共焦点顕微鏡による単細胞自然蛍光シグネチャの再構築

要約

ここでは、3次元空間に分布する全ての個々の生細胞から自然な細胞蛍光シグネチャ(すなわち細胞自家蛍光)を光学的に抽出およびカタログするためのプロトコルが提示される。この方法は、細菌、真菌、酵母、植物、および動物からの細胞を含む単一細胞分解能で、多様な生物学的系の自然蛍光シグネチャを研究するのに適しています。

要約

ここで説明するのは、共焦点反射顕微鏡支援単一細胞自然蛍光分析(CRIF)であり、3次元(3D)空間に分布する集団内の各個体の生細胞からの自然な細胞蛍光シグネチャを再構築するための低侵襲的な方法である。細胞の自然蛍光シグネチャは、細胞内の様々な生体分子によって放出される蛍光シグナルの集合体です。これまでの研究では、自然蛍光シグネチャは、様々な細胞特性と生理学的状態の違いを反映し、細胞の特性評価と同定のための豊富な情報源であることを確立しました。自然蛍光シグネチャは、伝統的に母集団レベルで分析されてきたが、単細胞レベルではクローン培養を必要としない。CRIFは、個々の細胞からの蛍光シグナルの3D分解能および/または選択的抽出を必要とする研究に特に適しています。蛍光シグネチャは細胞の自然な性質であるため、CRIFは、無傷および単一細胞のタイプおよび/または生理学的状態のタグフリー予測にも適しています。この方法は、異種集団における各単一細胞の表現型を、細胞タグ付けなしで顕微鏡下で自己蛍光シグネチャによって直接評価することができる、合理化された細胞分析のための強力なツールであり得る。

概要

セル¹内の多様な生体分子は自己蛍光シグナルを放出し、細胞の自然蛍光シグネチャはこれらのシグナルの集合体から成る。このシグネチャー蛍光は、様々な細胞特性および生理学的状態の違いを反映しています。自然な蛍光の分析は、低侵襲であり、完全な細胞破壊に軽度の代謝修飾から痕跡の範囲を残す伝統的な、より侵襲的な微生物学的プローブを補完することができます。DNAや細胞内容抽出^2,3、蛍光インストハイブリゼーション⁴、および蛍光レポーター遺伝子のゲノムへの導入は、細胞の種類や生理学的状態の決定に有効であるが、一般的には細胞の操作または侵襲的なタグ付けのいずれかが必要である。

バルク微生物培養懸濁液^5,6、活性汚泥⁷、哺乳動物組織^8,9、および哺乳動物細胞^1,10を含む様々な生きた微生物コロニーの自然な蛍光の研究は、自然な蛍光分析が細胞型および生理学的状態のタグフリー分析を促進することを示した。自然蛍光シグネチャは、従来、単細胞レベルではなく集団レベルで分析されてきたため、クローン培養が必要です。これに対し、このコンフォーカル・レンレクシス法は、コンフォーカル・レンレクシス法を支援する単細胞中華離性の分析(CRIF)技術¹¹¹を、個々の生きた微生物細胞の自然な細胞蛍光シグネチャを再構成およびカタログ化する。さらに、CRIFは、3次元(3D)空間に分布する集団内の単一の微生物細胞の自然蛍光シグネチャを体系的に照合することができます。

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プロトコル

1. サンプルの調製

1. グラススライドに、厚さ1mmのシリコーンガスケットとウェルを置きます。
2. シリコーンガスケットのウェルに厚さ0.8%(w/v)のアガローススラブを1mm入れる。
3. 任意の微生物細胞培養物の細胞密度を600 nm(_OD660)=1.0の光学密度に希釈します。
4. アガローススラブに5μLの細胞懸濁液を置きます。
5. ガラスカバースリップでやさしく覆います。

2. 顕微鏡のセットアップ

注意:CRIF技術は、共焦点反射顕微鏡(CRM)と多チャンネル共焦点顕微鏡を組み合わせたものです。CRMは、細胞の自然な蛍光から独立している細胞形態と空間局在化のための情報源として機能します。多チャンネル共焦点顕微鏡は、細胞の自然蛍光のスペクトル情報を提供します。以下のプロトコルにおいて、CRMまたは共焦点蛍光顕微鏡で取得した任意の画像は、それぞれCRM画像または多チャネル共焦点顕微鏡画像と呼ばれる。

