ディープシングルセルRNAシーケンシングのための1つの成人マウス脳半球からの領域特異的ミクログリアの分離

要約

成体マウス脳半球の異なる解剖領域からミクログリアを分離するためのプロトコルを提供し、続いて全長転写物の深い単一細胞RNAシーケンシングのための半自動化ライブラリ製剤を提供する。この方法は、健康と疾患におけるミクログリアの機能的不均一性を解明するのに役立ちます。

要約

中枢神経系の常駐マクロファージとして、ミクログリアは脳の発達と恒常性を積極的に制御し、その機能不全がヒト疾患を駆動する可能性がある。恒静性ミクログリアの分子シグネチャや、環境刺激に応じた遺伝子発現の変化を明らかにするために、かなりの進歩が見られた。単一細胞ゲノム方法論の出現と成熟により、異種ミクログリアは、異なる発達および病理学的条件において果たす多様な役割の根底にある可能性がますます認識されています。このような不均一性のさらなる解剖は、目的の所定の領域からミクログリアを効率的に分離することによって達成され、続いて個々の細胞の敏感なプロファイリングが行われる。ここでは、単一の成人マウス脳半球における異なる脳領域からのミクログリアの迅速な分離のための詳細なプロトコルを提供する。また、プレートベースのディープシングルセルRNAシーケンシングにこれらのソートミクログリアを使用する方法も示します。この方法の適応性を他のシナリオに議論し、大規模な研究に対応するためのシステム改善のためのガイドラインを提供する。

概要

ミクログリアは、全神経細胞の5%−10%を表し、中枢神経系(CNS)1全体に散在するマクロファージである。血液脳関門の背後で保護され、健康な成人の脳の典型的なミクログリアは、急速に拡張し、毛陰腫のニューロンや他のグリア細胞と相互作用するために後退する多くの微細なプロセスを含んでいます。ミクログリアはまた、特定の発達段階の間、または傷害および^{疾患1、2、3、4}における免疫上の課題に関連する貪食性形態を採用することができる。最近のエキサイティングな発見は、ミクログリアが脳由来または病理学的シグナルに対して決して受動的な傍観者ではなく、脳の発達と恒常性を制御する上で極めて重要な役割を果たすことを明らかに示^{している。}ミクログリアのより多くの機能が解明されるにつれて、TREM2のような多くの神経変性疾患リスク遺伝子がミクロ^{グリア5、6、7}によって主にまたは排他的に発現されることを示したヒト遺伝学研究によって興奮がさらに促進される。開発における彼らの意義ともっともらしい疾患駆動の役割を考えると、神経変^{性疾患1、8}の新しい治療標的を見つけることを期待して、近年、微小グリア遺伝子の調節と機能の理解に向けて多大な努力が払われている。

RNAシーケンシング(RNA-seq)は、細胞型特異的遺伝子発現の偏りのない特徴付けを可能にし、これにより科学者が高密度^{細胞ネットワーク7}における遺伝子機能を調査するよう導く。RNA-seqは、主にバルクサンプル上で行われていたが、他の神経細胞および免疫^細胞9とそれらを区別する恒静性微小グリア遺伝子シグネチャの発見につながった。しかし、このようなアプローチは、ミクログリア、特に開発中に一過性に存在するミクログリア間の分子的および機能的な違いを見落とす可能性があり、老化や疾患に関連する。実際、単一細胞RNA-seq(scRNA-seq)は、様々な^{文脈2、3、10}においてミクログリアの不均一性を以前に過小評価したことを明らかにすることによって、フィールドに革命をもたらした感度と分解能を提供する。さらに、CNS循環界面に他の同様の免疫細胞が存在するため、scRNA-seqは、これらの関連細胞を分離し、機能的に解剖するための新しいツールの設計を助ける情報を提供^する。

scRNA-seqプラットフォームの多様な配列が発明され、それぞれが特定の^{アプリケーション12}に適しています。一般に、10xゲノミクスのような液滴ベースの方法は、各実行で配列された数千個の細胞とのスループットが高く、広範な分類を必要とする混合細胞集団を含む可能性のある入力に対する選択性が低くなります。プレートベースの方法は、より高い感度と読み取り深^さ13、14を提供し、通常、微妙な違いやまれなトランスクリプトを明らかにするために、細胞ソートから特定の集団を対象とします。ミクログリア細胞の小さな割合、特に開発または疾患関連のサブ集団を考えると、すべてのCNS細胞型の中で、ミクログリアを特定の目的領域から単離し、それらの異質性を理解するために深く、全長の転写情報を得ることがしばしば望ましい。

