水性環境で炭化水素の変換を有効にするツールキット

要約

油汚染の浄化のための持続可能な自動調整システムは、標準的な細菌DNAの交換部品（BioBricks）を使用して設計されました。エンジニアリング E大腸菌の株が有毒、水性環境中のβ-酸化を介しアルカンを分解するために使用されていました。異なる種からそれぞれの酵素は、アルカン分解活性を示した。また、に耐性の増加 N-ヘキサンをアルカントレラント細菌由来の遺伝子を導入することによって達成された。

要約

この作品は、前方の大腸菌によるアルカンの変換を可能にし、その適用性の原理の証明を提示するツールキットを置きます。このツールキットには、複数の標準交換部品^{（BioBricks）9}アルカンの変換、有毒な炭化水素に富む環境における遺伝子発現と生存の調節をアドレッシングで構成されています。

アルカン分解の3段階経路を大腸菌で実装されました大腸菌それぞれアルカノール、カナール、最終的にアルカン-アミノ酸に、中長期鎖アルカンの変換を有効にする。後者はネイティブのβ-酸化経路を介して代謝された。中鎖アルカン（C5〜C13）とシクロアルカン（C5〜C8）、Gordonia spからアルカンヒドロキシラーゼシステムの4つの遺伝子（alkB2、rubA3、rubA4とrubB）の酸化を促進する。 TF6 ^8,21を 大腸菌に形質転換した大腸菌 。の変換のための長鎖アルカン（C15-C36）は、Geobacillus thermodenitrificansからLADA遺伝子が実装されました。分解プロセスの必要なさらなる手順については、ADHとALDHは（G. thermodenitrificans由来する^）10,11を導入^しました。活動は休止細胞アッセイにより測定した。各酸化ステップでは、酵素活性が観察された。

プロセス効率を最適化するために、式は唯一、低グルコース条件下で誘導されました：基板-調節プロモーター、pCaiF、使用されていました。 pCaiFは大腸菌に存在している大腸菌 K12と非グルコース炭素源の分解に関与する遺伝子の発現を調節する。

ツールキットの最後の部分-生存を標的に- PhPFDαとβ溶媒耐性遺伝子、 パイロコッカスホリコシ OT3からの両方を使用して実装されていました。有機溶媒としては、否定的にaffectinによって細胞ストレスを誘導し、生存性を低下させる可能性がGタンパク質の折り畳み。シャペロンとして、PhPFDαβはアルカンの存在下でタンパク質の折りたたみのプロセスなどを改善します 。培地で10％n-ヘキサンのプレゼンスの増加成長率（最大50％）で示される炭化水素の改善·トレランスにつながったこれらの遺伝子の発現が観察された。

要約すると、結果は、ツールキットは大腸菌を可能にすることを示す大腸菌水性環境中の炭化水素に変換して耐える。このように、それは合成生物学のアプローチを用いてオイル浄化のための持続的な解決に向けた第一歩を表しています。

概要

Oil pollution is among the most serious causes of environmental contamination, and greatly affects ecosystems, businesses and communities ³. Solutions are for example required to battle the continuous oil pollution originating from the oil sands tailing waters in Alberta, Canada. During the process of oil extraction from oil sands, bitumen, a semi-solid oxidized form of oil, is removed using thermal recovery techniques that consume about 3.1 barrels of water per single barrel of oil ¹. Oil contaminated process water, mainly originating from a local river, is stored in tailing ponds after bitumen extraction. A more effective recycling of process water in order to reduce the need for freshwater uptake is needed. To facilitate the bitumen extraction and to ensure that downstream sites meet water quality guidelines for the protection of aquatic ecosystems, process water treatments are rapidly evolving ³.

To treat pollution of organic compounds, bioremediation technologies employing microorganisms are presently encouraged ¹. Alkanes are the most abundant family of hydrocarbons in crude oil, containing 5 to 40 carbon atoms per molecule ^{7, 21}. Many bacteria are known to degrade alkanes of various lengths via sequential oxidation of the terminal methyl group forming first alcohols, then aldehydes and finally fatty acids ⁸. Within this iGEM project several enzymes from different organisms were expressed and characterized, and made available via the BioBrick standard and Registry of Standard Biological Parts.

