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要約

記載された比較、定量的プロテオミクスアプローチは、異なる条件下で多タンパク質複合体の組成物への洞察を得ることを目的と遺伝的に異なる菌株を比較することによって実証される。定量分析のためにショ糖密度勾配とは異なる画分の等し​​い体積を質量分析によって混合し、分析する。

要約

導入されたプロトコルは、異なる条件下での複雑な組成物への洞察を明らかにすることによって、チラコイド膜内の多タンパク質複合体の分析のためのツールを提供しています。このプロトコルではアプローチは、遺伝的に異なる株から単離されたコナミドリムシ環状電子流（CEF）に関与するタンパク質複合体の組成を比較することによって実証される。手順は、差動代謝標識（14 N / 15 N）に基づいて、ショ糖密度勾配遠心分離、SDS-PAGE、免疫検出および比較、定量的な質量分析（MS）による多タンパク質複合体へのそれらの分離を行い、チラコイド膜の単離を含む株を分析した。洗剤可溶化したチラコイド膜は、等しいクロロフィル濃度のショ糖密度勾配にロードされます。超遠心分離後、勾配は、質量spectrometによって分析される画分に分離されるRY同体積に基づく。このアプローチは、さらに勾配画内の組成の調査と、特にANR1、CAS、およびPGRL1に焦点を当て、異なるタンパク質の移行挙動を分析することができます。さらに、この方法は、（イムノブロットの結果を確認することにより、さらに、以前の研究からの知見を支持して、以前にCEF-supercomplex例えばPGRL1、FNRなどの一部であると記載されたタンパク質の同定およびPSI-依存性遊走を示しており、 CYT F）。注目すべきことに、このアプローチは、このプロトコルを採用することができ、 例えば、異なる環境条件から単離された多タンパク質複合体組成物の比較分析のために使用される質問の広い範囲に対処するために適用可能である。

概要

植物や藻類のチラコイド膜での光合成のプロセスは、線状および環状モードで機能することができます。リニア電子流（LEF）の間に光化学I（PSI）、光化学系II（PSII）およびシトクロムB 6 / Fは、最終的には 、NADPHとATP 2の生成につながる、NADP + 1を水から電子を移動。対照的に、状態2 3 4及び嫌気的条件等の多様な環境条件下で誘導されることが知られている環状の電子流（CEF）は、バック電子伝達鎖に電子を注入することによって酸化PSIの再減少をもたらす。このプロセスは、チトクロームB 6 / F複合体1の間質側またはプラストキノンプール5のいずれかで行われるとATPを生成しますが、無NADPH 2することができます。

提示されたプロトコルの目的は、質量分析（MS）ベースのm個を実証することである（遺伝的に異なる株と比較することによって例示される）、さまざまな条件の下でこれらの複合体の組成物への洞察を得るためにクラミドモナスのチラコイド膜での多タンパク質複合体の比較、定量分析のためのethod。このアプローチは、寺島らによる刊行物に適用された。2012年にはC言語でのCEFののCa 2 +依存性の調節を示すクラミドモナスは、タンパク質、CAS、ANR1、およびPGRL1 6を含む多タンパク質複合体により媒介される。手順は、比較的重いことにより、標識窒素（15 N）を有する二つの株のいずれかを利用して二つ遺伝的に異なる菌株におけるCEF-supercomplexの組成を分析することによって説明される。簡単に説明すると、プロトコルは、界面活性剤可溶化し、ショ糖密度勾配における光合成複合体の分画、続いてチラコイド膜の調製を含む。勾配の分画後、FRACを選択した二つの株のtionsを混合し、等しい体積に基づいてゲル内消化およびその後の定量的MS分析に続いてSDS-PAGEによって分離されている。

