SDS - PAGEに続く糖タンパク質から糖を削除するには、特定のグリコシダーゼを使用すると、タンパク質サンプルの糖鎖修飾を検出するための貴重な方法ですと、最初の糖鎖生物学の研究に適しています。脱グリコシル化は、次の変更は、ゲル移動度の変化として、あるいは糖鎖に敏感な試薬で染色によって検出することができます。
グリコシル化、共有結合した糖の付加は、大幅にそのような細胞接着、分子の人身売買、クリアランス、およびシグナル伝達1〜4とのプロセスに影響を与える可能性のタンパク質の主要な翻訳後修飾である。またはセリンまたはスレオニン残基での(O結合型)(図1)、真核生物では、分泌経路における最も一般的なグリコシル化の変更は、コンセンサスのアスパラギン残基(N -結合)で追加です。最終製品は、異なる種、組織、またはタンパク質の間で大きく変動する中に、N型糖鎖合成の開始は非常に、真核生物に保存されている。いくつかの糖鎖は、修正されていない("高マンノースN -結合型糖鎖")または、さらにゴルジ("複雑なN -結合型糖鎖")で処理されている残る。多様化は、動物細胞における一般的なN -アセチルガラクトサミン(GalNAcを)残基と開始が下等生物1で異なるO -結合型糖鎖、のために見られる。 ENT">タンパク質のグリコシル化の詳細な分析は、それ自体のフィールドであり、適切に実行するために豊富なリソースと専門知識を必要とする。糖を除去可能な酵素のしかし、様々な(グリコシダーゼ)はのグリコシル化状態の一般的な考え方を持つことが可能に標準的な実験設定におけるタンパク質ここでは、モデル糖タンパク質の分析のためのグリコシダーゼの使用説明:。。二つのN -結合型糖鎖および4個のO -結合型糖鎖5を運ぶ組換えヒト絨毛性ゴナドトロピンβ(hCGβ)、テクニックだけの単純な必要計測機器と代表的な消耗品、そしてそれは容易に複数の糖タンパク質の試料の分析に適応することができます。
いくつかの酵素は糖タンパク質の研究に並行して使用することができます。 PNGase FはN -結合型グリカン6,7のほぼすべてのタイプを削除することができます。 O -結合型糖鎖の場合は、利用可能な酵素は存在しないことを切断するには、目から無傷のオリゴ糖できますEのタンパク質骨格。代わりに、O -グリカンは、簡単にO -グリコシダーゼによって除去される短いコアにエキソグリコシダーゼによってトリミングされています。タンパク質の脱グリコシル化のミックスはPNGase F、O -グリコシダーゼ、ノイラミニダーゼ(シアリダーゼ)、β1- 4ガラクトシダーゼ、およびβ- N -アセチルグルコサミニダーゼが含まれています。それは同時に、N -結合型糖鎖といくつかのO -結合型糖鎖8を削除するために使用されます。最後に、脱グリコシル化のミックスは中に存在することが特に耐熱単糖を取除くのを助ける他のエキソグリコシダーゼの混合物(α- N -アセチルガラク、α1- 2フコシダーゼ、α1- 3、6ガラクトシダーゼ、およびβ1- 3ガラクトシダーゼ)、を添加した特定のO -結合型糖鎖。
SDS-PAGE/Coomasie青はグリコシダーゼ処理前後の蛋白質の移行の違いを視覚化するために使用されます。さらに、砂糖特有の染色法、ProQエメラルド- 300は、糖鎖がsucceなので低下信号を示しています。ssively削除。酵素的脱グリコシル化は、必要に応じて蛋白質のより多くの数量を収容するためにスケールアップすることができますが、このプロトコルは、糖タンパク質(0.5〜2μg)を少量の分析のために設計されています。
1。酵素的脱グリコシル化
チューブ/サンプル# | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
hCGβ(0.25mg/ml) | 9μl | 9μl | 9μl | 9μl | - | - | - |
10X糖タンパク質変性緩衝液 | 1μlの | 1μlの | 1μlの | 1μlの | 1μlの | 1μlの | 1μlの |
のdH 2 O | - | - | - | - | 9μl | 9μl | 9μl |
