パターン化ニューロン上の神経膠芽腫幹細胞の共培養による移動と細胞相互作用の研究

要約

ここでは、パターン化されたニューロン上で神経膠芽腫(GBM)の移行を分析するための使いやすい共培養アッセイを提示する。我々は、ニューロン上のGBM細胞移動を容易に定量化するためのFiJiソフトウェアでマクロを開発し、ニューロンがGBM細胞侵襲能力を変更することを観察した。

要約

グレードIV悪性神経膠腫(GBM)は、その積極的な特性のためにヒト癌の最も致命的なタイプの一つです。これらの腫瘍の遺伝学の有意な進歩にもかかわらず、GBM細胞が健康な脳のパレンチマに侵入する方法はよく理解されていない。特に、GBM細胞が異なる経路を介して心房に侵入することが示されている。本稿の主な関心事は、白物庫(WMT)に沿った経路である。腫瘍細胞と腹分神経細胞成分との相互作用は十分に特徴付けられていない。本明細書において、GBM細胞浸潤に対するニューロンの影響を評価する方法が記載されている。本論文は、ニューロン上のGBM幹細胞様細胞の移動を解析することによってWMTの侵入を模倣する、高度な共培養イン・ニューロンを紹介する。ニューロンの存在下でのGBM細胞の挙動は、オープンソースおよびフリーアクセスソフトウェアを用いた自動追跡手順を使用して監視される。この方法は、多くの用途、特に機能的および機械学的研究、ならびにニューロンに対するGBM細胞の移動をブロックすることができる薬理学的薬剤の影響を分析するのに有用である。

概要

GBMを含む原発性悪性神経膠腫は壊滅的な腫瘍であり、GBM患者の中生存率は12〜15ヶ月である。現在の治療は、大規模な腫瘍大量切除術と化学療法に依存し、放射線療法と相まって、生存率を数ヶ月しか延長していない。治療障害は、血液脳関門(BBB)を横切る薬物送達不良と、血管内腔、髄液、およびWMTs¹に沿った侵襲的な成長に密接に関連している。血管内侵入は血管の共同オプションとも呼ばれ、よく研究されたプロセスであり、分子機構が解明され始めています。しかし、WMTに沿ったGBM細胞浸潤のプロセスは十分に理解されていません。腫瘍細胞は、シェラーの二次構造に沿って健康な脳に移行する².確かに、ほぼ1世紀前、ハンス・ヨアヒム・シェラーは、現在、脳血管内サテリトーシス、血管内サテリアトーシス、亜脈広がり、WMTに沿った侵略と呼ばれているGBMの侵襲的なルートを説明しました(図1A)。

一部のケモカインおよびその受容体は、例えば、間質細胞由来因子-1α(SDF1α)およびC-X-Cモチーフケモカイン受容体4(CXCR4)など、血管内皮増殖因子(VEGF4)には関与していないが、WMT浸潤^因子3に関与しているようである。さらに最近では、細胞内NOTCH1-SOX2軸がGBM細胞⁴のWMT浸潤において重要な経路であることが示されている。著者らは、GBM幹細胞が部分的に非髄鞘のニューロン上で脳のパレンチマに侵入する方法を説明し、GBM細胞によるミエリン鞘の破壊を示唆した。2019年に3つの論文が連続してネイチャージャーナルに掲載され、グリオーマ開発における電気活動の役割を強調したマイルストーンに達しました^5,6.Monjeと共同研究者による精細な研究は、神経膠腫の発達を促進するニューロリジン-3の分泌における電気活動の中心的な役割に光を当てた。

ウィンクラーと共同研究者は、侵襲的なステップにおいて重要であるGBM細胞(マイクロチューブ)間の接続、および最近、新たに記述された神経神経膠腫シナプスを介したGBM細胞とニューロン間の相互作用について説明した。これらの構造は、α-アミノ-3-ヒドロキシ-メチル-4-イソキサゾアプロピオン酸(AMPA)受容体のグルタミン酸刺激を好み、腫瘍の発生と浸潤を促進するGBM細胞膜に位置する。腫瘍細胞浸潤は、GBM患者において観察される転移または遠隔二次病巣の普及における中心的なプロセスである。トロンボシン−1のようなGBMの浸潤において重要であることがいくつかの要因が同定されている、変換成長因子β(TGFβ調節されたマトリセルタンパク質、またはケモカイン受容体CXCR3)7、8。