1. 反射スペクトルチャンネルを持つ共焦点顕微鏡を、光増倍管(PMT)またはGaAsP検出器に接続します。
   注: これらの設定は、いくつかの製造元から入手できます。
2. 顕微鏡に十分な倍率を持つ高い数値開口(NA)の目的を装備します。
   注: 細菌細胞の解析には、NA > 1.4 の 63x の目的が推奨されます。
3. 細胞の形態を可視化するために入射光の細胞散乱に依存するCRMに対応するために、半反射ミラー(例えば、NT 80/20)を顕微鏡に装備します。
4. 多チャンネル共焦点顕微鏡では、顕微鏡に二色性ミラーを装備します。たとえば、405、458、488、488、488、514、543、または633 nmのexの場合は、MBS InVis405、MBS458、MBS458/514、MBS488/543/513、またはMBS 488/543/633ビームスプリッターを使用します。
5. レーザーパワーメーターを使用して、励起波長ごとに照明強度を調整します。励起波長を通して一定の顕微鏡の下で出力を保つ(例えば、63xの目的で50 μWを使用)。

3. 画像取得

1. 顕微鏡ソフトを使用してピンホールサイズを1 AUに設定します。
2. 各励起波長のピクセルのドウェル時間(すなわち、走査速度)を設定します。
   注: ピクセルの長い時間が長すぎると、セルに損傷を与える可能性があります。細胞への光の損傷を最小限に抑えるために、過度に長いピクセルのドウェル時間を避けてください。細菌サンプルの場合、ピクセルドウェルタイム<55.6 μs/^μm2 (顕微鏡下での放射出力が〜17μW/^cm2の場合)は、通常、増殖阻害を避けるために適しています。このパラメータは、生物や実験の設定によって異なる場合があります。
3. スキャンの解像度を設定します。細菌などの小さな細胞の場合は、1,024 x 1,024のスキャンエリアを使用してください。
4. 対象領域がカバーされるように Z スキャン範囲を設定します。
   注:アガローススラブに分布する細菌および酵母細胞サンプルの場合、Zスキャン範囲は通常〜15μmで十分です。
5. スキャン解除された検出器を設定して、可視波長範囲(例:416~691 nm)をキャプチャします。8-10 nm のスペクトル ウィンドウを使用します。
6. 蛍光画像のZスタックを作成するために、長いから最短の励起波長までのシーケンスで多チャンネル共焦点顕微鏡画像を取得します。
7. CRMイメージを取得します。
8. 取得したイメージを 16 ビットの TIFF ファイルとしてディレクトリに保存します。名前付け規則 XXXcYYzZZ を使用してファイルに名前を付けます.tif XXX は励起波長、YY は検出チャネル番号、ZZ は Z スライス番号、"c"と "z" はそれぞれ検出番号と Z スライス番号のプレフィックスです。
   1. 例えば、多チャンネル共焦点顕微鏡画像が励起波長405nmで撮影された場合、検出器アレイの^第1検出器チャネル、およびZスタックの^第5のスライスである場合、その名前は「405c01z05.tif。CRM イメージの場合は、XXX の代わりに文字列 "CRM" を使用します ("CRMc01z05.tifなど)。
      注: 2D または 3D セグメンテーションが画像データに最適かどうかを決定します。小さな細胞が2D平面に拘束される状況(例えば、ガラス表面に付着した細菌集団)で、2Dセグメンテーション法を使用します。細胞集団が3次元空間(例えば、バイオフィルムおよび組織サンプル)に分布している場合、または細胞サイズが光学スライスの厚さ(例えば、酵母細胞、哺乳類細胞)よりも大きい場合には、3Dセグメンテーション法を使用する。2D セグメンテーションについては、セクション 4 を参照してください。3D セグメンテーションについては、セクション 5 を参照してください。