The well-studied alkane hydroxylase system of Gordonia sp. TF6 facilitates the initial oxidation step of C₅-C₁₃ alkanes along with that of C₅-C₈ cycloalkanes using a minimum of four components: alkB2 (alkane 1-monooxygenase), rubA3, rubA4 (two rubredoxins) and RubB (rubredoxin reductase) ^{8, 21}. Oxidation of long-chain alkanes (ranging from C₁₅ up to C₃₆) is reported to be performed by ladA, a flavoprotein alkane monooxygenase from Geobacillus thermodinitrificans NG-80-2 ^{7, 15, 18, 22}. LadA forms a catalytic complex with flavin mononucleotide (FMN) that utilizes atomic oxygen for oxidation. This results in the conversion of alkanes into the corresponding primary alkanol. The alcohols are further oxidized by alcohol and aldehyde dehydrogenases to fatty acids, which readily enter the β-oxidation pathway ^{7, 21}. A zinc-independent alcohol dehydrogenase from the thermophillic bacterium Geobacillus thermoleovorans B23 oxidizes medium-chain alkanols into their respective alkanals, using NAD⁺ as a cofactor ¹⁰. Aldehyde dehydrogenase from the same bacterium is able to catalyze the NAD⁺-dependent final step in the medium-chain oxidation ¹¹.

In order to reduce induction costs and to maintain optimal proliferation of the bacterial system, the promoter pCaiF from E.coli was characterized. This promoter can regulate expression of the hydrocarbon degradation pathway components, and is regulated by cAMP-Crp levels, which in turn depend on glucose levels ⁶. At high extracellular glucose concentrations in the environment the cellular cAMP (cyclic Adenosine Mononucleotide Phosphate) level was low through the inhibition of adenylyl cyclase as a side effect of PTS mediated glucose transport. Conversely, during limitation (low glucose concentrations) the cAMP level increased and Crp bound to cAMP forming the complex, cAMP-Crp, which bound pCaiF and activated transcription of the downstream components ^{6, 14}.

Wildtype E. coli can only tolerate moderate concentrations of hydrocarbons. To complete the toolkit, tolerance to hydrocarbons had to be addressed. Several organic solvent-tolerant bacteria are known to survive in water-solvent two-phase systems ¹². Molecular components known to increase tolerance are chaperones that facilitate the correct folding of proteins. The prefoldin system from Pyrococcus horikoshii OT3, consisting of the proteins phPFDα and phPFDβ, was shown to increase hydrocarbon-tolerance ¹⁷.

The alkane conversion toolkit was constructed following the BioBrick principle, which is documented at the Registry of Standard Biological Parts ⁹. BioBricks are plasmids containing a specific functional insert that is flanked by 4 predefined restriction sites. The BioBrick inserts can be extended flexibly, allowing the construction of biological systems with new functions.

プロトコル

1。 BioBrickアセンブリ

1. 標準生物学的部分のレジストリからBioBricksはIGEM本部によって提供されています。既存BioBricksから新しいBioBrickを構築するために、アクセプター部分のドナー部分の下流に位置決めするための酵素EcoRIとSpeIでドナーBioBrick（最大1.0μg）を消化。アクセプター部の上流ドナー部分を位置決めするためのXbaIとPstIでダイジェスト。ドナーのバックボーンにカット第三適切な制限酵素を追加します。サプライヤー（最終濃度1X）によると、適切な緩衝液20〜25 mlの総体積で消化を行う。制限酵素のた​​めの5単位/μgのDNAを使用しています。
2. EcoRIおよびXbaIまたはSpeIとPstIでどちらかとアクセプタBioBrickを消化。
3. 37℃で1時間（少なくとも）のために消化をインキュベート℃に制限エンドヌクレアーゼは、熱によって不活性化、80℃インキュベーションまもなく10分間遠心℃で。
4. 消化BioBrickを連結一緒にパーツ（ドナーとアクセプター）。 XbaIとSpeIでは、互換性のDNA末端を生成するので、混合型のサイトは、4つの標準的な制限部位に隣接、新しい "複合" BioBrickに起因するいかなる制限酵素で切断することはできませんが作成されます。ライゲーション混合物で最終DNA濃度は、好ましくは約100 ng /μlに。 T4のライゲーションバッファー（最終濃度1x）とT4リガーゼ（1単位/μgのDNA）を10〜15 mLの全量ライゲーション反応を行う。
5. 少なくとも3時間16℃でライゲーション混合物をインキュベートする。
6. ライゲーションミックスの年頃の半分を使った変換反応を行う。
7. シーケンスと正しいことがBioBrickを確認します。
8. 合成されたDNAから新しいBioBrickを構築するために、Eの最適な発現のために合成するための遺伝子を変更JCatウェブツール（による大腸菌 http://www.jcat.de/ ）。 Bの要件に合わせてさらに変更を加え ioBrick標準。この標準化は、すべてのBioBrickがプレフィックスが先行し、接尾辞が続く目的のDNA配列で構成されていることを意味します。接頭辞と接尾辞は、残りのプラスミド配列には存在しない事前定義された制限部位を含む配列である。これらの標準的な制限部位は、インターチェンジと⁹柔軟BioBrickインサートを延長することが可能になる。接頭辞と接尾辞は、以下の配列を持っている：

