アイソレーション、文化、および成体マウスCardiomyoctyesの機能解析

要約

ここでは、ランゲンドルフ灌流システムを使用して、成体マウスcardiomyoctyesの単離を記載している。得られた細胞は、電気的に休止状態、のCa 2 +·トレラントであり、培養およびアデノ又は遺伝子発現を操作するためのレンチウイルスでトランスフェクトすることができる。それらの機能は、MMSYSシステムおよびパッチクランプ技術を用いて分析することができる。

要約

文化の中での一次心筋細胞（CMS）を使用すると、心臓病の理解を進める上で、心臓病のマウスモデルへの強力な補完を提供してきました。具体的には、疾患状態および疾患を引き起こす突然変異により、イオンホメオスタシス、イオンチャネル機能、細胞の興奮と興奮収縮連関とその変化を研究する能力は、心臓疾患に有意な洞察をもたらした。さらに、成人のCMを模倣するための適切な不死化細胞株の欠如、文化の中で（成人のCMの構造的および機能的生体力学特性の多くを欠いている）新生児のCMの制限は、シグナル伝達経路間の複雑な相互作用の理解を妨げている成人の心臓のイオンチャネルおよび収縮特性は、大人の孤立心筋細胞を研究することの重要性を強化する。ここでは、アデノウイルスexpreによる遺伝子発現の単離、培養、操作するための方法を提示するssedタンパク質、および成体マウスの心筋細胞のその後の機能解析。これらの技術の使用は、細胞の興奮性を調節する経路、Ca ^{2 +}の動態及び収縮性をシグナルに機械的な洞察力を開発し、心血管疾患の多くの生理学的に関連する特性評価を提供するのに役立ちます。

概要

心血管疾患のマウスモデルは、潜在的な治療標的に^1,3を識別するための基本的な病気のメカニズムの^1,2の解明だけでなく、のための効果的なツールとして役立ってきた。具体的には、（例えば、圧力過負荷など）後天性心疾患の両方のマウスモデル^4,5およびトランスジェニックマウスモデルの使用は、心臓病^6-8の我々の理解を進めてきた。単一細胞のレベルで心臓^11-13に細胞の興奮と興奮収縮連関の根底にある個々のタンパク質におけるシグナル伝達カスケード^3,9,10及び変更を研究するための細胞培養技術の使用は、 インビボのマウスモデルを補完している。しかしながら、成人のCMの構造と機能を反映十分な細胞株の欠如は、重大な制限となっている。研究者らは、異種発現系において、イオンチャネルなどの個々のタンパク質を研究することによってこの問題を克服しようとしてきた ^{14、およびこれらの研究は、イオンチャネルの生物物理学やタンパク質輸送の面で有益な情報を提供してくれたが、CMのネイティブ微小環境の不十分な表現は重要な制限である。第二に、これらの異種細胞のほとんどが成熟した収縮装置を有していないので、収縮機能および細胞興奮性と収縮との間の複雑な相互作用を研究することは不可能であった。この理由のために、研究者は、それらのインビトロ機能的研究の多くで主要な心臓細胞培養物になっている。最後に、単離された心筋細胞の研究は、瘢痕または線維症と繊維配向の影響を含む多細胞調製物の交絡因子なしで収縮機能の評価を可能にする。}

原発新生児ラット心室心筋細胞（NRVMs）が文化に比較的容易に、遺伝子発現^15を操作するためにアデノウイルスおよびレンチウイルスに感染することができているNDしたがって首尾よく¹使用されますが、自分自身の限界を持っているされています。これらは生理的微小環境^1を提供し、シグナリング·フィールドの主力してきたが、形態およびNRVMsと大人のcardiomyoctyesの細胞内組織との間の実質的な違いは、彼らに大人の心の中のイオンフラックスと興奮収縮連関の研究には不十分モデルを作成。最も顕著なのはNRVMsは決定的なT-管状サブシステム^4を欠いている。 Ca ^{2 +}のフラックスとダイナミクスが成熟T-管状と筋小胞体（SR）構造^{6、Ca 2 +}の動態とNRVMsにおける心収縮性の機能研究に決定的に依存しているので、成人の心筋細胞でこれらの重要なプロセスを正確に反映していない。さらに、シグナル伝達経路の一部のコンポーネントは、それによって病気のプロセスとそのIを研究するための別の制限を提供し、新生仔および成体マウス⁹の間で異なるNRVMs中の細胞の興奮と収縮性に対するMPACT。最後に、収縮機構の分布は、収縮測定の精度を制限する多方向不均一な細胞短縮につながる。

