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要約

このプロトコルは、蛍光発生RNAアプタマーであるホウレンソウ2とブロッコリーの動態を決定するための2つの方法を提示します。最初の方法では、プレートリーダーを使用してin vitro で蛍光発生アプタマー動態を測定する方法を説明し、2番目の方法では、フローサイトメトリーによる細胞内の蛍光発生アプタマー動態の測定を詳述します。

要約

蛍光発生RNAアプタマーは、RNAのタグ付けと視覚化、遺伝子発現の報告、代謝物やシグナル伝達分子のレベルを検出する蛍光バイオセンサーの活性化のために生細胞に適用されています。これらの各システムの動的変化を研究するためには、リアルタイムの測定値を得ることが望ましいが、測定の精度は、蛍光発生反応の速度論がサンプリング周波数よりも速いことに依存する。ここでは、試料注入器とフローサイトメーターを備えたプレートリーダーを使用して、蛍光発生RNAアプタマーのin vitroおよび細胞のターンオン速度を決定する方法について説明します。ホウレンソウ2とブロッコリーのアプタマーの蛍光活性化のin vitro動態は、二相会合反応としてモデル化でき、それぞれ0.56 s-1と0.35 s-1の異なる高速相速度定数を持つことを示しています。さらに、グラム陰性菌への色素拡散によってさらに制限される大腸菌におけるホウレンソウ2の蛍光活性化の細胞動態は、微小なタイムスケールで正確なサンプリング周波数を可能にするのに十分迅速であることを示しています。蛍光活性化速度論を解析するこれらの方法は、開発されている他の蛍光発生RNAアプタマーに適用可能である。

概要

蛍光発生反応は、蛍光シグナルを生成する化学反応です。蛍光発生RNAアプタマーは通常、低分子色素を結合させて蛍光量子収率を高めることでこの機能を果たします(図1A)1。異なる蛍光発生RNAアプタマーシステムが開発されており、特定のRNAアプタマー配列および対応する色素リガンドからなる1。蛍光発生RNAアプタマーは、mRNAおよびノンコーディングRNAの生細胞イメージングを可能にする蛍光タグとしてRNA転写物に付加されています2,3,4。それらはまた、レポーターとしての緑色蛍光タンパク質(GFP)の使用と同様に、遺伝子発現の蛍光レポーターとしてプロモーター配列の後に配置されていますが、報告機能はRNAレベル5,6です。最後に、蛍光発生RNAアプタマーは、特定の低分子に応答して蛍光発生反応を引き起こすように設計されたRNAベースの蛍光バイオセンサーに組み込まれています。RNAベースの蛍光バイオセンサーは、様々な非蛍光代謝物およびシグナル伝達分子の生細胞イメージングのために開発されている7、8、9、10、11。

RNAの局在、遺伝子発現、および低分子シグナルの動的な変化を可視化するための蛍光発生RNAアプタマーの開発への関心が高まっています。これらの各アプリケーションでは、リアルタイムの測定値を取得することが望ましいですが、測定の精度は、蛍光発生反応の速度論がサンプリング周波数よりも速いことに依存します。ここでは、試料注入器を備えたプレートリーダーを用いて蛍光発生RNAアプタマーSmallach2 12およびBroccoli13のin vitro動態を決定する方法と、フローサイトメーターを使用して大腸菌で発現するSpinach2の細胞ターンオン動態を決定する方法について説明します。これら2つのRNAアプタマーが選ばれたのは、RNA局在2,3,4の研究に適用されており、レポーター5,6およびバイオセンサー7,8,9,10,11で使用されており、対応する色素リガンド(DFHBIまたはDFHBI-1T)が市販されているためです。文献で決定されたそれらのインビトロ特性の要約は、表14、13、14に与えられ、これはプロトコール開発(例えば、使用される波長および色素濃度)を知らせた。これらの結果は、RNAアプタマーの影響を受ける蛍光発生反応が迅速であり、目的の細胞生物学的用途の正確な測定を妨げるべきではないことを示しています。