上述したように、CEFは異なる環境条件の下で誘導され、2010年からの出版物は、機能的なCEF-supercomplex Cの状態2ロックされたセルからの隔離を示しています超遠心分離中にショ糖密度勾配上に可溶化されたチラコイド膜を分離することによって行われた、07 ラインハーディ 。岩井ら 7とは異なり、提示されたプロトコルは、C.成長嫌気から、CEF-supercomplexの単離を記載代替手順に従うことによって、 クラミドモナスの文化。これは、チラコイド分離プロトコルにおける変化ならびに可溶化工程及び超遠心分離によるタンパク質複合体の分離に関する差異を含む。現在のプロトコルでは、チラコイド膜バッファは、岩井らによるチラコイド調製のために使用しながら、チュアとBennoun 8によって発表された手順を適用することによって単離される文献 09記載のように、25mMのMES、0.33 Mスクロース、5mMのMgCl 2、1.5mMのNaCl液（pH6.5）を含有した。ここで説明可溶化法が0.9％の界面活性剤の使用に依存しながら可溶化は、岩井および共同研究者の場合には、氷上で30分間、0.7から0.8パーセントの界面活性剤（n-トリデシル-β-D-マルトシド）を用いて行った（nは-ドデシル-β-D-マルトシド（DM-β））と、氷上で20分間だけ実行される。両グループは、それぞれの洗剤で可溶化にミリリットルあたりのクロロフィル0.8mgのを使用していました。このプロトコルの作者が範囲の濃度を使用し、一方、可溶化したチラコイド膜からの光合成複合体を分離するための岩井ら 、0.1から1.3 mのショ糖濃度を適用0.4〜M.最後の差から比べても低い遠心分離速度は、あるEAへrlier出版。

ショ糖密度勾配分画に続いて非イオン性界面活性剤とのチラコイド膜の可溶化は、すでに1980年代から、タンパク質の代謝標識の適用はプロテオミクス分野で普及の方法で、今日7、9月14日まで、至るまで数多くの研究に適用されている。記載されたアプローチは、質量に至る全てのアミノ酸に組み込まれている15 N NH 4 Cl を 、の形の唯一の窒素源として重窒素の存在下で培養することにより、2つの比較した株のいずれかの15 N代謝標識を適用するペプチドのアミノ酸配列に応じてシフトする。 1 MSラン内の14 Nおよび15 Nの混合物を分析する場合、この質量シフトは、各ペプチドの試料の起源を決定するために使用することができ、ペプチドの相対存在量は、相当の相対存在量を表す計算することができる。タンパク質15を ING。

C上の多数の定量的プロテオミクス研究クラミドモナスは、実験条件（ 例えば 、栄養16〜19によるプロテオームの変化や光ストレス20,21）間のプロテオームの変化を分析するために、タンパク質の定義された量を比較した、利用可能です。これらの研究と比較して、現在提示アプローチにおいて試料の等容量を一緒にし、分析する。このセットアップでは、グラデーション内のタンパク質の移行挙動を研究するため、さらに調査した株に対して異なる複合体の組成を分析することができます。

このメソッドは、主に三つのタンパク質に集中して説明する。第一候補は、C.中の光馴化に関与することが示された葉緑体に局在するカルシウムセンサータンパク質のCASで、 クラミドモナス 22。カルシウムは、重要なシグナルであると考えられている最終的に遺伝子発現と細胞生理学23の変化につながるため、様々な生物的および非生物的ストレスに活性化され、それが葉緑体は、CASタンパク質22,24,25を介したシグナル伝達+携帯のCa 2に貢献するかもしれないことが提案された経路のためのイオンをING。第二のタンパク質はANR1（嫌気応答1 6）、Cで無酸素の成長条件下で誘導されることが示されたタンパク質であるクラミドモナス 26。とりわけ、CASならびにANR1はCEF-supercomplexのサブユニットとして同定され、また、逆遺伝学的ア ​​プローチを用いて、それが両方のタンパク質が、このタンパク質複合体の機能的なサブユニットとしての役割を支持し、 インビボ 6 に CEFに機能的に寄与することが実証された。第3のタンパク質は、 クラミドモナス 4,27においてだけでなく、 シロイヌナズナ 5,28にCEFに関与することが示されており、また、IDだったチラコイド蛋白PGR5様1（PGRL1）、ある岩井らの作品にentified。7

ΔPSI29株（対）対野生型（WT）、PSAB遺伝子の欠失を示す、またの一部であるサブユニットIは本質的な光化学系をコードする：このアプローチは、2つの異なる実験の結果を示すことによって提示されるCEF-supercomplex及びWT対A pgrl1ノックアウト株は4。これらの実験のそれぞれについて、15 Nおよび14 N標識株は、比較されている間、CEF-supercomplexの定量的組成物。