ここでは、ニューロンがラミニンの軌跡にパターン化され、GBM細胞が単一細胞またはスフェロイドとして播種されるGBMの浸潤を研究するための単純化されたバイオミメティックモデルが説明されている(図1B)。2つの実験設定は、GBM^9、10、11で観察されるニューロンへの侵入を再現することを目的としています。このようなモデルは、機械的または化学的特性¹²を調節することによって細胞移動を研究することを可能にするアライメントナノファイバー生体材料(コアシェルエレクトロスピニング)として過去に開発されてきた。この記事で説明する共培養モデルは、このプロセスに関与する新しい分子経路を定義することによって、GBM細胞がニューロン上で脱出する方法をよりよく理解することを可能にする。

プロトコル

インフォームド・コンセントは、すべての患者(地元の倫理委員会の規則に従って、ノルウェーのベルゲンのハウケランド病院から)から得られました。このプロトコルはボルドー大学の人間と動物の研究倫理委員会のガイドラインに従います.妊娠中のラットは、ボルドー大学の動物施設に収容され、治療されました.E18タイミングの妊娠ラットの安楽死は_、CO2を用いて行った。すべての動物の手順は、制度上のガイドラインに従って行われ、地元の倫理委員会によって承認されています。すべての商用製品は、 資料一覧で参照されています。

1. パターン化されたスライドの準備

1. マイクロパフォーミング用基板調製
   1. 18 mmの円形ガラスカバーリップを空気/プラズマ活性化で5分間処理します。1時間のデシケーターに100 μLのトリエトキシシラン(3-アミノプロピル)トリエトキシシランを用いて、カバースリップを閉じたチャンバーに入れます。
   2. 10mMカーボネート緩衝液中のポリ(エチレングリコール)-スクシニミジルバレレート(分子量5,000(Peg-SVA))を100mg/mLでインキュベートし、pH>8、1時間用。超純水で広範囲にすすい、化学フードの下で乾燥させます。
      注:この段階では、サンプルは暗い4°Cで保存して、さらに使用することができます。
   3. 光新生剤、4-ベンゾイルベンジルトリメチルアンモニウムクロリド(PLPP)をリン酸緩衝生理食塩分(PBS)に14.7mg/mLで加えます。
      注: PLPP ゲルの濃縮形式も使用できます。これは、PEGブラシ(100 mJ/mm²⁾を劣化させるために必要な短い紫外線(UV)照明時間をもたらす。
2. 光新刺激体ゲル堆積物
   1. スライド中央に沈着するPLPPゲル3μLと無数エタノール50μLの混合物を調製します。絶対エタノールが完全に蒸発するまで、サンプルを化学フードの下に置きます。
      注:この段階では、サンプルは暗い4°Cで保存して、さらに使用することができます。
3. ガラススライドマイクロパターニング
   1. ラダン室にカバースリップを取り付け、オートフォーカスシステムを装備した顕微鏡の電動ステージに置きます。
   2. 想定されるマイクロパターンに対応する画像をソフトウェアにロードします。これらのパラメータを適用する:複製4 x 4回、200 μmの間隔、1,000 mJ/mm²のUV線量。自動UV照明シーケンスの後、PLPPを複数のPBSを洗い流して洗い流します。
      注:PLPPゲルを使用した場合は、脱イオン水で広範な水を流して取り除き_、N2の流れで乾燥し、4°Cで保管してください。
   3. ラミニン(PBSで50 μg/mL)を30分間インキュベートします。PBSで広範囲に洗います。
      注:精製された緑色蛍光タンパク質(GFP、PBS中10μg/mL)の蛍光溶液をラミニンと混合して、蛍光顕微鏡でマイクロパターンを可視化することができます。