プロトコル

1. インビトロ 動態実験

  1. PCRによるDNAテンプレートの調製
    1. PCR反応のセットアップ:PCR反応を準備するには、薄肉PCRチューブで次の試薬を混ぜ合わせます。
      33 μL の二重蒸留水 (ddH2O)
      10 μLの5xバッファー(ハイフィデリティDNAポリメラーゼ用)
      デオキシリボヌクレオシド三リン酸(dNTP)2 mM各5 μL
      0.5 μL 40 μM フォワードプライマー
      0.5 μL の 40 μM リバースプライマー
      0.5 μL(10-100 ng)のDNAテンプレート(ホウレンソウ2 PCRのみ;ブロッコリープライマーが重複)
      0.5 μLのハイフィデリティDNAポリメラーゼ(最後に追加)
      注:合成オリゴヌクレオチドは、多くの場合、乾燥状態で出荷されます。ストック溶液を調製するには、ddH2Oの既知の容量(100 μLを推奨)を追加し、その溶液のA260 を測定して、吸光係数をオンラインで最近傍ルールで計算できるベールの法則によって濃度を決定します。その後、このストック溶液を使用して、PCRでの使用に適した希釈を行うことができます。
    2. サーモサイクラープロトコルを実行します。
      1. 次のサーモサイクラープロトコルを使用して、完全長のほうれん草2およびブロッコリーDNAテンプレートを増幅します。
        初期変性:98°Cで2分間
        35サイクル:
        変性:98°Cで15秒間の変性
        アニーリング:72°Cで30秒
        伸長:72°Cで30秒
        最終延長:72°Cで5分間。
      2. 反応後、低分子量ラダー(サイズ範囲:25〜766ヌクレオチド)とともに2%アガロースゲルで生成物の少量のアリコートを分析し、目的のDNA産物の存在を確認します。
      3. 市販のゲル抽出またはPCRクリーンアップキットで生成物を精製し、ddH2Oまたはメーカーが提供するバッファーで溶出します。
        注:PCRクリーンアップキットを選択するときは、カラムの分子量カットオフがT7-ブロッコリー(81ヌクレオチド)を保持するのに十分低いことを確認してください。
        注:オプションの一時停止ポイント:DNAを-20°Cで保存します。
  2. インビトロ転写(IVT)によるホウレンソウ2およびブロッコリーRNAの調製
    1. 転写反応を設定します。
      1. 100 μLの転写反応を調製するには、1.5 mLの微量遠心チューブで次の試薬を組み合わせます:10 μLの10x転写バッファー+ 20 μLの10 mMリボヌクレオシド三リン酸(rNTP)+ 1-64 μLのDNAテンプレート(合計1 μg)+ 2 μLの無機ピロホスファターゼ+ ddH 2 Oから98 μL +2μLのT7 RNAポリメラーゼ(最後に追加)。
      2. この反応液を37°Cで4時間インキュベートします。 20%スクロース、0.1%ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)、1xトリスホウ酸EDTA(1x TBE)バッファー、および~18 M尿素からなる2x尿素ゲルローディングバッファー(2x ULB)を100 μL添加して反応を停止します。
        注:オプションの一時停止ポイント:クエンチ反応を-20°Cで保存します。
  3. RNAのポリアクリルアミドゲル電気泳動(PAGE)精製
    1. ほうれん草2およびブロッコリーRNAのページ精製
      注意: 非重合(液体または粉末)アクリルアミドは非常に有毒です。粉末アクリルアミドの重量を量る場合は、ドラフトで計量してください。常に適切な保護具を着用し、アクリルアミド粉末または溶液で汚染された手袋をすぐに取り外し、手をよく洗ってください。アクリルアミドが皮膚に直接触れた場合は、露出部分を石鹸と水で少なくとも15分間洗ってください。アクリルアミドが目に直接入った場合は、水で15分間洗い流してください。
      1. PAGEゲルの調製:全長製品から不要な中絶転写物および未反応rNTPを除去するには、6%尿素ポリアクリルアミドゲルを調製します。一般に、28 cm x 16.5 cm x 1.5 mmのゲルは8ウェルコームで使用できます。1x TBEバッファーを使用してリザーバーを満たすゲルおよび電気泳動装置をセットアップします。
      2. PAGEゲルにRNAサンプルをロードする:レーンごとに1回のクエンチされた200 μL反応でゲルをロードします。別のレーンに、トラッカー色素キシレンシアノールとブロモフェノールブルーを含む2x ULBを負荷し、それぞれ106ヌクレオチドと26ヌクレオチドでゲル中を移動します15。次のステップで汚染の可能性を回避するために、各サンプルの間に空のレーンを残します。
      3. PAGEゲルを実行する:95 ntのほうれん草2と49 ntのブロッコリーをそれぞれの切り捨てられた製品から分離するには、25 Wで1.5〜2時間ゲルを実行し、その時点でブロモフェノールブルー染料はゲル長の~5/6に移動します。