プロトコル

1。 クラミドモナスの培養

  1. 以下でクラミドモナスの株を、本研究で使用した：野生型cc124、WTのcw15-arg7（細胞壁欠損およびアルギニン栄養要求）、ΔPSI変異株29とpgrl1ノックアウト株は4。
  2. 全ての株は、トリス-酢酸-リン酸（TAP）で増殖させた培地30、25°Cで20〜50μE/ m 2の秒の連続光強度で120 rpmで振とう。 ΔPSIの文化は、<5μE/ m 2の秒の露光のためにいくつかティッシュペーパーで包まれるべきである。
  3. （それぞれΔPSIおよびWT cc124）ラベルされた株の培養は、7.5 mMの15 N 塩化アンモニウムを含有していた、非標識株（WT cw15-arg7とpgrl1、それぞれ）のための培養は、7.5 mMの14 N 塩化アンモニウムを含有していたのに対し。細胞は、少なくとも4つのGENERAT増殖する必要がフルラベリングとを達成するためのイオンは、指数増殖期に維持しなければならない。
  4. 実験開始の前日に、少なくとも750ミリリットル/株の体積の1×10 6細胞/ mlの密度に細胞をカウントし、希釈する。

不連続ショ糖密度勾配の2種類が以下のプロトコルに記述されていることに注意してください。 光化学スクロース密度勾配は、Takahashi ら 9に記載のチラコイドショ糖密度勾配の （プロトコル2を参照）の前に一晩遠心分離中に単離し、可溶化したチラコイド異なる光合成タンパク質複合体を分離し、その日に調製しなければならないために使用され8は （プロトコル3を参照）チラコイド分離手順で適用される。

2。光化学ショ糖密度勾配の調製

  1. 勾配を注入するための3ストック溶液が必要である。
    1. 2のスクロース
    2. H 2 O中10％のβ-DM
    3. 0.5 Mのトリシン、pH8.0のナトリウム（NaOH）
  2. これらの株式を使用して、次の解決策を準備します。
    濃度： 1.3 M 1.0 M 0.85 M 0.7 M 0.65 M 0.4 M
    2のスクロース 13ミリリットル 10ミリリットル 8.5ミリリットル 7ミリリットル 6.5ミリリットル 4ミリリットル
    10パーセント46;-DM 100μL 100μL 100μL 100μL 100μL 100μL
    0.5 Mトリシン 200μL 200μL 200μL 200μL 200μL 200μL
    H 2 O 6.7ミリリットル 9.7ミリリットル 11.2ミリリットル 12.7ミリリットル 13.2ミリリットル 15.7ミリリットル
  3. 14ミリメートルX 89ミリメートル遠心分離管を使用し、低密度の溶液に対して最も高いスクロース濃度溶液から出発し、非常にゆっくりと勾配を注ぐ。
  4. ソリューションの残りのための1.3および1.0 Mソリューションと2ミリリットルのための唯一の1ミリリットルずつ注ぐ。
  5. 低温室で一晩勾配のままにしておきます。