4. 2D画像解析

1. ワークステーションに画像解析ソフトウェア(MATLABなど)を装備します。
2. 単細胞の自然蛍光シグネチャの細胞のセグメンテーションと再構築を行います。
   1. 画像解析ソフトウェアを開きます。
   2. 表示されているスクリプトの 1 つをダブルクリックして開きます "Script2D.m" 。
   3. [エディタ] タブに移動し、[実行] をクリックします。フォルダ選択ウィンドウが表示されます。
   4. ステップ 3.8 で作成したディレクトリを選択し、[ 開く ] をクリックして続行します。セグメンテーション パラメータの入力を求めるダイアログ ボックスが自動的に表示されます。
      注: テスト目的で、提供されたデータセット (「Sample_2D」) を選択します。サンプル データセットは圧縮ファイルとして提供され、事前に抽出する必要があります。
   5. セグメンテーション パラメータを入力します: イメージ 二値化のしきい値 ( 0.45)、 セル領域の上限しきい値 (ピクセル単位) = 200、 セル領域の下限 (ピクセル単位) = 10、 検出器の数 = 32。[ OK] を クリックして続行します。
      注: これらのパラメータは、画質に応じて調整が必要な場合があります。
   6. CRM イメージを表示する新しいイメージ ウィンドウが表示されます。背景の減算に使用する任意の背景領域 (セルが存在しない領域) を選択します。CRM イメージ内の四角形をマウスでドラッグして描画します。選択した領域内をダブルクリックして、選択を確定します。
   7. 手順 4.2.4 で選択した同じディレクトリで Signature という名前の新しいディレクトリを見つけます。
      注: 指定されたコードは、このディレクトリを自動的に作成します。「署名」ディレクトリは、一般的な接頭辞「署名」の後に連続して番号が付.pngファイルとして、集団内の各微生物細胞の自然蛍光シグネチャを格納します。

5.3D画像解析

1. ワークステーションに画像解析ソフトウェア(材料表)を装備します。
2. 単細胞の自然蛍光シグネチャの細胞のセグメンテーションと再構築を行います。
   1. 画像解析ソフトウェアを開きます。
   2. ダブルクリックして、提供されているスクリプト "Script3D.m" を開きます。
   3. [エディタ] タブに移動し、[実行] をクリックします。フォルダ選択ウィンドウが表示されます。
   4. ステップ 3.8 で作成したディレクトリを選択し、[ 開く ] をクリックして続行します。セグメンテーション パラメータの入力を求めるダイアログ ボックスが自動的に表示されます。
      注: テスト目的で、提供されたデータセット (「Sample_3D」) を選択します。サンプル データセットは圧縮ファイルとして提供され、事前に抽出する必要があります。
   5. セグメンテーション パラメータを入力: イメージ 二値化のしきい値 (0 –1) のイメージ の二値化 = 0.01、 セル体積の上限しきい値(ピクセル数)=1,000、セル領域の下限しきい値(ピクセル単位)=20、Xピクセルサイズ[μm/ピクセル]=0.26、Yピクセルサイズ[μm/pixel]=0.26、Zピクセルサイズ[μm/ピクセル]=0.42、検出器数= 32。[OK] をクリックして続行します。励起波長の数の入力を促すダイアログボックスが表示されます。
      注: これらのパラメータは、画質に応じて調整が必要な場合があります。
   6. 画像取得に使用する波長数を入力します(例えば、405、488、561、630を使用する場合は、ダイアログボックスに 4 と入力します)。[ OK] をクリックします。
   7. 最短(すなわち、ボックス名: 励起番号1)から最長波長までのシーケンスで励起波長を入力して、ダイアログボックスに入れます。[ OK] を クリックして続行します。CRM イメージを表示する新しいイメージ ウィンドウがポップアップ表示されます。
   8. 背景の減算に使用する任意の背景領域(つまり、セルが存在しない領域)を選択します。CRM イメージ内の四角形をマウスでドラッグして描画します。選択した領域内をダブルクリックして、選択を確定します。
   9. 手順 5.2.4 で選択したディレクトリで 、Signature という名前のディレクトリを見つけます。
      注: 指定されたコードは、このディレクトリを自動的に作成します。「署名」ディレクトリは、一般的な接頭辞「署名」の後に連続番号が付いた.pngファイルとして、集団内の各単一の微生物細胞の自然蛍光シグネチャを格納します。

