレプリケーションがダフィーらの方法に基づいていた。1
2。制服スフェロイドの形成
スフェロイドはハンギングドロップ法2,3によって形成された。
3。デバイスにスフェロイドの導入
このセクションの1、表、図2を参照してください。
4。アポトーシス検出剤の紹介(CaspGLOW)
スフェロイドとチャンバーを梱包した後に、uの平衡を許可検出アポトーシスまたは治療剤を導入する前に、栄養勾配および微小環境を確立するために、24時間に電話。チャンバ内の組織が上部と下部から入り込めない壁に接触しているので、組織の厚さに沿った栄養勾配(0.15ミリメートル)がありません。 24時間のインキュベーション後、組織の厚さに沿ってすべての細胞層は、したがって等価であり、唯一の異質性が離れて流路からの方向である。
注意:
5。治療薬の導入
6。薬物拡散係数のタイムラプス顕微鏡と推定
きれいな蛍光データを得るためには、組織の下層に顕微鏡の焦点を合わせることによって、すべての画像を取得する。垂直方向には栄養素勾配が(セクション4を見てください)が存在しないため、セルの底層は、上記のすべての他の層の良好な代表である。
7。代表的な結果:
マイクロ流体デバイスは、3次元の腫瘍組織の成長のために1ミリメートル×0.3 X 0.15ミリメートル光学的にアクセス可能な培養チャンバーを提供した。多細胞の腫瘍スフェロイドはこれらの室に流入していた、背面に2フィルタの投稿によって保持された。ハンギングドロップ法は、いくつかの細胞株からの一貫した大きさと形状のスフェロイドの迅速な形成を可能にした。最大3日間までスフェロイドが正常にデバイス上で増殖させた。チャンバ内の成長はスフェロイド内微小環境の再現性の修正と関連していた。アポトーシスは、流路の近傍の細胞が少なく、より高い組織に深く発生しました。デバイスは、腫瘍組織におけるドキソルビシンの拡散係数を推定するために使用されていました。 8.75×10 -7 cm 2 sで-1の得られた値は9.1の値と一致×10 -7 cm 2 sで-1はヒト乳癌に以前に6を報告した 。細胞株 | 必要な細胞濃度 | インキュベーション時間 |
LS174T | 300細胞/μL | 2-3日 |
T47D | 750細胞/μL | 3-4日 |
MDA-MB-231 | 150細胞/μL | 5-6日 |
表1。ドロップスフェロイドを吊るすためのパラメータ
一部 | 説明 |
S F | フローシリンジ |
S P | シリンジの包装 |
Vのフィン | フローインレットバルブ |
V ピン | インレットバルブのパッキング |
V Foutを | 流れ出口バルブ |
Vのふくれっ面 | 出口バルブのパッキング |
表2。フロー設定にシリンジとバルブ
図1のフローセットアップV フィンとV Foutの回路図:フロー入口と出口弁、V ピンとV ふくれっ面 :パッキング入口と出口弁、S FとS、P:フローおよびパッキングシリンジ。回転楕円体をチャンバ内に流入したときの梱包や包装シリンジ入口と出口弁が使用されています。フローシリンジと流入口及び出口弁は、その後培地を流すために使用されます。
図2。デバイス上室に閉じ込められた回転楕円体の模式図。スフェロイドがデバイス上のチャンバ内に流入され、2つのフィルターposによってブロックされている室の奥のTS。
図3。デバイス上の腫瘍組織内ドキソルビシン拡散。 A.は、ドキソルビシンの位置や濃度を(赤)を示す、組織の透過光および赤色蛍光画像を合併。スケールバーは250μmを表しています。ドキソルビシン蛍光からBに正規化された線形強度プロファイルは。
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腫瘍内の血管系は、スパース行列で、病気7,8を開発しました 。血管系9にもかかわらず供給栄養素や薬にアクセスできない血管から遠い位置にある領域(>100μm)にあります。得られた不均一微小環境は、多くの化学療法剤10の限られた有効性に貢献しています。ここで開発したマイクロ流体デバイスは、in vitroで、静止し、アポトーシスまたはネクローシス?...
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特別な利害関係は宣言されません。
この作品は、厚生助成金総合研究所#1R01CA120825-01A1、マサチューセッツ大学アマースト校での共同医学研究(CBR)のプログラム、BhushanをJ. Toley用アイゼン奨学金によってサポートされていました。私たちは感謝してジェームズ·シェーファー、ビデオ撮影、ナレーター、そしてこのビデオの編集者の貴重な貢献を承諾します。
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
試薬の名称 | 会社 | カタログ番号 | 注釈 |
---|---|---|---|
シリコーンエラストマーキット | エルズワースの接着剤 | 184シルELASTキット | |
Miltex生検パンチ | MedexSupply | MTX-33-31AA | 1.5ミリメートル |
PTFEチューブ | コールパーマー | EW-06417から31 | 0.032 "ID |
オス型ルアーロックコネクタ | Qosina | 65111 | |
とげの雌型ルアーロックコネクタ | Qosina | 11556 | |
遮断弁 | IDEX健康科学 | P-721 | |
Yコネクタ | IDEX健康科学 | P-513 | |
20G 1.5 "針 | BD Bioscienc電子 | 305176 | |
トリプシン-EDTA | インビトロジェン | 25300-054 | |
HEPES | シグマ | H-4034 | |
CaspGLOWフルオレセイン | バイオビジョン | K183-25 | |
CaspGLOW赤 | バイオビジョン | K193-25 | |
塩酸ドキソルビシン | シグマ | 44583 | |
LS174T | ATCC | CCL-188 | ヒト結腸癌細胞株 |
T47D | ATCC | HTB-133 | 人間の乳管癌細胞株 |
MDA-MB-231 | ATCC | HTB-26 | ヒト乳腺腺癌細胞株 |
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