サンプル# | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 |
10%のNP - 40 | 2.5μl | 2.5μl | 2.5μl | 2.5μl | 2.5μl | 2.5μl | 2.5μl |
10X G7バッファ | 2.5μl | 2.5μl | 2.5μl | 2.5μl | 2.5μl | 2.5&ムー、L | 2.5μl |
PNGase F 1:50 DIL。 | - | 2μlの | - | - | 2μlの | - | - |
脱グリコシルミックス | - | - | 2μlの | 2μlの | - | 2μlの | 2μlの |
EGミックス | - | - | - | 2μlの | - | - | 2μlの |
のdH 2 O | 10μlの | 8μl | 8μl | 6μl | 8μl | 8μl | 6μl |
全反応巻。 | 25μlの | 25μlの | 25μlの | 25μlの | 25μlの | 25μlの | 25μlの |
2。脱グリコシル化のサンプルのSDS - PAGE
3。 SDS - PAGEゲルでのグリコシル化タンパク質の検出用Pro - Qエメラルド300
4。代表的な結果
酵素脱グリコシル化後のタンパク質の移動の変化を図2に示されています。 PNGase Fの治療(N -結合型糖鎖の除去、レーン2)、および脱グリコシル化のミックス(;プラスエンド-およびO -結合型糖鎖を除去するエキソグリコシダーゼ、レーン3 PNGase F)と(パネルA、レーン1)コントロールのサンプルを比較。それ以上の低下なしサイズで追加のグリコシダーゼ(レーン4)で消化した後に見られている。糖鎖が除去される質量の変化に加えて、バンドがシャープになる。 17kDaのマーカー(アスタリスク)の下で実行されているバンドは完全に脱グリコシル化hCGβポリペプチド(:16 kDaのMW)を表します。他のバンドは、不完全な脱グリコシル化またはhCGβ、試料中に存在する複数の未同定タンパク質(レーン1参照)から派生させるかもしれない。レーン5〜7は、(コントロール)グリコシダーゼに対応するバンドを示す。
エメラルドグリーンによる糖タンパク質の染色は、この試薬は、タンパク質の分子中に存在するすべての糖鎖を酸化し、汚れのパネルBに示されています。 hCGβを酵素(レーン4〜レーン1)脱グリコシル化されているため、信号の強度が低下する。レーン3および4における残差信号は、使用する酵素に耐性である糖鎖のモチーフ、の存在を示している。レーン4で使用される追加のグリコシダーゼは、いくつかの余分な糖残基を削除する:蛋白質の移行は同じですが、染色の強度のわずかな減少が見られる。耐糖部分は、すべての種類のタンパク質にも存在しません:いくつかのバンドは、それらが広範囲に脱グリコシル化されたことを示す、エメラルドグリーン(括弧内の、UV画像には存在しない)によって検出されなかった。追加データは、hCGβが不均一にグリコシル化されているという結論を支持。レーン2の上側のバンドは多くの糖鎖のグループがまだ存在していることを示し、明るい間にレーン2(矢印)の下側のバンドは、エメラルドグリーンの画像上で気絶です。これらのデータは、マウスの細胞で発現させた組換えhCGβは、複数のグリコフォーム9を含んでいるという結論をサポートしています。であっても同じタンパク質上にあれば、そうでないもの、これらの異なるグリコフォームはいくつかのポリペプチドは、それぞれのコンセンサス部位および/またはいくつかの糖鎖に糖鎖を受信しないグリコシル化の本質的な異質性に起因するものが拡張されています。
図1。分泌または細胞表面の糖タンパク質の典型的なグリコシル化パターン。
