수성 환경에서 탄화수소 전환을 사용하는 툴킷

요약

오일 오염의 개선을 위해 박테리아 시스템을 규제 지속 가능한 자동차는 표준 호환 DNA 부품 (BioBricks)를 사용하여 설계되었습니다. 엔지니어링 E. 대장균 변형은 독성 수성 환경에서 β-산화를 통해 alkanes을 저하하는 데 사용되었다. 종에서 각각의 효소는 alkane 저하 활동을 보여 주었다. 에 또한 증가 허용 N - 헥산은 alkane에 강한 박테리아 유전자를 도입하여 달성되었다.

초록

이 작품은 앞으로 대장균에 의해 alkanes의 전환을 가능하게하고 적용의 원리의 증명을 제시하는 툴킷를 게재 할 수 있습니다. 툴킷은 여러 표준 교환 부품 (BioBricks) ⁹ alkanes의 전환, 독성 탄화수소 풍부한 환경에서의 유전자 발현과 생존의 규정을 해결로 구성되어 있습니다.

alkane 저하에 대해 3 단계 경로는 E.에 구현 된 각 alkanols, alkanals 궁극적으로 alkanoic - 산에 중간과 긴 체인 alkanes의 전환을 활성화 대장균. 후자는 기본 β-산화 경로를 통해 대사되었다. 중간 체인 alkanes (C5-C13)와 cycloalkanes (C5-C8), Gordonia SP에서 alkane hydroxylase 시스템 네 가지 유전자 (alkB2, rubA3, rubA4 및 rubB)의 산화를 촉진합니다. TF6 ^8,21는 E.로 변환 된 대장균. 의 전환에 대한장쇄 alkanes (C15-C36)는 Geobacillus thermodenitrificans에서 라다 유전자가 구현되었습니다. 열화 과정에 필요한 자세한 단계를 들어, ADH 및 ALDH은 (G. thermodenitrificans에서 발생) ^10,11을 도입했다. 활동은 휴식 세포 assays에 의해 측정되었다. 각 산화 단계에 효소 활동이 관찰되었다.

프로세스 효율을 최적화하려면, 그 표현은 낮은 포도당 조건에서 유도되었습니다 기판 - 규제 발기인, pCaiF가 사용되었습니다. pCaiF는 E.에 존재 대장균 K12 및 비 포도당 탄소 소스의 저하에 관련된 유전자의 표현을 규제하고있다.

툴킷의 마지막 부분 - 생존을 대상으로는 - PhPFDα와 β 용매 내성 유전자, Pyrococcus horikoshii OT3에서 모두를 사용하여 구현되었습니다. 유기 용제에 부정적인 affectin에 의해 세포 스트레스를 유발하고 survivability을 감소 할 수 있습니다g 단백질 폴딩. 보호자로서 PhPFDα와 β는 alkanes의 존재에 따라 단백질 접힘 과정 등을 향상시킵니다. 문화 매체에서 10 % N-헥산의 presences의 증가 성장 속도 (최대 50 %)로 표시 개선 탄화수소 허용으로 이어이 유전자의 표현이 관찰되었다.

요약, 결과는 툴킷은 E. 수있게 된 것을 나타냅니다 수성 환경에서 탄화수소를 변환하고 관대 할 수 대장균. 따라서, 그것은 합성 생물학 접근 방식을 사용하여 오일 개선을위한 지속 가능한 솔루션에 대한 초기 단계를 나타냅니다.

서문

Oil pollution is among the most serious causes of environmental contamination, and greatly affects ecosystems, businesses and communities ³. Solutions are for example required to battle the continuous oil pollution originating from the oil sands tailing waters in Alberta, Canada. During the process of oil extraction from oil sands, bitumen, a semi-solid oxidized form of oil, is removed using thermal recovery techniques that consume about 3.1 barrels of water per single barrel of oil ¹. Oil contaminated process water, mainly originating from a local river, is stored in tailing ponds after bitumen extraction. A more effective recycling of process water in order to reduce the need for freshwater uptake is needed. To facilitate the bitumen extraction and to ensure that downstream sites meet water quality guidelines for the protection of aquatic ecosystems, process water treatments are rapidly evolving ³.