2. 共培養のためのニューロンとGBM細胞の調製

1. 胚性ラット海馬ニューロンの培養
   1. 胚(E18)ラットの海馬を解剖し、ハンクのバランス塩溶液(HBSS)/1 mM 4-(2-ヒドロキシェチル)-1-ピペラジネタンスルホン酸(HEPES)/ペニシリンストレプトマイシン溶液に15mLチューブで組織を移管する。海馬を乾燥させることなく余分な溶液を除去する。
   2. ペニシリン(10,000単位/mL)/ストレプトマイシン(10,000 μg/mL)および1 mM HEPESを添加したトリプシンエチレン酢酸(EDTA)5 mLを加え、37°Cで15分間インキュベートします。 HBSS/HEPES/ペニシリンストレプトマイシン溶液で2倍洗浄し、この溶液中に2〜3分間組織を残します。
   3. 2つの炎で磨かれたパスツールピペットを使用して組織を解約し、各組織で10倍上下にピペット化することで、発泡を最小限に抑えるように注意する。細胞を数え、細胞懸濁液の生存率を評価する。以下に示すように、マイクロパターン化されたカバーリップにニューロンをプレートします。
      注:細胞生存率は抽出後85〜90%です。
2. マイクロパターン化されたカバーリップ上のニューロンの細胞培養
   1. PBSでマイクロパターン化ガラススライドを再水和し、完全な神経細胞培養培地をインキュベートする。
   2. E18スプレイグドーリーラットから得られた海馬ニューロンを、3%の馬血清で濃縮された神経基底培地(NBM)の^cm2当たり50,000細胞の密度でマイクロパターン化ガラスカバースリップの上に直接種付けします。マイクロパターン化されたニューロンをインキュベーター(37°C、5%CO2)に48時間置きます。
      注:〜6時間後、主要な海馬ニューロンは、ラミニンマイクロパターンに付着して見ることができます。
3. ニューロン上のヒトGBM幹細胞の共培養
   注:この研究のために、膜GFP陽性および核トマト患者由来GBM細胞は、以前に公表されたプロトコル¹⁰に従って増殖した。
   1. スフェロイド状の細胞が懸濁液で成長するにつれて、200×gで5分間の懸濁液を遠心分離する。5 mLのPBSでスフェロイドを洗浄し、細胞を0.5 mLの細胞解離試薬(材料表参照)で37°Cで5分間インキュベートします。
   2. 4.5 mLの完全なNBM(B27サプリメント、ヘパリン、線維芽細胞成長因子2、ペニシリン、ストレプトマイシンを補^う)を加え、自動計数技術を使用して細胞を数える。
   3. 3%の馬の血清で富化NBMの微パターン神経培養の上に1,000 GBMの細胞をシード。プレートを37°C、5%CO2、湿度95%でインキュベートします。

3. ライブセルイメージング

1. GBM細胞の播種直後に、サーモスタットチャンバーを装備した反転顕微鏡のステージ上にサンプルを置きます。ソフトウェアの多次元取得ツールボックスを使用して、複数の位置を記録するための電動ステージを備えた顕微鏡でライブセルイメージングを行います。温度(37°C)およびガス制御(5%CO2)環境で20倍の目的で、12時間にわたって5分ごとに明視野および蛍光GFP/トマト画像を取得します。

4. 画像解析

注: フィジーを使用して、IJ1 マクロ言語で記述された、2 次元 (2D) イメージ スタックは、半自動処理または、IJ1 マクロ言語で記述された、自家製のユーザー フレンドリツール (このアドレスで入手可能: https://github.com/Guyon-J/Coculture_Gliomas-Neurons/blob/main/README.md) を使用して処理されました (図 2A)。自動化されたワークフローと手順を 図 2Bに要約します。