ここでは、半自動化されたプレートベースのライブラリ調製手順に従って単一細胞(またはバルク)RNA-seqに使用される単一半球から解剖された異なるマウス脳領域からミクログリアを分離する方法について詳しく説明します。その後、他の半球を組織学的検証に使用できます。以前に公開された^方法9から合理化されたこの絶縁プロトコルは、少量の出発物質からの歩留まりを最大化し、一方で内因性微小グリア遺伝子発現プロファイルを維持することを目的とする。蛍光活性化細胞選別(FACS)を使用して、ミクログリア(または対象の他の関連免疫細胞)を96ウェルプレートに濃縮し、ライブラリ調製用試薬の量を小型化してスループットを向上させます。我々は、他のプレートベースの戦略が適用される可能性があるが、この敏感なscRNA-seqプラットフォームを強調する。この方法は、損傷や疾患病巣などの他の解剖組織からミクログリアを分離するために容易に適応することができ、マウスの年齢は、ほぼすべての出生後段階にわたって変化し得る。単一細胞トランストランスクリプトミクス研究のための局所ミクログリアの効率的な分離は、健康および疾患におけるその機能のより良い理解を促進する。

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プロトコル

げっ歯類に関するすべての手順は、スタンフォード大学のガイドラインに準拠し、国および州の法律およびポリシーに準拠しています。すべての動物の手順は、スタンフォード大学の実験動物ケアに関する行政パネルによって承認されました.

注:すべてのソリューションおよびバッファー構成は、材料の表に記載されています。

1. 細胞分離の日の準備

1. 培地A(50mL)、磁気活性化細胞選別(MCS)緩衝液(30mL)、FACS緩衝液(25mL)、リン酸緩衝生理食塩水(PBS;30mL)、DNase(320μL)、およびRNase阻害剤(30°L)の氷上で冷却します。
   注:ここで提供される体積は、単一のマウス脳半球の4つの脳領域(例えば、皮質、小脳、海馬および線条体)からミクログリアを分離するのに十分である。より多くの組織を使用する場合はスケールアップします。
2. 4つのきれいな2 mLダウンスホモジナイザーを氷の上に置き、DNaseの80°L(12,500単位/mL)と5μLのRNase阻害剤を持つ培地Aの2 mLを各Dounceホモジナイザーに加えます。ピストンを15 mLチューブで冷やします。
3. 組織採取のための脳領域を持つ4つの6 cmペトリ皿にラベルを付け、氷の上の各皿に冷たい媒体Aの200°Lを加える。解剖用の6cmペトリ皿に約5mLの培地Aを加えます。
   注:使用する前に、すべての試薬が無菌でRNA用途に適していることを確認してください。ベンチおよび解剖ツールは清潔で、RNase除染液(材料のテーブル)でスプレーする必要があります。

2. 脳領域解剖

注:この手順は、約 30 分かかります。

1. 400-500 μLのケタミン/キシラジン(24 mg/mLケタミンおよび2.4 mg/mLキシラジン)を成人期マウス(>1ヶ月)の腹腹に注入する。
   注:ここでは男性マウスを使用してイラストを使用しますが、どちらかの性別が適しています。
2. 5分待ってから後足をつまんで、引き込みの欠如を確認します。
3. すぐに26 G x 3/8針を使用して、目に見える血液が無くなるまで20-30 mLの氷冷PBSで心筋灌流を行います。
4. 外科的なはさみでマウスを切り落とす。小さなはさみを使って皮膚を切り開いて頭蓋骨の下を露出させ、矢状縫合糸、ラムドイダル縫合糸、冠状縫合糸を切ります。鉗子を使用して、組織を損傷することなく頭頂骨と頭頂骨の両側を引き抜き、脳を媒体Aで解剖ペトリ皿に慎重に移動させる。
5. プレチルドブレードを使用して、中間線を通って脳を2つの半球に切断します。
   注:単一の半球からここで説明する4つの脳領域は、単一細胞またはバルクRNA-seqアプリケーションのための十分な数のミクログリアを生じる。他の半球は、その上の検証で免疫ヒストケミストリーまたはRNAに使用することができる。
6. 皮質葉と脳幹から小脳を#55鉗子で分離し、組織をコレクションペトリ皿に移す。
7. #55鉗子を使用して、海馬と線条体を皮質から慎重に解剖し、各組織をコレクションペトリ皿に移します。