To treat pollution of organic compounds, bioremediation technologies employing microorganisms are presently encouraged ¹. Alkanes are the most abundant family of hydrocarbons in crude oil, containing 5 to 40 carbon atoms per molecule ^{7, 21}. Many bacteria are known to degrade alkanes of various lengths via sequential oxidation of the terminal methyl group forming first alcohols, then aldehydes and finally fatty acids ⁸. Within this iGEM project several enzymes from different organisms were expressed and characterized, and made available via the BioBrick standard and Registry of Standard Biological Parts.

The well-studied alkane hydroxylase system of Gordonia sp. TF6 facilitates the initial oxidation step of C₅-C₁₃ alkanes along with that of C₅-C₈ cycloalkanes using a minimum of four components: alkB2 (alkane 1-monooxygenase), rubA3, rubA4 (two rubredoxins) and RubB (rubredoxin reductase) ^{8, 21}. Oxidation of long-chain alkanes (ranging from C₁₅ up to C₃₆) is reported to be performed by ladA, a flavoprotein alkane monooxygenase from Geobacillus thermodinitrificans NG-80-2 ^{7, 15, 18, 22}. LadA forms a catalytic complex with flavin mononucleotide (FMN) that utilizes atomic oxygen for oxidation. This results in the conversion of alkanes into the corresponding primary alkanol. The alcohols are further oxidized by alcohol and aldehyde dehydrogenases to fatty acids, which readily enter the β-oxidation pathway ^{7, 21}. A zinc-independent alcohol dehydrogenase from the thermophillic bacterium Geobacillus thermoleovorans B23 oxidizes medium-chain alkanols into their respective alkanals, using NAD⁺ as a cofactor ¹⁰. Aldehyde dehydrogenase from the same bacterium is able to catalyze the NAD⁺-dependent final step in the medium-chain oxidation ¹¹.

In order to reduce induction costs and to maintain optimal proliferation of the bacterial system, the promoter pCaiF from E.coli was characterized. This promoter can regulate expression of the hydrocarbon degradation pathway components, and is regulated by cAMP-Crp levels, which in turn depend on glucose levels ⁶. At high extracellular glucose concentrations in the environment the cellular cAMP (cyclic Adenosine Mononucleotide Phosphate) level was low through the inhibition of adenylyl cyclase as a side effect of PTS mediated glucose transport. Conversely, during limitation (low glucose concentrations) the cAMP level increased and Crp bound to cAMP forming the complex, cAMP-Crp, which bound pCaiF and activated transcription of the downstream components ^{6, 14}.

Wildtype E. coli can only tolerate moderate concentrations of hydrocarbons. To complete the toolkit, tolerance to hydrocarbons had to be addressed. Several organic solvent-tolerant bacteria are known to survive in water-solvent two-phase systems ¹². Molecular components known to increase tolerance are chaperones that facilitate the correct folding of proteins. The prefoldin system from Pyrococcus horikoshii OT3, consisting of the proteins phPFDα and phPFDβ, was shown to increase hydrocarbon-tolerance ¹⁷.

The alkane conversion toolkit was constructed following the BioBrick principle, which is documented at the Registry of Standard Biological Parts ⁹. BioBricks are plasmids containing a specific functional insert that is flanked by 4 predefined restriction sites. The BioBrick inserts can be extended flexibly, allowing the construction of biological systems with new functions.