孤立した大人の心筋細胞の使用は、より正確なin vitroのモデル化システムを提供しています。マウスの遺伝子操作によって可能になった知識の驚くべき成長は、マウスから機能的な孤立心筋細胞を得ることの重要性を強調している。実際には、マウスモデルから分離され、成人のCMの特徴付けは、多くの生物学的および病理学的事象を解明しました。トランスジェニックマウスモデルから分離されたCMは、それによって中から得られた情報を補完し、そのような虚血/再灌流^17,18として疾患モデルでのゲインまたはタンパク質の機能喪失単セル^2,16の収縮特性上、及び生存率の研究を可能にした上のin vivo試験SEマウス。 （生理肥大をモデル化するための）や運動^5,21検査のために可能にする（模倣高血圧や大動脈弁狭窄症は、そのような横方向の大動脈狭窄誘発の圧負荷など、）後天性心疾患^3,19,20のマウスモデルから単離した成人のCMの使用単セルのレベルでの細胞の興奮と興奮収縮連関と、これらのプロセスに関与するシグナル伝達カスケードの相互作用の。さらに、成人のCMでアデノウイルス駆動性遺伝子発現を用いて遺伝子発現を操作する能力は、私たちの複雑なシグナル伝達経路の成分を分析する機会を与える。

電気生理学の観点から、全セル電圧および単離された成体のCMに電流クランプ実験は、ベースラインでのイオンフラックスの性質を解明することで、種々の疾患状態において重要であった。なぜなら、細胞膜の複雑な構造と差動proteの成人のCMとNRVMsまたは異種の細胞株の間に足場構造で、成人の細胞にパッチを適用する機能は、特定の膜タンパク質、構造タンパク質、および成人の心臓の電気生理学的コンポーネントのイオンチャネル相互作用パートナーの影響のより良い表現を提供します。

大人のマウスの心筋細胞を研究する上で、このような顕著な利点にもかかわらず、成体マウスの心筋細胞を分離して培養したウイルスを用いてさらに遺伝子操作を可能にするために実行可能なマウスの心筋細胞を分離し、培養液中で、それらを維持するための方法論の体系的かつ正確な説明の必要性を促し、挑戦しているベクトル。これまでの研究では、急性単離したマウスの成人CMSまたは培養したラットの成人のCMのいずれかを使用している。後者は、成体マウスのCMよりも文化に容易であり、in vitroでの遺伝子発現を操作するほとんどの実験は、ラット大人のCMを使用している。いくつかの研究が正常に変更し、functiをを調査した実験の範囲に大きな制約を提示し、マウスの大人のCMSのonal遺伝子発現。そこで、ここでは詳細に隔離^7,8,22、文化^{3,10,15,23、}アデノウイルス感染^11-13,15、および成体マウスの心室cardiomyoctyesの機能解析のための以前の研究から変更などの方法を、紹介します。この分離プロトコル我々は、最大72時間のために正常に培養し、一過性にアデノウイルスでトランスフェクションしていたCa ^{2 +}トレラント、興奮性心筋細胞における結果。これらの単離された細胞の機能は、説明するMMSYS撮像システム^14,24およびパッチクランプを用いて評価することができる。