      4. PAGEゲル中のRNAサンプルを視覚化する:ゲルの周りのガラス板を分解し、両面をラップでゲルを覆い、ラップのレーンにラベルを付けます。UV光の下で蛍光TLCプレート上にラップされたゲルを置くことにより、UVシャドウイングによって暗い部屋でRNAバンドを視覚化します。製品に対応するRNAバンドの端をマーカーですばやく輪郭を描き、UVランプをオフにして、UV曝露による損傷を最小限に抑えます。
      5. PAGEゲルからRNAサンプルを切除して抽出する:各サンプルの新しいカミソリブレードを使用して、目的の製品バンドを切り取り、~1 mmの立方体にダイスし、ゲル片を500 μLのクラッシュソークバッファーを含む2 mLのマイクロ遠心チューブに追加して、室温(RT)で2時間、または4°Cで一晩ローテーターでRNAを抽出します。
        注:オプションの一時停止ポイント:サンプルは-20°Cで保存できます。
      6. RNAを沈殿させる
        1. バッファー中の抽出されたRNAからゲル片を分離するには、サンプルを13,000 x g で4°Cで20分間遠心分離し、次にナローチップピペットを使用して上清を抽出し、新しい2 mLマイクロ遠心チューブにロードします。
        2. RNAを沈殿させるには、1.5 mLの氷冷エタノールと1 μLの20 mg/mLグリコーゲン、ボルテックスを加え、-20°Cまたは-80°Cで少なくとも1時間保存します。
          注:オプションの一時停止ポイント:RNAは-20°Cで数か月間保存できます。
      7. RNA沈殿物の収集:沈殿したRNAを13,000 x g で4°Cで20分間遠心分離することによりペレット化します。 上清を除去し、残りのエタノールを屋外(~1時間)で蒸発させてから、ペレットを30 μLのddH2Oまたは1x TEバッファーに再懸濁します。
        注:このプロセスにより、通常、最終的なRNA濃度は~10 μMになります。
        注:オプションの一時停止ポイント:RNAサンプルは-20°Cで数か月間保存できます。
    2. RNAストック濃度を決定します。
      1. 加水分解反応用のRNAアリコートを調製します。
        1. このアッセイを実行するには、まずUV/Visナノ分光光度計を使用してストックRNAサンプルのA260 を測定し、サンプルの希釈アリコートをddH2Oで~10吸光度単位(AU)に希釈します。
        2. 0.5 mL PCRチューブで以下の反応液を調製します:16 μLのddH 2 O + 2 μLの10x Na2CO3バッファー +2μLのRNAアリコートを~10 AUに希釈します。反応液を95°Cで90分間インキュベートし、室温まで冷却します。
      2. ヌクレオチド吸光度を使用してRNA濃度を決定する:UV/Visナノ分光光度計でこのサンプルのA260 を測定し、次の式を使用してRNA濃度を計算します。
        figure-protocol-3868
        ここで、cはRNAの濃度、bはパス長、iは特定のヌクレオチド(A、C、G、またはU)、niはRNA配列中のヌクレオチドiの頻度、ε iはヌクレオチドiのモル吸光係数です。元のストックRNA濃度を決定するには、cに希釈係数を掛けます。
        注:オプションの一時停止ポイント:RNAは-20°Cで数ヶ月間保存できます。
  4. を実行する in vitro プレートリーダー動態アッセイ
    1. RNA再生プログラムを設定します。 [新しいプログラムの作成] > [新しい フェーズの追加] > [新しいステップの追加] を 複数回選択して、次のサーモサイクラー プロトコルを作成し、[ 保存] を押す前に次の各ステップを追加します。
      70°Cで3分間
      65 °C で 45 秒間
      60°Cで45秒間
      55 °C で 45 秒間
      50°Cで45秒間
      45 °C で 45 秒間
      40°Cで45秒間
      35 °C で 45 秒間
      30 °C で 45 秒間
    2. RNAの再生:ホウレンソウ2およびブロッコリーRNAを再生するには、0.5 mL薄肉PCRチューブ内のddH 2 O中の各RNAの2 μMストックを調製し、次に等量の2x再生バッファー(80 mM HEPES、pH 7.5 [KOH]、250 mM KCl、6 mM MgCl2)を加えて1 μM RNA溶液を作製します。チューブをサーモサイクラーに追加し、保存した再生プログラムを開いて、[実行]を押します。
      注:サーモサイクラーが利用できない場合は、代わりにRNAを70°Cのヒートブロックで3分間インキュベートしてから、ベンチでRTまでゆっくりと冷却することができます。
    3. 結合反応バッファーの調製:1つのアプタマー-色素結合反応用のバッファーを調製するには、バッファー成分を含むマスターミックスを作成します(69.5 μLのddH 2O + 4 μLの1 M HEPES、pH 7.5 [KOH] + 6.2 μLの2 M KCl + 0.3 μLの1 M MgCl2)。必要なサンプルと反復の数に応じて、これらの値にサンプル数に1を加えた数を掛けます。一般に、RNAサンプルあたり3回の反復が満足できる。
    4. プレートリーダーを準備します。