프로토콜

1. BioBrick 조립

1. 표준 생물 부품의 레지스트리에서 BioBricks는 iGEM 본부에 의해 제공됩니다. 기존 BioBricks에서 새로운 BioBrick을 구성하려면 수용체 부분의 기증자 부분의 하류를 위치에 대한 효소 EcoRI과 SpeI으로 기증자 BioBrick (최대 1.0 μg) 소화. 수용체 부분의 상류 기증자 부분을 위치시키기위한 XbaI 및 PstI있는 다이제스트. 기증자의 중추에 끊어 삼분의 일 적절한 제한 효소를 추가합니다. 공급 업체 (최종 농도 1X)에 따라, 해당 버퍼와 20-25 ML의 총 볼륨에 dig​​estions을 수행합니다. 제한 효소에 대해 5 단위 / μg의 DNA를 사용하십시오.
2. EcoRI 및 XbaI 또는 SpeI 및 PstI 중과 수용체 BioBrick을 소화.
3. 37에 하나의 시간 (최소)의 digestions을 품어 ° C. 제한이 열에 의해 endonucleases 비활성화, 80에서 부화 곧 10 분 및 원심 분리기에 대한 ° C.
4. 소화 BioBrick을 Ligate함께 부품 (기증자와 수용체). XbaI 및 SpeI 호환 DNA 종료를 생성하기 때문에, 혼합 사이트는 4 표준 제한 사이트으로 둘러싸인 한 새로운 '통합'BioBrick에서 발생하는 제한 효소로 절단 할 수없는 그 생성됩니다. 결합 혼합물에서 최종 DNA 농도가 바람직 ~ 100 NG / μl. T4 결합 버퍼 (최종 농도 1X) 및 T4 ligase (1 단위 / μg의 DNA)와 10-15 ML의 총 볼륨의 결합 반응을 수행합니다.
5. 적어도 3 시간 16 ° C에 결합 혼합물을 품다.
6. 결합 믹스의 년경 반으로 변환 반응을 수행합니다.
7. 시퀀싱과 올바른 BioBrick을 확인합니다.
8. 합성 DNA에서 새 BioBrick을 구성하려면, E.에 최적의 표현을위한 합성에 대한 유전자를 수정 JCat 웹 사이트 도구 (수단을 이용하여 대장균 http://www.jcat.de/ ). B의 요구 사항에 따라 추가 수정 ioBrick 표준입니다. 이 표준화는 모든 BioBrick이 접두사 앞에와 접미사 다음 관심있는 DNA 순서로 구성되어 있습니다 의미합니다. 접두사와 접미사는 나머지 플라스미드 순서대로 없어졌어 미리 정의 된 제한 사이트를 포함 시퀀스입니다. 이러한 표준 제한 사이트는 교류, ⁹ 유연하게 BioBrick 삽입을 확장하는 것이 가능합니다. 접두사와 접미사는 다음과 같은 순서를 가지고 :

이름	순서	논평
접두사	5 'GAATTCGCGGCCGCTTCTAG3'
	5 'GAATTCGCGGCCGCTTCTAGAG 3'	다음 부분은 코딩 순서 또는 "ATG"로 시작하는 일부 경우
접미사	5 'TACTAGTAGCGGCCGCTGCAG 3'

생체 내 ove_title "> 2. Alkane 변환 휴식 세포 분석,

이 분석은 후지 외. (2004)에 의해 기술 된 방법에 따라 수행되었다.

1. 문화 E. Alkane Hydroxylase 시스템 (표현 대장균 세포 BBa_K398014 빈 벡터 (수행)와 세포 BBa_J13002을 하루 아침에 적절한 항생제로 5 ML의 LB 매체에를).
2. 신선한 LB의 50 ML (항생제 포함)에 밤 문화를 500 μl를 전송하고 세포 탁도가 600 나노 미터에서 0.3의 OD를 (광학 밀도)에 도달 할 때까지 알을 품다.
3. 4000 rpm으로 10 분 동안 원심 분리기, 5 ML 0.1 M 인산 버퍼 (산도 7.4)에서 펠렛을 resuspend.
4. 4000 rpm에서 10 분 동안 다시 원심 분리기 지금 E2 소금과 0.66 % V / V 글리세롤 (질소 deficien를 포함하는 5 ML 0.1 M 인산 버퍼에있는 펠릿을 resuspendt 중간).
5. 셀 탁도 (OD ₆₀₀₎ 측정합니다.
6. 25 ML 폐쇄 캡 유리 플라스크없이 셀 컨트롤 (E2 소금 + 0.66 % V / V 글리세롤)에서 6 ML의 세포 혼합 aliquots를 준비합니다.
7. 각 플라스크에 alkane 100 nmol을 추가합니다.
8. 24 시간 (높은 속도를 얻을 때 단축)에 대한 37 ° C에서 혼합물을 품다.
9. 부화 후 OD ₆₀₀ 측정합니다.
10. 에틸 아세테이트하여 문화 미디어의 탄화수소를 추출하여 가스 크로마토 그래피 (프로토콜 3 참조)에 의해 세포 배양의 탄화수소 농도를 결정한다.
11. 각 플라스크에 총 바이오 매스 현재 (건조 중량에 OD ₆₀₀ 변환)에 의해 변환 alkane의 총 금액을 나누어 바이오 매스의 단위 당 저하를 계산합니다. 실험 기간으로 결과를 나누면 시간 단위 당 단위 바이오 매스 당 저하 활동을 산출. 평균은 세 개인 점에서 가져옵니다.