3. 機械組織解離

注:細胞や試薬は、染色工程中以外は常に冷却してください。この手順は、約 30 分かかります。

1. 各脳組織をカミソリの刃で切り刻み、<1 mm³の細かい部分に入れる。
2. 1 mL ピペット (先端を切り取ったもの) を使用して、組織片を事前に冷却された Dounce ホモジナイザーに移し、それぞれに DNase および RNase 阻害剤を含む培地 A の 2 mL を含みます。
3. 6-10フルストロークのためにピストンをゆっくりとねじり出して組織を均質化し、目に見える塊が存在しないまで。
   注:ドーピングは、ニューロンや他のほとんどのグリア細胞を殺すが、むしろそのままのミクログリア細胞を残します。不十分と過度の作業の両方が細胞の低収率につながることができます。.
4. 解一解裂した組織を70μmのストレーナーを通して50 mLの管に移す。
5. 各Dounceホモジナイザーとピストンを合計6mLのコールドミディアムAですすり、同じストレーナーを通してリンス溶液を対応するチューブに濾過します。
6. 単一細胞懸濁液(各約8mL)を15mLの円錐管に移し、400 x gで遠心分離機を4°Cで4°Cで5分間、ブレーキ= 5で転送します。

4. ミエリン除去

注:この手順は、約 60 分かかります。

1. 磁気セパレータ(材料表)に1つの大きな枯渇(LD)カラム(皮質の場合)と3つの大きな選択(LS)カラム(他の3つの領域の場合)を準備します。MCS バッファを 3 mL で各カラムにすすいでください。
2. 遠心分離が終了したら、ピペットアウトし、ペレットを邪魔することなく上清を廃棄します。皮質および小脳組織の場合、1.8μLのRNase阻害剤を用いてMCS緩衝液の850μLで細胞を再中断する。海馬組織および線条体組織の場合、0.9 μLのRNase阻害剤を用いてMCS緩衝液の400μLで細胞を再サスペンドする。
   注:カラム(LD対LS)および懸濁液に使用される体積は、組織中に存在するミエリンの量に基づいて最適化される。他の脳領域がアッセイされた場合、これらの状態は、組織の大きさとミエリンがどれくらい存在するかについて調整する必要がある。ミエリン除去の有効性は、ステップ4.9で推定することができる。
3. 皮質と小脳から細胞にそれぞれ100μLのミエリン除去ビーズを加え、海馬と線条体から細胞にそれぞれ50μLのミエリン除去ビーズを加えます。
4. 細胞をビーズと軽く混ぜ、氷上のチューブを10分間インキュベートします。
5. 皮質細胞を含むチューブの体積をMCSバッファーで2mLに、その他すべてのmLに持ち込みます(すなわち、皮質細胞に1mL、海馬細胞と生体細胞に500μLを加え、小脳細胞に緩衝液を追加する必要はありません)。
6. カラムがリンスバッファを空になったら、各カラムの下に15 mLチューブを置きます。皮質細胞(2 mL)をLDカラムにロードし、他のすべての細胞(それぞれ1 mL)をLSカラムにロードします。直ちに1mLのMCSバッファーを使用して、元のチューブを洗浄し、対応するカラムに溶液をロードします。
7. LD カラムを MCS バッファーの 1 mL で 1 回洗浄し、各洗浄を 1 mL の MCS バッファーで各 LS カラムを 2 回洗浄します。洗浄中にフロースルー溶液を収集し続けます。
8. 35μmのストレーナーキャップを通して丸底FACSチューブにセルをフィルタリングします。
   注:各チューブは、ミエリンを枯渇させた単一細胞懸濁液の約4 mLを収集する必要があります。
9. 必要に応じて、細胞懸濁液の10 μLを取り、0.4%トリパンブルー溶液の10°Lと混合します。10倍の明視野顕微鏡で細胞を調べ、収率、生存率、残留ミエリンのレベルを推定します。
   注:準備を成功させるには、ミエリンの破片をほとんどまたはまったく含めずに、90%以上の生細胞(形を丸くし、青色の染料を除く)を生成する必要があります。
10. FACSチューブ内のペレットセルは400 x gで、ブレーキ= 5で5分間。ゆっくりと上清を注ぎ、ティッシュペーパーにチューブの端をダブします。FACSバッファーの300°Lで各チューブ内のセルを再サスペンドします。
    注:MCS選別が好ましい場合、CD11bビーズは、ミエリン除去後にミクログリアおよび他の骨髄細胞を選択するために使用することができる。これらの細胞は、その後、非プレートベースのscRNA-seqだけでなく、バルクRNA-セクに使用することができます。この代替アプローチの注意点は、CD11bビーズは、この抗原に対しても陽性である他の関連免疫細胞からミクログリアを分離しないことである。