3。嫌気性誘導とチラコイド膜8の分離

  1. チラコイド膜の分離を開始する前に、4時間アルゴンをバブリングして嫌気条件を誘導する。泡立ちが磁気攪拌棒を培養の一定混合しながらフラスコの培養にガラスピペットを介して行うことができる。
  2. 2,500×gで5分間細胞をペレット化することにより、チラコイド膜の単離で始まり、H1緩衝液中に再懸濁（0.3 Mスクロース、25mMのHEPES（pH7.5）を、5mMのMgCl 2）。
    （チラコイド膜サンプルSHの分離を開始する際に注意してくださいケラチン汚染を避けるために強く推奨している全ての遠心操作は4℃で行われ、タンパク質分解を回避するために氷上に保持し、手袋を扱うことがウルド。）
  3. 2,500×gで、H1緩衝液中で再懸濁し、5分間、細胞をペレット化。
  4. 1,500 hPaの（細胞壁のない株が1つだけの通路を行うための）窒素圧で噴霧器を介して2つの通路を有する細胞を破壊する。
  5. 2,500×gで7分間細胞をスピンダウン。
    （このステップの後、上清をされていない場合、細胞破壊が成功しなかった、薄緑でなければなりません。）
  6. H2緩衝液（0.3 Mスクロース、5mMのHEPES（pH7.5）、10mMのEDTA（pH8.0）中）および32,800 X gで10分間ペレット細胞における細胞を再懸濁。
  7. H3のバッファーに再懸濁細胞（1.8 Mショ糖、5のHEPES（pH7.5）を、10mMのEDTA（pH8.0）に）とポッター（なし緑の粒子がこの作業工程の最後に残っていないはずです）でペレットを均質化する。
  8. 浴槽内のチラコイドショ糖密度勾配を準備します細胞との12ミリリットルH3緩衝層を底部から開始することによりエス（X 89ミリメートル25ミリメートル）は、H4緩衝液（1.3 Mスクロース、5mMのHEPES（pH7.5）、10mMのEDTA（12 mlに中間層を注ぐpH8.0）中）および上部12ミリリットルH5バッファ上（0.5 Mスクロース、5mMのHEPES（pH7.5）、10mMのEDTA（pH8.0）中）。グラデーションを注ぐときには注意が必要と3層の混合を避ける。
  9. H5は、X、G 70700で1時間バッファリングし、遠心チラコイドショ糖密度勾配とのバランス。
  10. チラコイドショ糖密度勾配からチラコイドバンドを外し、適切なボリュームH6バッファー（5のHEPES（pH7.5）に10mMのEDTA（pH8.0）で）でそれらを希釈する。
  11. 20分間37900×gで細胞をスピンダウン。ペレットが固まっていない場合、よりH6バッファは、この遠心分離工程に必要とされる。
  12. 少量H6バッファにチラコイドを再懸濁し、クロロフィル濃度の測定を進める。

4。クロロフィル濃度31の決定

  1. クロロフィル量の決定は、80％のアセトンを用いて行われる。
  2. H6バッファー（希釈1:200）に995μlの80％アセトン及びチラコイドの5μLを混ぜる。
  3. 数秒間ボルテックスない緑の粒子が残っていないし、次に5分間14.1×gでスピンダウンするまで。
  4. 上澄みを取り、それぞれ663.6と646.6 nmおよび750 nmでの吸光を測定します。
  5. 以下の式を用いてクロロフィル量を算出する。
    1. C クロロフィル [mg / mlの] =（0.01225 * E 663.6から 0.00255 * E 646,6）*希釈倍率
    2. C クロロフィルB [mg / mlの] =（0.02031 * E 646.6から 0.00491 * E 663.6）*希釈倍率
    3. C クロロフィル [mg / mlの] = C のChl + C クロロフィルB

5。光化学ショ糖密度勾配のロード

  1. 必要とされているチラコイド、β-DMおよびH6バッファの量を算出各勾配の場合：
    1. 各々の勾配が0.9％β-DM（H 2 O中のβ-DMを溶解）に0.8 mg / mlのクロロフィルと700μLの全容量をロードする必要があり、H6緩衝液を用いて、残りの容積を満たす。
  2. 可溶化のための各グラデーションのチラコイド、β-DMおよびH6緩衝液を用いて異なるアリコートを準備します。
  3. 定期的に（反転）数分おき（可溶化工程）混合しながら氷上で20分間サンプルを残す。
  4. 4℃で10分間、最大速度（14,000×g）で遠心
    （上清は暗緑色である間遠心分離した後、ペレットは小さく、白っぽいでなければなりません。）
  5. 勾配に上清をロードします。
  6. H6バッファーとのバランス、4℃で134470×gで一晩（14時間）で超遠心機を用いたスピン
    （ボイジャーとき、このプロトコルで提示され光化学スクロース密度勾配を利用した光合成複合体の正常な分離が唯一達成されることに注意してください可溶化および複雑な分離のための予測が以前に凍結されてきたチラコイド膜で作業するときにすることは困難であるため、Gたて、チラコイドを単離した。）