hCGβの酵素的脱グリコシル化を示す図2。SDS - PAGEゲル。パネルBは、グリコシル化タンパク質の可視化のためのPro - Qエメラルド300の結果を示しながら、パネルCoomasieブルー染色を示す。サンプル数:1、hCGβ制御、2、PNGase F消化、3、脱グリコシル化のミックスの消化、4、脱グリコシル化Mix Plusのエキソグリコシダーゼ消化、試料5〜7(O - Glyc、O -グリコシダーゼ試薬のコントロールであり、GNA、β- N -アセチルグルコサミニダーゼ、ギャル/フコース、β1- 3ガラクトシダーゼ、α1- 3、6ガラクトシダーゼ、およびα1- 2フコシダーゼ、GalNA、α- N - Acetylglalactosaminidase、ノイ、ノイラミニダーゼ、PNGase、PNGaseのF)
糖鎖特異的試薬は、データの解釈を容易にする一方法は、目的のタンパク質のグリコシル化の状態に関する貴重な情報を提供することができる酵素脱グリコシル化とSDS - PAGEを用いてここで説明する。このプロトコルは、タンパク質のグリコシル化の初期の研究のために意図され、それは特に哺乳動物細胞から分泌と膜の糖タンパク質に適しています:この場合、選択された酵素は、特にすべてのN -結合型糖鎖を削除し、またはN -結合型糖鎖に加えて、最も一般的な砂糖になります拡張とO -結合型糖鎖のコアを形成する。グリコシダーゼは、糖とタンパク質骨格の両方の整合性を維持し、化学的脱グリコシル化法と比較して、軽度であることの利点があります。
占有率(アミノ酸がグリコシル化されている)、グリコシル化の程度、または糖鎖の微細構造を決定するために明らかにするために、例えば、Mのような、より高度な技術お尻の分析法、液体クロマトグラフィーやNMRが必要です。
そのシンプルさのため、このプロトコルのいくつかのステップは、調整置き換え、および/または種々の実験ニーズに対応するために組み合わせることができます。しかし、明確に解釈できる結果を得るために、その長所と限界を理解することが重要です。最初に、グリコシダーゼの特異性と純度は非常に重要です:プロテアーゼと他の汚染活動のないようにテストのみ十分に特徴付けられた酵素を使用する必要があります。残念なことに、グリコシダーゼに対する標準的な酵素のユニットの定義はない、ユーザーは、メーカーの仕様に応じて適切な置換を決定する必要があります。第二に、検出の注意深い選択が必要です:)タンパク質染色試薬は、分子量の大幅なシフトで脱グリコシル化の結果場合に便利です。ここに示すようにそのような明確な結果は必ずしも得られていない。他のケースでは、我々は異常なマイルを見てきました脱グリコシル化後にgration(はるかに予測される分子量、または遅くても移行から)。この現象はよくわかっていないですが、それは移行の変化は、タンパク質が脱グリコシル化されている証拠であるといえる。B)抗体と砂糖の検出は、その適用性を制限する独自の課題を提示。それは、一般的な抗糖鎖抗体を生成するためには非常に困難であった、彼らは通常、その使用を制限する複雑な糖鎖のターゲットに対して発生します。また、いくつかのモノクローナル抗糖鎖抗体は、望ましくない交差反応性10を表示。C)レクチンは、(本質的な砂糖の親和性を持つタンパク質)も砂糖の検出に適している、加えて彼らは糖鎖の構造上の洞察を与える。ただし、すべてのそれらの狭い特異性を持っている、と多くの部分的にのみ(彼らは未知の親和性を有することができることを意味します)特徴がある。その結果、正レクチン染色では、GIの存在の指標ではなく、証拠を、提供するようにVEN砂糖。D)化学ラベリングキットは、(糖の過ヨウ素酸酸化に基づいて)すべての糖タンパク質を染色するのに最適な方法であり、そのためよく脱グリコシル化に従うことが適しています。
未知のサンプルを処理するとき、それは糖蛋白質のコントロールを含めることをお勧めします。フェチュインは容易に入手できるNです-とO -糖蛋白質、絨毛性ゴナドトロピンは(両方のサブユニット)にも適しています。ウシ血清アルブミンは(BSA)、ネガティブコントロールとして使用することができます。しかし、それはいくつかの非グリコシル化タンパク質は高濃度で使用する場合は特に、プロ- Qエメラルド300とわずかに反応することに注意してください。そのようなこのプロトコルで使用されているプレステタンパク質マーカーとしての非グリコシル化分子量標準、、シャープなバンドを表示できるという利点を持っている。唯一のチャンスでプロ- Qエメラルド300〜反応これらのタンパク質(80 kDa)の一つです。したがって、ユーザーはそのようなInvitrogeからキャンディケインとして、代わりに糖タンパク質の標準のラダーを実行したい場合がありますnの