3. Alkane 전환 효소 분석에서는체외

이 분석은 리 외. (2008)에 의해 기술 된 방법에 따라 기본적으로 수행되었다.

1. 문화 E. 라다 유전자 (표현 대장균 세포 BBa_K398017 ) 및 빈 벡터 (들고 세포 BBa_J13002을 하루 아침에 적절한 항생제로 50 ML의 LB 매체에를).
2. 신선한 LB의 50 ML (항생제 포함)에 밤 문화를 500 μl를 전송하고 세포 탁도가 600 나노 미터에서 0.6의 광학 밀도에 도달 할 때까지 품다.
3. 4000 RPM (4 ° C)에서 10 분 원심 분리기 50 MM 트리스 버퍼의 5 ML에 펠렛을 resuspend.
4. 4 출력 제어 40 % 듀티 사이클에서 Sonicate (셀 장애, LA Biosystems) 세포는 전체 기간 동안 얼음에 솔루션을 보관.
5. 4 & D에 4,000 rpm으로 5 분 동안 발생하는 혼합물을 원심 분리기예를 들어, C 세포 오염 물질을 제거 할 수 있습니다. 새로운 유리 병에 표면에 뜨는을 전송합니다.
6. 브래드 포드 분석하여 세포 추출물의 총 단백질 농도를 결정합니다. 참고 : 배경의 증가 및 / 또는 단백질의 손실을 방지하기 위해 유리 병을 사용합니다.
7. 0.1 % V / V alkane 50 MM 트리스 - HCL 버퍼를 포함하는 100 ML 혼합물을 준비합니다.
8. 5 분에 ° C 100 혼합물을 가열. 참고 : 높은 끓는 점과 중간 길이의 체인 alkanes에 대해이 단계를 수행합니다. (예 : C ₁₆ : 287 ° C).
9. alkane의 최적의 용해도를 달성하기 위해, 1 분 아직 따뜻한하는 동안 동질, 점성 혼합물을 취득 할 때까지에 sonicate.
10. NADH의 1mM, 1 MM FMN, 1 MM MgSO _4, 0.01 브이 / v 튼 X-100을 추가합니다.
11. 25 ML 폐쇄 캡 플라스크에서 6 ML aliquots를 준비합니다.
12. 세포 추출물의 충분한 양을 (브래드 포드 assays, 5 MG 단백질 / L​​의 최종 농도에 따라 달라집니다)를 추가합니다. 노 단백질 제어를 준비합니다.
13. 최적의 전자에 60 ° C (에 품다24 시간 용) 활동 nzymatic.
14. 에틸 아세테이트하여 문화 미디어의 탄화수소를 추출하여 가스 크로마토 그래피 (프로토콜 3 참조)에 의해 세포 배양의 탄화수소 농도를 결정한다.
15. 총 단백질에 의해 변환 alkane의 총 금액을 나누어 바이오 매스의 단위 당 저하를 계산은 각 플라스크 (브래드 포드 보정 곡선에 의해)에 추가되었습니다. 또한 실험 기간으로 나누어은 시간 단위 당 세포 단백질의 단위 당 저하 활동을 산출. 평균은 세 개인 점에서 가져옵니다.