プロトコル

1。心筋細胞の単離

材料（図1）

Microdissecting鉗子
組織鉗子
繊細な止血鉗子
止血鉗子
Microdissecting、鋸歯状、湾曲鉗子
ストレート操作はさみ、
湾曲したオペレーティング·はさみ、
15ミリリットルファルコンチューブ（5）
60ミリメートルペトリ皿
リン酸緩衝生理食塩水（PBS）
ナイロンメッシュ - 400ミクロンの孔の大きさ
小さな漏斗
ワックスコーティングされた、編まれた絹4-0 7-10センチ19ミリメートル、
非皮下注射針、平滑末端、24 Gまたは商業動物給餌針（W/1-1/4、24×1）
ヘパリンナトリウム
ケタミン/キシラジン混合物
パスツールピペット
OptiVision解剖ゴーグル
IonOptix MMSYSシステム

注意：細胞を培養する場合は、このプロトコルを開始する前に、細胞培養のセクション2を参照してください。

注：全てのマウスでの世話をし、バリア機能と承認されたIACUC規制、慣行、および手順に従って屠殺した。

注：前に作業を開始し、システム全体がランゲンドルフシステム（ 図2A、図3）のすべての要素が適切かつ完全なコラゲナーゼ活性を可能にするために37℃に温めていることを保証するために予熱する必要があります。

1. 腹部の空間にナトリウムヘパリン150 USP単位で成体マウス（〜12週）を注入。
2. 重量依存用量（ 表1）でのケタミン/キシラジン混合物の注射で麻酔。
   1. 80:12 mg / kgのケタミン：キシラジンレシピ：2.6ミリリットルケタミン（100 mg / ml）を+ 0.4ミリリットルキシラジン（100 mg / ml）を+ 37ミリリットルのPBS。最終：ケタミン= 6.5 mg / mlの、キシラジン= 1 mg / mlの
3. 営業パッドに鎮静マウスを固定し、心臓を切除し、室温PBSまたは0.9％生理食塩水（ 図1J）の皿に置く。 PHYsiologic生理食塩水は、そのまま心臓がチャンバー内の血液のよりよい押出および1.6に移行する前に大動脈を容易に識別のための契約を可能にする。マウスは、彼らが深く後肢足指ピンチレフ前開胸の発症呼吸数の減速の損失を経由して麻酔することを確認するためにチェックした。
4. 大動脈を特定して公開するOptiVision解剖ゴーグル（ 図1A）を使用します。大動脈基部がはっきり表示されている場合には、血管の可視化を容易ではないが、大動脈周囲の組織を除去すると、細胞単離の最適化のための必要はありません。
5. 素数潅流緩衝液（ 表2）を有するポンプ。温度が制御され、循環水浴（ 図2D）を用いて手順の長さを37℃に保持されるべきである。
6. ランゲンドルフ装置（ 図2A）に心をマウントします。 2マイクロ解剖鉗子（ 図1D-E）の使用、PR遠位先端にシリコンチューブを非皮下、平滑末端針（24 G）を中心に大動脈をIME。あるいは商用動物給餌針（W/1-1/4において24×1）を用いることができる。 24 G針や動物給餌針にシリコンチューブが溝の上に縫合糸を固定するためにできるようになります。靴下のような針で大動脈を配置します。 （ 図2C）。
   1. 注意：これは、針の端が理想的には腕頭に大動脈起始部の遠位に、上行大動脈にかかっているが、これは深刻なようにそれは、左心室に大動脈弁を通って延びていないことを確認することは重要である効果的に冠状動脈を介して心臓を通して灌流するバッファの能力を制限する。
7. （7〜10センチメートルロング）縫合シルクの小さな長さを接続することにより針に心を固定します（ 図1K）大動脈の上部の周囲、タイが右腕頭のarterの下に、上行大動脈のレベルであることを保証Yが、針の端部を超えている。
8. 適切な周囲温度を維持するために、円錐形ガラス（ 図2B）の内部に心を下ろします。
9. 1ml /分の速度で5分間灌流緩衝液で心臓を灌流し、灌流液が円錐ガラス中に収集し、心臓を包むことができるようにガラスチャンバーの流出をクランプする。心を消化するための回路図を図3に示します。
   1. この時点で、心臓の増加量が表示されるはずです。さらに、心臓組織内の血液は、組織蒼白を引き起こし、灌流液によって置換される。
10. 灌流液を排出するために流出クランプを解除する。酵素バッファー容器（ 図2E）に灌流バッファ容器からチューブを移動するためにポンプを停止します。 1ミリリットル/分で酵素緩衝液（ 表2）を心臓に灌流を開始するためにポンプを再起動します。酵素緩衝封筒できるようにするために、再び流出をクランプ心。
    1. ここでは、酵素は、心臓を灌流し、結合組織を消化しているように、心臓は淡いなり、構造的完全性は減少するでしょう。
    2. 、消化された心臓から心室をカット円錐ガラスから心を持ち上げ、静かにピンセットで心を絞ると、小さなシャーレに灌流液を数滴を収集し、単一の細胞が脱落しているかどうかをどうかを確認するかを決定するために。
    3. 初心者にとっては、圧力計の灌流ラインを接続するために役立ちます。心が消化なっている場合には、結合組織が耐性を保持していないように圧力が急速に低下する。圧力計は、針の位置が大動脈弁の上ではなく、心にあることを確実にするためにも、初心者に便利です。低圧は針が心室にあり、高圧ニードルバルブに触れることが示されたことを示します。
11. 皿に心臓から心室をカット転送バッファ（A）（ 表2）の完全な心室圧は劇的たり、灌流液中の単一細胞を見ることができる時に低下し始めたとき。これは通常〜7月10日分かかります。
12. 再び（ 図1C）、マイクロ解剖ピンセットを用いて、解離する小さな断片に心室をミンチ。成功の消化は、組織のほとんどが解離時にアモルファスになってきてて、ミンチ後の組織のほとんどない固体の塊を残す。
    1. さらに、先端が約45°の角度で切断されていたから、プラスチック製パスツールピペット（ 図4）を使用して、イン/アウト組織、ピペットソリューションを解離させる。この変形例は、組織が磨砕される細胞上の剪断応力の量を減少させる、従って、ピペットチップの内径の空間を増加させるのに役立つ。
    2. 鉗子で組織を切開する前に、それが個々のチャンバを分離し、別々に心房、左心室またはライを解離することが可能であるトン心室細胞。
13. クランプを使用し、小さな漏斗（ 図1L）に乗メッシュ（ 図1M）を確保し、15ミリリットルのファルコンチューブ（ 図1I）に、この濾過装置を置く。
14. 皿から細胞溶液を除去し、ファルコンチューブに溶液をフィルタリングするために修飾されたパスツールピペットを使用する。
15. （生細胞沈降が2-4分を取る必要があります）生細胞をチューブの底に沈殿することができます。
16. 4個別の15ミリリットルファルコンチューブに4カルシウムソリューション（ 表3）のそれぞれのアリコート2.5ミリリットル。
17. 再度、標準的なパスツールピペットを用いて、慎重に管の底部から細胞ペレットを除去し、カルシウム溶液の最初に細胞を移す。
18. 細胞は、チューブの底に沈殿し、細胞が最後の解決策になるまで、その後のカルシウム溶液中にステップ1.17を繰り返しすることができます。
19. 細胞は4トンに定住させてはいけない時間カルシウム溶液。チューブに蓋をし、その側に回します。