1. 神経回路ネットワーク解析 (図 2Bi)
   1. スタックのイメージを 1 つ選択します。 ネットワーク ツールを右クリックして、対応する [オプション] ダイアログ ボックスを開き、設定 ( しきい値 = トライアングル、Li、黄、 ガウス ブラー、 中央値 フィルタ = 1、2、3.) を調整して、画像の正確なセグメンテーションを作成します。次に 、[OK] をクリックします。
   2. [ネットワーク] ツールを左クリックすると、次の手順が自動的にアクティブになります。
      1. 選択した画像を複製し、3 つのカラーチャンネル(レッドグレー-グリーン)に 分割 します。
      2. グレーのチャンネル(明視野)を選択し、異なる領域間の分離を強化するために コントラストストレッチエンハンスメント (CSE)を実行します。 Sobel エッジ ディテクタ (SED)を使用して、[ エッジの検索 ]コマンドですでにグループ化されている 2D 信号処理畳み込み操作を実行します。
      3. ダブルフィルタリング(F)の場合は、ガウスブラーと中央値フィルタを適用してノイズを低減し、オブジェクト信号を滑らかにします。黒のピクセル (セル領域) と白のピクセル (背景) を持つバイナリ画像 (BIN-グレー) を取得する調整されたしきい値アルゴリズムを実行してマスク (CM) に変換します。小さな非ネットワーク化されたパーティクルを除去することにより、セル領域を単純なネットワーク (NET) にスケルトン化(Sk) し、NET イメージ内のパーティクル (EP) をフィルター処理します。
      4. 赤と緑のチャンネル(核と膜)の場合は 、二重フィルタリングを実行し、適合した閾値法 を使用してマスクに変換 し、[ パーティクルを分析]コマンドを使用して BIN-green で細胞の形態を決定できるようにします。
      5. 関心領域 (ROI) を OR (結合 ) 演算子で使用するすべてのチャネルを結合し、初期色を単純な RGB 画像に再割り当てします。
2. 単細胞運動性解析(図2Bii)
   1. [単一セルトラッキング]ツールを右クリックして対応するオプションダイアログボックスを開き、設定を調整します(例えば、トレイルタイプ= 核または膜、しきい値= トライアングル、Li..、Z投影= 最大強度、合計スライス、ガウスブラーフィルタ、中央値フィルタ= 1、2、3.)を調整して、画像の正確なセグメンテーションを作成します。次に、[OK] をクリックします。
   2. [単一セルトラッキング]ツールを左クリックすると、次の手順が自動的にアクティブになります。
      1. グレーのチャンネルを削除します。時間(Tスタック)に応じてイメージスタックに対応する画像を生成するスタックに Z投影 を適用します。 ダブルフィルター し、セルによって残された軌跡を マスクに変換 します。小さなパーティクルを BIN-RED/緑のイメージに削除します。
      2. ROI を使用して、セル トレースの各輪郭を選択し、[オプション]ダイアログ ボックスの[エッジ検出をスキップ] チェックボックスをオンにして、後続の手順でこの前処理手順をスキップします。
      3. 元のスタック上の赤いチャネル(トレイルタイプ= nucleus)を分離します。1 つの ROI を選択し、外側の領域を削除します。すべての画像をダブルフィルターし、マスク(ビンレッド)に変換します。各二項核の重心X/Y位置を決定します。
   3. スプレッドシート ソフトウェア¹³に対して既に公開されているマクロを使用して、このセルの平均平方変位、方向比、平均速度を計算します。
3. 多細胞追跡解析 (図 2Biii)
   1. トラッキングツールを右クリックして、対応するオプションダイアログボックスを開き、設定(閾値= トライアングル、Li、黄、ガウスブラー 、中央値フィルタ = 1、2、3.)など)を調整して、画像の正確なセグメンテーションを作成します。次に、[OK] をクリックします。
   2. 追跡ツールを左クリックすると、次の手順が自動的にアクティブになります。
      1. グレーのチャンネルを削除します。
      2. 赤と緑のチャンネルを分割し、ダブルフィルタを行い、マスクに変換します。
      3. 画像計算機を使用してチャンネルをマージ.コマンドはAND演算子で、膜内に見つかった核信号のみを残します。
         注:フィジーのいくつかのプラグインは、同時にこのバイナリ前処理された画像内のいくつかのセルのX / Y位置を決定するために使用することができます( 資料表を参照してください)。
   3. 先に説明したマクロ¹³を用いて、これらのセルの軌道プロット、平均平方変位、方向比、平均速度を計算する。
4. ニューラルマット上のスフェロイド移動 (図2Biv)
   1. [移行] ツールを右クリックして、対応する[オプション]ダイアログ ボックスを開き、設定 (しきい値= トライアングル、Li、黄、ガウス ブラー 、中央値フィルター = 1、2、3.) を調整して、画像の正確なセグメンテーションを作成します。次に、[OK] をクリックします。
   2. 移行ツールを左クリックすると、次の手順が自動的にアクティブになります。
      1. 赤いチャンネルを削除します。
      2. 緑と灰色のチャンネルを分割します。
      3. グレーのチャンネルの場合は、手動でニューロンマットの輪郭を 描 き、その面積を測定します。
      4. 緑のチャンネルでは、スタック をダブルフィルタ し、 マスクに変換します。パターンの外側の領域 (BIN) を削除し、各画像の二値化セル領域を決定します。
         注: 上記のパラメータは、目的のアイコンを左クリックして値を変更することで調整されます。この処理は手動で行うことができます。ただし、多数の画像(取得あたり約100)、チャンネル(一般的には3チャンネル)、および処理ステップの場合は、自動化されたツールまたは半自動ツールが適しています。