      1. プレートリーダーインジェクタープログラムのセットアップ:蛍光プレートリーダーで 温度を選択し、 希望の温度を37°Cに設定し、速度論実験を開始する前に温度がこの値に平衡化されていることを確認してください。プレートリーダーソフトウェアを開き、[設定] >[取得ビュー]を選択し、キネティクス測定用に次のプログラムを入力します。
        ループ:各ウェル
        ベースライン設定: 60 ベースライン読み取り
        スマートインジェクション設定:10 μLインジェクション(ベースライン読み取り後に行われます)
        蛍光(またはFL)は次のように読みます。
        励起: 448 nm (帯域幅: 9 nm)
        発光: 506 nm (帯域幅: 15 nm)
        カートリッジ: モノ (s/n 3297)
        タイミング：
        合計読み取り時間:10分
        読み取り間隔:0.5秒
        PMTおよび光学部品:読み取りあたり6回の点滅
        ループ:次の井戸
      2. インジェクターを準備する
        1. インジェクターを洗浄して吸引する:プレートリーダーインジェクターを準備するには、最初にプレートリーダーで[注入]を選択し、指示されたときにプレートリーダーに廃棄物収集プレートを供給してから、[洗浄]を選択し、プレートリーダーの指示に従って注入チューブを1mL容量のddH 2 O、ddH2O中の75%エタノールで洗浄します。 そしてddH2O。次に、[吸引]を選択して、インジェクターが余分な液体を排出できるようにします。
        2. インジェクターのプライミング:前の画面に戻った後、[ Prime ]を選択して、注入する260 μL容量のリガンドを2つインジェクターでプライミングし、実験中に純粋で濃縮されたリガンドがサンプルに追加されるようにします(この場合、ddH2O中の100 μM DFHBIでプライミングします)。
    5. in vitroキネティクス実験の実行:1回のキネティクス実験を実行するには、まず、事前に調製した結合バッファーマスターミックス80 μLを96ウェルクリアボトムプレートの1ウェルに加え、次に10 μLの変性RNAを加えます。このプレートとインジェクター内のDFHBI溶液をプレートリーダーで37°Cで15分間平衡化させます。
    6. プレートリーダーソフトウェア の設定 で、 読み取り領域で分析するウェルを選択し、[ ホーム ]タブで[ 実行 ]を選択して、前述の動力学プログラムを実行します。すべての実験が完了するまで、このプロセスを繰り返します。
      注:重要なことに、リピュートとサンプルの間で同じ条件下でRNAキネティクスが測定されることを確認するために、キネティクス実験は一度に1ウェルずつ実行する必要があります。
    7. インジェクターを洗浄する:注入チューブから残りのDFHBI溶液を除去するには、ステップ1.4.4.2.1の説明に従って、1mL容量のddH 2 O、ddH2O中の75%エタノール、次にddH2Oで注入チューブを洗浄します。
      注: オプションの一時停止ポイント。
  5. 蛍光発生RNAアプタマーの インビトロ 動態の解析。
    1. 解析ソフトへのデータ入力:実験データをスプレッドシートとしてエクスポートし、データを簡単にコピーして処理します。解析ソフトウェアで、XY形式の新しいデータテーブルを作成します。X列に、各読み取りタイムポイントを入力し、t = 0をDFHBI注射の時間とします。Y列に、t = 0から始まるそれぞれの時点での反復間の平均蛍光値を入力します。
    2. データの正規化とグラフ化:蛍光値を正規化するには、[ 分析>データ処理] > [正規化] をクリックし、[ OK] をクリックします。正規化にデータセットの最小値と最大値を使用し、結果を分数として表示し、 結果をグラフ化することを選択し、[ OK] をクリックします。正規化された平均蛍光の経時的なグラフを作成するには、[ データセット名]の正規化 アイコンをクリックし、 グラフファミリー: ポイントのみのXYを選択します。
      注: 誤差範囲を見ると、少数の時点がグラフ化されている場合に役立ちます。これらが必要な場合は、XY 形式のデータ テーブルを選択するときに、[Y] の下のオプションを選択して、並べて列にレプリケート値を入力します。デフォルトのオプションを選択して結果のテーブルをグラフ化すると、エラーバー付きのグラフが生成されます。
    3. カーブフィットを実行してキネティックパラメータを取得する:カーブをキネティクスデータにフィットするには、[分析]>[データの分析]をクリックし、[XY分析]タブで[非線形回帰(カーブフィット)]を選択します。[モデル]タブで、[指数>2相の関連付け]をクリックして、速度論データを次の2相関連方程式に適合させます。
      figure-protocol-7945
      ここで、Yは時間Xにおける蛍光、Y 0はt = 0における蛍光、K FastおよびK Slowはそれぞれ高速および低速速度定数であり、SpanFastおよびSpanSlowは、それぞれ高速および低速によって説明される蛍光ターンオンの範囲である(代表的な結果、図1を参照)。[ノンリンフィット]タブをクリックして、速度定数、t1/2値、およびパーセントファスト値を表示します。
      注:これらすべての値の標準偏差を取得するには、個々のプレートリーダー実験の反復を上記と同じ方法で処理できます。