2。細胞培養

1. 隔離板の1μg/ mlの天然マウスガラスカバースリップ上にラミニンおよび37℃で少なくとも1時間インキュベートし、2％CO _2の前に。また、メッキや培養培地（ 表4）は 37℃、2％CO ₂のインキュベーター内で加温することができます。これは、メディア内の溶解したCO _2を平衡化することができます。
   1. メディアからのトップを抜かないでください。単に汚染を避けるために、トップを緩めます。
2. 単離された細胞は、ファルコンチューブの底にペレット化することができます。
3. メディアのめっき適当量の標準的なプラスチックパスツールピペット再懸濁を使用してペレットを削除します。
4. プレートに適切な大きさの皿の中で、ラミニンコートしたカバーガラス上の細胞と細胞がカバーグラスに付着することを可能にするために、少なくとも30〜60分間37℃、2％CO ₂でインキュベートする。
5. **アデノウイルスでトランスフェクションする場合には、メッキのメディアの適切な量のウイルスを希釈し、ウイルス含有培地で皿にプレーティングメディアを交換してください。ウイルスは、37℃で2時間、2％CO ₂細胞上でインキュベートしましょう。**
6. 皿からメッキメディアを取り出して、培養培地と交換してください。
7. カバーガラス上の細胞を乱さないように注意深く毎日培養培地を変更してください。