6。光化学ショ糖密度勾配の分画

  1. 勾配の写真を撮る。
  2. 針を使用してチューブの底に穴を穿刺し、500μLチューブ内で勾配を分画。あるいは、分画はまた、96ウェルプレート（マイクロプレート）を用いて行うことができる。
  3. マイクロプレートを使用する場合は、675 nmで異なる勾配画分の吸光度を決定する。
    （この工程において、サンプル数週間のために-80℃で保存することができる。）

7。 SDS-PAGEおよび免疫検出

（のみΔPSI対WTの比較のために、ウェスタンブロット分析は、その後のMS分析のための画分を選択することが行われていることに注意してください。実験では、WT対pgrl1 FRアクションは異なる画分の吸光度を用いて選択された。）

  1. 13％SDSポリアクリルアミドゲル32上のWT及びΔPSI勾配から、各分画の別々の30μL。
  2. ANR1（TEF7）26、PGRL1 34、CAS 6、PSIサブユニットPSAD 32とPSIIコアサブユニットD1：以下の抗体を用いたウエスタンブロット解析33を実行します。 1:10,000の希釈して使用する必要があり、D1抗体を除いて、（高感度化学発光検出技術のための）1:1,000の希釈で全ての抗体を使用してください。
  3. 免疫検出の結果に基づいて、WT及びΔPSIためANR1、PGRL1とPSADのピーク画分（ここでは画分はそれぞれ6および13を）取るWT及びΔPSIからの画分6を30μlを混合しからの画分13で同じことを行う製剤及び13％SDSポリアクリルアミドゲル上で再度それらを分離両方。
  4. 対pgrl1 WTの定量的な比較のために、Cを取る異なる勾配画分の吸光度を測定することによって決定し、13％SDSポリアクリルアミドゲル上で分離し、続いて両方のサンプルを30μlを混合としてEF-supercomplex画分。
  5. 室温で又は一晩4℃で2時間、クーマシー溶液でタンパク質バンド（85％亜リン酸、757 mMの硫酸アンモニウム、1.2％クマシーブリリアントブルー、20％メタノール）で染色
  6. 非特異的染色を除去するために、蒸留H 2 Oで数回洗浄
  7. 1ミリメートルゲル片にレーンをカットし、ゲル内消化を進める。
    （代わりに、サンプルは真空遠心機で数分間乾燥させ、ゲル内消化を続行する前に、数週間のために保存することができます。）

8。ゲル内消化（シェフチェンコら 35から改変）

使用直前に、すべての緩衝液および溶液を準備し、アセトニトリル（ACN）を含むバッファのガラス瓶を取ることに注意してください。
注意！ ACNで働くことは有害であるかもしれません。詳細については、からダウンロードできます。http://www.sciencelab.com/msds.php?msdsId=9927335（2013）。

  1. 30秒間のddH 2 O（〜200μL）の> 10倍量のゲル片を洗浄します。
  2. 、振とうしながら15分間25 mMのNH 4 HCO 3300μlのゲル片を培養する液体を除去する。
  3. 振とうしながら15分間（1:1の割合でACNおよび50mMのNH 4 HCO 3を混合することによって準備する）50％ACN中の25mMのNH 4 HCO 3300μLでゲル片をインキュベートし、液体を除去。
  4. ゲル片がまだある場合、クーマシーブルーの大部分が除去されるまで、NH 4 HCO 3、NH 4 HCO 3 / ACN洗浄を繰り返す。
    （クーマシー染色の大部分が除去されるべきであるが、完全にゲル片を脱色する必要はない。）
  5. 5分間のゲル片を脱水し、ACNを100μlを加える。ゲル片を縮小する必要がありますND真っ白に見える。
  6. できるだけ多くのACNを削除し、トリプシン消化を進める。あるいは、サンプルは、数週間-20°Cで保存することができる。
  7. 20 ngの/ 10％μLのトリプシンのACN / 25のNH 4 HCO 3（新たに希釈した）のバンドあたり10から20μl加え、氷上でサンプルを保持します。
  8. 30分後、すべての溶液が吸収されたかどうか確認し、必要に応じて、より多くのトリプシンバッファーを追加します。ゲル片を完全にトリプシン緩衝液で覆われるべきである。サンプルを氷上で保管してください。
  9. トリプシンでそれらを飽和させるために氷上でさらに90分間ゲル片を残す。
    （クリティカルステップ：トリプシンペプチドの収率は、おそらく、ポリアクリルアミドマトリックス中への酵素の遅い拡散により、氷上でのインキュベーション時間の増加に伴って著しく増加することを回避するために、ゲル片を覆う溶液の小過剰を有することが必要であること片。一晩のインキュベーションの間に乾燥した秋。）
  10. 4-6時間、37℃で消化する。必要とする実験のために最大のペプチドの回収、一晩消化する。
  11. 消化後、凝縮されたバッファをスピンダウン。
  12. 5分間の超音波処理管が再びペプチドおよび遠心分離機を溶出した。
  13. 上清を回収し、新しいチューブに移す。
  14. 15分間の超音波槽内の30％ACN / 1％ギ酸（FA）の80μlのペプチド抽出を行う。
  15. 15分間の超音波槽中で30％ACN / 1％のFAの80μlの抽出を行う。
  16. 15分間の超音波槽内の70％ACN / 1％のFAの80μlの抽出を行う。
  17. 遠心分離機再び前溶出液のプール上清。
    （FAは、トリプシンを不活性化し、ペプチドの溶解度を増加させるのに役立つ。）
  18. 完全真空遠心乾燥ペプチド溶液。
    （この時点で、サンプルは、MS分析に進む前に、-20°Cで数週間保存することができる。）
  19. 6μLMS緩衝液（5％ACN、0.1 V / V FA·水）と2-5分間超音波処理中に再懸濁したペプチド。
  20. maximuで遠心サンプルm個の速度で5分間粒状物質を除去する。
  21. 質量分析のために上清を4μlを使用する。