2. 細胞動態実験

  1. 大腸菌株の調製
    1. BL21スター(DE3) 大腸菌 細胞を、メーカーのプロトコルに従って~100 ngのpET31b tRNA-Spinach2コンストラクトで形質転換します。
      注:プラスミド構築物は市販されています(プラスミド#79783)。
    2. カルベニシリン(炭水化物:50 mg / mL)プレートを含むLB寒天培地に細胞をプレートし、37°Cで12〜16時間インキュベートします。プラスミドを含む細胞は、プレート上のコロニーとして成長します。
      注:オプションの一時停止ポイント:プレート上の形質転換BL21スター細胞は、パラフィルムで包んで4°Cで1週間保存できます。
  2. 細胞の増殖と蛍光発生RNAアプタマーの発現誘導
    1. カルベニシリン(Carb:50 mg/mL)を含む非誘導培地(NI)の2 mL培養液に、形質転換BL21 Star細胞の単一コロニーを接種します。少なくとも3回の生物学的複製についてこれを繰り返します。培養物をインキュベーター/シェーカーで37°C、250 rpmで22〜24時間インキュベートします。
      メモ: オプションの一時停止ポイント:NI培地で増殖した細胞はプラスミドを保持し、4°Cで1週間保存できます。
    2. NI培地で増殖後、培養液を100倍に希釈して、カルベニシリン(炭水化物:50 mg/mL)を含む新しい3 mLのZYP-5052自己誘導培地(AI)にします。細胞をインキュベーター/シェーカーで37°C、250 rpmで16〜18時間増殖させ、発現を誘導します。
      注:培養物の典型的なOD600 は、18時間の成長後に2.0〜3.3の範囲になります。最適なセル密度範囲は2.5〜3.0です。
  3. 細胞動態実験の実施
    1. フローサイトメーターをセットアップします。
      1. 機器に接続されているフローサイトメーターとコンピューターの電源を入れます。フローサイトメーターのソフトウェアにログインしたら、[ 機器 ]タブで[ スタートアップ ]アイコンをクリックします。ソフトウェア画面に表示される手順に従って、インストゥルメンテーションが正しく初期化されていることを確認します。
        注:一部のフローサイトメーターでは、機器の起動シーケンスを プライミングと呼びます。実験に使用するフローサイトメーターの製造元のプロトコルに必ず従ってください。
      2. パフォーマンス テストを実行します (該当する場合)。 [メインメニュー ]タブで、[ パフォーマンステスト]をクリックします。培養チューブに、メーカーの性能追跡ビーズを3 mLのフォーカシング液に3滴加えます。
      3. 培養チューブをサンプルチューブリフターに入れ、リフターを持ち上げます。[パフォーマンステスト の実行]をクリックする前に、トラッキングビーズのチューブのロット#が [パフォーマンステストのセットアップ ]画面に示されているものと同じであることを確認してください。[ パフォーマンス テスト ] をクリックしてテストを実行します。
      4. この実験用のフローサイトメーターソフトウェアを、単一細胞蛍光の以下の取得パラメータでセットアップします。
        励起レーザー: 488 nm
        放出チャネル:GFP(FITCとも呼ばれます)
        取得量:40 μL(総吸引量90 μL)
        流量:200μL/分
        各測定のセル数:30,000
        機器設定:
        電圧：
        FSC: 480 V
        SSC: 400 V
        BL1: 540 V
        BL2: 392 V
        BL3: 422 V
    2. 実験用ファイルを設定します。
      1. [ 実験エクスプローラー ] タブでフロー サイトメーターのユーザー名を右クリックして、新しい実験ファイルを作成します。ドロップダウン ウィンドウで [ 新しい実験 ] を選択します。コンピューター画面に新しいウィンドウが表示されたら、[ OK] を選択します。
      2. 新しい実験ファイルで、「グループ」フォルダを右クリックし、[ 新しいサンプルチューブの追加]を選択します。特定の時点ごとにサンプルチューブにラベルを付け、 サンプル を右クリックしてドロップダウンメニューで [名前の変更 ]を選択して複製します。スタディの目的の時間経過の反復数と時間ポイントの合計数について、この手順を繰り返します。
    3. 希釈細胞溶液を調製する:新しい培養チューブに、1.5 mLの1x PBS溶液を加えます。次に、AI培地中の誘導細胞3 μLを1x PBS溶液に加え、希釈細胞溶液を作ります。異なる培養チューブで複製する各生物学的複製について、この手順を繰り返します。