この手順を使用して、細胞が正常に最大72時間培養した。培養し、GFPトランスフェクトされた細胞の画像を図5に見出すことができる。

3。 MMSYSシステム

1. アーク灯が最初に開始されることを確実にするMMSYSシステムの電源を入れます。
2. MMSYS室の適切な入口と出口（ 図6）にポンプからチューブを接続します。
3. プライムカルシウム緩衝液（B）を有するシステム（ 表2）。
4. APPRを配置室内へのopriatelyサイズのガラスカバースリップと（ 図6E）固定します。最もMMSYS室が22ミリメートル以上25ミリメートルの正方形カバーグラスのいずれかを使用する。あなた室のための適切なカバースリップを決定するためにあなたのMMSYSのユーザマニュアルを参照してください。
5. 小さなエッペンドルフチュー​​ブに細胞溶液500μlを移す。
6. 細胞の小さなチューブに0.5μLたFura2-AM（1μgの/μLのストック溶液）を追加し、それらを5-7分間、室温で暗所にインキュベートすることができます。これは、細胞膜を介した迅速な受動拡散を通じて細胞内への「ロード」のFura2-AMを可能にします。
   1. フラ-2負荷細胞をチューブの底にペレットましょう、とカルシウム緩衝液Bの500μlの過剰フラを洗う
7. 部屋の照明をオフにします。
8. 標準パスツールピペットを用いて、チャンバー（ 図6C）の中心に「ロードされた」細胞溶液1〜2滴（細胞濃度に依存）をドロップすると、細胞がT許すO 5分間カバースリップの上に落ち着く。
   1. チャンバー内の細胞の密度は、単一の非重複細胞は容易にMMSYSデータ取得プラットフォームで表示できるようにすべきである。
9. 慎重にチャンバを通してカルシウム緩衝液（B）を流れ始める。
10. 37℃に室内温度を上げる
    1. 重要：フローが開始されるまで、加熱装置をオンにしないでください。これは深刻なフィードバック熱電対（ 図6A）が損傷することがあります。
11. 接続ワイヤ（ 図6B）を介してチャンバがMyoPacerに接続されていることを確認し、1.5倍の細胞のためのペーシング閾値において細胞を5 Hzのペースを開始。
12. 正しい周波数で打っているセルを選択し、フレーミング開口部に移動します。
13. セル全体がウィンドウの中心になるようにカメラとフレーミング開口寸法を調整して、水平方向、筋節のAPと親。
    1. セル長のために、セルの端に赤と緑（左右）、フォトダイオードの指標を調整します。セルの端の白/黒のコントラストを最適化するためにコントラストを調整します。詳細はIonoptixのマニュアルを参照してください。
14. 明確に定義された筋節を含むセルの領域内にボックスを配置し、パワースペクトル（赤）のピークを最適化するために、ピントを合わせます。また、青色のスムージングウィンドウと黒のコントラスト情報を最適化するために、顕微鏡の明るさを調整します。
15. 赤いパワースペクトル（ピーク）と、可能な限り少し背景をできるだけ多く取り込むために、緑のしきい値バーを調整します。
16. 録音を開始します。
17. 十分なデータが記録された後、一時的に録音を停止し、「一時停止」をクリックして、表示​​ウィンドウのフォーカスや寸法のいずれもが改変されることを保証する、細胞も細胞材料はならないことができるカバースリップの領域に、顕微鏡のステージに移動する見。レン記録のGTHは研究者の実験プロトコルに依存して変化する。
    1. （注）「停止」をクリックすると、録画を終了し、バックグラウンドは、そのセルのために記録することができなくなります。
18. バックグラウンド測定を記録するために「再開」をクリックしてください。
19. 十分な背景が録音を終了するために「停止」をクリックして記録された後。
20. シングル。ZPTファイルでそのセルのすべてのトレースを保存するには、「ファイル>>保存」をクリックします。
21. 十分な細胞が記録されるまで3.20 - を繰り返して3.12を繰り返します。
22. 記録されたデータの分析方法については、IonOptix-MMSYSユーザーマニュアル12を参照してください。野生型心筋細胞の特性は記録されたデータは、図7の中で示されている。