6. 統計分析

注:細胞集団のハイパースペクトルの分布を可視化するために、寸法縮小技術(例えば、主成分分析[PCA])を行います。提供されたスクリプト(PCA.py)は、2つのセル集団(すなわち、2つのクラス)に対してPCAを実行する。

1. ワークステーションにプログラミング言語と付属のライブラリとモジュールを装備します (資料表)。
2. C ドライブ (またはそれと同等) に空のディレクトリを作成し、ディレクトリに 「Parent_directory」という名前を付けます (C:/Parent_ディレクトリ)。
3. 2つの細胞集団のそれぞれについて、2つの細胞集団の蛍光シグネチャ(例えば、ステップ4.2.7で生成された.pngファイル)を2つの別々のディレクトリに格納します。
   注: 2 つのディレクトリは両方とも "Parent_directory" に配置する必要があります。
   
   C:/Parent_directory/
   プティダKT2440/
    Signature01.png
    シグネチャー02.png
    :
   プティダKT2442/
    Signature01.png
    シグネチャー02.png
    :
4. PCA.py を「Parent_directory」にダウンロードします。
5. ワークステーションのコマンド・ライン・インターフェースを開きます。
6. コマンドラインインターフェイスに「python C:/Parent_directory/PCA.py」と入力します。
7. 「対象ディレクトリの選択」というメッセージが表示されたら、「Parent_directory」を選択します。
8. 「C:/Parent_directory」で、結果として得られるPCAプロットを含む「PCA.png」を見つけます。

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結果

図1Aは 、従来のスペクトルプロット(上)およびヒートマップ(中央)として提示される細菌細胞の典型的な単細胞蛍光シグネチャを示す。 図1B は、土壌細菌の集団の元のCRM画像に重ね合わせた正確な2D細胞セグメンテーションの結果を示す(シュードモナスプチダ KT2440)¹²。結果として生じる母集団の自然蛍光シグネチャは

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ディスカッション

再現性のある結果を得るために密接に従う必要があるこの方法の2つの重要なポイントがあります:1)励起波長と実験を通じて顕微鏡目的の下でレーザー出力を一貫して保ち、2)正確な細胞セグメンテーションを行います。

最初の点は、異なる実験間で自然蛍光シグネチャを比較する際に特に重要です。最大出力出力はレーザーライン間で大きさが大きく異なる場合がある?...

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資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Agarose	Wako Chemicals	312-01193
Beam splitters	Carl Zeiss, Nikon		MBSInVis405, MBS458, MBS488, MBS458/514, MBS488/543, or MBS 488/543/633 beam splitters (Carl Zeiss)
Confocal microscope	Carl Zeiss, Nikon		Model LSM 880 (Carl Zeiss), Model A1R (Nikon)
Cover slips	Matsunami Glass	C024601
Glass slides	Matsunami Glass	S011120
Half-reflection mirror	Carl Zeiss, Nikon		NT80/20
Laser power meter	Thorlabs		PM400 (power meter console) and S175C (sensor)
LB Broth	Nacalai tesque	20066-95	For bacteria culture
Image analysis software	The MathWorks		MATLAB version 2019a or later, Image Processing Toolbox is needed
Microscope objective	Carl Zeiss, Nikon	440762-9904	e.g. 63x plan Apochomat NA = 1.4 (Carl Zeiss)
Microscope software	Carl Zeiss, Nikon		ZEN (Carl Zeiss),NIS-elements (Nikon)
PBS(-)	Wako Chemicals	166-23555
Programming language			Python and libraries, modules (numpy, scikit-learn, scikit-image, os, glob, matplotlib, tkinter) are rquired to run the supplied PCA script.
Silicone gasket	ThermoFisher Scientific	P24744
Workstation			A high-performance workstation with discrete GPUs is recommended.
Yeast extract-peptone-dextrose (YPD) agar medium	Sigma-Aldrich	Y1500-250G	For yeast culture
YPD medium	Sigma-Aldrich	Y1375-250G