4. 에틸 아세테이트 탄화수소 추출 및 농도 측정

1. Alkanes은 6 ML 실험 용액에 2.5 ML 에틸 아세테이트 (apolar solvant)를 추가하여 수용액에서 추출됩니다. 내부 표준은 0.1 %의 농도 (V / V)에서 용매에 추가됩니다. 표준 (예 : cyclo-decan) 관심 봉우리의 예상 범위에 따라 다양.
2. 옵션 : 추가 튼수성 혼합물에 X-100과 적절한 이중 phasic 시스템을 위해 4,000 rpm에서 10 분 동안 샘플을 원심 분리기.
3. 소용돌이 두 단계 분리 될 때까지 5 초 (1,500 RPM)와 실온에서 배양을위한 혼합.
4. 유기 층 (상단)의 최대 양을 제거하고 무수 마그네슘 황산염을 사용하여 용매를 건조.
5. 여과 (0.2 μm)로 MgSO _4를 제거하고 -20 ° C.에있는 측정을위한 가스 크로마토 그래프 용 시험관에 여과, 또는 상점을 전송할
6. CP-SIL 5CB 열 (길이 = 5m)를 사용하여 가스 크로마토 그래피에 의한 농도를 결정합니다. (1시 10분, 230 ° C) 분할 모드에서 샘플의 10 μl를 삽입. 1 ML / 분 (헬륨)에 열 가스의 흐름을 설정합니다. 다음 오븐 온도 프로그램이 사용됩니다 :

   율	온도 [° C]	시간 [분]
   0	50	7.5
   50	90	1.0
   50	110	2.0
   50	130	2.0
   50	145	2.0
   50	160	2.0
   50	170	2.0
   50	185	2.0
   50	210	2.0
   50	250	2.0
   50	320	2.0

7. 봉우리를 통합하고 내부 표준과 관련하여 농도를 수정합니다.

5. 알코올 / 알데히드 탈수소 효소 활동 분석

이 분석은 가토 외에 기술 된 방법에 따라 기본적으로 수행되었다.(2010).

1. 문화 E. ADH (표현 대장균 세포 BBa_K398018 ) 또는 ALDH ( BBa_K398030 ) 유전자와 빈 벡터 (들고 세포 BBa_J13002을 하루 아침에 적절한 항생제로 50 ML의 LB 매체에를).
2. 신선한 LB의 50 ML (항생제 포함)에 밤 문화를 500 μl를 전송하고 세포 탁도가 600 나노 미터에서 0.6의 광학 밀도에 도달 할 때까지 품다.
3. 4 ° C에서 4,000 rpm으로 10 분 원심 분리기 50 MM 트리스 버퍼의 5 ML에 펠렛을 resuspend.
4. 4 출력 제어 (sonication 동안 얼음에 솔루션을 유지)와 40 % 듀티 사이클에서 셀 솔루션을 Sonicate.
5. ° C는 세포 파편을 제거하기 위해 4에서 4,000 rpm으로 5 분의 결과 혼합물을 원심 분리기.
6. 로를 결정(: 단백질 바인딩을 방지하기 위해 유리관을 사용 주) 브래드 퍼드 분석하여 세포 추출물의 할거야, 단백질 농도.
7. 180 μl 57 MM 글리신 버퍼는 각 우물에 NAD를 (최종 농도 1 ㎜, 산도 9.5)이 포함 된과 96 잘 접시를로드합니다.
8. 우물에 테스트 할 수있는 알코올 (알데히드)의 5 μl를 추가합니다. 참고 : 액체를 가지고 할 수있는 분석의 시작 전에 열 긴 사슬 알코올. 각 주류 (알데히드) 기판없이 제어 (대조군) 추가해야합니다. 또한, 세포 추출물없이 버퍼와 기판의 혼합물을 포함하는 빈을 준비합니다.
9. 앞서 열을 가하다 37 번 15 분을위한 플레이트 리더 (Tecan 마젤란 v7.0)의 판 ° C 시스템의 평균을 허용 할 수 있습니다.
10. 세포 추출물의 충분한 양을 (브래드 포드 assays, 5 MG 단백질 / L​​의 최종 농도에 따라 달라집니다)를 추가합니다. 노 단백질 제어를 준비합니다.
11. 340 nm의 파장 37 번 1 시간마다 2-3 분 ° C. <에서 분광 광도계를 사용하여 NADH 생산을 측정/ 리>
12. OD (340 nm 정도)의 경사면에서 NADH 생산 속도를 계산할 수 있습니다. 계정으로 빛 경로 길이 6,220 M ^-1 cm ^-1의 NADH의 흡광 계수보십시오. 단백질의 총 양에 의해 NADH 생산 속도를 나눈다는 세포 추출물에서 탈수소 효소 반응 (U / MG 전체 세포 단백질)의 활동을 표현하는 추가되었습니다. 평균 세 독립 실행에서 표준 편차를 계산합니다.