    4. 細胞のバックグラウンド蛍光を測定する:色素を添加する前に、1x PBS溶液中の細胞を含む各生物学的複製培養チューブの読み取り値を取得します。これは、細胞の蛍光バックグラウンドを測定して、色素が添加されると時間の経過とともに折り目がオンになるのを観察するためです。
      1. 読み取りを行うには、培養チューブをサンプルチューブリフターに入れ、リフターを手でサンプル注入針に持ち上げます。[ コレクション パネル ] タブで適切なサンプル ファイルを選択し、[ 記録] をクリックします。
      2. 実行が完了したら、培養チューブでサンプルチューブリフターを手で下げます。これにより、流体システムをフラッシュし、各生物学的複製サンプル間のキャリーオーバーを最小限に抑える すすぎ ステップが開始されます。実行が完了すると、データは自動的にコンピューターに保存されます。
      3. 2.3.4の手順を繰り返して、少なくとも3回の生物学的複製の細胞蛍光バックグラウンドを測定します。次のサンプルファイルに移動するには、 記録 アイコンの下にあるサンプルチューブ名の近くにある右矢印アイコンをクリックして、次のサンプルファイルを選択します。
    5. 色素を含む細胞の時点での蛍光を測定します。
      1. 1.4 μLの濃縮色素ストック(50 mM DFHBI-1T溶液)を細胞を含む1x PBS溶液に加え、最終濃度50 μM DFBHI-1Tを得ました。次に、培養チューブの蓋を固定し、培養チューブを3x〜5x反転させて溶液を均一に混合してから、最初のポイント読み取りを行います。
        注: 大腸菌 の培養チューブ内のDMSOの合計パーセンテージは、細胞の生存率に影響を与える可能性があるため、10%を超えてはなりません16。
      2. 蓋を外し、培養チューブをサンプルチューブリフターに入れます。ホルダーを手でサンプル注入針まで持ち上げ、適切なサンプルファイルの下で、 記録 アイコンをクリックします。さらに、実験の [開始 ] を押してタイマーを開始します。
      3. 実行が完了したら、チューブリフターを手で下げ、手順2.3.5.1〜2.3.5.2を繰り返します。(タイマー作動状態で)濃縮DFHBI-1Tを1.4 μL添加し、培養チューブを反転させ、残りのすべての生物学的複製の読み取りを行います。これらの最初の記録は、すべての生物学的複製について0分で得られた測定値になります。生物学的複製ごとに一度に1つずつこれを行います。
        注:レコードフローサイトメトリーの取得が押された時間をメモします。実験の過程で、この時間をずらして時間に固執します。
      4. サンプルチューブリフターの培養チューブをサンプル注入針まで上げ、適切なサンプルファイルを選択し、[ 記録]をクリックして、各実行が完了したらリフターを手で下げて、読み取りを続けます。テスト対象のすべての追加の時点と生物学的複製に対してこれを行います。実験が完了するまで手順を繰り返します。
        注意: サンプルをアルミホイルで覆うことにより、溶液中のDFHBI-1Tの光退色を避けるために、サンプルを光から遠ざけてください。
    6. 色素を含まない細胞の時点で蛍光を測定します(コントロール)。
      1. フローサイトメーターの適切な洗浄プロトコルを実行してから、メーカーのプロトコルに従ってネガティブコントロールで実験を再度繰り返します。これは、前の実験から制御時点分析実験への持ち越しを最小限に抑えるために行われます。以下は、実験間のフローサイトメーターについて従う手順です。
        1. 空の培養チューブをチューブリフターに手で入れ、チューブホルダーを持ち上げて、[機器]タブの[詰まり解除]アイコンをクリックします。これにより、流路系システムでバックフラッシュが実行され、粘着性のあるサンプルがクリーンアップされます。チューブホルダーを手で下げ、詰まりのないシーケンスが完了したらチューブを取り外します。
        2. 新しい培養チューブで、10%漂白剤溶液3 mLを追加し、培養チューブをチューブホルダーに入れ、ホルダーを手でサンプル注入針に持ち上げます。さらに、フローサイトメーターに該当する場合は、清潔な96ウェルプレートをオートサンプラーに入れます。
        3. サニタイズ SIP/サニタイズオートサンプラーSIP アイコンをクリックして、流路系システム全体で10%の漂白剤を使用したクリーニングシーケンスを実行します。チューブホルダーを下げて、クリーニングシーケンスを完了します。
      2. 制御時間ポイント分析のサンプル・ファイルを、ステップ 2.3.3 の指示に従って設定します。
      3. 新しい培養チューブで、1x PBS溶液1.5 mL中の希釈細胞溶液を調製します。AI培地中の誘導細胞3 μLを1x PBS溶液に加え、希釈細胞溶液を作ります。生物学的複製ごとにこの手順を繰り返します。
      4. 1.4 μLのDMSOを培養チューブに1つずつ加え、細胞を含む1x PBS溶液に添加し、同じ時点でテストします。培養チューブの蓋を固定し、培養チューブを3x〜5x反転させて溶液を均一に混合してから、最初のポイント読み取りを行います。生物学的複製ごとに一度に1つずつこれを行います。