名前	シーケンス	コメント
接頭辞	5 'GAATTCGCGGCCGCTTCTAG3'
	5 'GAATTCGCGGCCGCTTCTAGAG 3'	次の部分は、コード配列または "ATG"で始まる任意の一部である場合
サフィックス	5 'TACTAGTAGCGGCCGCTGCAG 3'

Vivoで ove_title "> 2。アルカン変換一休み細胞アッセイ、

このアッセイは、藤井ら （2004）によって記載された方法に基づいて行われた。

1. 文化、E.アルカン水酸化酵素系（発現している大腸菌細胞BBa_K398014空ベクター（簿価）と細胞BBa_J13002を一晩適切な抗生物質を5 mlのLB培地中で）を。
2. 新鮮なLBの50ml（抗生物質を含む）に一晩培養液500μlを移すと、細胞濁度が600nmで0.3のOD（光学密度）に達するまでインキュベートする。
3. 4,000 rpmで10分間遠心し、5mlの0.1Mリン酸緩衝液（pH7.4）でペレットを再懸濁します。
4. 4,000 rpmで10分間遠心分離し、再び今のE2の塩および0.66パーセントv / vグリセロール（窒素deficienを含む5mlの0.1Mリン酸緩衝液中でペレットを再懸濁トン培地）。
5. 細胞濁度（OD _600）を測定_します 。
6. 25ミリリットルクローズドキャップガラスフラスコおよび無細胞コントロールで6ミリリットル（E2塩+ 0.66％（v / v）のグリセロール）の細胞混合物のアリコートを準備します。
7. 各フラスコにアルカンの100ナノモルを追加します。
8. 24時間（より高いレートが得られたときに短縮）37℃で混合物をインキュベートする。
9. インキュベーション後、OD _600を測定_します 。
10. 酢酸エチルで培地中の炭化水素を抽出し、ガスクロマトグラフィー（プロトコル3を参照）により、細胞培養における炭化水素濃度を測定します。
11. 各フラスコ内の全バイオマス存在する（乾燥重量のOD _600に変換）によって変換されたアルカンの合計額で除してバイオマスの単位あたりの劣化を計算します。実験期間で結果を分割する単位時間当たり、単位当たりのバイオマス分解活性が得られます。平均は3個々の実行から取得されます。