6. pCaiF 특성

1. 문화 E. pCaiF-GFP 구조 (표현 대장균 세포 BBa_K398331 )와 단둘이 발기인 (운반 세포 BBa_K398326를 적절한 항생제 박 5 ML의 LB 매체에 하룻밤 정도).
2. 5 ML M9는 밤 문화의 50 μl를 10g / L 포도당과 항생제를 포함하는 예방하고 하루 아침에 성장합니다.
3. 밤새 가지의 하위 문화 50 μl 신선한 M9 with10 g / L 및 배양의 5 ML에는 세포 탁도는 600 nm의에서 0.2의 광학 밀도에 도달 할 때까지.
4. 각 우물에 테스트 탄소 소스의 원하는 금액을 포함하는 새로운 M9 매체 100 μl와 96 잘 판을로드합니다. 통계 평가를위한 세중의 실험을 수행하고 각각의 부정적인 컨트롤을 (야생 형 대장균 K12)를 추가합니다.
5. 매체가 포함 된 우물에 밤 문화의 5 μl를 추가합니다.
6. 성장 곡선 (OD _600)와 플레이트 리더를 사용하여 GFP 형광 (485 나노 미터 여기와 520 방출) 37 18 시간마다 10 분 ° C 일정한 진동과를 측정합니다.
7. 성장 속도와 각각의 측정에서 특정 GFP 내용을 계산하고 컨트롤에 비교합니다. 평균 적어도 세 독립적 인 실험의 표준 편차를 계산합니다.

7. 공차 분석

1. 문화대장균은 PhPFDα와 β 유전자 (표현 BBa_K398406를 5 ML의 LB 매체와 적절한 항생제에 밤새). E.는 라다 유전자 (표현 대장균 BBa_K398017가 ) 대조군으로 사용됩니다.
2. 신선한 5 LB의 ML (항생제) 및 배양에 밤새 가지의 하위 문화 10 μl의 세포 탁도는 600 nm의에서 0.4-0.3의 광학 밀도에 도달 할 때까지.
3. 이 0.1의 OD _600에 도달 할 때까지 새로운 매체 문화를 희석.
4. 적절한 항생제와 세중의에 독성 화합물 (예 : 0, 4, 8, N-헥산의 10 %)의 적절한 최종 농도를 포함하는 180 μl M9 매체와 96 잘 판을로드합니다. alkane - 물 혼합물은 2 단계 시스템으로 이어질 수 있기 때문에 (예 : D 번호판의 적절한 컨트롤을 가지고 필수적입니다ifferent 긴장하고 각각의 빈 실험).
5. 우물에 문화의 20 μl (제어)를 추가합니다.
6. 지속적인 진동과 판 독자에게 37에서 24 시간마다 10 분 ° C를 사용하여 바이오 매스 농도 (OD ₆₀₀₎ 측정합니다.
7. 다른 에이전트 농도에 대한 각각의 측정에서 성장 속도를 계산하고 부정적인 컨트롤에 비교할 수 있습니다. 평균 적어도 세 독립 실행의 표준 편차를 계산합니다.