4。パッチクランプ

異なる細胞型パッチクランプ法は、同様にこのジャーナル^25-28に以前に記載されている。そこで我々は、いくつかの評論家に焦点を当てる大人の心筋細胞の正常なパッチクランプ用のアル·パラメータは、我々のプロトコルで説明を使用して単離した。

1. （フィラメントで：ID 0.86ミリメートル外径1.5ミリメートル、 - 10cmの長さ）は、ピペットプラーとホウケイ酸ガラスを使用したピペット溶液（ 表5）で満たされたとき、〜2.0〜3.0MΩ示すピペットを引き出します。
2. 火 - ポーランド優しくナリシゲまたは他の垂直火災ポリッシャーを使用してピペットチップ。パッチピペットの抵抗は、火研磨後2-4ミズーリでなければなりません。
3. コンピュータの電源を入れ、アンプ（たAxopatch 200B）、ADコンバータ（Digidata 1440A、アクソン·インスツルメンツ）とマニピュレーター（MP-285）。ホールセルパッチクランプのために、我々は前述のように標準的なパラメータで始まります。
4. 培養された大人のCMSの、インキュベーターからそれらを削除し、優しくのCMは、室温でPBSでメッキされているカバーガラスを洗う。
5. 穏やかにカバースリップを除去し、倒立顕微鏡（TE、ニコン2上灌流チャンバーに配置し000）。
   1. （吸引用）灌流システムと出口の入口だけのカバーガラスの表面上にあることを確認してください。
6. 適切な細胞外液（ 表5）で灌流を開始します。
7. 新鮮に解離した大人のCMSの、上記のように灌流システムでコラーゲン被覆カバースリップを配置。
   1. 細胞は解決策になりますので、ゆっくりと細胞外液で溶液を交換してください。
8. 修正されたパスツールピペットを用いて（ 図4）、そっと外のバッファに細胞を再懸濁、一定分量を取り、カバースリップの上に置きます。
9. 細胞が4.4のように、灌流を開始する前に10〜15分間添付してみましょう。
10. Microfil（世界の精密機器、28 G）の針を用いて細胞内液と全細胞パッチピペットをバックフィル。気泡がピペットの先端に存在しないことを確認してください。静かに気泡がsurfaに浮くことができるようにタップしてソリューションのCE。
11. 微小電極と内部液との接触があることを保証し、ピペットホルダーに満たされたパッチピペットを取り付けます。
    1. 私たちは、塩化銀の電極を使用していますが、家庭用漂白剤に一晩浸漬することにより、銀線は少なくとも週に一度「塩化物化」の世話をする。
12. そっと風呂電極はバス/細胞外液中に常時浸漬されることを保証する、お風呂にピペットを下げる。この時点でいずれかの液間電位を相殺した。大きな接合電位は、電極上に塩化銀の悪化の徴候である可能性があり。
13. 健康的な円筒形の成人のCMは、顕微鏡で識別され、視野の中心にされています。前述したように、マイクロマニピュレータを移動させて焦点調節の組み合わせが近いパッチピペットの近傍とCMの表面を可能にする。
    1. それらが同じ焦点面に入ると、我々の視覚の組み合わせを使用（たAxopatch 200Bで利用可能）は、細胞と試験パルスのブリダイゼーション。
    2. ピペットの抵抗（ピペットは、細胞の表面に接触していることを示唆する）、および細胞は、円筒形を探し続け半分に減少したら、穏やかな吸引を使用して、ギガオームのシールを確立する。
    3. CMのために、我々は負圧を確立するために、口の吸引を好む。ギガシールの取得に成功した場合、我々は再びホールセルパッチモードにするセルに「侵入」に優しいリズミカルな口の吸引を使用しています。
14. 健康的なCMの典型的な休止電位が-85〜-90 mVと順になっています。ギガシールが得られると、I = 0でpAの電流クランプを使用して、静止膜電位を測定する。
    1. 静止膜電位が脱分極している場合、これは、損傷した細胞やシール不良を示すことができます。
15. CMは、表面積の多い大規模な細胞であるため、細心の注意は、特にW、キャパシタンス補償に支払われる必要があるナトリウムチャネルのような編急速に活性化する電流が検討される必要がある。十分な容量補正は、パルス発生器上で補正設定に内蔵用いて得ることができない場合には、サブスレッショルド電圧と逆極性でのプレパルスを印加する必要がある可能性があり、得られた電流が記録された信号から差し引く。このようなプロトコルを簡単たAxopatchにプログラムされている。
16. 全細胞パッチ·モードが確立されると、平衡化を可能にするためには、15分待って、開始前に電圧または電流クランププロトコルにシールの安定性を確保する。私たちは、これと他の雑誌で、以前に記載されており、詳細な説明は省略する標準プロトコルを使用しています。