最後に、nucleocytosolic糖タンパク質(シングルO - GlcNAcので改変されている)のシンプルで-ゲルの検出は、特異性のコントロール11のβ- N -アセチルグルコサミニダーゼに沿って、モノクローナル抗体の使用が可能です。この手法の説明を超えているこの記事の範囲が、それがグリコシダーゼとして言及されるべきは、細胞内に存在する他の多くの糖タンパク質と複合糖質の研究のための便利なツールです。グリコシル化のすべての既知の形態の包括的な治療は、"糖鎖生物学のエッセンシャル"の第2版では見つけることができます。NCBIの本棚で利用できる無料のオンライン(ブックシェルフID:NBK1908、PMID:20301239)12。
著者らは、この記事で使用される試薬の多くを生産するニューイングランドバイオラボで採用されています。
ドンのくし
Name | Company | Catalog Number | Comments |
試薬の名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
ヒト絨毛性ゴナドトロピンβ | シグマアルドリッチ | C6572 | |
PCRチューブ | VWR | 20170-004 | |
PCRサーモ | アプライドバイオシステムズ | 4359659 | |
PNGase F | ニューイングランドバイオラボ | P0704 | バッファーが付属 |
タンパク質の脱グリコシル化のミックス | ニューイングランドバイオラボ | P6039 | バッファーが付属 |
α- N - Acetylglalactosaminidase | ニューイングランドバイオラボ | P0734 | バッファーが付属 |
α1- 2フコシダーゼ | ニューイングランドバイオラボ | P0724 | バッファーが付属 |
α1- 3、6ガラクトシダーゼ | ニューイングランドバイオラボ | P0731 | バッファーが付属 |
β1- 3ガラクトシダーゼ | ニューイングランドバイオラボ | P0726 | バッファーが付属 |
G7 10Xバッファー(500 mMリン酸ナトリウム) | ニューイングランドバイオラボ | --- | PNGaseFまたはDeglミックスで供給 |
10X糖タンパク質変性緩衝液(5%SDS、400mMのDTT) | ニューイングランドバイオラボ | --- | PNGaseFまたはDeglミックスで供給 |
10%のNP - 40 | ニューイングランドバイオラボ | --- | PNGaseFまたはDeglミックスで供給 |
3X SDSローディングバッファー(187.5 mMトリス- HCl pH6.8で、6%SDS、30%グリセロール、0.03%ブロムophenol青) | ニューイングランドバイオラボ | B7703 | 1.25M DTTが付属 |
ColorPlusプレステタンパク質マーカー | ニューイングランドバイオラボ | P7709 | |
10から20パーセントは、トリス - グリシンマルチゲル | コスモバイオ(株) | DCB - 414893 | |
カセット電気泳動ユニット | コスモバイオ(株) | DCB - 303111 | |
電気泳動用電源EPS 301 | GEヘルスケア | 18-1130-01 | |
プロ- Qエメラルド300糖タンパク質染色キット | インビトロジェン | P - 21857 | |
ブリリアントブルーR | シグマアルドリッチ | B0149 | |
AlphaImager HPシステム | セルバイオサイエンス | 92-13823-00 |
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