8. 상 동체 상호 작용 매핑

1. 이 응용 프로그램 HIM은 STRING 데이터베이스 (학술 사용하기 위해 무료) ^20을 실행하는 PostgreSQL 서버에 단백질 쿼리를 수행하기 위해 개발되었습니다. homologue 상호 작용 매핑 응용 프로그램은 STRING 데이터베이스를 사용하여 원래의 호스트 유기체에서 상호 작용하는 단백질을 식별합니다. 각각의 상호 작용 유전자의 시퀀스는 대상 생물의 상동 유전자를 찾기 위해 BLAST 검색에 사용됩니다. Cytoscape ⁴ 는 매핑의 결과를 시각화하는 데 사용됩니다. : HIM 소프트웨어 도구에서 다운로드 할 수 있습니다 https://github.com/jcnossen/InteractionHomologMapping.
2. 매핑을 수행하려면 (1) BioBrick의 ID를 입력하고 응용 프로그램은 자동으로 표준 생물학 부품 ^9, 또는 응용 프로그램의 (2)를 입력 (붙여 넣기) 시퀀스 데이터의 레지스트리에서 일부 순서 데이터를 다운로드합니다.
3. 입력 된 아미노산 서열에 대한 STRING 단백질 ID를 찾을 수 STRING 데이터베이스 웹 사이트를 사용합니다.
4. 높은 호몰 로지와 단백질은 BLAST를 사용하여 결정됩니다. 이후 응용 프로그램은 호스트 유기체의 homologs (예 : 대장균)의 소스 유기체와 검색에 각 알려진 상호 작용하는 단백질을 보여줍니다.
5. 텍스트 또는 Cytoscape에 결과 putative 상호 작용 목록을 내 보냅니다.

결과

Alkane conversion

The activity of the three oxidation steps from the alkane to the respective fatty acid was evaluated using resting cell assays and enzyme activity measurements. The results are presented following the pathway reactions (1) alkane hydroxylase, (2) alcohol dehydrogenase and (3) aldehyde dehydrogenase.
For the first step, different plasmids were constructed for medium and long-chain alkanes. The plasmid BBa_...

토론

BioBrick의 원리는 alkanes의 저하에 대한 섀시를 만드는 데 사용되며 툴킷의 단일 구성 요소에 대한 원칙의 증명 얻은 것입니다. 여러 assays는 생체과 alkane 굴욕 경로의 효소의 체외 활동에 측정하기 위해 제안합니다. 제시 작업은 성공적으로 호스트 유기체 E.의 효소 활동과 표현을 결정하는 데 사용할 수있는 방법의 수를 보여줍니다 적절한 BioBricks를 구현 한 후 대장균. 또...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
E. coli K12	New England Biolabs	C2523H
Octane	Fluka	74822
Hexadecane	Fluka	52209
octanol-1	Fluka	95446
dodecanol-1	Sigma-Aldrich	126799
Hexane	Sigma-Aldrich	296090
NADH	Sigma-Aldrich	N4505
FMN	Sigma-Aldrich	F2253
MgSO4	J.T. Baker Casno	7487 889
Triton X-100	Sigma-Aldrich	T8787
T4 ligase	New England Biolabs	M0202L
Gas chromatograph
Cell disrupter	LA Biosystems	CD-019
Spectrophotometer	Amersham pharmacia	spec 2000
Plate reader	Tecan Group Ltd.	Magellan v7.0
Incubator	Innova, 44
BioBrickTM K398014: BBa_J23100-BBa_J61100-alkB2-BBa_J61100-rubA3-BBa_J61100-rubA4- BBa_J61100-rubB	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398014	Alkane Hydroxylase System Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398027: BBa_R0040-BBa_B0034-ladA	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398027	ladA Protein Generator Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398018: BBa_J23100-BBa_J61101-ADH	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398018	ADH generator Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398030: BBa_R0040-BBa_B0034-ALDH	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398030	ALDH generator Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398326: pCaiF	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398326	pCaiF promoter Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398331: pCaiF-BBa_B0032-BBa_I13401	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398331	pCaiF measurement device Resistance: Chloramphenicol
BioBrickTM K398406: BBa_J23002-BBa_J61107-phPFDα-BBa_J61107-	Delft University of Technology at the department of Biotechnology or Registry of Standard Biological Parts	BBa_K398406	Solvent tolerance cluster Resistance: Chloramphenicol