5. 蛍光活性化細胞選別用染色

注:この手順は、約 40 分かかります。

1. マウスFc受容体ブロック試薬(材料表)を各チューブに5μL添加します。氷の上で5分間インキュベートします。
2. CD45-PE-Cy7 を 1 μL、CD11b-BV421 を各チューブに 1 μL 加えます。
   注:他の共役フルオロフォアを有する抗体が使用され得る。恒良性ミクロ^グリア9の特定のマーカーであるTMEM119に対する抗体も含めることができますが、特定のミクログリア亜集団がTMEM119表面発現を失う可能性があるため、CD45およびCD11bと一緒に使用することをお勧めします。
3. 室温(RT)で10分間シェーカーのチューブをインキュベートします。
4. 2 mL の FACS バッファーを追加して洗浄します。
5. ペレット細胞を4°、400 x gで5分間ゆっくりと流し出し、チューブの端をティッシュペーパーに取り付けます。RNase阻害剤の1μLとヨウ化プロピジウムの0.5 μL(PI、1:1,000希釈)を用いて、400μLのFACS緩衝液を使用して各チューブ内の細胞を再サスペンドします。

6. インデックス FACS ソート

注:この手順は~1時間かかるはずです。

1. 標準的なFACS手順に従って、散乱(破片を除く)、単一細胞、生細胞(PI陰性)、ミクログリアおよび骨髄細胞(CD45+、CD11b+)に基づいてゲートを描画する。
   注:典型的なマイクログリア細胞は、血管周辺および髄度マクロファージなどの他の境界関連マクロファージと比較して低レベルでCD45を発現し、したがってCD45低CD11b+にゲーティングすることは、これらの古典的なミクロ^{グリア1、2}における遺伝子発現プロファイルの焦点であるならば十分であるべきである。しかしながら、ミクログリアの特定のサブセットは、より高いCD45発現を有する可能性があり、これは発達中または疾患状態において特に当てはまる。微小グリア遺伝子発現の偏りのない分析を確実にするために、CD45高およびCD45低免疫フェノタイプは、インデックスソート設定とシーケンシングおよび下流解析のために収集された両方の集団を通じて記録することができる。さらに、TMEM119表面発現は、恒静性微小グリア集団を標的とするために使用され得る(ステップ5.2を参照)、CD45レベルおよびシーケンシング結果と共に分析する。
2. 単一ミクログリア(100μmノズル付き)を96ウェルポリメラーゼ連鎖反応(PCR)プレートにソートし、それぞれ4μLのリシス緩衝液を含む(詳細は公開された^{プロトコル14}を参照)。
   注:外部RNA制御コンソーシアム(ERCC)RNAスパイクインミックス(材料テーブル)は、品質管理および正規化目的のために、lysisバッファに1:2.4 x 10⁷で追加^{することができます。}
3. ベンチトップ遠心分離機を使用してプレートとスピンダウンを簡単にボルテックスします。
4. すぐにドライアイスでサンプルを凍結します。プレートは、ライブラリの準備ができるまで-80°Cで保管してください。
   注:あるいは、バルクRNA-セクのRNA抽出バッファーを用いて、より多くの細胞を1.5mLチューブに回収することができる。著者の経験によると、3,000細胞は、公開された^{プロトコル2、14}に続く良質のライブラリを生成するのに十分です。

7. 単一細胞RNAシーケンシングライブラリの準備

注:ここで、公開された^{プロトコル14}は、液体処理ロボティクスおよびいくつかの改変を助けてscRNA-seqライブラリを生成するために続く。この記事では、手順について簡単に説明し、相違点を強調します。4枚のプレートを同時に処理するには約2.5日かかります。