9。 「Proteomatic」とMS-データ解析

データ分析は、オープンソースソフトウェア（http://www.proteomatic.org/でダウンロードすることができます）」Proteomatic」、世代およびMS / MSデータ評価パイプラインの完成、使用することによって可能にするプラットフォームを用いて実施した自由と商用ソフトウェア36。簡単に説明すると、設定が以下に記載される、より詳細な情報が6,26に見出すことができる。

  1. MSデータの同定および定量
    実験からの同定およびタンパク質の定量6,26が記載されているようΔPSI対WTは、それぞれ、OMSSA（バージョン2.1.4 37）およびqTrace 26を用いて行った。次の更新されたパイプラインpgrl1実験WT対からMSデータ解析のために使用した。
    1. OMSSA 37に加えて、タンパク質はまた、Xで特定された！タンデム（バージョン2013年2月1日38）。両アルゴリズムは、オーガスタス·データベース·バージョン10.2だけでなく、NCBIデータベースのBK000554.2とNC_001638.1の参加データベースに対してでJGI クラミドモナス遺伝子モデルデータベースのバージョン4.3を組み合わせることにより、生成されたデータベースに対して検索することによって適用した。
    2. ペプチドのMS 2同定は、標的デコイアプローチ39を用いて行った。各タンパク質のためのおとりはnonproteotypicペプチドの冗長性を維持しながら、ランダムにトリプシンペプチドをシャッフルして作成された。
    3. ペプチドの統計的検証が0.01未満と結果の事後エラー確率（PEP）閾値を使用してソフトウェアqvality（バージョン0.3.3 40）を用いて行ったが5ppmの前駆体の質量公差で濾過した。
    4. OMSSAとXからのペプチド！タンデムランはqTraceで接合し、定量化した次のフィルタステップを適用26：、MS 2の識別を必要とするタンパク質名/グループ情報を追加して、両方の姉妹ペプチドを必要とする。

タンパク質比は、WTとpgrl1からの混合CEF-supercomplex画分に互いに向かって有意に異なっていたか否かを調べるために、統計分析は、SPSSソフトウェア（バージョン21）を適用して行った。チトクロームB 6 / F複合体のサブユニットは、互いに同様のタンパク質FNR、FTSH2およびPSIサブユニットに対するHCF136に対して試験した。すべての4つの反復試験のタンパク質あたりの各走査カウントペプチドの比は、シャピロ·ウィルクス検定で正規分布について試験した。ペプチド集団が正常に（p <0.001）分布していたため、ノンパラメトリック統計を行った。まず、クラスカル·ワリス検定を群間で有意な相違を評価することを印加した。この試験では、有意差を予測する場合にのみ群間sが、さらなる分析は、マン·ホイットニーのU-テストを持つ2つの独立したグループ間の有意差を予測するために実施した。

結果

導入された定量的プロテオミクスのアプローチは、遺伝的に異なる温度でのCEF-supercomplexコンポーネントの比較分析によって実証チラコイド膜内の多タンパク質複合体の組成物を特徴づけることを目的クラミドモナス株 。 。メソッドが正常寺島らにより適用された6記載の洗剤可溶化に続いて、嫌気性成長した培養物からのチラコイド膜の単離を含む。次い?...