3。アルカン変換酵素アッセイでは 、ビトロ

このアッセイは、Li ら （2008）により記載された方法に本質的に従って行った。

1. 文化、E. LADA遺伝子（発現している大腸菌細胞BBa_K398017 ）と空ベクター（担持する細胞BBa_J13002を一晩適切な抗生物質を50mlのLB培地中で）を。
2. 新鮮なLBの50ml（抗生物質を含む）に一晩培養液500μlを移すと、細胞濁度が600nmで0.6の光学密度に達するまで培養する。
3. 4000 RPM（4℃）で10分間遠心分離し、50mMトリス緩衝液5mlにペレットを再懸濁します。
4. 4の出力制御を40％のデューティサイクルで超音波洗浄します（細胞破砕、LA Biosystems社）細胞は、全期間にわたって氷の上で解決策を保つ。
5. 4＆dで4,000 rpmで5分間遠心し、得られた混合物を例えば、C細胞破片を除去する。新鮮なバイアルに上清を移してください。
6. ブラッドフォードアッセイにより細胞抽出物の総タンパク質濃度を決定します。注：バックグラウンドの増加および/またはタンパク質の損失を防ぐために、ガラスバイアルを使用します。
7. 0.1パーセントv / vのアルカンおよび50mM Tris-HCl緩衝液を含む100mlの混合物を準備します。
8. 5分間100℃で混合物を加熱する。注：のみ沸点の高い中型の長鎖アルカンに対してこの手順を実行します。 （ 例えば、C _{16：287℃）。}
9. 均質、粘性の混合物が得られるまでアルカンの最適な溶解性を達成するためには、まだ温かいうちに1分間超音波洗浄します。
10. NADHの1mm、1mMのFMN、1mMのMgSO ₄および0.01 V / VのTriton X-100を追加します。
11. 25ミリリットルクローズドキャップフラスコに6 mlのアリコートを準備します。
12. 細胞抽出物（ブラッドフォードアッセイ、5 mgタンパク質/ lの最終濃度に依存します）の適切な量を追加します。無タンパク質制御を準備します。
13. 60℃でインキュベート（最適なeについて24時間nzymatic活動）。
14. 酢酸エチルで培地中の炭化水素を抽出し、ガスクロマトグラフィー（プロトコル3を参照）により、細胞培養における炭化水素濃度を測定します。
15. 各フラスコ（ブラッドフォード検量線による）に加え全タンパク質によって変換されたアルカンの合計額で除してバイオマスの単位あたりの劣化を計算します。さらに実験期間で割ると、単位時間あたりの細胞タンパク質の単位当たりの分解活性が得られます。平均は3個々の実行から取得されます。

4。酢酸エチルの炭化水素抽出と濃度測定

1. アルカンは6ミリリットル実験溶液中に2.5ミリリットルの酢酸エチル（無極性solvant）を加えることによって、水溶液から抽出されます。内部標準は、0.1％（v / v）の濃度で溶媒に添加される。標準（ 例えばシクロデカン）興味のあるピークの予想範囲に応じて変化した。
2. オプション：追加トリトン水性混合物のX-100および適切な二相系を得るために4,000 rpmで10分間サンプルを遠心分離する。
3. ボルテックス5秒（1,500 rpm）と別々の二つの相になるまで室温でインキュベートするための混合物。
4. 有機層（上部）の最大量を削除し、無水硫酸マグネシウムを用いて溶媒を乾燥させてください。
5. ろ過によりMgSO _4を取り外します（0.2μm）と測定のためのガスクロマトグラフバイアルにろ液を転送、または-20℃で保存する
6. CP-SIL 5CB列（長さ= 5メートル）を使用してガスクロマトグラフィーを用いて濃度を測定します。 （1:10、230℃）、スプリットモードではサンプルの10μlを注入します。 1ml /分（ヘリウム）にカラムガス流量を設定します。以下のオーブン温度プログラムは使用されています：

   率	温度[°C]	時間[分]
   0	50	7.5
   50	90	1.0
   50	110	2.0
   50	130	2.0
   50	145	2.0
   50	160	2.0
   50	170	2.0
   50	185	2.0
   50	210	2.0
   50	250	2.0
   50	320	2.0