1. 氷上でプレートを解凍し、オリゴ-dT30VNプライマー(リシス緩衝液中)で逆転写を行い、サーマルサイクラーでcDNAを生成する(表1):42°C 90分;70 °C 5 分;4 °Cホールド。次に、PCRマスターミックスとin situ PCR(ISPCR)プライマー(材料テーブル)と次のPCR条件を使用して、最初に追加のエキソヌクレアーゼ消化ステップ(表2)でcDNAを増幅します。95 °C 3 分;98 °C 20 sの 23 サイクル, 67 °15 s, 72 °C 4 分;72 °5 分
2. 井戸当たり18μLの磁気ビーズ(0.7:1比)を用いてcDNAを精製します。磁気スタンドでプレートを5分間インキュベートし、作りたての80%エタノール、毎回80°Lでサンプルを2回洗浄します。プレートを15〜20分間乾燥させた後、ウェルあたり20μLの溶出緩衝液でcDNAを溶出する。
   注:品質管理には、フラグメントアナライザ(高感度次世代シーケンシング[NGS]フラグメント分析、1-6,000 bp)を使用してcDNAのサイズ分布と濃度を確認し、さらに500~5,000 bpのスミアを持つサンプルのみを処理し、0.05 ng/μLを超えます。
3. ライブラリを生成するには、ナノリットルピペットマシンの助けを借りて、384ウェルプレートのライブラリ調製キット(材料テーブル)からTn5タグメント試薬の1.2 μLを各cDNAサンプルの0.4μLを55°Cで10分で混合します。
   注:ここでは、推奨反応量の1/12.5(5μLサンプルおよび15μLのタグメント試薬)を添加し、コストを削減し、スループットを向上させる。ナノリットルピペットマシン(材料のテーブル)は、試薬(このと次のステップ)を384ウェルプレートとの間で転送するために使用されます。
4. 0.4 μLの中和緩衝液を加えて、RTでのタグメント反応を5分間停止します。
5. 384 個のインデックス (材料表、0.4 μL フォワード、0.4 μL リバース)、PCR ミックスの 1.2 μL をサンプルに追加し (それぞれ 2 μL)、次の条件を使用してライブラリを増幅します。95 °C 30 s;95°C 10s、55°30 s、72°1分の10サイクル;72 °5 分
6. すべての個々のライブラリ(それぞれ1μLを取る)を同じ384ウェルプレートからプールし、磁気ビーズ(材料表、0.7:1比)を使用して最終的なプールされたライブラリを精製します。
7. 蛍光計 (材料表)を使用して濃度を測定し、バイオアナライザ (材料表) を使用して、シーケンシングの前にプールされたライブラリのサイズ分布を調べます。シーケンスの深さをセルあたり 100 万の生の読み取り値に設定します。
8. 標準的なバイオインフォマティクス手順に従って、シーケンシング読み取りをフィルタリングおよびトリムし、アライメント²を実行します。カウント テーブルとメタ データを入力として使用し、Seurat パッケージ¹⁵を使用してクラスタリング分析を実行します。

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結果

このプロトコルは、1人の成人の浸透した脳半球において異なる脳領域からミクログリアを分離およびソートする方法を記述し、続いてscRNA-seqを行う。私たちは、単一の細胞懸濁液を作成するために、またミクログリアを豊かにするための最初のステップとして、ドーニングを使用しています。不十分または過度の実行は、収量を減少させます。さらに、大人のマウスの脳はミエリンの高レベ...

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ディスカッション

ミクログリアは、CNSの他の細胞タイプと積極的に相互作用し、環境刺激に非常に敏感です。単離過程における炎症反応および遺伝子発現の異常変化を最小限に抑えるために、このプロトコルは以前に公開された^方法9から合理化され、ミクログリアを単一マウス脳半球の複数の領域から並列に分離するのに適している。組織および試薬は冷温に保たれ、実験は限られた組織サ...