結果

蛍光GBM細胞と共培養したパターン化されたニューロンは、プロトコルセクションに記載されているように調製し、追跡実験を行った。GBM細胞は、ニューロン上で移行しながら、それらの形状を素早く変更しました(図1B:パネル6 と ビデオ1)。細胞は、ランダムな動きで、ニューロンの拡張に沿って移行しました (ビデオ 1).蛍光GBM細胞?...

ディスカッション

神経膠芽腫は、周囲の血管のコオプション、間質の侵略、またはWMTs¹⁸への侵入など、さまざまなモードを使用して広くパレンチマに侵入する。この後者のモードは、WMTの侵略に関連するインビトロまたはインビボモデルで適切な発見に困難があるため、文献で十分に特徴付けられていない。ここでは、培養げっ歯類ニューロンをラミニンコーティングされた表?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
(3-aminopropyl) triethoxysilane	Sigma	440140-100ML	The amino group is useful for the bioconjugation of mPEG-SVA
96-well round-bottom plate	Sarstedt	2582624	Used to prepare spheroids
Accutase	Gibco	A11105-01	Stored at -20 °C (long-term) or 4 °C (short-term), sphere dissociation enzyme
B27	Gibco	12587	Stored at -20 °C, defrost before use
Basic Fibroblast Growth Factor	Peprotech	100-18B	Stored at -20 °C, defrost before use
Countess Cell Counting ChamberSlides	Invitrogen	C10283	Used to cell counting
Coverslips	Marienfeld	111580	Cell culture substrate
Dessicator cartridges	Sigma	Z363456-6EA	Used to reduce mosture during (3-aminopropyl) triethoxysilane treatment
DPBS 10x	Pan Biotech	P04-53-500	Stored at 4 °C
Fiji software, MTrack2 macro	ImageJ		Used to analyze pictures
Flask 75 cm²	Falcon	10497302
HBSS	Sigma	H8264-500ML
Heparin sodium	Sigma	H3149-100KU	Stored at 4 °C
Laminin		114956-81-9	Promotes neuronal adhesion
Leonardo software			loading of envisioned micropatterns
MetaMorph Software	Molecular Devices LLC	NA	Microscopy automation software
Methylcellulose	Sigma	M0512	Diluted in NBM for a 2% final concentration
Neurobasal medium	Gibco	21103-049	Stored at 4 °C
Nikon TiE (S Fluor, 20x/0.75 NA)			inverted microscope equipped with a motorized stage
Penicillin - Streptomycin	Gibco	15140-122	Stored at 4 °C
PLPP	Alveole	PLPPclassic_1ml	Photoinitiator used to degrade the PEG brush
Poly(ethylene glycol)-Succinimidyl Valerate (mPEG-SVA)	Laysan Bio	VA-PEG-VA-5000-5g	Used as an anti-fouling coating
PRIMO	Alveole	PRIMO1	Digital micromirror device (DMD)-based UV projection apparatus
Trypan blue 0.4%	ThermoFisher	T10282	Used for cell counting
Trypsin-EDTA	Sigma	T4049-100ML	Used to detach adherent cells