7. ピークを積分し、内部標準に対する濃度を修正します。

5。アルコール/アルデヒド脱水素酵素活性アッセイ

このアッセイは、加藤らの方法によれば、基本的に行った。（2010）。

1. 文化、E. ADH（発現している大腸菌細胞BBa_K398018 ）またはALDH（ BBa_K398030 ）遺伝子と空ベクター（担持する細胞BBa_J13002を一晩適切な抗生物質を50mlのLB培地中で）を。
2. 新鮮なLBの50ml（抗生物質を含む）に一晩培養液500μlを移すと、細胞濁度が600nmで0.6の光学密度に達するまで培養する。
3. 4℃、4,000 rpmで10分間遠心分離し、50mMトリス緩衝液5mlにペレットを再懸濁します。
4. 4の出力制御（超音波処理中に氷の上で解決策を保つ）と40％のデューティ·サイクルで細胞溶液を超音波洗浄します。
5. °Cは、細胞破片を除去するために4℃、4,000 rpmで5分間、得られた混合物を遠心分離します。
6. に決定Bradfordアッセイ（：結合タンパク質を防止するために、ガラスバイアルを使用注）により細胞抽出物のタンパク質濃度TAL。
7. 各ウェル中のNAD（最終濃度1mM、pH 9.5）で含む180μlの57 mMグリシン緩衝液を用いて、96ウェルプレートをセットします。
8. ウェルにテストされるアルコール（アルデヒド）の5μlを添加する。注：ヒート長鎖アルコールアッセイの開始前の液体を持っている。各アルコール（アルデヒド）のための基質を含まない対照（陰性コントロール）を追加する必要があります。加えて、細胞抽出せずにバッファと基板との混合物を含有するブランクを準備します。
9. 予熱37℃で15分間プレートリーダー（TecanマゼランV7.0）のプレート°C系の平衡化を可能にする。
10. 細胞抽出物（ブラッドフォードアッセイ、5 mgタンパク質/ lの最終濃度に依存します）の適切な量を追加します。無タンパク質制御を準備します。
11. 340 nmの波長で37℃で1時間2〜3分ごと℃<を分光光度計を用いてNADH産生を測定/ LI>
12. OD（340 nm）の斜面からのNADHの​​生産率を計算します。アカウントへの光路長と6220 M ^-1 cm ^-1のNADHの吸光係数を取る。細胞抽出物（U / mgの全細胞タンパク質）における脱水素酵素反応の活性を発現するために追加されたタンパク質の総量によってNADH生産速度を割ります。平均値と3は独立して動作しますから標準偏差を計算します。

6。 pCaiFキャラクタリゼーション

1. 文化、E. pCaiF-GFPコンストラクト（発現している大腸菌細胞BBa_K398331 ）と単独のプロモーター（担持する細胞BBa_K398326を適切な抗生物質を一晩5mlのLB培地で一晩）。
2. 一晩培養した培養液50μlと、10g / lのグルコースおよび抗生物質を含む5mlのM9を接種し、一晩増殖。
3. 新鮮なM9 with10 g / lでインキュベートし、5mlの中に一晩伸長のサブカルチャー50μlの細胞濁度は、600nmで0.2の光学密度に達するまで。
4. 各ウェルにテストするための炭素源の所望の量を含有する新鮮なM9培地100μlの96ウェルプレートをセットします。統計的評価のために3回の実験を行い、それぞれのネガティブコントロール（野生型大腸菌 K12）を追加します。
5. 井戸を含む培地に一晩培養液5μlを添加する。
6. 成長曲線（OD _600）とプレートリーダーを用いてGFP蛍光（485 nm励起と520発光）37℃で18時間毎に10分°Cの定数と振とうして測定します。
7. 成長率は、それぞれの測定値から特定のGFP量を計算し、コントロールと比較します。平均値と少なくとも3つの独立した実験の標準偏差を計算します。

7。許容アッセイ

1. 文化PhPFDαおよびβ遺伝子（発現する大腸菌 BBa_K398406 5 mlのLB培地と適切な抗生物質で一晩）、E. LADA遺伝子（発現している大腸菌は BBa_K398017 ）ネガティブコントロールとして使用されます。
2. 新鮮なLBの5ミリリットル（抗生物質）とインキュベート中に一晩伸長のサブカルチャー10μlの細胞濁度は、600nmで0.3から0.4の光学密度に達するまで。
3. 0.1のOD _600に到達するまで、新鮮な培地で培養液を希釈します。
4. 適切な抗生物質と三重で毒性化合物（ 例えば、0、4、8、n-ヘキサンの10％）の適切な最終濃度を含む180μlのM9培地で96ウェルプレートをセットします。アルカン-水混合物は、二相系につながる可能性があるので、それはプレート上の適切なコントロール（ 例えば dを持つことが不可欠であるifferent株とそれぞれのブランク実験）。
5. ウェルに培養液20μl（コントロール）を追加します。
6. 一定振盪しながらプレートリーダーを37℃で24時間毎に10分°Cを使ってバイオマス濃度（OD _600）を測定_します 。
7. 異なる薬剤濃度については、それぞれの測定値からの成長率を計算し、陰性対照と比較します。平均値と、少なくとも3つの独立した実行の標準偏差を計算します。