結果

棒状、横紋および（自発的に拍動しない）、静止細胞（ 図5A）の成人cardiomyoctyes結果の単離。死んだ細胞は、丸いなりますし、何条線は存在しません。静止状態の細胞を培養し、遺伝子発現（ 図5Bおよび5C）を操作するためのアデノウイルスでトランスフェクトすることができる。培養24時間後、生きた細胞の形態が変化しないが、それでものCa ^{2 +·}

ディスカッション

本稿では、マウスの心臓から大人のCMの成功単離および培養のために必要な技術を説明しています。我々の技術は、上記の方法を用いてCM機能および興奮性のその後の研究を可能にする。大人のCMの機能性を研究するための重要なパラメータは、孤立したCMの健康と品質です。上述したように、我々の技術は、アデノウイルス/レンチウイルスの培養における感染、および細胞興奮性と収縮機能?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Sodium Chloride	Sigma	S7653
Potassium Chloride	Sigma	P9333
Magnesium Chloride	Sigma	M8266
HEPES	Sigma	H3375
Sodium Phosphate Monobasic	Sigma	S8282
D-glucose minimum	Sigma	G8270
Taurine	Sigma	T0625
2,3-Butanedione monoxime	Sigma	B0752
Collagenase B	Roche Applied Science	11088807001
Collagenase D	Roche Applied Science	11088858001
Protease XIV from Streptomyces griseus	Sigma	P5147
Albumin from Bovine Serum	Sigma	A2153
Calcium Chloride	Sigma	C8106
Minimum Essential Media	Sigma	51411C
Albumin solution from bovine serum	Sigma	A8412
L-glutamine	Sigma	G3126
Penicillin-Streptomycin	Sigma	P4333
Insulin-transferrin-sodium selenite media supplement	Sigma	I1884
Cesium Chloride	Sigma	289329
Glutamate	Sigma	G3291
Adenosine 5'-triphosphate magnesium salt	Sigma	A9187
Ethylene glycol-bis(2-amin–thylether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid	Sigma	E3889
Cesium Hydroxide Solution	Sigma	232041
Tetraethylammonium hydroxide solution	Sigma	86643
OptiVisor optical glass binocular visor	Dohegan Optical Company Inc.	N/A
Tissue forceps, 5.5", 1x2 teeth	Roboz Scientific	RS-8164
Moloney forceps - 4.5" (11.5 cm) long slight curve, serrated	Roboz Scientific	RS-8254
Dumont #3 Forceps, Dumostar, tip size 0.17 x 0.10mm	Roboz Scientific	RS-4966
Packer Mosquito Forceps 5" Straight Flat	Roboz Scientific	RS-7114
Micro Dissecting Scissors 4.5" Curved Sharp/Sharp	Roboz Scientific	RS-5917
Micro Dissecting Scissors 3.5" Straight Sharp/Sharp20mm	Roboz Scientific	RS-5907