ディスカッション

安定同位体標識を用いて、異なる定量的プロテオミクス研究は、過去数年に発表されている。これらの実験では、通常、2つの異なるサンプルは、1つのサンプルが安定同位体で標識された、比較される。その後、二つの試料からのタンパク質またはペプチドは、等しい比率で組み合わされ、一緒になって、さらに48を処理した。このような研究は、多くの場合、アップまたはダウンレ?...

開示事項

著者らは、競合する経済的利害関係を宣言していません。

謝辞

MHが「ドイツ学術振興」（DFG）からの支援を認めるものです。著者 寄付：MHが調査を設計し、KT、JSとMTは、研究を行い、データを分析し、KTとMHが論文を書いた。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Chemicals
Acetic acidAppliChemA0662http://www.applichem.com/home/
AcetoneAppliChemA2300http://www.applichem.com/home/
Acetonitrile Optigrade für LC-MSDiagonal9340Harmful, work with gloves. See protocol text for further precautions.

https://www.diagonal.de/

Ammonium chloride 15NCambridge Isotope Laboratories39466-62-1http://www.isotope.com/cil/index.cfm
Ammonium chloride 14NAppliChemA0988http://www.applichem.com/home/
Ammonium hydrogen phosphate AppliChemA3583http://www.applichem.com/home/
Ammonium sulfate AppliChemA3598http://www.applichem.com/home/
Coomassie brilliant blue R-250Fisher Scientific10041653http://www.de.fishersci.com/index.php/deindex
n-Dodecyl-β-D-maltosideAppliChemA0819http://www.applichem.com/home/
EDTAAppliChemA2937http://www.applichem.com/home/
Formic acid  AppliChemA3858http://www.applichem.com/home/
HEPESAppliChemA3724http://www.applichem.com/home/
Magnesium chlorideAppliChemA4425http://www.applichem.com/home/
MethanolAppliChemA2954http://www.applichem.com/home/
Phosphorous acidAppliChemA0989http://www.applichem.com/home/
Dipotassium hydrogen phosphate AppliChemA1042http://www.applichem.com/home/
Potassium dihydrogen phosphate AppliChemA1043http://www.applichem.com/home/
Sodium hydroxideAppliChemA1551http://www.applichem.com/home/
SucroseAppliChemA1125http://www.applichem.com/home/
TricineAppliChemA3954http://www.applichem.com/home/
TrisAppliChemA2264http://www.applichem.com/home/
Trypsin (sequencing grade modified) and Trypsin bufferPromegaV5111http://www.promega.de/
Equipment
Nebulizer (BioNeb cell disruptor)Glas-Colhttp://www.glascol.com/product/subproduct/id/75
Centrifuge tubes (14 mm x 89 mm) Beckman Coulter331372for preparation of Takahashi style gradients

http://www.beckmancoulter.de/

Centrifuge tubes 25 mm x 89 mm
Beckman Coulter344058for preparation of thylakoid isolation gradients.

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Coulter Avanti Centrifuge J-20 XPBeckman Coulterhttp://www.beckmancoulter.de/
Fuchs-Rosenthal cell couting chamberDiagonal449/72https://www.diagonal.de/
Homogenizer (Potter) 50 ml Fisherbrand10618242http://www.de.fishersci.com/index.php/defisherbrand
Pistil for homogenizerFisherbrand105252220http://www.de.fishersci.com/index.php/defisherbrand
Ultracentrifuge (Optima XPN-80 Ultracentrifuge)Beckman Coulterwebsite: http://www.beckmancoulter.de/
Other
Antibodies Agriserahttp://www.agrisera.com/en/index.html

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