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資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
5 M Betaine	Sigma-Aldrich	Cat# B0300-5VL
10 mM dNTP mix	Thermo Fisher Scientific	Cat# R0192
0.5 M EDTA, pH 8.0	Thermo Fisher Scientific	Cat# 15575020
10X Hanks’ Balanced Salt Solution	Thermo Fisher Scientific	Cat# 14185-052
1 M HEPES	Thermo Fisher Scientific	Cat# 15630080
1X KAPA HIFI Hotstart Master Mix	Kapa Biosciences	Cat# KK2602
5 mL Round Bottom Polystyrene Tube, with Cell Strainer Cap	Corning	Cat# 352235
AATI, High Sensitivity NGS Fragment Analysis Kit (1 bp – 6,000 bp)	Advanced Analytical	Cat# DNF-474-1000
Bovine Serum Albumin	Sigma Aldrich	Cat# A8806
DNase I	Worthington	Cat# LS002007	Working solution: 12500 units/ml
DTT, Molecular Grade	Promega	Cat# P1171
ERCC RNA Spike-In Mix	Thermo Fisher Scientific	Cat# 4456740
Fetal Bovine Serum	Thermo Fisher Scientific	Cat# 10437-028
Illumina XT Index Kit v2 Set A (96 indexes)	Illumina	Cat# FC-131-2001
Illumina XT Index Kit v2 Set B (96 indexes)	Illumina	Cat# FC-131-2002
Illumina XT Index Kit v2 Set C (96 indexes)	Illumina	Cat# FC-131-2003
Illumina XT Index Kit v2 Set D (96 indexes)	Illumina	Cat# FC-131-2004
Lambda Exonuclease (5 U/μl)	New England BioLabs	Cat# M0262S
Mouse Fc block	BD Pharmingen	Cat# 553142
Myelin removal beads	Miltenyl Biotec	Cat# 130-096-433
Nextera XT DNA Sample Prep Kit	Illumina	Cat# FC-131-1096
NextSeq 500/550 High Output Kit v2.5 (150 Cycles)	Illumina	Cat# 20024907
PBS (10X), pH 7.4	Thermo Fisher Scientific	Cat# 70011044
PCRClean DX beads	Aline Biosciences	Cat# C-1003-50
Propidium Iodide	Thermo Fisher Scientific	Cat# P3566	Staining: 1:1000
Qubit dsDNA HS Assay Kit	Thermal Fisher Scientific	Cat# Q32851
Rat monoclonal anti mouse/human CD11b, Brilliant Violet 421 (clone M1/70)	BioLegend	Cat# 101236; RRID: AB_11203704	Staining: 1:300
Rat monoclonal anti mouse CD45, PE/Cy7 (clone 30-F11)	Thermo Fisher Scientific	Cat# 25-0451-82; RRID: AB_469625	Staining: 1:300
Recombinant RNase Inhibitor	Takara Bio	Cat# 2313B
SMARTScribe Reverse Transcriptase (100 U/μl)	Clontech	Cat# 639538	Containing 5x First strand buffer
Oligonucleotides
0.1 μM ISPCR Oligo: 5' - AAGCAGTGGTATCAA CGCAGAGT-3'			(Picelli et al., 2014)
Oligo-dT30VN primer: 5' - AAGCAGTGGTATCAACGCA GAGTACT 30 VN-3'			(Picelli et al., 2014)
TSO 5' - AAGCAGTGGTATCAACGCAGA GTACATrGrG+G-3' ("r" is forribobases and "+" is for an LNA base)			(Picelli et al., 2014)
Solutions
FACS buffer			Recipe: sterile-filtered 1% FBS, 2 mM EDTA, 25 mM HEPES in 1X PBS
MCS buffer			Recipe: sterile-filtered 0.5% BSA, 2 mM EDTA in 1X PBS
Medium A			Recipe: 15 mM HEPES, 0.5% glucose in 1X HBSS without phenol red
Plates
384-well Rigi-Plate PCR Microplates, Axygen Scientific	VWR	89005-556
Hard-shell 96-well PCR plates	Bio-Rad	HSP9631
Others
Dumont #55 forceps	Fine Science Tools	11295-51
Dounce homogenizer, 2 ml	Wheaton	357422
Large depletion column	Miltenyi Biotec	130-042-901
Large selection column	Miltenyi Biotec	130-042-401
MACS MultiStand	Miltenyi Biotec	130-042-303
QuadroMACS Separator	Miltenyi Biotec	130-090-976
RNAzap	Thermo Fisher Scientific	AM9780
Strainer (70 μm)	Falcon	352350
Equipment
BD FACSAria II	BD Biosciences	http://www.bdbiosciences.com/
Bioanalyzer	Agilent	2100
Fragment Analyzer	Agilent	5300
Mosquito HTS nanoliter pipetting robot	TTP Labtech	https://www.ttplabtech.com/
Qubit 4 Fluorometer	Thermo Fisher Scientific	Q33226