      5. コントロール細胞の分析には、色素を含む細胞と同じプロトコルに従い、ステップ2.3.5.2-2.3.5.4を使用します。
    7. フローサイトメーターのシャットダウン:機器の適切なシャットダウンについては、製造元のプロトコルに従ってください。フローサイトメーターの場合、機器は以下の方法でシャットダウンの準備をします。
      1. フローサイトメーターの初期クリーニングプロトコルを、ステップ2.3.6.1.1-2.3.6.1.3に従って実行します。
      2. 培養チューブを10%漂白剤溶液と交換し、3 mLの集束液を入れた培養チューブと交換します。チューブホルダーを手で持ち上げ、[ シャットダウン ]アイコンの下でドロップダウンメニューをクリックして、[ 完全]を選択します。
        注: オプションの一時停止ポイント。
  4. フローサイトメトリーデータの解析
    1. 分析のためにすべての FCS ファイルをエクスポートします。フローサイトメトリー解析ソフトウェアでFCSファイルを開きます。
    2. セルのみのFCSファイルの1つを使用して、前方散乱(FSC)と側方散乱(SSC)ドットプロット(FSCエリア/SSCエリア)からゲートを生成し、両方のログ軸を使用してデブリから信号を除外します。このゲートを作成するには、フローサイトメトリー分析ソフトウェアの AutoGate アイコンをクリックし、 Gate 1という名前を付けます。これと同じゲートを、データ処理ワークスペースの [すべてのサンプル ] タブでテストされたすべてのサンプルに適用します。これにより、処理されるすべてのFCSファイルの下に ゲート1 が表示されます。
    3. 手順 2.4.2 で使用した [セルのみ] FCS ファイルをダブルクリックして、新しいサブセット ファイルを作成します。軸設定をFSC面積/FSC高さに変更し、どちらも対数軸を使用します。フローサイトメトリー分析ソフトウェアの AutoGate アイコンをクリックして楕円形ゲートを生成し、 ゲート2と名付けます。このゲートを、手順2.4.2で設定したゲートの下のサブセットとして、テストするすべてのサンプルに適用します。これにより、すべてのサンプルに ゲート 1 >ゲート 2 が各 FCS ファイルが関連付けられます。
    4. ゲート 2 をダブルクリックして、手順 2.4.2 と手順 2.4.3 で設定した別のサブセット ファイルを作成します。軸の設定をFSCエリア/ヒストグラムに変更します。このヒストグラムゲートをサブセットとしてテストするすべてのサンプルに適用すると、すべてのサンプルにゲート1>ゲート2>ゲート2が各FCSファイルに関連付けられます。
      注: ヒストグラムの名前を ゲート 2 からヒストグラムに変更して、 ヒストグラム をレイアウト ウィンドウに移動したり、データ処理でより多くの組織を作成したりできます。
    5. 平均蛍光強度 (MFI) 値を分析するには、レイアウト ウィンドウを開きます。各時点のヒストグラム ゲートをクリックして、レイアウト ウィンドウにドラッグします。
    6. テストされた各サンプルについて∑平均:BL1-A」(GFP)の統計分析を実行して、MFI結果をレイアウトウィンドウに表示します。
    7. 少なくとも3つの独立した生物学的反復の時点分析ごとのMFI値の標準偏差を計算します。
    8. 各時点のヒストグラムと MFI 値を保存するには、レイアウト ウィンドウを PDF ファイルとしてエクスポートします。
      注: オプションの一時停止ポイント。
  5. フローサイトメトリーデータのグラフ
    1. 各時点のヒストグラムと MFI 値を含む PDF ファイルを開きます。MFI値はデータ分析ソフトウェアにコピーされます。データグラフ作成ソフトウェアで、XY形式の新しいデータテーブルを作成します。
      1. 選択すると、次の項目が選択された XY テーブルが作成されます。
        データテーブル: 新しいテーブルにデータを入力またはインポートします
        オプション：
        X: 経過時間
        Y: 横並びのサブ列に (3 から 4 の) レプリケート値を入力します。
      2. X 軸に、実験とコントロールの実行のすべての時点のラベルを付けます。
      3. グループAでは、色素を添加した細胞の蛍光分析のために、すべての生物学的複製のMFI値を各時点に入力します。
      4. グループBでは、色素(DMSO)を添加していない細胞の分析のために、すべての生物学的複製のMFI値を各時点に入力します。
      5. 結果を確認するには、グラフタブの[データセット名を挿入]をクリックします。これにより、データポイントが平均として表示され、エラーバーは各時点での標準偏差(s.d.)を表します。X 軸は経過時間を表し、Y 軸は MFI 値を表します。