8。同族体の相互作用のマッピング

1. アプリケーションHIMは、STRINGデータベース（学術的な使用のため無料^）20を稼動しているPostgreSQLサーバ上のタンパク質のクエリを実行するために開発されました。同族体の相互作用マッピングアプリケーションはSTRINGデータベースを使用して、元の宿主生物において作用するタンパク質を識別します。それぞれの相互作用遺伝子の配列は、標的生物の相同遺伝子を見つけるために、BLAST検索で使用されています。 Cytoscape ⁴ は、マッピングの結果を可視化するために使用されています。 ：HIMソフトウェアツールは次の場所にダウンロードすることができますhttps://github.com/jcnossen/InteractionHomologMapping。
2. マッピングを実行するには、（1）BioBrick IDを入力すると、アプリケーションは自動的に標準生物パーツ^9、または（2）を入力（ペースト）、アプリケーション内の配列データのレジストリから一部のシーケンスデータをダウンロードします。
3. 入力したアミノ酸配列のSTRINGプロテインIDを見つけるために、文字列データベースのWebサイトを使用しています。
4. 高い相同性を持つタンパク質は、BLASTを用いて決定される。その後、アプリケーションは、宿主生物におけるホモログ（ 例えば大腸菌 ）のソース生物と検索で既知の各相互作用タンパク質を示しています。
5. テキストまたはCytoscapeに結果の推定上の相互作用リストをエクスポートします。

結果

Alkane conversion

The activity of the three oxidation steps from the alkane to the respective fatty acid was evaluated using resting cell assays and enzyme activity measurements. The results are presented following the pathway reactions (1) alkane hydroxylase, (2) alcohol dehydrogenase and (3) aldehyde dehydrogenase.
For the first step, different plasmids were constructed for medium and long-chain alkanes. The plasmid BBa_...

ディスカッション

BioBrick原理は、アルカンの分解のために、シャーシを構築するために使われ、このツールキットの単一コンポーネントの原理の証明を得た。いくつかのアッセイは、in vivoおよびアルカン分解する経路酵素のin vitro活性を測定するために提案されている。提示された仕事は、正常宿主生物大腸菌の酵素活性と発現を決定するために使用できるメソッドの数を示しています適?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
E. coli K12	New England Biolabs	C2523H
Octane	Fluka	74822
Hexadecane	Fluka	52209
octanol-1	Fluka	95446
dodecanol-1	Sigma-Aldrich	126799
Hexane	Sigma-Aldrich	296090
NADH	Sigma-Aldrich	N4505
FMN	Sigma-Aldrich	F2253
MgSO4	J.T. Baker Casno	7487 889
Triton X-100	Sigma-Aldrich	T8787
T4 ligase	New England Biolabs	M0202L
Gas chromatograph
Cell disrupter	LA Biosystems	CD-019
Spectrophotometer	Amersham pharmacia	spec 2000
Plate reader	Tecan Group Ltd.	Magellan v7.0
Incubator	Innova, 44
BioBrickTM K398014: BBa_J23100-BBa_J61100-alkB2-BBa_J61100-rubA3-BBa_J61100-rubA4- BBa_J61100-rubB	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398014	Alkane Hydroxylase System Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398027: BBa_R0040-BBa_B0034-ladA	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398027	ladA Protein Generator Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398018: BBa_J23100-BBa_J61101-ADH	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398018	ADH generator Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398030: BBa_R0040-BBa_B0034-ALDH	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398030	ALDH generator Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398326: pCaiF	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398326	pCaiF promoter Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398331: pCaiF-BBa_B0032-BBa_I13401	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398331	pCaiF measurement device Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398406: BBa_J23002-BBa_J61107-phPFDα-BBa_J61107-	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398406	Solvent tolerance cluster Resistance: Chloramphenicol