結果

インビトロ 動態
合成オリゴヌクレオチドとして購入したDNAテンプレートとプライマーの配列を 表2 に、試薬レシピを 補足ファイル1に示します。PCR増幅は、その後の in vitro 転写(IVT)反応に必要なT7プロモーターによるDNAテンプレートの量をスケールアップするために使用されます。さらに、PCR増幅は、プライマー伸長による?...

ディスカッション

インビトロ動態実験のために、同じ一般的なプロトコルを変更して、リガンド結合ドメインとフルオロフォア結合ドメインの両方を含むRNAベースの蛍光バイオセンサーのインビトロ動態を測定することができます8。 この場合、リガンド応答速度論を得るために、リガンドを注入する際の測定前にRNAを蛍光色素とともにインキュベートする必要があります。反?...

開示事項

著者は利益相反を宣言しません。

謝辞

この作業は、MCHへの次の助成金によってサポートされました:NSF-BSF 1815508およびNIH R01 GM124589。MRMは、トレーニング助成金NIH T32 GM122740によって部分的にサポートされました。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
AgaroseThermo Fischer ScientificBP160500
Agarose gel electrophoresis equipmentThermo Fischer ScientificB1A-BP
Alpha D-(+)-lactose monohydrateThermo Fischer Scientific18-600-440
Amber 1.5 mL microcentrifuge tubesThermo Fischer Scientific22431021
Ammonium persulfate (APS)Sigma-AldrichA3678
Ammonium sulfate ((NH4)2SO4)Sigma-AldrichA4418
Attune NxT Flow cytometerThermo Fischer ScientificA24861
Attune 1x Focusing FluidThermo Fischer ScientificA24904
Attune Shutdown SolutionThermo Fischer ScientificA24975
Attune Performance Tracking BeadsThermo Fischer Scientific4449754
Attune Wash SolutionThermo Fischer Scientific J24974
Boric acidSigma-AldrichB6768
Bromophenol blueSigma-AldrichB0126
Carbenicillin disodium saltSigma-AldrichC3416
Chlorine BleachAmazonB07J6FJR8D
Corning Costar 96-well plateDaigger ScientificEF86610A
Culture Tubes, 12 mm x 75 mm, 5 mL with attached dual position capGlobe Scientific05-402-31
DFHBISigma-AldrichSML1627
DFHBI-1TSigma-AldrichSML2697
D-Glucose (anhydrous)Acros OrganicsAC410955000
Dimethyl sulfoxide (DMSO)Sigma-AldrichD8418
Dithiothreitol (DTT)Sigma-AldrichDTT-RO
DNA loading dyeNew England BiolabsB7025S
DNA LoBind Tubes (2.0 mL)Eppendorf22431048
dNTPs: dATP, dCTP, dGTP, dTTPNew England BiolabsN0446S
EDTA, pH 8.0Gibco, Life TechnologiesAM9260G
Ethanol (EtOH)Sigma-AldrichE7023
Filter-tip micropipettor tipsThermo Fischer ScientificAM12635, AM12648, AM12655, AM12665
FlowJo SoftwareBD BiosciencesN/AFlowJo v10 Software
Fluorescent plate reader with heating controlVWR10014-924
Gel electrophoresis power supplyThermo Fischer ScientificEC3000XL2
GlycerolSigma-AldrichG5516
Glycogen AM95010Thermo Fischer ScientificAM95010
GraphPad PrismDotmaticsN/AAnalysis software from Academic Group License 
Heat block Thomas Scientific1159Z11
HEPESSigma-AldrichH-4034
Inorganic pyrophosphataseSigma-AldrichI1643-500UN
Low Molecular Weight DNA LadderNew England BiolabsN3233LSupplied with free vial of Gel Loading Dye, Purple (6x), no SDS (NEB #B7025).
Magnesium chloride hexahydrate (MgCl2)Sigma-AldrichM2670
Magnesium sulfate (MgSO4)Fisher ScientificMFCD00011110
Microcentrifuge tubes (1.5 mL)Eppendorf22363204
Microcentrifuge with temperature controlMarshall ScientificEP-5415R
MicropipettorsGilsonFA10001M, FA10003M, FA10005M, FA10006M
Micropipettor tipsSigma-AldrichZ369004, AXYT200CR, AXYT1000CR
Millipore water filter with BioPak unitSigma-AldrichCDUFBI001, ZRQSVR3WW
Narrow micropipettor pipette tipsDOT ScientificRN005R-LRS
PBS, 10xThermo Fischer ScientificBP39920
PCR clean-up kitQiagen28181
PCR primers and templatesIntegrated DNA technologies
PCR thermocycler for thin-walled PCR tubesBio-Rad1851148
PCR thermocycler for 0.5 mL tubesTechne5PRIME/C
pET31b-T7-Spinach2 PlasmidAddgenePlasmid #79783
Phusion High-Fidelity DNA polymerase New England BiolabsM0530LPurchase of Phusion High-Fideldity Enzyme is supplied with 5x Phusion HF Buffer, 5x Phusion GC Buffer, and MgCl2 and DMSO solutions.
Polyacrylamide gel electrophoresis gel comb, C.B.S. ScientificC.B.S. ScientificVGC-1508
Polyacrylamide gel electrophoresis equipmentC.B.S. ScientificASG-250
Potassium chloride (KCl)Sigma-AldrichP9333
Potassium phosphate monobasicSigma-AldrichP5655
Razor bladesGenesee Scientific38-101
rNTPs: ATP, CTP, GTP, UTPNew England BiolabsN0450L
SDSSigma-AldrichL3771
Short wave UV light sourceThermo Fischer Scientific11758221
Sodium carbonate (Na2CO3)Sigma-AldrichS7795
Sodium chloride (NaCl)Sigma-AldrichS7653
Sodium hydroxide (NaOH)Sigma-AldrichS8045
Sodium phosphate dibasic, anhydrousThermo Fischer ScientificS375-500
SoftMax ProMolecular DevicesN/ASoftMax Pro 6.5.1 (platereader software) obtained through Academic Group License
Sterile filter unitsThermo Fischer Scientific09-741-88
SucroseSigma-AldrichS0389
SYBR Safe DNA gel stainThermo Fischer ScientificS33102
TAE buffer for agarose gel electrophoresisThermo Fischer ScientificAM9869
Tetramethylethylenediamine (TEMED)Sigma-AldrichT9281
Tris baseSigma-AldrichTRIS-RO
Tryptone (granulated)Thermo Fischer ScientificM0251S
T7 RNA polymeraseNew England BiolabsM0251S
Urea-PAGE Gel system National DiagnosticsEC-833
UV fluorescent TLC plateSigma-Aldrich1.05789.0001
UV/Vis spectrophotometerThermo Fischer ScientificND-8000-GL
Vortex mixerThermo Fischer Scientific2215415
Xylene cyanolSigma-AldrichX4126
Yeast Extract (Granulated)Thermo Fischer ScientificBP9727-2

参考文献

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